Name: Transfection יעיל ביותר של של אדם המקרופאגים THP-1 על ידי nucleofection (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 54 s
Description: למד שיטת nucleofection לטרנספקציה יעילה של תאי THP-1 מקרופאגים אנושיים תוך שמירה על חיוניות התאים. הפרוטוקול מאפשר knockdown גנטי או overexpression לחקר תפקודי מערכת החיסון.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים לLonza גרופ בע&quot;מ להנותנים חסות פרסום זה על ידי כיסוי עלויות הפרסום. אנו מודים לדויטשה Infarktforschungshilfe, וילהלם-Vaillant-Stiftung, ארנסט-סולביי-Stiftung, וMinisterium Thuringer für Bildung, דעם und Kultur לתמיכה כספית לSL.

.1 Predifferentiation של המקרופאגים THP-1 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לטפח THP-1 תאים בינוניים RPMI-1640 תוספת 10% (v / v) עוברי עגל בסרום (FCS) ו1% (v / v) פניצילין / סטרפטומיצין / L-glutamin (PSG) ב CO 2 (5% חממה) בשעה 37 C °. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני transfection, לפצל תאים ולהעבירם למדיום RPMI טרי כמו קודם. לטפח תאים ל24 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זרע 1.0-1.5 x 10 7 תאים לתוך בקבוק תרבית רקמת 75 סמ&quot;ר או 2.5 x 10 7 תאים לתוך בקבוק תרבית רקמה 150-סמ&quot;ר במדיום RPMI-1640 ולהוסיף 10% (v / v) FCS, 1% (v / v) PSG, 1% (v / v) פירובט נתרן, 1% (v / v) חומצות אמינו חיוני, 10 ng / ml PMA, וβ-mercaptoethanol 50 מיקרומטר ל48 שעות. </li></ol> 2 הכנת nucleofection <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח Accutase אני וכל מדיה לתוך אמבט מים על 37 מעלות צלזיוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדיום התרבות לשאוב מבקבוק ולהחליף עם 6 מ&quot;ל (בקבוק 75 סמ&quot;ר) או 12 מ&quot;ל (בקבוק 150 סמ&quot;ר) שלAccutase אני ודגירה של 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס במשך ניתוק מלא של תאים. שים לב תא מורפולוגיה לאחר Accutase אני טיפול כדי להבטיח שיש לי תאים מראה עגול. אם חלק מהתאים מופיעים עדיין להיות מחוברים, לשטוף בזהירות את הבקבוק עם micropipette או לטפוח בעדינות את זה כדי להשלים את הניתוק. אין להשתמש במגרדי תאים, כמו זה שיש לו השפעה שלילית על חיוניות תא. העבר את ההשעיה תא צינור 15 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במהלך Accutase אני טיפול, להכין את המדיה הבאה: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להכין מדיום transfection: מדיום תרבות תא תוסף עם 1% (v / v) PSG, 1% (v / v) (V / V) בסרום אנושי של חומצות אמינו חיוניות, 1% (v / v) פירובט נתרן, ו -5% (לsiRNA) או 20% (v / v) בסרום אנושי (לפלסמיד דנ&quot;א); להכין נפח סופי של שני 3 מ&quot;ל / מדגם לצלחת אחת 6 היטב או 4 מ&quot;ל / מדגם לשתי 12 גם צלחות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להכין מדיום טיפוח: מדיום תרבות תוספת עם 1% (v / v) PSG, 1% (v / v), 1% (v / v) פירובט של חומצות אמינו חיוניות נתרן, ו -5% (v / v) huסרום אדם (לsiRNA) או 20% (v / v) בסרום אנושי (לפלסמיד), 2.5 ng / ml PMA, ו50 מיקרומטר β-mercaptoethanol; להכין נפח סופי של שני 3 מ&quot;ל / מדגם לצלחת אחת 6 היטב או 4 מ&quot;ל / מדגם לשתי 12 גם צלחות. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השעיה תא צנטריפוגה במשך 5 דקות ב XG 300 בטמפרטורת חדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים לשאוב Accutase אני וגלול ב 1 מ&quot;ל של מדיום RPMI מחומם מראש ל37 ° C; לספור תאים כדי לקבוע מספר תא. הערה: כאשר נהלי ספירת תאים אוטומטיים מהירים משמשים, על שלבים 2.4 ו2.5 עשויים להיות מושמטים וניתן לספור תאים מייד לאחר ניתוק ובלבד שחשיפה ממושכת לAccutase אני נמנעת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור כל דגימת transfection להכין aliquots בצינורות צנטריפוגה מכילים 2.0-2.5 x 10 6 תאים. </li></ol> .3 Nucleofection של המקרופאגים THP-1 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה כל aliquots 10 דקות ב 250 XG בטמפרטורת חדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל פלסמיד דנ&quot;א או siRNA בnuclease ללא<html> מים או מאגר מתאים. שמור את הנפח הנדרש של פלסמיד דנ&quot;א או siRNA קטן ככל האפשר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן אחד קובט Nucleofector גם עם 1 מיקרוגרם של siRNA או 0.5 מיקרוגרם של פלסמיד דנ&quot;א לכל transfection. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע transfection אחד בכל פעם. supernatant לשאוב מaliquot התא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend תאי pelleted בפתרון Nucleofector להניב היקף כולל של של DNA / siRNA ופתרון Nucleofector 100 μl. שמור את הזמן של חשיפה לפתרון Nucleofector הטהור למינימום ולהבטיח שזמן חשיפה אינו עולה על 15 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים תאי resuspended וDNA / siRNA בקובט Nucleofector על ידי הקשה עדינה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאי Transfect על ידי ביצוע תכנית Y-001 במכשיר 2b Nucleofector. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את תאי transfected לתוך בקבוקון תגובה באמצעות טפטפות פסטר מפלסטיק חד פעמי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מייד להוסיף 500 μl של מדיום transfection מוכן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבים 3.4-3.9 עבור כל דגימת transfection. </li></ol>ילדה = &quot;jove_title&quot;&gt; 4. פוסט nucleofection טיפול <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן צלחות או 6 גם או 12 גם לתאי transfected. פיפטה 2.5 מ&quot;ל של מדיום transfection לבאר כל צלחת 6 היטב (1 היטב / transfection) או 1.75 מ&quot;ל של מדיום transfection לבאר כל צלחת 12 גם (2 בארות / transfection). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים השעיות תא ביסודיות עם micropipette. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר את תאי transfected לתוך הבארות מוכנות (או גם אחד בצלחת 6 היטב או שתיים בצלחת גם 12). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה צלחות במשך 4 שעות בחממה humidified (5% CO 2, 37 מעלות צלזיוס). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק שחיבור של תאים מיקרוסקופיים. הערה: רוב התאים צריכים להיות חסיד שוב. מדי פעם, הארכת תקופת הדגירה על ידי שעה 1 מגדילה את מספר התאים חסיד במקרה של חיבור מחדש מספיק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהירות לשאוב בינוני transfection עם micropipette ולהחליף עם כמות שווה של מדיום גידול. לשאוב היטב רק אחד בכל פעם. </li> &lt;li&gt; דגירה תאים לתקופת זמן דרושה לאפקט מקסימאלי של פלסמיד או siRNA (24-72 hr). אם תקופות דגירה יעלו 48 שעות, להחליף בינוני לאחר 48 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לטיפול נוסף עם effectors (למשל., ציטוקינים, אגוניסטים, יריבים ומעכבים) להשתמש בינוני בסרום חופשי ללא PMA וβ-mercaptoethanol. זמן סוף תקופת הדגירה של מפעיל עם הזמן של אפקט המקסימאלי של פלסמיד או siRNA ולתכנן את השינוי של מדיום ותוספת של מפעיל בהתאם. אל לשמור על תאים בתנאים חופשיים בסרום למשך זמן ארוך יותר מאשר 24 שעות. </li></ol>

