Name: הזרקת גישת subretinal Limbal של ויראלי וקטורים לטיפול גנטי בעכברים הרשתית פיגמנט האפיתל (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: למד טכניקת הזרקה סוב-רטינלית לספק גנים לאפיתל הפיגמנט הרשתי בעכברים באמצעות וקטורים ויראליים. שיטה זו מאפשרת מחקר מתקדם בטיפול גנטי לטיפול במחלות עיניים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

מחקר זה נתמך על ידי סיאול האוניברסיטה הלאומית מענק המחקר (800-20140542), תכנית פיוניר המחקר של NRF / MEST (2012-0009544), וניתוח הטכנולוגיה התכנית ביו-האיתותים החדשנות של NRF / MEST (2009-0090895), וגרנט של NRF / MEST (2015M3A9E6028949).

כל הניסויים בבעלי החיים בוצעו בהתאם לעמותה למחקר בהצהרת חזון ורפואת עיניים לשימוש בבעלי חיים ברפואת עיניים ומחקר חזון, וההנחיות והתקנות שנקבעו על ידי הוועדה מוסדית אוניברסיטת הטיפול בבעלי חיים והשימוש סיאול הלאומית וסיאול הלאומית ועדת בטיחות ביולוגית בבית חולים האוניברסיטאי. 1. הכנת ערכת הזרקה ווקטורים ויראליים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את מזרק microliter מצויד במחט קהה 33 G המעוקרים באמצעות גז אתילן אוקסיד. לדלל את הווקטורים ויראליים בPBS לכייל נאות בצינור מיקרו (כלומר, 1 x 10 6 TU / μl). לשטוף את המזרק מספר פעמים עם וקטורים ויראליים כדי להסיר כל שטח מת במזרק. </li></ol> 2. הזרקת subretinal של וקטורים ויראליים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכברים הבוגרים (כלומר, 6-8 שבועות) עם זריקת intraperitoneal של התערובת של tiletamine וzolazepam (1: 1, 2.25 מ&quot;ג / קילוגרם משקל גוף) וhydrochloride xylazine (0.7 מ&quot;ג / קילוגרם משקל גוף) או משטר הרדמה מתאים חלופית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להתרחב תלמידים עם ירידה של 0.5% עין phenylephrine וtropicamide 0.5%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את מזרק microliter על ידי טעינה עם 1.5 - 2 μl של וקטורים ויראליים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את העפעף ובולט לעין כדי לחשוף את קו המשווה להזרקה נוחה ולהתמקד במתחת למיקרוסקופ ההפעלה. לשמור על מיקום העין בלטו עד גמר ההזרקה, או עקירה של המחט יכול להתרחש במהלך ההזרקה. להחזיק את גלגל העין בחוזקה, למקם את האצבעות מחוץ לשפת מסלולית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל ירידה של פתרון viscoelastic עיניים אל פני השטח של הקרנית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום שקופית כיסוי עגול קטנה בחלק העליון של הקרנית כדי להמחיש את הרשתית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנקב חור קטן באחורי קלה לימבוס באמצעות מחט סטרילית 30 G 1/2 להזרקת subretinal נוספת. הפוך את החור נחותים FOr עין ימין, ומעולה לעין השמאל לנוחות. הערה: אם החור הוא עשה בזמן, או באף, זה קשה להיות מכוסה על ידי העפעף לאחר ההזרקה. לנקב ראשוני צריכים להיעשות מעט אחורי לימבוס, כדי למנוע את כלי limbal אשר לרוץ לאורך ימבוס וניתן לזהות בקלות. להיות זהיר כדי להימנע מפגיעה בעדשה עם מחט בעת ביצוע הניקור הראשוני. אל תכניס את כל השיפוע של המחט, כדי למנוע ניקור עדשה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המחט הקהה 33 G של מזרק microliter דרך החור המנוקב מראש ומתקרב למחט לתוך חלל subretinal עד הנקודה שבה התנגדות קלה מורגשת. הערה: להזרקת subretinal, זווית הגישה הטובה ביותר של המחט היא כ -45 מעלות נגד מטוס איריס, והמחט הקהה יש דחף בדיעבד כלפי אזור peripapillary. כיכר מנוקדת הצביעה על מסלול המחט הציע על פני חלל הזגוגית לInjectio subretinaln באיור 1. הערה: לא יהיה התנגדות הרגישה כאשר פירסינג (או הפטירה) שכבות רשתית כפי שהם רכים מאוד. לפיכך, התחושה הראשונה של התנגדות מתונה מצביעה