Name: Photopatterning חלבונים ותאים בסביבה מימית שימוש Tio 2 Photocatalysis (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: למד שיטה לשינוי אפיניות תאים על משטחי פיגומים באמצעות פוטוקטליזה של תחמוצת טיטניום. הטכניקה יוצרת מיקרו-דומיינים לחלבונים ומאפשרת הידבקות סלקטיבית של תאים בסביבה מימית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחברים מודים למר קוטארו אוקובו על הסיוע האדיב בהדמיית SEM. עבודה זו נתמכה על ידי האגודה היפנית לקידום המדע מענק סיוע למחקר בסיסי (B) (20310069), מענק סיוע לסטארט-אפ של פעילות מחקרית (25880021), ועל ידי מענקי מחקר מקרן המדע והטכנולוגיה של קוראטה ממוריאל היטאצ'י וקרן ניפון למדע והנדסה של חומרים.

1. הכנת Tio 2 -coated זכוכית Coverslip <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מספר coverslips באמצעות חרט יהלומים. זה לא רק עוזר כדי לעקוב אחר כל coverslips אלא גם כדי להבטיח שהצד הנכון של המדגם פונה כלפי מעלה. נקה את coverslips, הראשון תחת זרם DDH 2 O, לאחר מכן על ידי טבילתם בפתרון פיראניה (H 2 SO 4: H 2 O 2 = 4: 1). לאחר 10 דקות, לשטוף ביסודיות את coverslips, 8 פעמים בDDH 2 O. יבש coverslips תחת N זרימת 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר Tio 2 יעד במערכת רדיו בתדר (RF) המקרטעת. צרף את coverslips על בעל מדגם של הציוד המקרטעת באמצעות קלטת polyimide. מניחים את בעל המדגם בתא המקרטעת. לפנות את החדר עד שהלחץ מגיע 2.0 × 10 -4 אבא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להציג את גז Ar לתוך התא ולהגדיר את הלחץ בתצהיר לmTorr 4.0. תוך שמירה על התריס סגור, להגדיל בהדרגהכוח RF 70 W. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את התריס וגמגום במשך 15 דקות כדי להשיג סרט בעובי של 120-150 ננומטר (איור 1: שלב). שיעור צמיחה של הסרט צריך להיות נגזר לכל מכונה. </li></ol> ציפוי משטח 2. עם סרטים ניידים דוחה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Hydrophilize משטח Tio 2 על ידי טיפול במדגם עם O 2 פלזמה, בעקבות הוראות הניתנות על ידי היצרן של כור הפלזמה. אנחנו מתייחסים למדגם במשך 5 דקות ב 200 W עם O 2 זרימה של 100 SCCM. לטבול את המדגם בDDH 2 O ולאשר כי פני השטח הוא סופר-הידרופילית. ייבש את המשטח ביסודיות תחת N זרימת 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 1 octadecyltrichlorosilane מ&quot;מ פתרון (OTS) על ידי הוספת 39.6 OTS μl 100 מיליליטר טולואן. לטבול את המדגם בפתרון לשעה 1 ב RT. לנהל את הצעד הזה בתוך 2 שקית N -filled כפפה (איור 1: שלב ב &#39;). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להסיר מולקולות physisorbed, sonicatדואר המדגם בטולואן, אצטון, אתנול, וDDH 2 O למשך 5 דקות כל אחד, על מנת ש. יש לשטוף את המדגם ארבע פעמים בDDH הטרי 2 O ולייבש את המשטח מתחת N זרימת 2. המשטח צריך להיות הידרופובי עם זווית מגע של 100-110 °. </li></ol> דפוסים משטח 3. אקס-Situ <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבודה בזרימה למינרית מכסה המנוע, לצייר כמה שריטות עם חרט יהלומים על פני השטח. הסימנים לעזור בשמירה על המסלול של אזורי מעובד וגם להביא מיקרוסקופים אל מוקד. לעקר את הדוד מצופה OTS 2 על ידי טבילת המדגם באתנול 70% במשך 5 דקות. לאחר מכן לשטוף את המדגם פעמיים בDDH 2 O. מעוקר </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המדגם בצלחת בגודל 35 מ&quot;מ, ולהוסיף 2 מיליליטר של מדיום גידול PC12 (ראה שלב 4.2). דגירה במשך 3 שעות בחממה CO 2 (37 מעלות צלזיוס). הליך זה נועד לתת albumins הסרום לספוג על פני השטח. albumins נספח לעכב הספיחה הבאה של הגנה של מחזור שניתוספות ותאים (איור 1: שלב ג). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזמן ההמתנה, להגדיר מיקרוסקופ פלואורסצנטי ההפוך. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את מנורת הקשת, הכנס את קוביית מסנן UV, ולהגדיר את העדשה האובייקטיבית ל20X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למדוד את עוצמת אור ש( W סנטימטר -2) באמצעות מד UV-עוצמה, ולחשב זמן t קרינה (בשניות) למינון של ד (ב-2 סנטימטרים J) כ: t = ד / אני. לדוגמא, כדי להקרין במינון של 200 סנטימטר J -2 שימוש במקור אור של סנטימטר 600 mW -2, נדרש 333 שניות של הקרנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש במיקרומטר במה ולסגור את סרעפת השדה להגדיר את הגודל של האזור שמוקרן, למשל, 200 מיקרומטר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הדגירה 3 שעות, להשלים בינוני עם 200 μl של 3.0 מיליליטר מ&quot;ג -1 קולגן מסוג IV (Col-IV; מיליליטר מיקרוגרם סופי ריכוז 300 -1). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את הצלחת בגודל 35 מ&quot;מ לבמה מיקרוסקופ. מצא מ &#39;השריטההארון, להתמקד מיקרוסקופ על פני השטח המדגם, ולהקרין UV-אור במינון של 200 סנטימטר J -2 (איור 1: שלב ד &#39;). האזור של קרינת UV ניתן לשנות או על ידי התאמת הפתיחה של הסרעפת השדה או על ידי החלפת סרעפת השדה עם מסכת מתכת של גיאומטריה בוררות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החלף את המדיום עם מדיום גידול טרי (ללא Col-IV), ומניח את המדגם בחזרה בחממה. </li></ol> תרבות 4. סלולארי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התרבות השגרתית של תאי PC12 מתבצעת על צלחת פלסטיק מצופה קולגן. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למעייל צלחת רקמות תרבות 60 מ&quot;מ עם Col-IV, להרטיב ראשון את פני השטח עם DDH 2 O ולשאוב את כל DDH 2 O. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 300 מיקרוגרם מיליליטר -1 Col-IV על ידי דילול הפתרון המקורי (3 מ&quot;ג מיליליטר -1) 10x עם DDH 2 O. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 200 μl של 300 מיליליטר מיקרוגרם -1 Col-IV לכל צלחת 60 מ&quot;מ. תן הפתרון התפשט על פני השטח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לא יבשהוא המנה בזרימה למינרית כ 1 שעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יש לשטוף את המשטח פעמיים עם 4 מיליליטר של פוספט שנאגרו מלוח של Dulbecco (D-PBS). כאשר לא משתמש בצלחת המצופה מייד, יש לשטוף את הצלחת פעם אחת עם 4 מיליליטר של DDH 2 O. לאחר aspirating DDH 2 O, לאחסן את המנה בחממה. נסה לא לשמור את זה מאוחסן במשך יותר משבועיים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאי PC12 גדלים במדיום גידול שמורכבת: הבינוני (גלוקוז הנמוך) של הנשר שונה Dulbecco פתרון + 10% בסרום שור עוברי + סוס 5% סרום + 1% פניצילין, סטרפטומיצין. דגירה התאים בחממה CO 2 (37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2), ולהחליף מחצית בינונית בכל יום אחר. תאי מעבר לפני שהם מגיעים למפגש. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב את מדיום הגידול, ולהוסיף 2 מיליליטר של PBS + (D-PBS + 10 מיליליטר מ&quot;ג -1 אלבומין בסרום שור (BSA) + 10 מ&quot;מ EDTA) prewarmed עד 37 ° C. דגירה של 5 דקות על 37 מעלות צלזיוס. לטפוח בעדינות את הצלחת כדי לנתק את כל לסה&quot;נLLS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף תאים בצינור חרוטי 15 מיליליטר. יש לשטוף את הצלחת עם 3 מיליליטר של D-PBS הטרי, prewarmed עד 37 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה הצינור ב 150 × גרם במשך 4 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב supernatant, ולהוסיף 1 מיליליטר של מדיום הגידול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לתרבות שגרה, לפצל את התאים 1: 3 ל -1: 5. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לתאי צלחת על מדגם OTS / Tio 2-שונה UV, לספור צפיפות תאים ולהוסיף 3.0 × 10 5 תאים בצלחת 35 מ&quot;מ (איור 1: שלב E). דגירה הצלחת בחממת humidified (37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2) במשך 1-2 ימים. שני תאי PC12 -differentiated גורם גדילה נאיבי ועצב (NGF) יכולים לשמש לניסויי דפוסים. לבידול NGF, מיליליטר 100 ng -1 של 7S-NGF מתווסף לכמה ימי הצמיחה בינונית לפני ציפוי התאים על המדגם. נראה NGF-בידול להגדיל adhesibility של תאי PC12 והופך את הטיפול קל יותר, במיוחד בדואר הדפוסים-האתר בxperiments. </li></ol> דפוסים משטח 5. באתר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 1-2 ימים של תרבות על פני השטח לשעבר באתר שונה, לאשר כי התאים מצרפים וגדלו רק באזור המוקרן UV. הגדרת מיקרוסקופ, כמתואר בשלב 3.4. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר את המדגם לצלחת חדשה 35 מ&quot;מ רקמת תרבות המכילה מדיום הגידול, 100 מיליליטר ng -1 NGF (במקרה של שימוש בתאים מובחנים-NGF), ו -100 מיקרוגרם מיליליטר -1 Col-IV. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצלחת על הבמה מיקרוסקופ. מצא את המיקום המתאים, ולהקרין אור UV במינון של 200 סנטימטר J -2 (איור 1: שלב F, G). האזור מתירנית החדש שנוצר הוא מסומן בכוכבית באיור 1: שלב ג &#39; </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנסות להשלים את עיבוד של מדגם יחיד בתוך 30 דקות. לאחר הקרנה, להעביר את המדגם בחזרה לתוך המדיום ללא Col-IV. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להיות זהיר מאוד בעת ביצוע את המנה עם מ&quot;קתאי ltured והעברת הדגימה מצלחת לצלחת כדי למנוע ניתוק של התאים בדוגמת. </li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/53045/53045fig1highres.jpg" width="700" /> איור 1. איור סכמטי של התהליך הכולל. ראה טקסט לפרטים. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53045/53045fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