<ol><li>Ricardo, S. D., van Goor, H., Eddy, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+diversity+in+renal+injury+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Macrophage diversity in renal injury and repair.</a> J Clin Invest. 118 (11), 3522-3530 (2008).</li>
<li>Mosser, D. M., Edwards, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+full+spectrum+of+macrophage+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Exploring the full spectrum of macrophage activation.</a> Nat Rev Immunol. 8 (12), 958-969 (2008).</li>
<li>Morille, M., Passirani, C., Vonarbourg, A., Clavreul, A., Benoit, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progress+in+developing+cationic+vectors+for+non-viral+systemic+gene+therapy+against+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Progress in developing cationic vectors for non-viral systemic gene therapy against cancer.</a> Biomaterials. (24-25), 3477-3496 (2008).</li>
<li>Schnoor, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+non-viral+transfection+of+THP-1+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Efficient non-viral transfection of THP-1 cells.</a> J Immunol Methods. 344 (2), 109-115 (2009).</li>
<li>Maeß, M. B., Buers, I., Robenek, H., Lorkowski, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+protocol+for+efficient+nonviral+transfection+of+premature+THP-1+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Improved protocol for efficient nonviral transfection of premature THP-1 macrophages.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2011 (5), (2011).</li>
<li>Ma, W., Liu, Y., Ellison, N., Shen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+C-X-C+chemokine+receptor+type+7+%28CXCR7%29+switches+stromal+cell-derived+factor-1+%28SDF-1%29+signaling+and+phagocytic+activity+in+macrophages+linked+to+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Induction of C-X-C chemokine receptor type 7 (CXCR7) switches stromal cell-derived factor-1 (SDF-1) signaling and phagocytic activity in macrophages linked to atherosclerosis.</a> J Biol Chem. 288 (22), 15481-15494 (2013).</li>
<li>Xie, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface+localization+of+ABCG1+does+not+require+LXR+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell surface localization of ABCG1 does not require LXR activation.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 26 (11), 143-144 (2006).</li>
<li>Buers, I., Robenek, H., Lorkowski, S., Nitschke, Y., Severs, N. J., Hofnagel, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TIP47%2C+a+lipid+cargo+protein+involved+in+macrophage+triglyceride+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">TIP47, a lipid cargo protein involved in macrophage triglyceride metabolism.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 29 (5), 767-773 (2009).</li>
<li>Robenek, H., Buers, I., Hofnagel, O., Lorkowski, S., Severs, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GFP-tagged+proteins+visualized+by+freeze-fracture+immuno-electron+microscopy%3A+A+new+tool+in+cellular+and+molecular+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">GFP-tagged proteins visualized by freeze-fracture immuno-electron microscopy: A new tool in cellular and molecular medicine.</a> J Cell Mol Med. 13 (7), 1381-1390 (2009).</li>
<li>Guh, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+novel+adenosine+monophosphate-activated+protein+kinase+activators%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Chem%22%5BJournal%5D)">Development of novel adenosine monophosphate-activated protein kinase activators.</a> J Med Chem. 53 (6), 2552-2561 (2010).</li>
<li>Park, E. K., Jung, H. S., Yang, H. I., Yoo, M. C., Kim, C., Kim, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+THP-1+differentiation+is+required+for+the+detection+of+responses+to+weak+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22Inflamm+Res%22%5BJournal%5D)">Optimized THP-1 differentiation is required for the detection of responses to weak stimuli.</a> Inflamm Res. 56 (1), 45-50 (2007).</li>
<li>Maeß, M. B., Wittig, B., Cignarella, A., Lorkowski, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduced+PMA+enhances+the+responsiveness+of+transfected+THP-1+macrophages+to+polarizing+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Reduced PMA enhances the responsiveness of transfected THP-1 macrophages to polarizing stimuli.</a> J Immunol Methods. 402 (1-2), 76-81 (2014).</li>
<li>Angosto, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+inflammasome+functions+in+vertebrates%3A+Inflammasome+and+caspase-1+trigger+fish+macrophage+cell+death+but+are+dispensable+for+the+processing+of+IL-1b%5BTitle%5D)+AND+%22Innate+Immun%22%5BJournal%5D)">Evolution of inflammasome functions in vertebrates: Inflammasome and caspase-1 trigger fish macrophage cell death but are dispensable for the processing of IL-1b.</a> Innate Immun. 18 (6), 815-824 (2012).</li>
<li>Latz, E., Xiao, T. S., Stutz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+and+regulation+of+the+inflammasomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Activation and regulation of the inflammasomes.</a> Nat Rev Immunol. 13 (6), 397-411 (2013).</li>
<li>Muruve, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inflammasome+recognizes+cytosolic+microbial+and+host+DNA+and+triggers+an+innate+immune+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The inflammasome recognizes cytosolic microbial and host DNA and triggers an innate immune response.</a> Nature. 452 (7183), 103-107 (2008).</li>
</ol>

