Name: צעד אחר צעד: שיטת אימון Microsurgical שילוב של שני מודלים של בעלי חיים דוממים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 25 s
Description: למד שיטת אימון מיקרוכירורגיה באמצעות מודלים של עוף לא חי, כולל חיתוך עורק הירך והזרוע. שיטה זו מכינה מתמחים לניתוחים חיים בבעלי חיים ובתרחישים קליניים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

למחברים אין אישורים.

1. הכנה: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשיג מיקרוסקופ סטריאו שולחן, עם 3.5 x משתנה ל45x זום, 200 מ&quot;מ מרחק עבודה, מרחק בין אישונים משתנים מ&quot;מ 55 עד 75 ואביזר הובילו טבעת אור. כל מיקרוסקופ דומה הוא נאות, ניתן להגדיר על שולחן קטן זה ולא מאוד יקר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף ולהכין סט של מכשירי מייקרו עם שני טנדרים מייקר, מספריים לנתח אחד, ומחט-נהג אחד; זה המינימום הנדרש, אותו יש לקחת בחשבון שמדובר במכשירים בפועל, ומכשירים באיכות גבוהה סוף אין צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש מיקרו-תפר 9/0 חוט חד לכל הנהלים. קנה זמין מסחרי ירכי עוף או כנפיים וצבען מזון בסופרמרקט המקומי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Angio-קטטר 20 G משמש לבדיקות פתיחות בעורקי הירך העוף. לעורקי הזרוע נדרש קטטר G 27 דק. אלה ניתן לרכוש דרך האינטרנט בבית מרקחת מקומית אועם המכשירים להגדיר. קנה מזרק זמין מסחרי כדי להזריק את צבע מזון. </li></ol> 2. טכניקות לנתיחה מקרוסקופית: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגישה לכלי הירך היא פשוטה. לירכי עוף, לבצע טכניקה לנתיחה בוטה רק המדיאלי לפיר הירך, להפריד את שריר הירך מהעצם ולחשוף את העורק, וריד ועצב הירך. העצב יכול להיות גזור נוסף לשני fascicles הנפרד לסוגים שונים של שיטות לתיקון עצב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לגשת לעורק זרוע עוף בכנפי העוף, לחתוך את עור longitudinally עם מספריים, מהכתף עד קצה הכנף. שים לב לעורק פועל בין כופפי שרירי ויד אחוריים. </li></ol> 3. משטר אימונים מומלץ: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מתאמן עם עורק הירך. הערה: הצעד הראשון במשטר האימונים הוא להתאמן עם עורק הירך העוף. </li></ol><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את החתיכה מתחת למיקרוסקופ ולהתחיל לנתיחה המייקר. לשחרר את עורק הירך מהרקמות הבסיסיות; ולחלק אותו בצורה אופקית. בצע adventicectomy. השתמש במייקרו-הטנדרים ומיקרו מספריים לקצץ כל adventicia שמעל לומן עורקים. יש לשטוף את לומן הפנימי במים ברז רגילים. רשום את זמן ההתחלה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבצע מקצה לקצה השקה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התחל על הקיר האחורי של העורק בצד הנגדי למפעיל. מניחים את התפר הראשון; תתחיל בצד השמאל, אם עובד בצורה אופקית, בצד התחתון, אם עובד בצורה אנכית. להעביר את המחט מהצד החיצוני של העורק ללום ולאחר מכן מלומן לחלק החיצוני של העורק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקשור את התפר, לבצע קשר כפול ראשון, ולאחר מכן שני יחידים זורק כיוונים לסירוגין. השלם את הקיר האחורי כולו עם הטכניקה שתוארה לעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל מהיום בצד ימין אם אתה עובד בצורה אופקית או בצד העליון אם אתה ווrking אנכי, מקום תפר אחד ממחוץ ללום ולאחר מכן מלומן החוצה. לקשור את הקשר כפי שתואר לעיל. השלם את הקיר הקדמי חוזר ההליך מתואר ב3.1.2.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> רשום את הפעם האחרונה זה יאפשר לך לשמור על זמן שיא, כך שאתה יכול לשלוט בהתקדמות שלך. הערה: המחברים מעדיפים טכניקת דרך אחת; אבל יכול להיות מתורגל בכל סוג של תפר מייקר. זה recommendable שהמתאמן משלים כ -25 anastomoses המייקר באופן זה לפני שהוא יכול לנסות תרחישים קליניים אחרים. אלה כוללים השתלת וריד לפערי עורקים, מקצה לקצה תיקוני עצב, ושימוש של צינורות וריד לטיפול בפערי עצב. טכניקה חשובה בניתוח כלי דם, שאפשר ללמוד עם שיטת אימון זו היא התפר המתמשך או ריצה, לבצע טכניקה זו תמורת החניך כ3.1.2.1 אבל סטיץ לא