<ol><li>Hughes, M. A., Brennan, P. M., Bunting, A. S., Shipston, M. J., Murray, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Patterning+on+Photolithographically+Defined+Parylene-C%3A+SiO2+Substrates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Cell Patterning on Photolithographically Defined Parylene-C: SiO2 Substrates.</a> J. Vis. Exp. (85), e50929(2014).</li>
<li>Kleinfeld, D., Kahler, K. H., Hockberger, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+Outgrowth+of+Dissociated+Neurons+on+Patterned+Substrates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Controlled Outgrowth of Dissociated Neurons on Patterned Substrates.</a> J. Neurosci. 8, 4098-4120 (1988).</li>
<li>Pensen, D., Heinz, W. F., Werbin, J. L., Hoh, J. H., Haviland, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+Beam+Patterning+of+Fibronectin+Nanodots+that+Support+Focal+Adhesion+Formation%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Electron Beam Patterning of Fibronectin Nanodots that Support Focal Adhesion Formation.</a> Soft Matter. 3, 1280-1284 (2007).</li>
<li>Tanii, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+Organosilane+Monolayer+Template+to+Quantitative+Evaluation+of+Cancer+Cell+Adhesive+Ability%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn.+J.+Appl.+Phys%22%5BJournal%5D)">Application of Organosilane Monolayer Template to Quantitative Evaluation of Cancer Cell Adhesive Ability.</a> Jpn. J. Appl. Phys. 50, 06GL01(2011).</li>
<li>Yamamoto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In-Situ+Guidance+of+Individual+Neuronal+Processes+by+Wet+Femtosecond+Laser+Processing+of+Self-Assembled+Monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">In-Situ Guidance of Individual Neuronal Processes by Wet Femtosecond Laser Processing of Self-Assembled Monolayers.</a> Appl. Phys. Lett. 99, 163701-1610 (2011).</li>
<li>Yamamoto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Neurite+Outgrowth+is+Required+for+Axon+Specification+by+Cultured+Hippocampal+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Differential Neurite Outgrowth is Required for Axon Specification by Cultured Hippocampal Neurons.</a> J. Neurochem. 123, 904-910 (2012).</li>
<li>Shen, K., Qi, J., Kam, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcontact+Printing+of+Proteins+for+Cell+Biology%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Microcontact Printing of Proteins for Cell Biology.</a> J. Vis. Exp. (22), e1065(2008).</li>
<li>Johnson, D. M., LaFranzo, N. A., Maurer, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creating+Two-Dimensional+Patterned+Substrates+for+Protein+and+Cell+Confinement%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Creating Two-Dimensional Patterned Substrates for Protein and Cell Confinement.</a> J. Vis. Exp. (55), e3164(2011).</li>
<li>Singhvi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+Cell+Shape+and+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Engineering Cell Shape and Function.</a> Science. 264, 696-698 (1126).</li>
<li>Chen, C. S., Mrksich, M., Huang, S., Whitesides, G. M., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Geometric+Control+of+Cell+Life+and+Death%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Geometric Control of Cell Life and Death.</a> Science. 276, 1425-1428 (1997).</li>
<li>Degot, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+Visualization+and+Quantitative+Analysis+of+Drug+Effects+using+Micropatterned+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Improved Visualization and Quantitative Analysis of Drug Effects using Micropatterned Cells.</a> J. Vis. Exp. (46), e2514(2010).</li>
<li>Nakanishi, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoactivation+of+a+Substrate+for+Cell+Adhesion+under+Standard+Fluorescence+Microscopes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Photoactivation of a Substrate for Cell Adhesion under Standard Fluorescence Microscopes.</a> J. Am. Chem. Soc. 126, 16314-16315 (2004).</li>
<li>Kim, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Addressable+Micropatterning+of+Multiple+Proteins+and+Cells+by+Microscope+Projection+Photolithography+Based+on+a+Protein+Friendly+Photoresist%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Addressable Micropatterning of Multiple Proteins and Cells by Microscope Projection Photolithography Based on a Protein Friendly Photoresist.</a> Langmuir. 26, 12112-12118 (2010).</li>
<li>Deka, G., Okano, K., Kao, F. -J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+Photopatterning+of+Cells+In+Situ+by+Q-Switched+Neodymium-Doped+Yttrium+Ortho-Vanadate%5BTitle%5D)+AND+%22Laser.+J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Dynamic Photopatterning of Cells In Situ by Q-Switched Neodymium-Doped Yttrium Ortho-Vanadate.</a> Laser. J. Biomed. Opt. 19, 011012(2014).</li>
<li>Robertus, J., Browne, W. R., Feringa, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+Control+over+Cell+Adhesive+Properties+using+Molecular-Based+Surface+Engineering+Strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Soc.+Rev%22%5BJournal%5D)">Dynamic Control over Cell Adhesive Properties using Molecular-Based Surface Engineering Strategies.</a> Chem. Soc. Rev. 39, 354-378 (2010).</li>
<li>Choi, I., Yeo, W. -S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-Assembled+Monolayers+with+Dynamicity+Stemming+from+%28Bio%29chemical+Conversions%3A+From+Construction+to+Application%5BTitle%5D)+AND+%22ChemPhysChem%22%5BJournal%5D)">Self-Assembled Monolayers with Dynamicity Stemming from (Bio)chemical Conversions: From Construction to Application.</a> ChemPhysChem. 14, 55-69 (2013).</li>
<li>Nakanishi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Switchable+Substrates+for+Analyzing+and+Engineering+Cellular+Functions%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Asian+J%22%5BJournal%5D)">Switchable Substrates for Analyzing and Engineering Cellular Functions.</a> Chem. Asian J. 9, 406-417 (2014).</li>
<li>Yamamoto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Situ+Modification+of+Cell-Culture+Scaffolds+by+Photocatalytic+Decomposition+of+Organosilane+Monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">In Situ Modification of Cell-Culture Scaffolds by Photocatalytic Decomposition of Organosilane Monolayers.</a> Biofabrication. 6, 035021(2014).</li>
<li>Sekine, K., Yamamoto, H., Kono, S., Ikeda, T., Kuroda, A., Tanii, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+Modification+of+Cell+Scaffold+in+Aqueous+Solution+using+TiO2+Photocatalysis+and+Linker+Protein+L2+for+Patterning+Primary+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22e-J.+Surf.+Sci.+Nanotech%22%5BJournal%5D)">Surface Modification of Cell Scaffold in Aqueous Solution using TiO2 Photocatalysis and Linker Protein L2 for Patterning Primary Neurons.</a> e-J. Surf. Sci. Nanotech. 13, 213-218 (2015).</li>
<li>Arima, Y., Iwata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Surface+Functional+Groups+on+Protein+Adsorption+and+Subsequent+Cell+Adhesion+using+Self-Assembled+Monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mater.+Chem%22%5BJournal%5D)">Effects of Surface Functional Groups on Protein Adsorption and Subsequent Cell Adhesion using Self-Assembled Monolayers.</a> J. Mater. Chem. 17, 4079-4087 (2007).</li>
<li>Fujishima, A., Zhang, X., Tryk, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TiO2+Photocatalysis+and+Related+Surface+Phenomena%5BTitle%5D)+AND+%22Surf.+Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">TiO2 Photocatalysis and Related Surface Phenomena.</a> Surf. Sci. Rep. 63, 515-582 (2008).</li>
<li>Sigal, G. B., Mrksich, M., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Surface+Wettability+on+the+Adsorption+of+Proteins+and+Detergents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Effect of Surface Wettability on the Adsorption of Proteins and Detergents.</a> J. Am. Chem. Soc. 120, 3464-3473 (1998).</li>
<li>Zhang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Transparent+and+Photo-Patternable+Superhydrophobic+Film%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Commun%22%5BJournal%5D)">A Transparent and Photo-Patternable Superhydrophobic Film.</a> Chem. Commun. 2007, 4949-4951 (1039).</li>
<li>Kaech, S., Banker, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culturing+Hippocampal+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Culturing Hippocampal Neurons.</a> Nat. Protoc. 1, 2406-2415 (2006).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