על כך שהמחט כבר נגעה בשכבת הרשתית והחדרת המחט צריכה להיפסק. היזהר שלא לחדור לרקמות scleral עם לחץ מוגזם בגלל המחט צריכה להיות ממוקמת בחלל subretinal הפוטנציאלי. אם המחט מפוצצת רקמות scleral ידי כוח מופרז, הוא נכנס לתוך חללי מסלולית extraocular ללא התנגדות. (שלב זה הוא קריטי) </li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/53030/53030fig1.jpg" /> איור 1. סכמטי תרשים של הזרקת subretinal. H &amp; E סעיף מוכתם צלב של העין העכבר המתארת ​​את המבנים עם מסלול מחט להזרקת subretinal המסומן (כיכר מקווקו). הגדלה: 40X, בר סולם:<html> 500 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53030/53030fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="9" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק את הווקטורים ויראליים (כלומר, 1 x 10 6 TU / μl) בעדינות לתוך חלל subretinal ללא רעד, כדי למנוע נזק לרקמות לא רצויים ולמשוך את המחט בעדינות. החזק את גלגל העין בחוזקה במהלך ההזרקה כפי שתואר ב2.4. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצפות את ההיווצרות של בועה subretinal לאחר ההזרקה תחת מיקרוסקופ כדי לוודא שאין דימום ברשתית. </li></ol><img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/53030/53030fig2.jpg" /> איור 2. גיבוש subretinal Belb ללא רשתית דימום. מבט מיקרוסקופי של belb subretinal לאחר הזרקת subretinal תחת מיקרוסקופ ניתן לראות היווצרות בועה מוצלחת ללא דימום ברשתית.מ &#39;/ קבצים / ftp_upload / 53030 53030fig2large.jpg &quot;target =&quot; / _ blank &quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. <ol start="11" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לסגור את העפעף כדי לכסות את אתר ההזרקה לאיטום עצמי. להחזיר את העכברים לכלוב בבית ולהישאר בחיים עד ההערכה. הערה: לאחר שהחוקרים להתרגל לנהלים, הם יכולים לקבל את תוצאות הדיר עם נהלים מהירים על ידי דילוג על השלבים הבאים (2.5, 6, ו -10) </li></ol> 3. הערכת היעילות של ג&#39;ין משלוח ברשתית פיגמנט האפיתל <ol start="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להקריב את העכברים בתא CO 2. Enucleate העיניים באמצעות מספריים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקן את העיניים בפתרון paraformaldehyde 4% ב 4 מעלות צלזיוס במשך שעה 1 מינימום לכמה ימים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תפוס את הקרנית עם מלקחיים עדינים ולנקב את הקרנית עם מיקרו מספריים. הסר את הקרנית לאחר המספריים לאורך ימבוס. הסר את העדשה עם מלקחיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חתוך את גוף הריסים עם מ &#39;icro-מספריים המאפשרים היפרדות רשתית. משוך בעדינות את כל הרשתית מהרשתית / דמית העין / מורכבת לובן העין. חותך את הרשתית / דמית העין / המורכב scleral רדיאלית מהפריפריה למרכז ליד כמה פעמים עצב הראייה לעשות 4-8 עלים להרכבה שטוחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפוך את הרשתית / דמית העין / המורכב scleral לעשות צד הרשתית למטה, ולקצץ את כל הרקמות שנותרו בצד scleral כולל שרירים, לחמית ועצב ראייה. שלב זה חשוב לעשות הרשתית / דמית העין / מורכב scleral שטוח כי כל רקמה שנותרה הופכת אחידה מורכב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה מורכבת עם נוגדן ראשוני והמשני למטרות הספציפיות שלך המחקר (אופציונליות, ראה אזכור לשיטות מפורטות). שטוח הר הרשתית / דמית העין / מתחמי scleral בשקופית הזכוכית ולספוג את PBS עם ספוג סופג. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 30 μl של פתרון הרכבה ולמקם את כיסוי השקופיות. שים לב לדוגמא ליעילות של משלוח וקטור תחת מיקרוסקופ והעמסת. שמור את הדגימות בהמקרר לתצפית נוספת. </li></ol>