לחתוך, תמשיך לבצע תפרים כמו ב3.1.2.1 ללא חיתוכם until שתשלים את כל התפר ולקשור אותו לתפר המקורי בסוף. </li></ol></li></ol><ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אימון עם עורק הזרוע <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את החתיכה מתחת למיקרוסקופ. להשלים את ההליך כפי שתואר לעיל לעורק הירך. הערה: ההבדל היחיד הוא הגודל. עורק הזרוע הוא קטן בהרבה מעורק הירך וההשקה היא הרבה יותר מאתגר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדיקות patency <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחצות angio-קטטר 27 או 20 G חלק באמצעות ההשקה, כדי לבדוק חסימות שנגרמו על ידי תפרים תפירת שני דפנות הכולים יחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל מזרק עם צבען מזון מסחרי לסוף angio-קטטר, ותנקב לצבוע לתוך העורק לבדיקת דליפת סילון </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את העורק longitudinally לדמיין את התפרים, ההקבלה שלהם ואת כמות הקיר נלקחה. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+events+on+development+of+experimental+microsurgical+organ+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Yonsei+Med+J%22%5BJournal%5D)">Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation.</a> Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).</li>
<li>Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+model+in+microsurgery+education%3A+classical+exercises+and+new+horizons%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons.</a> Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).</li>
<li>Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cadaveric+infusi%C3%B3n+model+for+neurosurgical+training%5BTitle%5D)+AND+%22Surg+Neurol%22%5BJournal%5D)">Human cadaveric infusión model for neurosurgical training.</a> Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).</li>
<li>Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsilicone+anastomoses%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsilicone anastomoses.</a> Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).</li>
<li>Gluer, N. M., Rao, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Canniesburn+%E2%80%9Cever-ready%E2%80%9D+model+to+practise+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery.</a> Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).</li>
<li>Hino, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Training+in+microvascular+surgery+using+a+Chicken+wing+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery.</a> Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).</li>
<li>Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+the+Chicken+thigh+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training the Chicken thigh model.</a> Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).</li>
<li>Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+with+fresh+chicken+legs+and+their+histological+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics.</a> Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).</li>
<li>Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+regimen+with+nonliving+chicken+models%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training regimen with nonliving chicken models.</a> Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).</li>
<li>Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+using+a+pulsatile+membrane+pump+and+chicken+thigh%3A+A+new%2C+realistic%2C+practical%2C+nonliving+educational+model%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model.</a> Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).</li>
<li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant%22%5BJournal%5D)">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