בפרוטוקול הנוכחי שלנו, Tio 2 סרט נוצר על ידי המקרטעת RF-magnetron. אנו דוגלים בשיטה זו בתצהיר שכן הוא מאפשר לנו להכין reproducibly Tio 2 סרט photocatalytic עם חספוס תת-ננומטר. למרות שתהליכי גמגום בתצהיר הם מוכרים למדעני חומרים ומהנדסי אלקטרוניקה, זה לא יכול להיות די נגיש לביולוגים. במקרה זה, סרט Tio 2 מצופי ספין יהיה בחירת חלופת 23. בשיטה זו, Tio 2 חלקיקים מומסים בממס פרושים על פני מצע על ידי כוח הצנטריפוגלי. ציוד מיוחד הנדרש ...

תהליכים ליתוגרפיה סמיקונדקטור ונגזרותיו - כגון 1,2 photolithography, ליתוגרפיה קרן האלקטרונים 3-6, וmicrocontact הדפסת 7-10 - הפכו להיות עכשיו כלי הוקם בביולוגיה של תא לגדול תאי חיים בעמדה וגיאומטריה מוגדרות. שיטת הדפוסים מסתמכת על השימוש במצעי microfabricated, בהיקף של מיקרו-האי של ציפוי מתירנית תא ברקע שאינו מתירנית. מצע כזה משמש כתבנית לתבנית התאים. טכנולוגיות אלה סיפקו לנו את שיטות הרומן להנדס תאים ותפקודם ברמה חד ורב-תאית, כדי לחלץ את המאפיינים הפנימיים של תאים, ולהגדיל את התפוקה של הקרנת סמים מבוססי תאים 11. התואר של חופש בדפוסי תא היה להגדיל באופן משמעותי אם הגיאומטריה דפוס תבנית אפשר לשנות באתר, כלומר, בזמן שתאים בתרבית על יםurface. השיטות המקובלות להיווצרות דפוס לא ניתן ליישם ישירות כאן, שכן הם לעבד דגימות באווירה או בואקום. טכניקות שינוי פני השטח חדשות ולכן שונות הוצעו, המבוססים, למשל, על תרכובות photoreactive 12,13 או אבלציה לייזר 5,14, רק כדי שם כמה. השיטות המוצעות נבדקו יפה על ידי אל Robertus et. 15, ולאחרונה על ידי צ&#39;וי et al. 16 ועל ידי נאקאנישי 17. כאן במאמר זה, אנו מתארים פרוטוקול רומן של שינוי באתר פני השטח, אשר מנצל את פירוק photocatalytic של מולקולות אורגניות על דו תחמוצת טיטניום (Tio 2) משטח 18,19. בשיטה זו, סרט Tio 2 מוכנס בין מצע הזכוכית והסרט האורגני ממשקים התאים, והסרט האורגני מתפרק באתר על ידי מקומי הקרנת אור אולטרה סגול (UV)אור לאזור של עניין (λ &lt;ננומטר 388). אנו מראים כי הפרוטוקול החדש יכול לשמש ליצירה של חלבונים תאיים micropatterns מטריצה ​​ותאי חיים הן באתרו לשעבר ובאתרו. Tio 2 הוא ביולוגית, כימי יציב, ושקוף אופטי, תכונות שהופך אותו לידידותי להציג בניסויי תא-תרבות. פרוטוקול זה מספק אלטרנטיבה חומרים מבוסס מדע לשינוי פיגומי תא-תרבות בסביבת תא-תרבות.