<ol><li>Maguire, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+efficacy+of+gene+transfer+for+Leber%27s+congenital+amaurosis%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Safety and efficacy of gene transfer for Leber's congenital amaurosis.</a> N Engl J Med. 358 (21), 2240-2248 (2008).</li>
<li>Jacobson, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+leber+congenital+amaurosis+caused+by+RPE65+mutations%3A+safety+and+efficacy+in+15+children+and+adults+followed+up+to+3+years%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for leber congenital amaurosis caused by RPE65 mutations: safety and efficacy in 15 children and adults followed up to 3 years.</a> Arch Ophthalmol. 130 (1), 9-24 (2012).</li>
<li>Conlon, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+potency+and+safety+studies+of+an+AAV2-mediated+gene+therapy+vector+for+the+treatment+of+MERTK+associated+retinitis+pigmentosa%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther+Clin+Dev%22%5BJournal%5D)">Preclinical potency and safety studies of an AAV2-mediated gene therapy vector for the treatment of MERTK associated retinitis pigmentosa.</a> Hum Gene Ther Clin Dev. 24 (1), 23-28 (2013).</li>
<li>MacLaren, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+gene+therapy+in+patients+with+choroideremia%3A+initial+findings+from+a+phase+1%2F2+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Retinal gene therapy in patients with choroideremia: initial findings from a phase 1/2 clinical trial.</a> Lancet. 383 (9923), 1129-1137 (2014).</li>
<li>Trapani, I., Puppo, A., Auricchio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vector+platforms+for+gene+therapy+of+inherited+retinopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Vector platforms for gene therapy of inherited retinopathies.</a> Prog Retin Eye Res. 43, 108-128 (2014).</li>
<li>Liang, F. Q., Anand, V., Maguire, A. M., Bennett, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraocular+delivery+of+recombinant+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Intraocular delivery of recombinant virus.</a> Methods Mol Med. 47, 125-139 (2001).</li>
<li>Peyman, G. A., Lad, E. M., Moshfeghi, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravitreal+injection+of+therapeutic+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Intravitreal injection of therapeutic agents.</a> Retina. 29 (7), 875-912 (2009).</li>
<li>Matsumoto, H., Miller, J. W., Vavvas, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+detachment+model+in+rodents+by+subretinal+injection+of+sodium+hyaluronate%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Retinal detachment model in rodents by subretinal injection of sodium hyaluronate.</a> J Vis Exp. (79), (2013).</li>
<li>Wert, K. J., Skeie, J. M., Davis, R. J., Tsang, S. H., Mahajan, V. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subretinal+injection+of+gene+therapy+vectors+and+stem+cells+in+the+perinatal+mouse+eye%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Subretinal injection of gene therapy vectors and stem cells in the perinatal mouse eye.</a> J Vis Exp. (69), (2012).</li>
<li>Eberle, D., Santos-Ferreira, T., Grahl, S., Ader, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subretinal+transplantation+of+MACS+purified+photoreceptor+precursor+cells+into+the+adult+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Subretinal transplantation of MACS purified photoreceptor precursor cells into the adult mouse retina.</a> J Vis Exp. (84), e50932(2014).</li>
<li>Sahel, J. A., Roska, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for blindness.</a> Annu Rev Neurosci. 36, 467-488 (2013).</li>
<li>Allocca, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+adeno-associated+virus+serotypes+efficiently+transduce+murine+photoreceptors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Novel adeno-associated virus serotypes efficiently transduce murine photoreceptors.</a> J Virol. 81 (20), 11372-11380 (2007).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+transduction+of+ocular+cells+with+a+bovine+immunodeficiency+viral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Sustained transduction of ocular cells with a bovine immunodeficiency viral vector.</a> Hum Gene Ther. 13 (11), 1305-1316 (2002).</li>
<li>Rolling, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapeutic+prospects+in+early+onset+of+severe+retinal+dystrophy%3A+restoration+of+vision+in+RPE65+Briard+dogs+using+an+AAV+serotype+4+vector+that+specifically+targets+the+retinal+pigmented+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+Mem+Acad+R+Med+Belg%22%5BJournal%5D)">Gene therapeutic prospects in early onset of severe retinal dystrophy: restoration of vision in RPE65 Briard dogs using an AAV serotype 4 vector that specifically targets the retinal pigmented epithelium.</a> Bull Mem Acad R Med Belg. 161 (10-12), 497-508 (2006).</li>
<li>Le Meur, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+vision+in+RPE65-deficient+Briard+dogs+using+an+AAV+serotype+4+vector+that+specifically+targets+the+retinal+pigmented+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Restoration of vision in RPE65-deficient Briard dogs using an AAV serotype 4 vector that specifically targets the retinal pigmented epithelium.</a> Gene Ther. 14 (4), 292-303 (2007).</li>
<li>Alexander, J. J., Hauswirth, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adeno-associated+viral+vectors+and+the+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Adeno-associated viral vectors and the retina.</a> Adv Exp Med Biol. 613, 121-128 (2008).</li>
<li>Puche, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+environmental+factors+associated+with+reticular+pseudodrusen+in+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Genetic and environmental factors associated with reticular pseudodrusen in age-related macular degeneration.</a> Retina. 33 (5), 998-1004 (2013).</li>
<li>Campochiaro, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+for+neovascular+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene transfer for neovascular age-related macular degeneration.</a> Hum Gene Ther. 22 (5), 523-529 (2011).</li>
<li>Park, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+amyloid+beta+alters+the+tight+junction+of+retinal+pigment+epithelium+in+5XFAD+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">Intracellular amyloid beta alters the tight junction of retinal pigment epithelium in 5XFAD mice.</a> Neurobiol Aging. 35 (9), 2013-2020 (2014).</li>
<li>Shin, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+cleavage+of+amyloid+beta+by+a+viral+protease+NIa+prevents+amyloid+beta-mediated+cytotoxicity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Intracellular cleavage of amyloid beta by a viral protease NIa prevents amyloid beta-mediated cytotoxicity.</a> PLoS One. 9 (6), e98650(2014).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