הפרקטיקה הקלינית של מיקרוכירורגיה דורשת תרגול מתמשך ורמת מומחיות גבוהה; היישומים שלו כוללים דשים חופשיים, הליכי השתלה מחדש ורה-וסקולריזציה, אנסטומוזה תוך גולגולתית - חוץ-גולגולתית להליכים נוירוכירורגיים, ניתוחי עצבים היקפיים ואחרים. למרות המגוון הרחב של הליכים הדורשים טכניקות מיקרוכירורגיות, חלקם מבוצעים לעיתים רחוקות במרכזים רבים. לכן המנתחים צריכים לפעמים לשמור על רמת המיומנות שלהם בחזרה על הניתוחים במודלים שונים של תרגול. 
מודל האימון הנפוץ ביותר כיום הוא החולדה 1,2; זה נחשב בעי...

מערך נרחב של מודלים של אימון תוארו ללמידה ותחזוקה של מיומנויות מיקרוכירורגיות בסיסיות ומתקדמות כאחד. אלה כוללים בעלי חייםחיים 1,2, דגימות גופות אנושיות3, מודלים אינרטיים4,5 ודגמי בעלי חיים לא חיים6-9. המודלים של בעלי חיים חיים, במיוחד אלה המשתמשים בחולדות היו בשימוש נרחב בהוראת מיקרו-כירורגיה 1,2; והם נחשבים לסטנדרט הזהב הנוכחי של האימונים. למרות ערכם המאלף יוצא הדופן, כאשר נדרשת הכשרה אינטנסיבית או ממושכת; שיקולים כלכליים ואתיים יכולים לעכב את השימוש המעשי בהם. 
מודלים של גופות3 מציעים את ההזדמנות להתאמן בסביבה דומה לזו של המצב הקליני בפועל; למרבה הצער הם מוגבלים למעבדות אנטומיה ומתקנים דומים, מיקרוסקופ חייב להיות זמין גם במעבדה; מודלים אלה אינם זמינים באופן נרחב. דגמים אינרטיים כגון צינורות גומי, או כפפות4,5 הם זולים, ונגישים בקלות, הציוד הנדרש ליישומם הוא מינימלי. עם זאת, הדמיון למצב קליני קלוש; ויישומם מוגבל בדרך כלל לשלבי ההיכרות של האימון, לפני שהמתאמן מתחיל להתאמן על חולדות. למיטב ידיעתנו, הינו6 היה הראשון שהציע שימוש בעוף שאינו חי לפיתוח ותחזוקה של מיומנויות מיקרו-כירורגיות קליניות. המודל שלו מבוסס על מיצוי ושימוש לאחר מכן בעורק הזרוע של העוף מכנפי עוף מסחריות. גישה זו אינה זקוקה לאישור מועצת ביקורת מוסד, הרדמת מכרסמים, טכנאי מעבדה או טיפול לאחר ניתוח. 
בעקבות תיאורו של הינו את מודל עורק כנפי התרנגולת פורסמו מודלים רבים אחרים של בעלי חיים שאינם חיים. השימוש בירכי עוף מסחריות הוצע לראשונה על ידי מארש ואחרים.7 שדיווחו על שימוש בעורק הירך, הווריד והעצב למטרות דידקטיות. מודל מסוים זה מרחיב את אפשרויות האימון כולל מבנים שונים מהעורקים; זה מאפשר למתאמן לבצע מגוון פרוצדורות מורכבות כגון השתלות ורידים, השתלות עצב או תיקונים פאסיקולריים. ג'ונג ואחרים חקרו עוד את מודל ירך התרנגולת של מארש ואת יישומיו להוראה של רופאים מתמחים. המחברים ניתחו דגימות רקמת עוף מבחינה היסטולוגית ומצאו שהיא מציגה קווי דמיון לרקמות אנושיות. הזמן לביצוע אנסטומוזה על ידי המתאמן הצטמצם משמעותית על ידי תרגול במחקר שלהם. הם הגיעו למסקנה כי "צרורות העוף הנוירו-וסקולריים של עצם הירך הם מודל מתאים ויעיל להוראה ותרגול של מיקרו-כירורגיה". בשנת 2013עמיתיי ואני פרסמנו משטר אימונים מיקרו-כירורגי ששילב גם את ירך התרנגולת וגם את דגמי כנפי התרנגולת; גישה זו נהנית מהרבגוניות של ירכי העוף ומהגודל המוגבל של עורק כנפי העוף שיכול להוות אתגר גדול יותר מכלי הירך עבור המתאמנים המתקדמים יותר. 
בכתב היד הנוכחי אנו מתארים צעד אחר צעד את תהליך הקמת תחנת תרגול מיקרו-כירורגית; החומרים הנדרשים, כיצד לנתח את המבנים הנוירו-וסקולריים של כל מודל וכיצד ליישם ביעילות את משטר האימון.