<table><tbody><tr><td>כיסוי זכוכית</td><td>Warner Instruments</td><td>CS-15R15</td><td>קוטר 15 מ"מ, #1.5 עובי</td></tr><tr><td>יהלום סופר</td><td>Ogura Jewel Industry</td><td>D-Point Pen</td><td></td></tr><tr><td>RF מקרטע מערכת</td><td>ANELVA</td><td>SPC350</td><td></td></tr><tr><td>TiO2 יעד מקרטע</td><td>Kojundo Chemical Lab</td><td>טיטניום (IV) תחמוצת, טוהר מטרה</td><td>, 99.9%</td></tr> <tr><td>כור פלזמה</td><td>Yamato</td><td>PR301</td><td></td></tr><tr><td>n-octadecyltrichlorosilane (OTS)</td><td>Aldrich</td><td>104817</td><td></td></tr><tr><td>Toluene</td><td>Wako</td><td>204-01866</td><td></td></tr><tr><td>צלחת תרבית רקמות (35&#160; מ"מ)</td> <td>גריינר</td><td>627160</td><td></td></tr><tr><td>צלחת תרבית רקמות (60&#160; מ"מ)</td> <td>BD Falcon</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>קולגן מסוג IV</td><td>ניטה ג'לטין</td><td>Cellmatrix סוג IV</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>מדיום הנשר המותאם של Dulbecco (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11885-084</td><td></td></tr><tr><td>סרום בקר עוברי</td><td>Gibco</td><td>12483-020</td><td>השבתת חום ומעבר דרך 0.22&#160; &#956; מסנן m לפני השימוש</td></tr><tr><td>סרום סוסים</td><td>Gibco</td><td>26050-088</td><td>עובר דרך 0.22&#160; &#956; m מסנן לפני השימוש</td></tr><tr><td>פניצילין-סטרפטומיצין (100x)</td><td>Nacalai tesque</td><td>26253-84</td><td></td></tr><tr><td>7S גורם צמיחה עצבי (NGF)</td><td>Alomone Labs</td><td>N-130</td><td></td></tr><tr><td>אלבומין בסרום בקר (BSA)</td><td>Sigma</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Dojindo</td><td>N001</td><td>תמיסת מלאי ב-0.5 M</td></tr><tr><td>TiO2 ננו-חלקיקים</td><td>Tayca</td><td>TKD-701</td><td></td></tr></tbody></table>

photopatterning חלבונים ותאים בסביבה מימית שימוש tio<sub&gt; 2</sub&gt; photocatalysis

Photopatterning Proteins and Cells in Aqueous Environment Using TiO2 Photocatalysis

מזהמים אורגניים אשר נספחים על פני השטח של תחמוצת טיטניום (Tio 2) יכולים להיות מפורקים על ידי photocatalysis באור אולטרה סגול (UV). כאן אנו מתארים פרוטוקול רומן העסקת photocatalysis Tio 2 לשנות זיקת תא של משטח המצע מקומי. לצורך ניסוי זה, Tio 2 סרט דק היה על coverslip זכוכית מצופה גמגום, ופני שטח Tio 2 שונה לאחר מכן עם monolayer organosilane נגזר מoctadecyltrichlorosilane (OTS), אשר מעכב את הידבקות תא. המדגם היה שקוע במדיום תרבית תאים, והתמקד אור UV היה מוקרן לאזור מתומן. כאשר תאי PC12 שורת תאים עצביים היו מצופים על המדגם, תאים דבקו רק באזור המוקרן UV. בנוסף, אנו מראים כי שינוי פני השטח זה יכול גם להתבצע באתר, כלומר, גם כאשר תאים גדלים על המצע. שינוי נכון של פני השטח הנדרש עמ &#39;מטריקסrotein קולגן להיות נוכח במדיום בעת קרינת UV. הטכניקה המוצגת כאן יכולה להיות מועסקות פוטנציאלית בסוגי תאים מרובים דפוסים לבניית מערכות coculture או לתמרן באופן שרירותי תאים תחת התרבות.

איור 2 א מראה תמונת מיקרוסקופ אלקטרונים סורק חתך (SEM) של סרט Tio 2-הופקד גמגום. מהתצפית, עובי של הסרט נאמד בכ 150 ננומטר. בולט כאן היא השטיחות של Tio 2 סרט שהופקד. ניתוח נוסף על ידי מיקרוסקופ כוח האטומי (AFM) גילה כי חספוס שורש ממוצע רבוע (RMS) של פני השטח היה 0.2 ננומטר (איור 2). כאשר פני השטח Tio 2 הוא שונה עם OTS ולאחר מכן טובלים במדיום גידול ...