עלויות פרסום למאמר וידאו זה אינן ממומנים על ידי Lonza גרופ בע&quot;מ

הפרוטוקול המתואר כאן מציג דרך אמינה ויעילה לtransfect THP-1 מקרופאגים אשר בדרך כלל די קשים transfect. Transfection ניתן להשיג עם יעילות transfection של 90% מעל לsiRNA ללא הפחתה משמעותית של חיוניות תא. יעילות לפלסמידים עשויה להיות פחות בשל יעילות הגודל אבל transfection של כ -70% בדרך כלל ניתן להשיג. היעילות של מציאה בתיווך siRNA יכולה להגיע 80 90% בהתאם לsiRNA מיושם. יתרון עיקרי של פרוטוקול זה הוא שזה לא מפריע להתמיינות תאים. לאחר transfection התאים עדיין מגיבים בדרך כלל לסוכן בידול (איור 1 א ל1B ואיור 4) PMA 12. בקיטוב סלולארי בנוסף על ידי גירויי ציטוקינים כגון IL10 או LPS / IFNγ הוא 12 מושפעים, אם כי זה גם תלוי במידה רבה במדיום שנבחר לטיפוח לאחר transfections מוצג באיור 4. ישנן מספר אפשרויות בהליך שיכול להיות שונה כדי להתאים את הפרוטוקול לדרישות ספציפיות. כפי שניתן לראות באיור 4 התאים מגיבים באופן שונה לאותו הגירוי IL10 תלוי במדיום התרבות שנבחר לאחר transfection. זה מצביע על כך שיש בהרכב הבינוני השפעה חזקה על התנהגות סלולרית. כאפקט שהוטל על ידי המדיום עשוי להיות שונה לגירויים ניסיוניים שונים, זה אפשרי, כי המדיום האופטימלי עשוי להשתנות ולכן יש צורך לבדוק את התאמתו של המדיום לניסויים שונים באופן עצמאי. עם זאת בינוני RPMI-1640, המהווה את ברירת המחדל &#39;בינוני המשמש לטיפוח THP-1 תאים, הוכיח את עצמו לא מתאים לעיבוד חקלאי לאחר transfection כהפסד משמעותי בחיוניות תא נצפה. יתר על כן הפרוטוקול יכול להיות מיושם גם לTHP-1 מונוציטים ללא בידול מושרה PMA לפני, זהברור שמסיר את הצורך בניתוק תא במהלך ההליך, אבל אין לי כל השלבים הנותרים להיות מותאמים. יכולים להיות מובחנים מונוציטים THP-1 לאחר מכן במידת צורך. האלמנטים הקריטיים ביותר של הפרוטוקול הם קודם כל הניתוק ושנית הזמן הנדרש לtransfection. הניתוק חייב להתבצע בעדינות ככל האפשר, על מנת לשמור על כדאיות תא גבוהות. לכן אנו ממליצים על הניתוק האנזימטית יחסית קל על ידי Accutase עליי שיטות די אגרסיביות כגון trypsinization. שיטות ניתוק נוספות כגון טיפול בLidocain או גירוד נמצאו ולא מזיקה ולא אמור לשמש. במקרה ש30 דקות של Accutase אני טיפול לא צריכה להיות מספיק כדי לנתק את כל התאים כמו שצריך זה הוא בדרך כלל אינדיקציה לאופן שגוי מאוחסן או שפג תוקף פתרון Accutase אני או של להקפיא להפשיר מחזורים רבים מדי. יש לנו להשיג תוצאות טובות על ידי אחסון aliquots הקטנים של Accutase אני ב-20 °C כדי להפחית את מספר מחזורי ההפשרה הקפאה. עם זאת, כאשר יש ניתוק מספק או להחליף Accutase אני עם Accutase הטרי או להגדיל את זמן דגירה עד שעה 1. בהקשה עדינה בנוסף או שטיפה של הבקבוק או צלחת יכול לסייע ניתוק. לגבי הזמן הדרוש לtransfection את זמן החשיפה של התאים לפתרון Nucleofector טהור יש לי השפעה גבוהה על הישרדות תא ובכך צריך להיות קצר ככל האפשר. הדרך הטובה ביותר להשיג זאת היא לבצע כל transfection בכל פעם (2.10-2.15 השלבים) ולא transfections מרובה במקביל. אם יעילות מציאה היא נמוכה, זה בדרך כלל לא נגרם על ידי יעילות transfection נמוכה, אבל זה יכול להיות מאומת בקלות באמצעות cytometry זרימה או מיקרוסקופ פלואורסצנטי ושכותרתו fluorescently siRNA או פלסמיד קידוד GFP. בעיקר הסיבה היא DNA siRNA או פלסמיד לא יעיל. בנסיבות אלה יש לשקול להגדיל (עד 2-3 מיקרוגרם) הסכום של siRNA אופלסמיד דנ&quot;א (עד 1-2 מיקרוגרם) או להשתמש וקטור siRNA או ביטוי שונה אם הוא זמין. לחלופין, תוצאות משביעות רצון יכולות גם להיות מושגת על ידי שימוש בברכה של כמה siRNAs שונה המכוונים נגד אותו היעד. יתר על כן, ניסויים כמובן זמן ייתכן שיהיו צורך לקבוע את התקופה של אפקט מקסימאלי, שהוא בדרך כלל הגיע לאחר 24 עד 72 שעות לאחר transfection במדויק. מלבד transfection ידי electroporation יש עוד טכניקות מבוססות היטב על transfection של תאי יונקים. לעתים קרובות מערכות מיושמות סוכני transfection כימיים אשר יכולה ליצור קומפלקסים עם חומצות גרעין מטען ולאחר מכן להקל על התחבורה אל תוך התאים. הנפוץ ביותר ריאגנטים מבוססים גם על מיני שומנים שונים או ניתן לבחור ממספר של הפולימרים קטיוני 3. עבור שני גישות מבחר מגוון זמין באופן מסחרי. ריאגנטים transfection אלה מציעים יתרון שהם בדרך כללקל לשימוש, אינו דורש הרבה זמן, ולעבוד עם תאים חסיד, כמו גם, ובכך להסיר את הצורך בניתוק. לרוע המזל, מקרופאגים הם די קשים transfect בשיטות אלה כפי שהם אינם מתרבים באופן משמעותי במבחנה ויש מנגנוני הגנה מכוונים נגד DNA cytosolic הזר 13-15. לפיכך, גישות transfection הכימי לעתים קרובות לגרום לירידה חמורה ביכולת הקיום של תאים. עם זאת, כפי שמוצג באיור 2 יש סוכני transfection כימיים אשר יכול להעביר בהצלחה siRNA לתוך מקרופאגים, אלא כזרימה cytometric (איור 2 א) ומיקרוסקופי ניאון (איור 2) מניתוחי הם לא מצליחים להשיג את אותה חלוקה הומוגנית של siRNA בתוך התאים כ מתקבל על ידי nucleofection. למעשה, נתוני הזרימה cytometric, עולים כי שתי אוכלוסיות שונות של תאי transfected להתרחש, קודם כל אוכלוסייה עם הקרינה דומה לזו של תאים לאחר Nucleofectiבמזוהה ושנית יש אוכלוסייה עם הקרינה חזקה יותר. אישור ברור עדיין נדרש אבל אנחנו מניח שהאוכלוסייה הראשונה היא במיקרוסקופ פלואורסצנטי הזהה לאלה תאים שמראים חלוקה הומוגנית של siRNA ניאון בתוך cytosol בעוד האוכלוסייה השנייה צפויה תואמת את התאים עם agglomerates בהיר מאוד. נתוני הזרימה cytometric שמוצגים באיור 2 א עולים כי תוצאות nucleofection בפחות siRNA לכל תא מגישת lipofection החלופית. עם זאת הנתונים בתרשים 3 מראה כי אפילו הכמות הקטנה יחסית של siRNA שולבה על ידי nucleofection היא כבר מספיק ל80 עד 90 מציאה% מגן המטרה. לכן הסכום נוסף של siRNA שולב על ידי האוכלוסייה השנייה לאחר transfection הכימי סביר מאוד עודף ולכן סיכוי גבוה יותר לגרום לתופעות לוואי לא רצויים מאשר לעלייה נוספת יעילות מציאה. חוץ מזה<html> היווצרות של agglomerates תאיים היא כבר לא רצויה בעצמו מאז מולקולות siRNA אלה הן כנראה לא פונקציונליים או לפחות פחות יעיל מאשר מולקולות siRNA חופשיות ועלולה לגרום לתופעות את היעד. יתר על כן טבעו האמיתי של agglomerates אלה עדיין לא ברור. יתכן כי כתמים אלה בהירים מייצגים endosomes מצביע על כך שsiRNA הופנם על ידי התאים אך לאחר מכן לשחרר מendosomes נכשל וsiRNA נותר לכוד ולכן לא יעיל. לחלופין הכתמים יכולים להיות agglomerates אשר נוצרים intracellularly. הערכות תפקודיות של transfection הכימי תלויות ועומדות, ולכן אין הצהרות חד משמעיות על יעילות מציאה יכולות להתבצע עדיין, עדיין קיומם של שתי אוכלוסיות מובחנות הוא כבר שלילי כמו זה אומר שכל התוצאות לתאר הממוצעת של שני האוכלוסיות, זה לכן לא מתאים ל אחת מהאוכלוסיות. מסיבה זו nucleofection הוא הגישה מעולה. התחת = &quot;jove_content&quot;&gt; ובכל זאת יש גם מגבלות להליך transfection המתוארים כאן. מאז התאים צריכים להיות בהשעיה לתאים חסיד nucleofection צריכים להיות מנותקים, המציג גורם לחץ נוסף לתאים. יתר על כן כל הפרוטוקול זמן רב למדי. מאז לא ניתן לבצע בו זמנית transfections, אך יש לבצע במהירות על מנת למנוע נזק לתאים, במספר הדגימות מוגבל לכ 8 - 10 לכל ניסוי. לפיכך, פרוטוקול זה אינו מתאים לפרויקטי הקרנת תפוקה גבוהה. עבור יישומי תפוקה גבוהים מערכות Nucleofector שונות זמינות. ראשית, יש את מערכת 4D-Nucleofector שמציעה פורמט רצועה 16 גם. עבור תפוקה גדולה עוד יותר, יש מערכת הסעות 96 היטב ומערכת HT Nucleofector 384 גם. עם זאת כפי שמערכות חדשות יותר אלה לעבוד עם אלקטרודות מוליך פולימר במקום אלומיניום ולכן תנאים חשמליים, תוכניות כלומר ויערותition של פתרון Nucleofector, השתנה בהתאם, זה צריך להיקבע אם הפרוטוקול שלנו יכול להיות מועבר למערכות אלה. עם זאת, למרות מגבלות אלה הפרוטוקול מובא כאן אינו להניב transfection אמין והיעיל של THP-1 תאים אשר הוא עדיף על כל הגישות שאינן נגיפיות האחרות. פרוטוקול זה מאפשר החקירה של האפקטים של ביטוי גנים שעבר שינוי בתאי THP-1, אשר להבדיל ובכל ההיבטים האחרים לקטב בדרך כלל ובכך להראות מעט תופעות לוואי כמו של transfection ככל האפשר.