<table><tbody><tr><td>סטריאומיקרוסקופ</td><td>אמסקופ</td><td>SM-1BX</td><td>מיקרוסקופ</td></tr><tr><td>אור לד</td><td>אמסקופ</td><td>LED-80S-YA</td><td>מערכת תאורה</td>סט</tr><tr><td>מכשירים מיקרוכירורגיים מכשירים מיקרוכירורגיים</td><td>חן תרנגולת</td><td>HC- X803-1</td><td>מכשירים מיקרוכירורגיים</td></tr><tr><td>תפרים מיקרוכירורגיים</td><td>S/T מיקרוכירורגי</td><td>9/0</td><td>תפרים</td></tr></tbody></table>

צעד אחר צעד: שיטת אימון microsurgical שילוב של שני מודלים של בעלי חיים דוממים



Step By Step: Microsurgical training method combining two nonliving animal models

לימוד טכניקות מיקרוכירורגיות ושמירה על מיומנויות מיקרוכירורגיות התבססו באופן מסורתי על שימוש בבעלי חיים חיים, בעיקר חולדות מעבדה. שיטה זו, למרות שהיא בעלת ערך רב, יכולה להיות תובענית מבחינה כלכלית הן עבור המנתח והן עבור המוסד המממן; זה גם דורש מתקני אימונים מיוחדים שאולי לא תמיד זמינים או נגישים. יתר על כן, חששות אתיים יכולים להגביל את השימוש בבעלי חיים למטרות אילוף. שיטות אימון אלטרנטיביות, כגון צינורות אינרטיים וכפפות לא זכו לפופולריות בקרב מנתחים מכיוון שהן אינן מציעות חוויה דומה לזו של מצב קליני. מודלים של בעלי חיים שאינם חיים כוללים שימוש בירכי עוף וכנפיים; הם מציעים חווית תרגול הדומה במידה ניכרת למצב קליני. סוג זה של הכשרה זול יחסית וזמין בקלות. את המיקרוסקופ והמכשירים הנדרשים ניתן לרכוש דרך האינטרנט, ואת נתחי העוף ניתן לקנות בסופרמרקט המקומי.
גישה זו מאפשרת למתאמן בעל מוטיבציה לתרגל סוגים שונים של טכניקות כירורגיות מספר פעמים בהוצאה סבירה, ועוזרת לפתח או לשמר את המומחיות הכירורגית שלו אם אין מתקנים מורכבים יותר זמינים. בכתב היד הנוכחי אנו מתארים כיצד להקים עמדת תרגול קטנה, כיצד לנתח את הדגימות, וכיצד לתרגל הן עם ירכי התרנגולת והן עם כנפי התרנגולת בצורה פרוגרסיבית. גישה זו מנצלת את הרבגוניות של דגם ירך העוף ואת הגודל הקטן של עורק הזרוע של כנף העוף.

המחברים chronometered פעמיהם עם שיטת האימון הנוכחית וראו את זה כדי להפחית באופן משמעותי את זמני השקה לעורק הירך בסוף השבוע השלישי. המתאמן יכול לשלוט על השיפורים בטכניקה שלו על ידי בדיקתו פעמים, אחוזי הפתיחות שלו והיישור של תפריו. המערכת המתוארת בכתב היד הזה מתואר באיור 1 כולל מיקרוסקופ שולחן וקבוצה של מכשירי מייקרו. הניתוחים מקרוסקופית מוצגים איורים 2 ו -3 דוגמא להשקת מייקר עורק הירך מוצג באיור 4. איור 5 מראה השקה מייקר עורק זרוע. איור 6 מציג תיקון עורק הירך עם שתל וריד. בדיקות pa...