אנו מתארים פרוטוקול לשינוי זיקה תאית של משטח פיגום בסביבה מימית. השיטה מנצלת את הפוטוקטליזה של טיטניום דו חמצני כדי לפרק סרט אורגני באזור המוקרן באור. אנו מראים שניתן להשתמש בו ליצירת מיקרו-דומיינים של חלבוני פיגומים, הן מחוץ למקום והן באתרם.

Photopatterning חלבונים ותאים בסביבה מימית שימוש Tio<sub&gt; 2</sub&gt; Photocatalysis

Organic contaminants adsorbed on the surface of titanium dioxide (TiO2) can be decomposed by photocatalysis under ultraviolet (UV) light. Here we describe ...

המטרה הכללית של הניסוי הבא היא לבצע מודיפיקציה של פני השטח של פיגום לתרבית תאים באמצעות הפעילות הפוטוקטליטית של טיטניום דיאוקסיד. מטרה זו מושגת על ידי השקעת שכבה דקה של טיטניום דיאוקסיד על גבי כיסוי זכוכית (cover slip), ולאחר מכן ציפיו באוקטדסלין כדי להפוך את כל פני השטח להידרופוביים. כשלב שני, התשתית נחסמת על ידי טבילה בתמיסת תרבית תאים המכילה סרום אלבמין.האלבומין נספח לפני השטח והופך אותם לבלתי מאפשרים להיצמדות תאים. לאחר מכן, הדגימה מועברת לתמיסה מימית המכילה קולגן, ואור UV ממוקד משמש להקרנת הפני השטח. פעולה זו מאפשרת למולקולות קולגן להיספח באופן סלקטיבי לאזור שהוקרן, ובכך הופכת אזור זה למאפשר להיצמדות תאים.ניתן לחזור על תהליך זה על מנת ליצור תבניות של חלבונים או סוגי תאים מרובים. בסרטון זה אנו מראים כיצד ניתן לשנות באופן סלקטיבי את האזור הדביק של תאי PC 12 באמצעות הקרנת UV. הרעיון לשיטה זו עלה לראשונה כאשר הבנו שפוטוקטליזה של טיטניום דו-חמצמתי מיושמת מסחרית בחלונות זכוכית לניקוי עצמי המסירים מזהמים אורגניים מהפני השטח בעקבות קרינת אור, מה שמוכיח כי הפרוצדורה תהיה יעילה; חיפוש אחר סטודנט לתואר שני מהמעבדה שלי.התחילו במספור של זכוכית הכסייה באמצעות שרטטן יהלום, באופן שיסייע בהבטחה שהצד הנכון של הדגימה פונה כלפי מעלה. לאחר מכן, נקו את זכוכית הכסייה תחילה תחת זרימה של מים מזוקקים פעמיים, ולאחר מכן על ידי טבילה בתמיסת פיראנה למשך 10 דקות. לאחר 10 דקות, שטפו את זכוכית הכסייה שמונה פעמים במים מזוקקים פעמיים ויבשו אותן תחת זרימת חנקן.בשלב הבא, מקמו מטרת טיטניום תחמוצה במערכת התספיריות בתדר רדיו (RF sputtering), ולאחר מכן הצמידו את כיסויי הזכוכית הנקיים למחזיק הדגימה באמצעות סרט פוליאמיד. הניחו את מחזיק הדגימה בתא ההספיריות והוואקיעו את התא עד שהלחץ יגיע ל-2.0 times 10⁻⁴ pascals. לאחר מכן, הכניסו גז ארגון לתא וקבעו את לחץ השקיעה ל-4.0 mTorr תוך השארת התריס סגור. הגבירו בהדרגה את הספק ה-RF ל-70 watts.לאחר מכן, פתחו את התריס ובצעו התזה (sputter) למשך 15 דקות כדי לקבל שכבה בעובי של 120 עד 150 nanometers. התחילו בייבוש כוס כימית מזכוכית ופינצטה בתנור בטמפרטורה של 120 °C למשך 30 דקות. לאחר מכן, הניחו את לוחות הכיסוי במגיב פלזמה וטיפלו במשטח הטיטניום הדי-אוקסיד בפלזמה של חמצן למשך חמש דקות בהספק של 200 watts ובזרימת חמצן של 100 standard cubic centimeters per minute כדי ליצור משטח הידרופילי יותר.לאחר מכן, הוציאו את הדגימות ושקיעו אותן במים מזוקקים פעמיים כדי לוודא שהמשטח הוא סופר-הידרופילי, ויבשו את המשטח ביסודיות תחת זרימת חנקן. לאחר מכן, העבירו את הדגימות, את הכלי היבש ואת הפינצטה לתוך שקית כפפות מלאה בחנקן, והכינו תמיסה של 1 mM של Octadecyltrichlorosilane המומס בטולואן. השקיעו את הדגימה בתמיסה למשך שעה אחת בטמפרטורת החדר כדי ליצור שכבה מוניתית המרכיבה את עצמה (self-assembled monolayer) על גבי תחמוצת הטיטניום.לאחר מכן, הסירו שאריות של מולקולות פאזור על ידי שטיפה של הדגימה בטולואן, אצטון ואתנול, ולבסוף במים מזוקקים פעמיים למשך חמש דקות כל אחד. לאחר מכן, שטפו את הדגימה ארבע פעמים במים מזוקקים פעמיים טריים וייבשו את הפני השטח תחת זרימת חנקן.יש לעקר את כיסורי הזריקה המצופים על ידי טבילת הדגימות ב-70% ethanol למשך חמש דקות. לאחר מכן, יש לשטוף את הדגימות פעמיים במים מזוקקים כפולה (double distilled water) סטריליים. לאחר מכן, יש להניח את הדגימה בצלחת בקוטר 35 מילימטר ולהוסיף שני מיליליטר של מצע גידול PC 12.