בין המרכיבים התאיים של מערכת החיסון האנושית, מקרופאגים הם בעלי חשיבות רבה לתגובה החיסונית המולדת. משימותיהם שונות; הם מעורבים בphagocytosis של פתוגנים וחומר נימקי, הם משחקים תפקיד חשוב בהומאוסטזיס רקמה ולייצר ולהפריש כמות גדולה של ציטוקינים להסדיר ולתאם את התגובה החיסונית 1. לכן מקרופאגים, היו מעורבים בתהליכים פיסיולוגיים רבים ותנאי pathophysiological. בשל הגיוון של משימותיהם, מקרופאגים הם סוג תא מאוד הטרוגנית ורב פנים. זו מושגת על ידי קיטובים שונים; בהתאם למקרופאגים גירויים חיצוניים יכול להתפתח לפנוטיפים שונים 2. השתנות &#39;מקרופאגים והשפעה על התגובה החיסונית לגרום להם נושא מחקר מעניין מאוד. על מנת להבהיר את חילוף החומרים שלהם מורכבים ופונקציות רגולציה, מקרופאג המתאים במודלים חוץ גופית הוא required שבצורה נכונה משקף את ההטרוגניות מקרופאג והשתנות. Transfection של תאים עם וקטורי פלסמיד דנ&quot;א או RNAs התערבות קטן (siRNAs) כדי לשנות את ביטוי הגנים סלולארי הפך לכלי בשימוש וחזק באופן נרחב בביולוגיה של תא לחקירת שתי ויסות הגנים ותפקוד גן. כיום יש מבחר גדול של כלים שונים זמינים עבור transfection של תאים האיקריוטים. כלים אלה כוללים יישום של וקטורים ויראליים, שיטות מכאניות (כגון רובי גן), גישות כימיות (אשר מסתמכות על פולימרים או שומנים שיכולים ליצור קומפלקסים עם חומצות גרעין), וelectroporation של תאים 3. כל הגישות הללו יש יתרונות וחסרונות שלהם והבחירה המתאימה ביותר ממגוון רחב זה לסוג תא מסוים ויישום יכולה להיות תהליך גוזל קשה וזמן. המקרופאגים הם קשים לtransfect transfe כמו כמעט כל מבוסס היטבגישות ction להפחית באופן דרסטי את הכדאיות &#39;מקרופאגים או להפריע להתנהגות שלהם, כלומר אבחנה ובקיטוב מסוים. לכן, אנו מציגים כאן פרוטוקול יעיל, שאינו נגיפי לtransfect מקרופאגים THP-1 האנושיים באמצעות טכנולוגית Nucleofector מבוססת electroporation, המייצגת את גישת electroporation מותאמת הדורשת כמויות מופחתות של DNA. Nucleofection מתאים היטב לתאים רגישים כגון מונוציטים ומקרופאגים. פרוטוקול זה הוא עיבוד של גרסאות שפורסמו בעבר 4,5. בקיצור, phorbol 13 יצטט 12 myristate (PMA) משמש כדי להבדיל מונוציטים THP-1 בבני אדם ל48 שעות לתוך מקרופאגים מוקדמים לפני transfection עם siRNA או פלסמיד דנ&quot;א. לtransfection מקרופאגים predifferentiated מנותקים אנזימים ידי Accutase אני טיפול. Transfection מתבצע באמצעות מכשיר 2b Nucleofector electroporation של התאים. לאחר transfection, שונהentiation הוא המשיך ל24 עד 48 שעות נוספות כנדרש. לבסוף, מקרופאגים transfected הבוגרים מודגרת עם סוגים שונים של תרכובות ללימודים פונקציונליים שונים. גישה זו מאפשרת לtransfection של שורות תאים כגון מונוציטים THP-1 אנושיים ומקרופאגים ויושמה בהצלחה ב6-10 העבר. בניגוד לרוב גישות transfection הכימי, הליך nucleofection שונה שלנו באמצעות מקרופאגים מוקדמים מניב יעילה transfection גבוהה בשילוב עם כדאיות תא שאינו פגומות, ללא הצורך להשתמש בוקטורים ויראליים או להוסיף תרכובות מוביל נוספות עם תופעות לוואי ידועים. בנוסף, מקרופאגים לשמור את הפוטנציאל שלהם מלא לבידול, כמו גם קיטוב ובכך מאפשרים חקירות פונקציונליות ללא הפרעה הבאה transfection 11. יתר על כן, מדיום תרבות התא מיושם לאחר nucleofection מאוד משפיע מחקרים תפקודיים tran הבאsfection; בפרט, היכולת &#39;מקרופאגים לקיטוב יכולה להיות מושפעת בהתאם למדיום התרבות מיושם. הנה ארבעה סוגים שונים של תקשורת בתרבות התא (IMDM, X-VIVO 20, בינוני Nucleofector סלולארי LGM3 ועכבר T) נבדקו בתנאי כיבוי באמצעות interleukin (IL) 10. השימוש THP-1 מקרופאגים, שציינו כי היענות תא לIL10 היא החזק ביותר כאשר בינוני Nucleofector הנייד העכבר T משמש בהשוואה לתקשורת והתרבות האחרות שהוזכר לעיל. תוצאות אלו מראות כי אופטימיזציה המתאימה של כל תנאי תרבית התאים חיונית ללימודים פונקציונליים הבאים und transfection המוצלח כמו אלה עשויים לשפר באופן משמעותי את תוצאות ניסוי. כמקרופאגים מעורבים במחלות אנושיות שונות, הרבה מחקר מתמקד בהבהרת התנהגות מקרופאג כמו גם מנגנוני ויסות משפיעים מקרופאגים או בתורו נשלטו על ידי מקרופאגים. לכן, פרוטוקול זה הוא רלוונטי בתחומי מחקר רבים ושונים.