כאן אנו מתארים כיצד להקים תחנת תרגול מיקרוכירורגית קטנה ושיטה פשוטה וזולה לאימון מיקרו-כירורגיה עם מודלים של בעלי חיים שאינם חיים.

צעד אחר צעד: שיטת אימון Microsurgical שילוב של שני מודלים של בעלי חיים דוממים

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly ...

המטרה הכוללת של הניסוי הבא היא לפתח שיטה לאימון במיקרו-כירורגיה, המשלבת שני מודלים מיקרו-כירורגיים של בעלי חיים שאינם חיים. עבור מתמחה ללא ניסיון מיקרו-כירורגי קודם, מומלץ לבצע תחילה נתיחה מיקרוסקופית של ירך עוף הזמינה מסחרית כדי לחשוף את העורק הפמורלי, הווריד והעצב הפמורליים. לאחר מכן, הרקמה מונחת תחת המיקרוסקופ לביצוע הטכניקה המיקרו-כירורגית הרצויה.לדוגמה, תפר מקצה לקצה של עורק הירך של תרנגולת. כאשר המתמחה מרגיש בנוח לעבוד עם רקמת הירך, ניתן לתרגל את ההליך בעורק זרוע קטן יותר הנמצא בכנפי עוף הזמינות מסחרית. בסופו של דבר, השלמת הטכניקות המיקרו-כירורגיות הללו בעורקי הירך והזרוע של התרנגולת יכולה להכין את הנוירוכירורג לעבודה במודלים של בעלי חיים חיים קטנים יותר ובסצנריוים קליניים.היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות אחרות, כגון אימון במיקרו-כירורגיה בחתולים, הוא שטכניקה זו אינה דורשת הרדמה ואינה מצריכה מתקנים ייעודיים, ובכך היא מצמצמת עלויות כלכליות והקרבת בעלי חיים. ניתן לחשוף בקלות את כלי הדם הפמורליים ואת העצב הסיאטי בירך העוף על ידי העברת אצבע במדיאלית למומב הפמורלי. לאחר מכן ניתן להבחין בראש הפמורלי סמוך למישור הניתוח, הממוקם במקביל למומב הפמורלי, כדי לתרגל אנסטומוזיס מקצה לקצה בשיטת "one way up" בעורק הפמורלי של העוף.כעת הניחו את הרקמה תחת המיקרוסקופ. כעת ניתן להבחין במיקומם של העורק הפמורלי, הווריד והעצב הסיאטי. שחררו את העורק מהרקמות שמתחתיו ובצעו חיתוך רוחבי.לאחר מכן, באמצעות פינצטות מיקרו ומספרי מיקרו, גזרו כל שכבת אדוונטיציה המכסה את הלומן העורקי, ולאחר מכן שטפו את הלומן הפנימי במי ברז רגילים. במידה ומדובר באימון תזמון, רשמו את זמן ההתחלה, ולאחר מכן בצעו את התפר הראשון החל מהדופן האחורית של העורק הפמורלי בצד הרחוק של הרקמה, תוך העברת המחט מהחלק החיצוני של העורק לעבר הלומן, ולאחר מכן מהלומן אל החלק החיצוני של העורק כדי לקשור את התפר. בצעו קשר כפול תחילה, ולאחריו שתי לולאות בודדות בכיוונים מנוגדים.לאחר מכן השלימו את כל הדופן האחורית, תוך העברת המחט הלוך ושוב כפי שהודגם כעת. בשלב הבא, בצעו תפר בודד בדופן הקדמית של כלי הדם, מהחוץ אל הלומן, ואז מהלומן אל החוץ. לאחר מכן קשרו את הקשר כפי שהודגם כעת, והשלימו את הדופן הקדמית באמצעות תפרים בודדים כפי שתואר קודם לכן.הקליטו את הסיום. הגיע הזמן לתרגל על העורק הזרועי (brachial artery) של תרנגולת. ראשית, השתמשו במספריים כדי לבצע חתך אורך בעור, מהכתף ועד לקצה הכנף.ניתן כעת להבחין בעורק העובר בין שרירי הדו-ראשי והתלת-ראשי של הזרוע (biceps and triceps brachii), כפי שמוצג על ידי ראשי החצים. כדי לבחון את הפתוחות (patency) של כל אחד מההליכים המיקרו-כירורגיים, העבירו קטטר אנגיו חלק בכיול 20 או 27 דרך האנסטומוזה כדי לבדוק אם קיימות חסימות. לאחר מכן, חברו למסוף הקטטר מזרק טעון בצבע מאכל מסחרי והזרים את הצבע אל תוך העורק כדי לבדוק אם קיימות דליפות.לבסוף, פתחו את העורק לאורכו כדי לדמויין את התפרים, את המקביליות שלהם ואת כמות הדופן שהוסרה כאן. מוצגת תמונה מיקרוסקופית של תפר קצה-לקצה של עורק פמורלי שהושג באמצעות טכניקת כיוון אחד עם תפרים בודדים כפי שהודגם כעת. לעומת זאת, בתמונה זו מוצג תפר קצה-לקצה מייצג של עורק ברכיאלי של תרנגולת.העורק הזרועי קטן בהרבה מהעורק הפמורלי, מה שהופך את הפרוצדורה למורכבת יותר מבחינה טכנית. מודל ירך העוף הוא ורסטילי מאוד ומאפשר סוגים שונים של תרגילי תרגול. למעשה, בניסוי מייצג זה, בוצע תיקון של עורק פמורלי באמצעות שתל ורידי שהוצא מהוריד הפמורלי.לאחר צפייה בסרטון זה, אמורה להיות לכם הבנה טובה כיצד לבצע אנסטומוזה מקצה לקצה של עורקי ה-e femoral או ה-rial של תרנגולת, וכן כיצד להעריך את תקינות תוצאות התפרים שלכם.