דגרו את הדגימות למשך שלוש שעות לפחות באינקובטור עם באפר CO2 בטמפרטורה של 37 °C, בזמן שאלבמין הסרום במצע נספח לפני השטח של כיסויי הזכוכית (cover slips). הכינו את מיקרוסקופ הפלואורסצנציה ההפוך על ידי הדלקת מנורת הקשת. לאחר מכן, הכניסו את קוביית מסנן ה-UV וסובבו את העדשה לאובייקטיב בעלת הגדלה של 20x.מדוד את עוצמת האור באמצעות מד עוצמת UV וחשב את זמן ההקרנה עבור מינון של 200 joules per square centimeter. לאחר מכן, השתמש במיקרומטר של השולחן וכוון את קוטר האזור להקרנה ל-200 microns באמצעות כיוון דיאפרגמת השדה. לאחר דגירה של שלוש שעות, הוסף למצע המכסה את לבישי הזכוכית (cover slips) כ-200 µL של 3.0 mg/mL Type four collagen.לאחר מכן, העבירו את הפיתה בקוטר 35 מילימטר למסבב של המיקרוסקופ ומקדו את המיקרוסקופ על פני השטח של הדגימה באמצעות סימני השריטה. הקרינו אזור של זכוכית הכיסוי באור UV במינון של 200 joules per square centimeter. לאחר מכן, החליפו את המצע בשני מיליליטר של מצע גידול טרי עם NGF וללא Type four collagen והחזירו את הדגימה לאינקובטור.קצרו תאי PC 12 מובחנים באמצעות NGF שגודלו בתרבית אל תוך מבחנה קונית של 15 מיליליטר, וסובבו את המבחנה בצנטריפוגה במהירות של 150 ×g למשך ארבע דקות. לאחר מכן, שאבו את העילוי והוסיפו מיליליטר אחד של מצע גידול. השעיקו מחדש את התאים על ידי פיפטינג עדין למעלה ולמטה באמצעות המוציא. ספרו את צפיפות התאים והוסיפו 3.0 כפול 10 בחזקת 5 תאים לצלחית של 35 מילימטר המכילה את הלוחיות המכסוות המעובדות. דגרו את הצלחית למשך יום עד יומיים באינקובטור עם 5%CO2 בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס, לאחר יום עד יומיים של תרבית על פני השטח המעובד של XC two. השתמשו במיקרוסקופ כדי לוודא שהתאים נצמדים וגדלים אך ורק באזור שהוקרן ב-UV של הלוחיות המכסוות.לאחר מכן, הוסף 67 microliters של קולגן מסוג ארבע לצלחית עם התאים המטופחים, כך שריכוז הקולגן הסופי יהיה 100 micrograms per milliliter, כאשר המיקרוסקופ מוגדר לתבנית פני השטח. הנח את הצלחית על במה המיקרוסקופ ומקם את אזור ההקרנה סמוך למיקום התאים הנוכחי. הקר את הזכוכית המכסה באור UV במינון של 200 joules per square centimeter.לאחר ההקרנה, החליפו את המצע במצע נטול קולגן והחזירו את הדגימה לאנקובטור, תוך ניסיון להשלים את עיבוד הדגימה הבודדת בתוך 30 דקות. זוהי תמונת מיקרוסקופיה אלקטרונית סורקת בחתך רוחב של שכבת טיטניום דו-חמצני שהופקדה בשיטת התזה (sputter deposition). מהתבונית נאמד עובי השכבה לכ-150 ננומטרים.ניתן להבחין כאן גם במישוריות של שכבת הטיטניום דאוקסיד שהטרספה. ניתוח נוסף באמצעות מיקרוסקופיה של כוח אטומי חשף כי השורש הריבועי הממוצע (RMS) של חספוס הפני השטח היה רק 0.2 ננומטרים. קולגן מסוג 4 והתמיסה נספחים באופן מועדף לאזור שהוקרן ב-UV, שם האלבומין מודחק על ידי הלייזר.כדי להדגים את הרב-גוניות של גישה זו, חלבונים אחרים כגון פיברין דוגמו גם הם באמצעות אותה טכניקה. כאן תאים גדלים על האזור המודפס XC שני של כיסוי הזכוכית ובסמוך להם באזור המוגדר על ידי הקו המקווקו. כיסוי הזכוכית הוקרן לאחרונה בקרינת UV במקום שני וצופה בקולגן מסוג 4.במהלך חמשת הימים הבאים, התאים מתרבים ונדודים כדי לכסות את האזור שקודד מחדש. ניתן להשתמש בנוהל המוצג כאן כדי לתמרן תאים בתרבית באופן שרירותי, וייתכן שניתן להשתמש בו כדי ליצור דפוסים של סוגי תאים מרובים לצורך בניית מערכות מורכבות של תרביות משולבות (co-culture).

photopatterning-proteins-cells-aqueous-environment-using-tio2

Research

JoVE Journal

Bioengineering

הנדסה ביולוגית

Non-עכירות monolayer PEG silane היה desorbed מ למיעון בנפרד אלקטרודות איטו על זכוכית על ידי יישום של פוטנציאל רדוקטיבי. אלקטרוכימי של שכבת הפשטת PEG-silane מ microelectrodes איטו מותר הידבקות התא להיערך בצורה מוגדרת מרחבית, עם דפוסי הסלולר המקביל הדוק דפוסי אלקטרודה.