במאמר זה וידאו, שתארנו את טכניקת הזרקת subretinal limbal-גישה בפירוט עם תוצאות נציג של הרשתית / דמית העין / שטוח הר scleral. זוהי טכניקה קלה ונוחה להזרקת subretinal של וקטורים ויראליים לרשתית. הדמיה ישירה של היווצרות בועה במהלך ההזרקה היא צעד חשוב למסירה מדויקת למתחילים. יש כמה טכניקות הזרקת subretinal הציגו בכתב העת של ניסויי Visualized 8-10. חלל subretinal הוא המרחב הפוטנציאלי בין הרשתית ורשתית, ולכן יש שני מסלולים אפשריים להתקרב למרחב subretinal. אחת מהן הוא גישה בתו...

ברפואת עיניים, ריפוי גנטי התגלה כשיטת הטיפול בretinopathies ירש monogenic. יש retinopathies ירושה הקשורים לגנים באפיתל של רשתית פיגמנט (RPE) כולל amurosis לבר מולדת 1,2, פיגמנטוזה רטיניטיס 3, וchoroideremia 4. שדה המחקר של ריפוי גנטי מתרחב בשני מחקרים פרה-קליניים וניסויים קליניים באמצעות וקטורים ויראליים כגון וירוס adeno -associated (AAV), lentivirus (LV) ואדנווירוס (מודעות) 5. יש וקטורים ויראליים שונים כמיהות שונות ברשתית. לריפוי גנטי בטוח ויעיל, יש לבחור וקטורים ויראליים בזהירות בהתאם לתאי מטרה וגני המטרה. תוואי מסירת הגן הוא גם חשובים למסירת גן יעילה למקד תאים, ובכך, אותו יש לבחור בקפידה, כמו גם. שתי שיטות הנפוצות ביותר למסירת התוך עינית של וקטורים ויראליים הם subretהזרקת INAL והזרקת זגוגית 6. ההזרקה האחרונה, הזגוגית, כבר בשימוש נרחב למסירת תרופה לטיפול בneovascularization choroidal בניוון רטוב הקשורות לגיל מקולרי (AMD) ובצקת מקולרית ברטינופתיה סוכרתית 7. מסלול זגוגית מספק חשיפה של וקטורים ויראליים לרשתית זגוגית והפנימית, אבל דיפוזיה של הווקטורים לרשתית חיצונית היא מוגבלת. מצד השני, מסלול subretinal מספק משלוח ישיר של וקטורים ויראליים למרחב הפוטנציאלי בין הרשתית ורשתית, גרימת בועה מקומית. לכן, הזרקת subretinal נחשבת כיום דרך יעילה יותר למיקוד תאי קולטי האור ורשתית. במונחים של גישה ניתוחית, pars Plana נבחר כאזור בטוח להזרקת זגוגית כדי למנוע נזק ברשתית בחולים אנושיים. פשוט על ידי שינוי בגישה זו כדי עכברים, אנחנו יכולים להזריק וקטורים ויראליים subretinally או intravireally באמצעות גישת limbal. בסרטון הזהמאמר, אנחנו מדגימים שיטה קלה ונוחה של הזרקת subretinal של וקטורים ויראליים לרשתית עכברים. לאחר ניקור יחיד באחורי לימבוס עם מחט 30 G 1/2, מזרק microliter המצויד 33 מחט קהה G מוכנס לתוך חלל subretinal באמצעות האתר לנקב limbal. הווקטורים ויראליים של 1.5 - 2 μl נפח מוזרקים למרחב הפוטנציאלי בין הרשתית ורשתית גרימת שלפוחיות subretinal. הליך זה יכול להתבצע תחת הדמיה ישירה באמצעות מיקרוסקופ הניתוחי. תרגול חוזרים ונשנים יבטיח תוצאות לשכפול גם ללא הדמיה ישירה של היווצרות בועה. זה יעזור לי החוקרים לבצע ניסויים מדויקים וחיסכון בזמן למסירת גן subretinal ברשתית עכברים.