step-step-microsurgical-training-method-combining-two-nonliving

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

אנו מתארים טכניקה שבה קטע של אב העורקים בבטן מעכבר הושתל orthotopically ממש מתחת לעורקי הכליה בנמען אלוגנאית או syngeneic. טכניקה זו יכולה להיות שימושית במחקרים בם השתלה של עורקים גדולים של גודל אחיד נחשבת יתרון.

השתלת אב עורקים בעכברי orthotopic לחקר מחלת כלי דם

סרטון זה מציג את ההליך הכירורגי לכריתה מונחית הדמיה של גידול והשתלת פיגום ביולוגי עם תאי גזע מזנכימליים מהונדסים גנטית או MSCs המבטאים ליגנד הקשור לגורם נמק גידולי אפופטוזיס או TRAIL. MSCs טיפוליים אלה הם בעלי פוטנציאל בטיפול בגידולי מוח.

כריתת גידול מונחה פלואורסצנטיות והשתלת פיגום זרעי MSC במודל מורין: הליך כירורגי להעברת תאי גזע מזנכימליים טיפוליים לחלל כריתת גידול במוח במודל עכבר

כדי לחקור השתלה משולבת של איברים מוצקים וכלי דם, אנו מתארים מודל חדש של השתלת דופן חזה הטרוטופית, בלוטת התימוס ולב בעכברים באמצעות טכניקת שרוול צוואר הרחם ללא תפרים.

Microsurgical דגם חדשני לHeterotopic, כמקשה אחת בחזה קיר, קורנית, ולב השתלה בעכברים

תיכננו הליך שבו גופה אנושית-קבוע פורמלדהיד משמש כדי לסייע נוירוכירורגים להכשרת ההשתלה של מערכים microelectrode לתוך קליפת של המוח האנושי.