דפוסים על תאים שקוף אופטית טין אלקטרודות תחמוצת אינדיום

פרוטוקול זה מתאר שיטת microfabrication התואם לדפוסי תא על SiO 2. עיצוב parylene-C מוגדר מראש מודפס photolithographically על SiO 2 הוופלים. תאים לאחר דגירה עם סרום (או פתרון הפעלה אחר) לדבוק במיוחד ל( ולגדול בהתאם להתאמה של) parylene-C שבבסיס, בעוד שנהדף על ידי SiO 2 אזורים.

תא דפוסים על photolithographically מוגדר Parylene-C: SiO<sub&gt; 2</sub&gt; מצעים

נהלים מתוארים להכנת ננו-חוטים מפולחים וקואקסיאליים באמצעות אלקטרודפוזיציה מעוצבת בננו-נקבוביות. כדוגמאות, ננו-חוטים מפולחים המורכבים מקטעי Ag ו-ZnO, וננו-חוטים קואקסיאליים המורכבים ממעטפת TiO2 וליבת Ag. הננו-חוטים שימשו בניסויים בהיווצרות מימן פוטו-קטליטי.

אופן ההכנה ושימוש בPhotocatalytically פעיל מקוטע Ag | ZnO וקואקסיאלי טיו<sub&gt; 2</sub&gt;-Ag Nanowires Made by Templated Electrodeposition

מוצג פרוטוקול לגידול חמצוני פוטוכימי של ננו-חלקיקי תחמוצת אירידיום גבישיים קטנים על פני השטח של ננו-חלקיקי מוט זרעים CdSe@CdS.

צמיחת פוטו חמצונים של חלקיקים אירידיום תחמוצת על Nanorods CdSe @ התקליטורים

מאמר זה חוקר את ההתאמה של הדפסת הזרקת דיו לייצור תאים סולאריים רגישים לצבע. דיו ננו-חלקיקים TiO2 נטול קלסר נוסח והודפס על מצע זכוכית FTO. השכבה המודפסת יוצרה לתא עם שטח פעיל של 0.25 ס"מ 2 ויעילות של 3.5%.

דפוס דיגיטלי של טיטניום דו-חמצני עבור לצבוע תאים סולריים רגישים

שיטת תאים סולריים להדפסה, פולרן-חינם לחלוטין, מאוד אוויר-יציב, בתפזורת-heterojunction מבוססים על Ti alkoxides כמו acceptor האלקטרון לבין ייצור הפולימרים לתרום אלקטרונים מתוארת כאן. יתר על כן, שיטה לשליטה על המורפולוגיה של שכבת photoactive דרך bulkiness המולקולרי של יחידות Ti-alkoxide מדווח.

בקרת מורפולוגיה עבור תאים סולריים מילוי heterojunction אורגני-אורגניים להדפסה מלא מבוסס על מולקולה פולימרית Ti-alkoxide ו מוליכים למחצה

המטרה הכוללת של פרויקט זה היתה להשתמש electrospinning כדי לפברק photanode עם ביצועים משופרים עבור תאים סולריים רגישים צבע.

Electropinning של אלקטרודות photatalalytic עבור תאים סולריים רגישים צבען

כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי להכין הן העברת תשלום המבוסס על קרום polyoxometalate/פולימרים מרוכבים.

הכנה של ממברנות צילום תגובה מבוססת-Polyoxometalate צילום-הפעלת זרזים תחמוצת מנגן

במסמך זה, אנו מציגים נתונים היסטוריים פרוטוקולים עבור פתרון-מעובד כסף-ביסמוט-יוד (Ag-Bi-I) ternary מוליכים למחצה סרטים רזה מפוברק TiO2-מצופה אלקטרודות שקופות, שלהם פוטנציאל יישום אוויר-יציב, נטול עופרת מעגל התקנים.

הפתרון-מעובד "סילבר-ביסמוט-יוד" Ternary סרטים רזה עבור בולמי נטול עופרת פוטו

יש לנו משולבים ישירות צבע אורגני מבוסס העצם לתוך ליבת הקובלני כדי ליצור פוטוסנסיקטאז צמד-catalyst עבור פוטוקטליטי H2 הייצור. פיתחנו גם התקנה ניסיונית פשוטה להערכת הייצור H2 המונעת על ידי photocatalytic הרכבות.

פיתוח פוטוסנסיבקובלהלאיים עבור הייצור הסולארית H2 הפקה בתנאים אירובי מימית

מוצג כאן פרוטוקול לחקר סדרה אוניברסלית של הליכים ניסיוניים להערכת מעבדה מקיפה של פוטוזרזים בתחום הטיהור הסביבתי, תוך שימוש בדוגמה של הסרה פוטוקטליטית של מולקולות מזהמים אורגניים אנטיביוטיים ממים על ידי תרכובות פוספט כסף רגישות לפתלוציאנין.

שיטה מלאה להערכת הביצועים של photocatalysts עבור השפלה של אנטיביוטיקה בתיקון סביבתי

למד שיטה לשינוי אפיניות תאים על משטחי פיגומים באמצעות פוטוקטליזה של תחמוצת טיטניום. הטכניקה יוצרת מיקרו-דומיינים לחלבונים ומאפשרת הידבקות סלקטיבית של תאים בסביבה מימית.

Photopatterning חלבונים ותאים בסביבה מימית שימוש Tio

גלה סרטונים נוספים