<table><tbody><tr><td>פינצטה DUMONT #5 11 ס"מ DUMOSTAR 0.1 x 0.06 מ"מ טיפים</td><td>WPI</td><td>500233</td><td></td></tr><tr><td>VANNAS מספריים S/S, 105 מ"מ</td><td>WPI</td><td>555583S</td><td></td></tr><tr><td>33 G מחט קהה</td><td>WPI</td><td>NF33BL-2</td><td></td></tr><tr><td>מזרק NanoFil, 10 מיקרוליטר&nbsp;</td><td>ערכת WPI</td><td>NANOFIL</td><td></td></tr><tr><td>RPE-KIT</td><td>WPI</td><td>RPE-KIT</td><td>להזרקה קלה ביד אחת</td></tr><tr><td>30 G x 1/2 (0.3 מ"מ x 13 מ"מ) BD PrecisionGlideTM מחט</td><td>BD</td><td>305107</td><td>ניקוב ראשוני להזרקה תת-רשתית</td></tr><tr><td>משקפי כיסוי מיקרוסקופ (מס' 1 קוטר 3 מ"מ)</td><td>וורנר אינסטרומנטס</td><td>64-0720&nbsp; (CS-3R)</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ הפעלה Leica</td><td></td><td>Leica LM M80</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ פלואורסצאין</td><td>Nikon</td><td>Eclipse 80i</td><td></td></tr><tr><td>Lentivirus</td><td>Thermo Scientific</td><td>TMO. LV-Ctr</td><td>משמש לדילול וקטורים</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>10010-015</td><td>משמש לדילול וקטורים</td></tr><tr><td>טרופרין (פנילפרין 0.5% - טרופיקמיד 0.5%)</td> <td>Hanmi</td><td></td><td>להרחבה</td></tr><tr><td>תמיסת עיניים פרופרקאין הידרוכלוריד USP, 0.5% (סטרילי)</td> <td>Bausch & Lomb</td><td></td><td>להרדמה מקומית</td></tr><tr><td>Healon GV OVD</td><td>Abbott Medical Optics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>זולטיל 50 (טילטמין היפוכלוריד וזולזפאם היפוכלוריד)</td><td>Virbac</td><td></td><td>להרדמה כללית</td></tr><tr><td>הזרקת רומפון (קסילזין הידרוכלוריד)</td><td>באייר</td><td></td><td>להרדמה כללית</td></tr></tbody></table>

הזרקת גישת subretinal limbal של ויראלי וקטורים לטיפול גנטי בעכברים הרשתית פיגמנט האפיתל

Limbal Approach-Subretinal Injection of Viral Vectors for Gene Therapy in Mice Retinal Pigment Epithelium

העין היא איבר קטן וסגור מה שהופך אותה למטרה אידיאלית לטיפול גנטי. לאחרונה יושמו אסטרטגיות שונות לטיפול גנטי ברטינופתיה באמצעות העברת גנים לא ויראלים וויראליים לאפיתל הפיגמנט של הרשתית והרשתית (RPE). הזרקה תת-רשתית היא הגישה הטובה ביותר להעברת וקטורים נגיפיים ישירות לתאי RPE. לפני הניסוי הקליני של טיפול גנטי, אין מנוס מלוודא את יעילות הטיפול במודלים של בעלי חיים של רטינופתיות שונות. לפיכך, הזרקה תת-רשתית בעכברים הופכת לטכניקה בסיסית לטיפול גנטי בעין. בפרוטוקול זה, אנו מספקים את הטכניקה הקלה והניתנת לשכפול להזרקה תת-רשתית של וקטורים נגיפיים לעכברי ניסוי. טכניקה זו שונה מהזריקה התוך-זגוגית, הנמצאת בשימוש נרחב במרפאות עיניים. התוצאות המייצגות של קומפלקס RPE/כורואיד/סקלרלי יסייעו להבין את היעילות של טכניקה זו ולהתאים את הנפח והטיטר של וקטורים נגיפיים למידת העברת הגנים.