<table><tbody><tr><td>Accutase I</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6964</td><td></td></tr><tr><td>חומצות אמינו,</td> צינורות צנטריפוגה <td>PAA</td><td>M11-003</td><td></td>לא חיוניים</tr><tr><td>(15 מ"ל)</td><td>TPP</td><td>TPP91015</td><td></td></tr><tr><td>סרום עגל עוברי (FCS זהב)</td><td>PAA</td><td>A15-151</td><td></td></tr><tr><td>ערכת נוקלאופקטור מונוציטים אנושיים</td><td>Lonza</td><td>VPA-1007</td><td>מכילה תמיסת נוקלאופקטור, קובטות ופסטר פיפטות</td></tr><tr><td>סרום אנושי מהקריש</td><td>Lonza</td><td>C11-020</td><td></td></tr><tr><td>Isove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) עם 25 מ"מ HEPES ו-25 מ"מ L-גלוטמין</td><td>Lonza</td><td>12-722F</td><td></td></tr><tr><td>Lymphocyte Growth Medium 3 (LGM3)</td> <td>Lonza</td><td>CC-3211</td><td></td></tr><tr><td>Mouse T Cell Nucleofector Medium</td><td>Lonza</td><td>VZB-1001</td><td></td></tr><tr><td>Nucleofector 2b</td><td>Lonza</td><td>AAD-1001</td><td></td></tr><tr><td>פניצילין / סטרפטומיצין / L-גלוטמין (100x)</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>G1146</td><td></td></tr><tr><td>פורבול 12-מיריסטאט 13-אצטט (PMA)</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>BP685</td><td></td></tr><tr><td>מכון הזיכרון רוזוול פארק 1640 בינוני (RPMI 1640)</td><td>PAA</td><td>E15-840</td><td></td></tr><tr><td>siRNA / פלסמיד</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>נתרן פירובט (100 מ"מ)</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>S8636</td><td></td></tr><tr><td>THP-1 מונוציטים לוקמיה אנושית</td><td>CLS</td><td>300356</td><td></td></tr><tr><td>צלוחיות תרבית רקמות (75 ס"מ&sup2;; 150 ס"מ&sup2;)</td><td>TPP</td><td>TPP90076/TPP90151</td><td></td></tr><tr><td>צלחות תרבית רקמות (6 בארות; 12 בארות)</td>צינורות <td>TPP</td><td>TPP92406/TPP92012</td><td></td></tr><tr><td>(1.5 מ"ל)</td><td>StarLab</td><td>S 1615-5500</td><td></td></tr><tr><td>מים (ללא נוקלאז) או מאגר</td><td></td><td></td><td></td>siRNA/פלסמיד מתאים</tr><tr><td>X-Vivo 20 עם גנטמיצין</td><td>לונזה</td><td>BE04-448Q</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-מרקפטואתנול</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>M3148</td><td></td></tr></tbody></table>

transfection יעיל ביותר של של אדם המקרופאגים thp-1 על ידי nucleofection

Highly Efficient Transfection of Human THP-1 Macrophages by Nucleofection

המקרופאגים, כשחקני מפתח של תגובת החיסון המולדת, נמצאים במוקד של מחקר העוסק בהומאוסטזיס רקמה או פתולוגיות שונות. Transfection עם siRNA ופלסמיד דנ&quot;א הוא כלי יעיל לחקר תפקודם, אבל transfection של מקרופאגים הוא לא דבר טריוויאלי. למרות גישות רבות ושונות לtransfection של תאים האיקריוטים זמינות, רק מעטים מאפשרים transfection אמין והיעיל של מקרופאגים, אבל חיוניות תא מופחתת וקשה שעברה שינוי התנהגות תא כמו יכולת מופחתת לבידול או קיטוב נצפה לעתים קרובות. לכן נדרש פרוטוקול transfection כי הוא מסוגל להעביר siRNA ופלסמיד דנ&quot;א לתוך מקרופאגים מבלי לגרום לתופעות לוואי רציניות ובכך מאפשרות החקירה של ההשפעה של siRNA או פלסמיד בהקשר של נורמלי התנהגות תא. הפרוטוקול המובא כאן מספק שיטה לאמינות וביעילות transfecting THP-1 מקרופאגים אנושיים ומוnocytes עם חיוניות גבוהה תא, יעילות transfection גבוהה, והשפעות מינימליות על התנהגות תא. גישה זו מבוססת על nucleofection והפרוטוקול כבר מותאם כדי לשמור על היכולת המרבית לתא הפעלה לאחר transfection. הפרוטוקול הוא נאות לתאים חסיד לאחר הניתוק, כמו גם תאים בתרחיף, וניתן להשתמש בם לקטנות למספרים לדוגמה בינוניות. לפיכך, השיטה המוצגת היא שימושית לחקירת השפעות רגולציה גנים במהלך בידול מקרופאג וקיטוב. מלבד הצגת תוצאות אפיון מקרופאגים transfected על פי פרוטוקול זה, בהשוואה לשיטה כימית חלופית, את ההשפעה של בחירת מדיום תרבות תא לאחר transfection בהתנהגות תא גם דנה. הנתונים שהוצגו מצביעים על החשיבות של אימות הבחירה להגדרות ניסוי שונות.