אימוני ניתוח ההשתלה של מערכים Neocortical Microelectrode באמצעות מודל של פורמלדהיד-קבוע גווייה אנושי

כאן אנו מציגים פרוטוקול עבור השימוש הכריכה מנקב עורק הצפק סופריור חזיר כמו מודול למידה עבור שחזור microvascular הראש והצוואר.

חזירי כמו מודול אימון עבור שחזור Microvascular הראש והצוואר

המטרה של נייר זה היא להמחיש כיצד לארגן מעבדה להמחשת לניתוח הגרון על במחיר סביר והדוק דומה בעלי חיים מודלים הלוע על מנת לשפר את הידע האנטומי כירורגי ומיומנויות.

למידה ניתוח מודרני הגרון במעבדה לחיתוך

המאמר הנוכחי מתאר טכניקה שונה להשתלת לב הטרוטופית וסקולרית עם טכניקה אספטית מעודכנת, שיכוך כאבים והרדמה.

פרוטוקול השתלת לב הטרוטופי מורין מותאם לסטנדרטים עכשוויים של טכניקה אספטית, הרדמה ושיכוך כאבים

תיקון עורק התרדמה במודל עכברי לאחר הזרקה מחזיר את זרימת הדם לעורק מבלי להשפיע לרעה על פיזור החומר המוזרק. תיקון אתר ההזרקה מאפשר זריקות עוקבות דרך אותו עורק ומונע איסכמיה מוחית בזני עכברים חסרי מעגל שלם של וויליס.

הקלה על הזרקות חוזרות תוך קרוטיד במודלים של עכברים על ידי טכניקת תיקון אתר הזרקה חדשנית

אנו מציגים גישה חדשנית למיקרוסקופ דו-פוטוני של העברת הגידול של ננו-חלקיקי תחמוצת ברזל עם תווית פלואורסצנטית לגליובלסטומה במודל עכבר.

מיקרוסקופיה תוך-חיונית דו-פוטונית של גליובלסטומה במודל מורין

פרוטוקול זה מכיל תיאור מקיף של גישה שלב אחר שלב למודל עכבר חלון גולגולתי כרוני ותסחיף מיקרווסקולרי מותאם להדמיה מיקרוסקופית דו-פוטונית בתוך ה-vivo באמצעות מיקרוספירות פוליסטירן פלואורסצנטיות.

מודל עכבר של תסחיף מיקרווסקולרי למיקרוסקופיה דו-פוטונית בחיים באמצעות מיקרוספירות פוליסטירן פלואורסצנטיות

אנו מציגים מודל עכבר שניתן לשחזור של אלוטרנסלנטציה מורכבת של גפיים אחוריות לצוואר הטרוטופית. פרוטוקול סופר-מיקרוכירורגי זה, הכולל אנסטומוזות כלי דם בקוטר 0.3-0.5 מ"מ, משלב הנחיית חוטי ניילון ושרוול ורידי. הוא מספק פלטפורמה אמינה למחקרים תרגומיים על סבילות, פגיעות איסכמיה-רפווזיה, ומנגנונים אימונולוגיים באלוטרנסרפלנטציה של כלי דם מרוכב.

השתלת גפה אחורית לצוואר הטרוטופית בעכבר: מודל סופר-מיקרוכירורגי של אלוטרנספלינצ'נציה מורכבת וסקולרית

למד שיטת אימון מיקרוכירורגיה באמצעות מודלים של עוף לא חי, כולל חיתוך עורק הירך והזרוע. שיטה זו מכינה מתמחים לניתוחים חיים בבעלי חיים ובתרחישים קליניים.

צעד אחר צעד: שיטת אימון Microsurgical שילוב של שני מודלים של בעלי חיים דוממים

גלה סרטונים נוספים