כדי להעריך את היעילות של הזרקת subretinal על התמרה גנטית נגיפית על ידי פרוטוקול זה, השתמשנו וקטורי LV זמינים מסחרי עם אמרגן CMV להביע שני GFP וRFP למדד. עיניים enucleated לאחר תקופת הזמן המתאימה בהתאם למטרת המחקר. לקבלת תוצאות הנציג, עיניים enucleated 10 שבועות ו -20 שבועות לאחר הזרקת subretinal. לאחר הסרת הרשתית תוך שימוש בשיטה שתוארה לעיל שלמה, ההר השטוח של מורכב / דמית העין / בלובן העין הרשתית הוערך תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי. תוצאות הנציג היו מוצגות באיור 3 א (...

הזרקה תת-רשתית היא טכניקה כירורגית להעברת גנים יעילה לאפיתל פיגמנט הרשתית בעין העכבר. כאן אנו מתארים שיטה קלה וניתנת לשכפול להזרקה תת-רשתית של וקטורים נגיפיים לאפיתל פיגמנט רשתית בעכברי ניסוי.

הזרקת גישת subretinal Limbal של ויראלי וקטורים לטיפול גנטי בעכברים הרשתית פיגמנט האפיתל

The eye is a small and enclosed organ which makes it an ideal target for gene therapy. Recently various strategies have been applied to gene therapy in ...

המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא להחדיר גן מטרה לאפיתל הפיגמנט של הרשתית בעכבר חי. הדבר מושג תחילה על ידי פתיחת העפעף והבליטת גלגל העין כדי לחשוף את קו המשווה (equator). השלבים הבאים הם יצירת חור קטן אחורי ללימבוס (limbus).הזריקו את הווקטורים הויראליים לחלל התת-רשתית באמצעות מחט קהה ועקבו אחר היווצרותו של שלפוחית תת-רשתית (subretinal bleb). לבסוף, נעשה שימוש במיקרוסקופיה של אימונופלורסנציה כדי להראות את הביטוי של סממני פלואורסנציה שהועברו על ידי הנגיף המוזרק באפיתל הרשתית הפיגמנטית. זוהי טכניקה יעילה ונוחה להזרקה תת-רשתית של ווקטור ויראלי לאפיתל הרשתית הפיגמנטית.הדגמה חזותית של שיטה זו היא קריטית שכן בדיקות של הזרקה תת-רשתית הן קשות לביצוע עבור מתחילים. ראשית, הכינו מזרק מיקרוליטר עם מחט קהה בכילייג' (gauge) 33 שעברה סטריליזציה באמצעות גז אתילן אוקסיד.בשלב הבא, הכינו במבחנת מיקרו-צנטריפוגה מהלו אל ה-PBS של הווקטורים הוויראליים בריכוז של כמיליון יחידות טיטר ל-µL. כעת, בעת מילוי המזרק, שטפו אותו מספר פעמים עם התמיסה כדי להסיר כל נפח מת בתוך המזרק. הכינו 1.5 עד 2 µL להזרקה של הווקטור הוויראלי.הרדמו עכבר בוגר באמצעות הזרקה תוך-peritoneal של diazepam ומלח (saline), ואשרו שהבעל חיים הורדם על ידי היעדר רפלקסים. לאחר אישור ההרדמה, הרחיבו את האישונים באמצעות טיפה של phenylephrine 0.5% ו-ide 0.5%. כעת, תחת מיקרוסקופ כירורגי, פתחו את העפעף והבליטו את העין כדי לחשוף את קו המשווה (equator).החזיקו את העין בעמדה זו על ידי הצבת האצבעות מחוץ לשוליים העצמיים של מחסום העין (orbital rim). לאחר מכן, מרחו תמיסת ויסקו-אלסטיק אופתלמית על פני הקרנית והניחו זכוכית כיסוי עגולה וקטנה מעל הקרנית. באופן זה ניתן לצפות כעת ברשתית מעט אחורית ללימבוס, ובצורה תחתית בעין ימין או עליונה בעין שמאל.השתמשו במחט סטרילית בכיול 30 (30 gauge) בעלת חציית מחט כדי ליצור חור קטן במיקום זמני (temporally) או במיקום נאזאלי (nasally). חורים אינם בחירה טובה מכיוון שקשה לכסות אותם. בזמן הדקירה, היזהרו לא לפגוע בכלי הדם הלימבליים או בעדשה, ואל תכניסו את גוף המחט במלואו עבור הזרקות סוב-רטינליות.החדירו את מחט הזרקת הווקטור דרך החור בזווית של 45 מעלות למישור הקשתית. דחפו את המחט אחורה לכיוון האזור הפרי-פפילרי, תוך מעקב אחר הנתיב המסומן כדי לחצות את חלל הזגוגית.החדירו את המחט אל החלל התת-רשתי עד להרגשת התנגדות קלה, המעידה על כך שהגעתם לשכבת ה-RPE. יש להימנע מחדירה לרקמת הסקלרה באמצעות לחץ מופרז, שכן יש למקם את המחט בחלל התת-רשתי הפוטנציאלי. אם המחט תדקור את רקמת הסקלרה בעוצמה מוגברת, היא תיכנס לחלל האורביטלי מחוץ לעין ללא התנגדות. כעת, הזריקו בעדינות את הווקטור הוויראלי אל החלל התת-רשתי.שמרו על המחט ללא תנועה כדי למנוע נזק לרקמה, דבר שהוא חשוב מאוד. לאחר מכן, שלפו את המחט באותה עדינות. כעת ניתן לשחרר את גלגל העין.יש לראות בועה סוב-רטינלית (subretinal blabbing) המעידה על הצטברות של הווקטור. לבסוף, סגור בעדינות את העפעף כדי לכסות את אתר ההזרקה. החור ייסגר באופן עצמי.כדי להעריך את העברת הגן, השחית את העכברים באמצעות חנק בפחמן דו-חמצני, ולאחר שהאו-תנזיה אוששה, בצע ניקולציה (Nucleation) לעיניים באמצעות מספריים. קבע את העיניים ב-4% PFA בטמפרטורה של 4°C למשך שעה אחת לפחות, אך רצוי למשך מספר ימים.יש לתפוס ולנקב את הקרנית באמצעות פינצטה ומספרי מיקרו. לאחר מכן, יש לחתוך לאורך הלימבוס כדי להסיר את הקרנית. השתמשו בפינצטה כדי להסיר את העדשה.בשלב הבא, קצצו את הגוף הריסני (ciliary body). לאחר הסרת הרשתית, משכו את הרשתית כולה מקומפלקס ה-RPE Choroid Sclera. חתכו את הקומפלקס באופן רדיאלי מהפריפריה לעבר המרכז, בקרבת עצב הראייה, כדי ליצור ארבע עד שמונה צורות דמויות עלה ולהפוך את המבנה לשטוח לצורך עיגון.כעת, הפכו את הקומפלקס כך שצד ה-RPE יפנה כלפי מטה, וגזרו את כל שאריות הרקמות מצד הסקלרה, כולל שרירים, לחמיתיה ועצב ראייה. פעולה זו תיצור הרכבה שטוחה (flat mount) של קומפלקס RPE Cort scleral על גבי למסת זכוכית. ספגו את עודפי ה-PBS בעזרת ספוג סופג.מרחו כ-30 µL של מדיום קיבוע (mounting media) וכסו את התכשיר עם זכוכית כיסוי. אחסנו את הפיתח בטמפרטורה של 4 °C כאשר אינו בבדיקה. באמצעות הפרוטוקול המתואר, הוזרק וקטור LV זמין מסחרית עם מקדמי CMV המבטאים הן GFP והן RFP.העיניים הוצאו לאחר 10 שבועות והוכנו סליידים של RPE flat mount. עוצמות האות של GFP ו-RFP השתנו בין תאי ה-RPE באתר ההזרקה, והטרנסדוקציה הייתה מוגבלת לאזור שבו נוצר דם ההזרקה. הגדלה של התצוגה מ-four DX ל-400 x אפשרה להעריך את הפתולוגיה של ה-I ברזולוציה גבוהה עוד יותר.אף שאינם מוצגים כאן, התאים שעברו טרנסדוקציה ביטאו את הווקטור גם 36 שבועות לאחר ההזרקה. לאחר ששולטה בטכניקה, ניתן לבצעה בחמש דקות אם היא מבוצעת כראוי.בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור להחדיר את המחט בעדינות ובצורה מדויקת אל החלל הסוב-רטינלי לאחר התפתחותו. טכניקה זו סללה את הדרך עבור חוקרים בתחום האופתלמולוגיה לבחון טיפולים בגנטיקה לריפוי פתולוגיות תורשתיות מונוגניות מלידה וניוון רשתית תלוי גיל.

limbal-approach-subretinal-injection-viral-vectors-for-gene-therapy

Research

JoVE Journal

Neuroscience

מדעי המוח

טכניקה ניתוחית זו ממחישה את הזריקה של וקטורים בריפוי גנטי ותאי גזע לתוך חלל subretinal של עין העכבר.

הזרקת subretinal של וקטורי ריפוי גנטי ותאי גזע לעיניים המאוסות

מקור: Park, S. W., et al. גישה לימבלית - הזרקה תת-רשתית של וקטורים נגיפיים לטיפול גנטי באפיתל פיגמנט רשתית של עכברים. J. Vis. Exp. (2015)הסרטון מתאר את השיטה להזרקה תת-רשתית של וקטורים נגיפיים לאפיתל פיגמנט הרשתית (RPE) במודל עכבר. הוא מפרט את ההליך מהרדמה והכנת עיניים ועד לאספקה מדויקת של וקטור לנטי-ויראלי, מה שמבטיח אינטגרציה וביטוי גנים ב-RPE.