השימוש בפרוטוקול זה לtransfection של THP-1 מקרופאגים עם siRNA אנחנו בדרך כלל להשיג שיעורי transfection של מעל 90% ללא הפחתה משמעותית של חיוניות תא. איור 1 מציג נתונים נציג המאפיינים את המדינה של התאים 24 שעות לאחר transfection עם fluorescently שכותרתו siRNA לעומת untransfected שליטה, שלא טופלו בחומרים כימיים nucleofection ודופק או siRNA אבל קיבל את כל השינויים של תקשורת בתרבות כדוגמאות transfected. באיור 1 א המורפולוגיה התאית מוצגת על פי מדידת cytometric זרימה. תמונות מיקרוסקופיות מוצגות באיור 1 ב 1C דמויות ו1D מייצגים את השיעורים נמוכים לאפופטוזיס (שליטה: 1.5%; nucleofection: 5.4%). ונימק (שליטה: 2.0%; nucleofection: .3.2%) המצביעים על חיוניות תא מושפעת. נמק ואפופטוזיס הם מעט גבוהים יותר למדגם transfected כמקרופאגים THP-1 transfected יותרקשה לנתק מאשר תאי untransfected, כך ההסתברות לניזק לתאים במהלך עליות ניתוק. לבסוף יעילות transfection מוצגת באיור 1E. ככל שאוכלוסיית transfected כל מוסטת נגד השליטה, זה מצביע על כך שכל התאים transfected אשר אושר על ידי תמונות הקרינה מיקרוסקופיות (איור 2). שני לזרום נתונים cytometric כמו גם תמונות מיקרוסקופיות הקרינה מצביעים על כך שכל תאי transfected באופן עקבי עם חלוקה הומוגנית של siRNA בין תאים, כמו גם בתוך תאים. זאת בניגוד לרבים ריאגנטים transfection כימיים, ל2A מספרי השוואה ו2B להציג את הנתונים בהתאמה התזרים cytometric ותמונות מיקרוסקופיות הקרינה לסוכן transfection הכימי תוך שימוש בגישה מבוססת שומנים. נתונים אלה מראים כי שתי אוכלוסיות נפרדות של תאי transfected ניתן לאתרם. האוכלוסייה הראשונה היא דומה לתאי transfected folloהאגף nucleofection. הם מאופיינים בקרינה כוללת נמוכה והפצה הומוגני של siRNA בתוך התאים. האוכלוסייה השנייה מתאפיינת בקרינה אינטנסיבית יותר שמקורו מagglomerates תאיים בהיר מאוד של siRNA. המורפולוגיה התאית נשארה ללא פגע לשני גישות transfection כפי שמוצג על ידי התערבות ההפרש לעומת זאת באיור 2 ג. Transfections באמצעות תשואת פלסמיד דנ"א ביעילות תוצאות דומות, לדוגמאות עיין Robenek et al. (2009) 9 או שיה et al. (2006) 7. הבחירה של מדיום תרבית תאים לאחר transfection היא רלוונטית רב; לכן תקשורת תרבית תאים שונה נבדקו בהשוואה. המדיה שנבחרה כולם מתאימות לגידול של THP-1 תאים ונבחרו על פי המלצות של Lonza כאמצעי תקשורת רלוונטי עבור פוסט nucleofection טיפוח. איור 3 מייצגים את mediat siRNAעורך מציאה יעילות באמצעות siRNA המכוון נגד IL10RB (שרשרת β 10 קולט interleukin) mRNA. לכל אמצעי התקשורת שנבדקה הביטוי של IL10RB הופחת באופן משמעותי לכ -10 20% מרמת השליטה (איור 3). עם זאת תאי transfected להשתנות בהתאם למדיום התרבות בפוטנציאל שלהם לקיטוב. THP-1 מקרופאגים transfected עם siRNA או siRNA שליטה הנוקב או IL10RB הספציפי עובדו באמצעי תקשורת שונה לאחר transfection וטופלו בIL10. בהמשך לכך רמות הביטוי של גן SOCS3 המושרה IL10 (המדכא של ציטוקינים איתות 3) ברמת mRNA נמדדו על ידי RT-qPCR. הבדלים בין תקשורת והתרבות להתרחש בכל הנוגע להיקף הגיוס של ביטוי SOCS3 mRNA (איור 4), זירוזים לכל אחד מאמצעי התקשורת שנבדקה תא העכבר T Nucleofector בינוני, LGM3, X-VIVO 20 וIMDM היו 19.5 [17.7-21.5 ], 11.5 [8.5-15.7], 8.0 [4.6-14.2] ו7.2 [5.6-9.5] לקפל, בהתאמה.יישום refore של מדיום Nucleofector הנייד העכבר T הוא חיוני. בנוסף, הבדלים בהשפעה של מציאה של IL10RB על ביטוי SOCS3 לאחר טיפול IL10 היו נצפים, רמות ביטוי של SOCS3 mRNA הופחתו ל9.5 [8.8-10.3] בינוני Nucleofector לקפל בסלולרי העכבר T, 2.1 [1.1-4.1] לקפל בLGM3, 4.8 [3.2-7.2] לקפל בX-VIVO 20 ו3.3 [2.7-3.9] IMDM לקפל ב. ערכים אלה מתאימות להפחתה של ביטוי SOCS3 באמצעי התקשורת שונה ל49%, 18%, 60%, ו45%, בהתאמה. הפחתה של IL-induced 10 ביטוי SOCS3 לאחר transfection של IL10RB siRNA מאשרת את downregulation המוצלח של IL10RB ידי transfection. <img alt="איור 1" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51960/51960fig1highres.jpg" width="300"> אפיון איור 1 של THP-1 מקרופאגים transfected. המצב האופייני לתאים אינו מושפע כפי שנחשף על ידי מיקרוסקופי אור וזרימת cytometric ניתוחים של שיתוף untransfectedתאי ntrol לעומת THP-1 מקרופאגים transfected על פי הפרוטוקול שהוצג. THP-1 מקרופאגים הובדלו עם 10 ng / ml PMA ל48 שעות וtransfected עם (488 אלקסה) שליטה שכותרתו fluorescently נוקבת siRNA. 24 שעות לאחר transfection או תמונות של תאי חיים נלקחו (B), או התאים היו מנותקות על ידי Accutase אני טיפול ונותחו על ידי cytometry זרימה (). צביעת אפופטוזיס ונימק בוצעה באמצעות Annexin V-Phycoerythrin (PE) (ג) ו -7-aminoactinomycin (7-AAD) (D). יעילות transfection (E) נקבעה על ידי cytometry זרימה באמצעות תווית הקרינה המצורפת לsiRNA. אות הקרינה של תאי transfected (השחורה) מוצגת כנגד אות השליטה (האפור). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51960/51960fig1highres.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" fo:content-width="src" ftp_upload width='"400"' src="/files/ftp_upload/51960/51960fig2highres.jpg"> תאי איור 2 השוואה של החלוקה תאית של siRNA לאחר nucleofection לעומת lipofection. THP-1 הובדלו ל48 שעות על פי פרוטוקול זה ולאחר מכן transfected או על ידי או על ידי nucleofection lipofection. תוצאות lipofection הציגו התקבלו באמצעות ערכת Xtremegene siRNA על פי המלצות היצרן עם יחס תשלום של מגיב לsiRNA של 4: 1. 24 שעות לאחר תאי transfection היו או מנותקים עם Accutase אני לניתוח התזרים cytometric או הערכה מיקרוסקופית בתאים חיים. (א) יעילות Transfection והפצה של siRNA לכל תא באוכלוסייה נקבעו על ידי cytometry זרימה באמצעות תווית הקרינה המצורפת לsiRNA, בקרות transfected ללא siRNA מוצגות באפור, דגימות transfected עם siRNA מוצגות בשחור. מיקרוסקופיה (B) פלואורסצנטיתמונות מראים הפצה תאית של fluorescently שכותרתו siRNA (אלקסה פלואוריד 488); סרגל קנה המידה מייצג 40 מיקרומטר. תמונת התערבות הפרש לעומת זאת מתאימה לתמונת הקרינה (C); סרגל קנה המידה מייצג 40 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51960/51960fig2highres.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51960/51960fig3highres.jpg" width="500"> .3 איור siRNA בתיווך מציאה של IL10RB במקרופאגים THP-1 transfected. THP-1 מקרופאגים היו transfected על פי הפרוטוקול שתואר. לאחר transfection התאים עובדו בארבע מדיה שונה תרבות, כלומר תא העכבר T בינוני Nucleofector (), IMDM (B), LGM3 (C), וX-VIVO 20 (ד '), בתוספת כפי שתוארו בסעיף הפרוטוקול. Cאמות היו transfected גם עם שליטה נוקבת siRNA (Ctrl) או IL10RB הספציפי siRNA (IL10RB). כבקרות נוספות דוגמאות הבאות נכללו: שליטת Pulse, כלומר. תאים שעברו transfection בהעדר siRNA (Pulse), ושליטה בינונית, כלומר. תאים שקיבלו רק את השינויים של תקשורת בתרבות אבל נשארו אחרת לא טופלו. 24 שעות לאחר transfection התאים הודגרו במדיום סרום ללא עם או בלי 50 ng / ml IL10 עבור שעות 24 נוספות. ביטוי IL10RB נמדד על ידי RT-qPCR; תרשימים מראים הממוצע של שלושה ניסויים בלתי תלויים, ברים שגיאה מייצגים את שגיאת התקן של הממוצע; * P &lt;0.05; ** P &lt;0.01; *** P &lt;0.001 לעומת Ctrl. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51960/51960fig3highres.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 4" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51960/51960fig4highres.jpg" width='"500"'> איור 4 תקנת IL10 תלויה של SOCS3 לאחר מציאה של IL10RB במקרופאגים THP-1 transfected. THP-1 מקרופאגים היו transfected על פי הפרוטוקול המתואר. לאחר transfection התאים עובדו בארבעה בינוני תרבות תקשורת סלולארי העכבר T שונה Nucleofector (), IMDM (B), LGM3 (C) וX-VIVO 20 (ד) בתוספת כפי שתואר בסעיף הפרוטוקול. תאים היו transfected גם עם שליטה נוקבת siRNA (Ctrl) או IL10RB הספציפי siRNA (IL10RB). כבקרות נוספות דוגמאות הבאות נכללו: שליטה דופק, תאים כלומר שעברו transfection בהעדר siNRA (Pulse), ושליטה בינונית, כלומר. תאים שקיבלו רק את השינויים של תקשורת בתרבות אבל נשארו אחרת לא טופלו. 24 שעות לאחר transfection התאים הודגרו במדיום סרום ללא עם או בלי 50 ng / ml IL10 עבור שעות 24 נוספות. expre SOCS3ssion נמדד על ידי RT-qPCR; תרשימים מראים הממוצע של שלושה ניסויים בלתי תלויים, ברים שגיאה מייצגים את שגיאת התקן של הממוצע; *, # P &lt;0.05; **, ## עמ '&lt;0.01; ***, ### עמ '&lt;0.001 לעומת Ctrl ולעומת Ctrl + IL-10, בהתאמה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51960/51960fig4highres.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