הזרקה תת-רשתית של וקטורים נגיפיים לאפיתל פיגמנט הרשתית במודל עכבר

כאן אנו מציגים פרוטוקול מקובל על הקהילה בפורמט מולטימדיה להזרקה תת-רשתית של תאי RPE בחולדות ועכברים. גישה זו יכולה לשמש לקביעת פוטנציאל הצלה, פרופילי בטיחות ויכולות הישרדות של תאי RPE מושתלים עם השתלה במודלים של ניוון רשתית בבעלי חיים.

ביצוע subretinal זריקות במכרסמים כדי לספק תאי הרשתית פיגמנט האפיתל בהשעיה

זריקות תת-רשתית הן הטכניקה הנפוצה ביותר להעברת חומרים טיפוליים גדולים כגון חלבונים ווקטורים נגיפיים לקולטני האור ולאפיתל הפיגמנט ברשתית. שיטה חלופית בעכברים המכוונת בהצלחה לחלל התת-רשתית עם נזק אגבי מינימלי וזמני התאוששות מהירים מתוארת כאן.

שיטת הזרקה אלטרנטיבית והמאומתת עבור גישת שטח subretinal<i&gt; דרך</i&gt; בגישה אחורית Transcleral

כאן אנחנו מדגימים גישה מוזרה לשימוש טומוגרפיה אופטית קוהרנטית בתחום ספקטרלי ברזולוציה גבוהה (HR-SD-אוקטובר) כדי לסייע משלוח של סוכנים טיפול גנטי לחלל subretinal להעריך את פעולתה אמיתיות, לאפיין את קולט אור חיוניות.

טומוגרפיה אופטית קוהרנטית העכבר הרזולוציה על קוליים כדי לסייע הזרקה תוך-עיני במחקר ריפוי גנטי ברשתית

בכתב יד זה, הזרקה תת-קרקעית מודגמת כשיטת העברה וקטורית תקפה לרקמות עיניים בעכברים באמצעות מערכת הזרקה המורכבת ממשאבת מזרק אינפוזיה/נסיגה ומזרק נשלף גז בשילוב עם מחטי מיקרו-הזרקה. מערכת הזרקה זו ניתנת להתאמה גם לנתיבי ניהול תוך עיניים אחרים.

מתן תת-לחמית של וקטורים של וירוסים הקשורים לאדנו במודלים של בעלי חיים קטנים

זריקות תוך-גופיות בוצעו בעין הכבשה במטרה להעביר טיפול גנטי בתיווך ויראלי לרשתית.

זריקות תוך ויטרליות בעין הבקר

פרוטוקול זה מציג גישה טרנס-סקלרלית מונחית ראייה טרנס-אישונים להעברה בטוחה ומדויקת של שתלים תאיים תת-רשתית, עם שיעור נמוך של סיבוכים כירורגיים, במושתלי עכבר עם או בלי ניוון רשתית.

השתלה טרנס-סקלרלית מונחית אישונים של שתלים תת-רשתית במודל עכבר ניוון רשתית

אנו מתארים פרוטוקול מפורט להכנת תאי אב קולטי אור שמקורם בתאי גזע עובריים עובריים (photoreceptor) שמקורם בהקפאה, ואת ההעברה התת-רשתית של תאים אלה בעכברי RD10 .

העברה תת-רשתית של אבות פוטורצפטור שמקורם בתאי גזע עובריים אנושיים בעכברי RD10

זריקות תת-רשתית הן טכניקה הכרחית לפיתוח פרה-קליני של טיפולים למחלות קולטני אור ו-RPE. אנו מתארים טכניקת הזרקה תת-רשתית טרנססקלרלית אופטימלית בעכברים המשפרת את שיעורי ההצלחה תוך ניתוחיים וממזערת נזק לרשתית.

טכניקת הזרקה תת-רשתית טרנססקלרלית זעיר פולשנית אופטימלית בעכבר

למד טכניקת הזרקה סוב-רטינלית לספק גנים לאפיתל הפיגמנט הרשתי בעכברים באמצעות וקטורים ויראליים. שיטה זו מאפשרת מחקר מתקדם בטיפול גנטי לטיפול במחלות עיניים.

הזרקת גישת subretinal Limbal של ויראלי וקטורים לטיפול גנטי בעכברים הרשתית פיגמנט האפיתל

גלה סרטונים נוספים