פרוטוקול זה מציג שיטה יעילה ואמינה לtransfect מקרופאגים THP-1 אנושיים עם siRNA או DNA פלסמיד על ידי electroporation עם יעילות transfection גבוהה תוך שמירה על חיוניות תא גבוהה ויכולת מקרופאג מלאה לבידול וקיטוב.

Transfection יעיל ביותר של של אדם המקרופאגים THP-1 על ידי nucleofection

Macrophages, as key players of the innate immune response, are at the focus of research dealing with tissue homeostasis or various pathologies. ...

המטרה הכוללת של הליך זה היא להעביר באופן אמין THP אנושי מקרופאגים אחד עם כדאיות תאים גבוהה וללא הפעלת תאים. זה מושג על ידי הבחנה מוקדמת של THP אחד מונוציטים למשך 48 שעות. השלב השני של ההליך הוא ניתוק המקרופאגים המוקדמים של TP one.השלב השלישי הוא להעביר את התאים עם IRNA או DNA פלסמיד, באמצעות טכנולוגיית גורם הגרעין של לונזה. השלבים האחרונים הם לזרוע מחדש ולהבדיל עוד יותר את התאים. בסופו של דבר, ניתן להראות הפלה או ביטוי יתר מוצלחים של גנים באמצעות PCR כמותי בזמן אמת, כתם מערבי לאחור וכן הלאה.היתרון העיקרי של טכניקה זו בהשוואה לגישות טרנספקציה אחרות כגון ליפופקציה, הוא שאנו יכולים להשיג יעילות טרנספקציה גבוהה יחד עם כדאיות תאים גבוהה, ואיננו משנים את תפקוד והתנהגות המיקרופאג'ים. למרבה הצער, טכניקה זו אינה מתאימה ליישומי הספק גבוה מכיוון שלא ניתן לבצע טרנספקט אינטנסיבי יותר בכל פעם עבור פרוטוקול זה. תרבית תאי THP אחד ב-RPMI 1640 עם 10% FCS ועם 1% סטרפטוקוקוס L גלוטמין 24 שעות לפני הטרנספקציה פיצלו את התאים וספקו להם מדיה טרייה.למחרת. יש להבדיל מראש את התאים על ידי זריעת 10 עד 15 מיליון תאים בבקבוק רקמה בגודל 75 סנטימטר רבוע עם התוספות הבאות למדיום ה-RPMI המתווסף, 1% חומצות אמינו לא חיוניות, 1% נתרן פירובאט, 10 ננוגרם למיליליטר, PMA ו-50 מיקרו-מולרי בטא מרקפטואתנול לאחר 48 שעות, שואבים את המדיה ומחליפים אותה בשישה מיליליטר אקוטן. אחד התחמם ל-37 מעלות צלזיוס כדי לנתק את התאים.דגרו אותם למשך 30 דקות במהלך הדגירה. הכן מדיום טרנספקציה מספיק ומדיום טיפוח לטיפול בחיבה פוסט-נוקלאו של התאים. לאחר 30 דקות, בדוק שהתאים מנותקים והסתכל סביב.אם חלק מהתאים עדיין מחוברים, שאבו בעדינות את הבקבוק עם מיקרו פיפטה או השתמשו בתסיסה פשוטה כדי לנתק אותם. אל תשתמש במגרד. העבירו את התרחיף לצינור של 15 מיליליטר וצנטריפוגה אותם למשך חמש דקות ב-300 גרם ובטמפרטורת החדר, הסירו את הסופרנטנט על ידי שאיפה והשעו מחדש את כדור התא.במיליליטר אחד של RPMI, בינוני לפני התחממות עד 37 מעלות צלזיוס, סופרים את התאים ויוצרים צינורות אשפה מיקרו המכילים שניים עד שניים וחצי מיליון תאים להעברה מיידית. ביצוע מהיר של פרוטוקול זה הוא חיוני. כדי למנוע אובדן תמותה של תאים, הקפד להכין את כל החומרים מראש צנטריפוגה ראשונה, כל הטרנספקציה מבצעת למשך 10 דקות ב-250 GS ובטמפרטורת החדר בזמן שהם מסתובבים מטה, טען את כל הווטרינרים של אפקטור הגרעין בחצי מיקרוגרם של DNA פלסמיד או מיקרוגרם אחד של SI RNA השתמש בדילול מרוכז מאוד כך שהם תופסים נפח מינימלי של הווטרינר.כעת שאפו את הסופרנטנט רק מאחד מהתאים. השעו את התאים ל-100 מיקרוליטר בתמיסת גורם גרעין. אל תתנו לתאים להישאר חשופים לתמיסה יותר מ -15 דקות.העבירו את התאים לווטרינר Q וערבבו אותם עם הקשה עדינה. לאחר מכן העבר את התאים באמצעות תוכנית Y 0 0 1 על מודל שני גורם גרעין B. בעזרת פיפטה חד פעמית, העבירו את התאים החשמליים לבקבוקון תגובה והוסיפו מיד חצי מיליליטר של מדיום טרנספקציה שהוזהר מראש לתאים.כעת המשיכו לחזור על התהליך עם כל כמות תאים בזה אחר זה עד שכולם עוברים. לאחר השלמת חיבת הגרעין, העבירו כל טרנספקציה של תאים לבאר של צלחת שש בארות עם 2.5 מיליליטר של אמצעי טרנספקציה חמים. מערבבים היטב כל אחד היטב עם מיקרו פיפטה.לאחר שנתנו לכל הצלחות העמוסות לדגור במשך ארבע שעות, בדקו את מצב התאים במיקרוסקופ. לאחר ארבע שעות, יש להדביק את רוב התאים לצלחת במידת הצורך. לכל היותר.שעה נוספת של דגירה תספק מספיק סאהה שעובד באר אחת בכל פעם. שאפו את מדיום הטרנספקציה מהתאים הדבוקים והחליפו אותו בנפח שווה של מדיום גידול חם. היזהר להימנע מניתוק התאים במהלך שלב זה.כעת, דגרו על התאים כל עוד יש צורך. במידת הצורך, החלף את המדיה כל 48 שעות תכנן ליישם טיפולים כך שהם יסתיימו כאשר ה-DNA או ה-RNA הטרנספטנטי נמצא בשיא השפעתו. בעת טיפול בתאים עם אפקטורים, השתמש במדיום נטול סרום ללא PMA וללא בטא מרקפטואתנול.היזהר לא לתת לתאים לדגור יותר מ-24 שעות ללא סרום. הפרוטוקול שימש לטרנספטקט, הוערך THP אחד מקרופאגים עם מורפולוגיה תאית של IRNA. על פי מדידה ציטומטרית זרימה.שיעור האפופטוזיס והנמק בתאים היה נמוך הן בתרביות טרנספטציה והן בתרביות ביקורת. עם זאת, ספירה זהירה גילתה שגם האפופטוזיס וגם הנמק היו מעט גבוהים יותר עבור הדגימות שהועברו. ייתכן שהסיבה לכך היא שמקרופאגים THP 1 שעברו טרנספטציה היו קשים יותר לניתוק מלוחות מאשר תאים שעברו טרנספטציה של UNT.בסך הכל, שיעורי הטרנספקציה היו מעל 90% כפי שנותח על ידי ציטומטריית זרימה. שימוש ב-S-I-R-N-A פלואורסצנטי יעילות טרנספקציה אושרה גם על ידי מיקרוסקופיה פלואורסצנטית. הפונקציונליות של הטרנספקציה הוכחה על ידי חיסול גנטי של ביטוי IL 10 RB.שימוש ב-RNA מפריע קצר לאחר השליטה, ניתן לבצע את הטרנספקט תוך שעה עד שעה וחצי אם הוא מבוצע כראוי. בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור שלמדיום התרבות יש השפעה ניכרת על הביצועים. זה מתואר בפרוטוקול הטקסט.

highly-efficient-transfection-human-thp-1-macrophages

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

אימונולוגיה וזיהומים

היכרות עם גן עניין לתא היא שיטה חזקה הבהרת תפקידה in vivo. פרוטוקול זה מתאר שיטה יעילה transfecting תרבות של גזע אנושי / מבשר תאים עצביים (hNSPCs) באמצעות מנגנון electroporation Nucleofector שנעשו על ידי Amaxa.

Transfecting אדם בתאי גזע עצביים עם Nucleofector Amaxa

אנו מציגים תפוקה גבוהה פרוטוקול אופטימיזציה שלנו nucleofection כדרך יעילה של transfecting העיקרי האדם מונוציטים הנגזרות תאים דנדריטים עם ה-DNA או פלסמיד siRNA או ללא גרימת התבגרות התא. בנוסף, אנו מספקים ראיות השתקת siRNA מוצלח של הגן ממוקד חבל, אני ב-mRNA והן רמות החלבון.

פרוטוקול אופטימיזציה עבור transfection יעילה של תאים דנדריטים ללא ההבשלה Cell

המידור של חלבונים גם בתוך קרום פלזמה או אל מקומות תאיים הוא אחד מנגנון רגולטורי כי יכול מאוד להשפיע על התוצאות איתות, ולכן, כדי להבין איתות חשוב ללמוד את התנהגות במרחב ובזמן של חלבונים המעורבים. המתואר כאן מערכת מבוססת מיקרוסקופיה TIRF ללמוד התמרה האות בתאי T, אבל הוא החלים רחב.

טכניקה מיקרוסקופית TIRF הדמיה בזמן אמת סימולטני של TCR וחלבונים הקשורים אליו לשידור אותות

סרטון זה מדגים את התהליך של הדבקת מקרופאגים ראשוניים עם mRNA שונה המקודד חלבון פלואורסצנטי ירוק. אלה mRNA שונה, שנועדו להפחית אימונוגניות ולשפר את יציבותה, להבטיח transfection מוצלח ביטוי הבא של חלבונים פלואורסצנטיים ירוקים, אשר אושר באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

הדבקת מקרופאגים ראשוניים עם mRNA שונה

בפרוטוקול זה, אנו מתארים שיטות להעברה יעילה של קווי תאי מקרופאגים של עכברים עם siRNAs באמצעות מערכת המעבורת Amaxa Nucleofector 96-well, לעורר את המקרופאגים עם ליפופוליסכריד ולנטר את ההשפעות על ייצור ציטוקינים דלקתיים.

באמצעות RNA-התערבות לחקר התגובה החיסונית המולדת בהמקרופאגים עכבר

טרנספקציה לקו תאי המקרופאגים, RAW264.7, קשה בשל התגובה הטבעית של התא כנגד חומרים זרים. תיארנו כאן הליך עדין אך חזק להעברת גנים מדווחים על לוציפראז לתאי RAW264.7.

Transfecting תאי RAW264.7 עם לוציפראז כתב ג&#39;ין

אלקטרופורציה מהדור הבא היא שיטה יעילה להעברת תאי Th17 אנושיים עם RNA קטן כדי לשנות את ביטוי הגנים והתנהגות התאים.

RNA הקטן Transfection ב ראשוני האדם TH17 תאים על ידי הדור הבא Electroporation

במאמר זה, אנו מספקים שפרוטוקול מפורט עבור הביטוי של פיוז'ן פלורסנט חלבונים במח העצם מאתר נגזר התאים הדנדריטים ומקרופגים. השיטה מבוססת על התמרה חושית של מח העצם אבות עם בונה retroviral ואחריו בידול לתוך מקרופאגים, הדנדריטים תאים במבחנה.

ביטוי של חלבונים פיוז'ן פלואורסצנט תאים דנדריטים הנגזרות מח עצם מאתר ו מקרופאגים

מקרופאגים, במיוחד מקרופאגים ראשוניים, מאתגרים transfect כפי שהם מתמחים בזיהוי מולקולות של מוצא לא עצמי. אנו מתארים פרוטוקול המאפשר העברה יעילה מאוד של מקרופאגים הראשי עם mRNA שנוצר מתבניות DNA כגון פלמידים.

העברה יעילה במיוחד של מקרופאגים ראשוניים עם מחוץ לגופית

קו התאים THP-1 נמצא בשימוש נרחב כמודל לחקירת התפקודים של מונוציטים/מקרופאגים אנושיים בתחומי מחקר שונים הקשורים לביולוגיה. מאמר זה מתאר פרוטוקול עבור הנדסה יעילה מבוססת CRISPR-Cas9 ובידוד שיבוטים של תא יחיד, המאפשר ייצור של נתונים פנוטיפיים חסונים וניתנים לשחזור.

נוקאאוט גנים בתיווך CRISPR-Cas9 מבוסס אלקטרופורציה בתאי THP-1 ובידוד שיבוט של תא בודד

פרוטוקול מפורט מסופק לשימוש בטכנולוגיית CRISPR/Cas9 כדי להשיג דפיקה ממוקדת יעילה ביותר של מבנים גדולים ומולטי-ציסטרוניים בתאי T אנושיים ראשוניים באמצעות מסלול תיקון ה-DNA בתיווך הומולוגיה (HMEJ). תאי T המהונדסים עם פרוטוקול זה הניתן להתאמה ל-cGMP שומרים על התרחבות תאים מצוינת, ציטוטוקסיות וייצור ציטוקינים.

הנדסה לא ויראלית של תאי T אנושיים ראשוניים באמצעות אינטגרציה ממוקדת בתיווך הומולוגיה של תבניות DNA גדולות

למד שיטת nucleofection לטרנספקציה יעילה של תאי THP-1 מקרופאגים אנושיים תוך שמירה על חיוניות התאים. הפרוטוקול מאפשר knockdown גנטי או overexpression לחקר תפקודי מערכת החיסון.

Transfection יעיל ביותר של של אדם המקרופאגים THP-1 על ידי nucleofection

גלה סרטונים נוספים