16 בפברואר 2016
הקמנו טכניקה הבידוד, אפיון פנוטיפי ופונקציונלי ניתוח של תאים חיסוניים מן החניכיים בעכברים.
המטרה הכוללת של שיטה זו היא לבודד תאי חיסון חניכיים לאפיון מעמיק של התגובות החיסוניות הקשורות לחסינות הפה ודלקת חניכיים. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום חסינות הפה, כגון אילו גורמים תאיים מעורבים בפתוגנזה של דלקת חניכיים. היתרונות העיקריים של טכניקה זו הם בכך שהיא מאפשרת הערכה של רשת תאי החיסון האוראלי ובידוד של מספיק תאים ברי קיימא לחקירות חוץ גופיות במורד הזרם.
כצעד ראשון בפרוטוקול זה, התחל בהנחת סיכות כדי לשתק את גוף העכבר ולפתוח את חללי בית החזה והבטן כדי לחשוף את הלב והאיברים הפנימיים. לאחר מכן, בצע חתך בווריד הנבוב, והשתמש במזרק של 3 מיליליטר, המצויד במחט בגודל 27, כדי להשקיע 3 מיליליטר PBS דרך החדר השמאלי. לאחר שכל הדם נשטף, הצמד את ראש העכבר למשטח ניתוח, כשהבטן פונה כלפי מעלה.
לאחר מכן השתמש במספריים כדי לחתוך כל קומיסורה של השפה לכיוון הצוואר, להפריד את העור המכסה את אזור הלסת התחתונה והצוואר, ולחשוף את הרקמות והשרירים הבסיסיים. חותכים בין החותכות התחתונות כדי להפריד בין שני צידי הלסת התחתונה. קבעו כל צד של הלסת התחתונה המופרדת בעזרת מחטים בגודל 25 כדי לגשת לחלל הפה.
לאחר זיהוי החיך, השתמש בלהב כירורגי מספר 10 כדי לבצע חתכים אנכיים ממש קדמיים לטוחנת הראשונה, ואחוריים לטוחנת השלישית. ואז לנתח את הרקמה הרחק מחלל האף, וגם לנתח את הבלוקים מהלסת התחתונה. לאחר מכן הסר את הרקמה העודפת מגבול החניכיים והעביר את הבלוקים הלסתיים והלסת התחתונה לצינור חרוטי של 50 מיליליטר המכיל 5 מיליליטר קולגנאז ו- DNase על קרח.
עכל את הרקמה באינקובטור שייקר ב-37 מעלות צלזיוס למשך שעה, והוסף 50 מיקרוליטר של 0.5 EDTA מולארי במהלך חמש הדקות האחרונות. לאחר מכן הוסף 5 מיליליטר של מדיום DNase קר לרקמות, וערבב בעדינות את תוכן הצינור על ידי מערבולת. לאחר מכן, העבירו את ארבעת גושי הרקמה לצלחת פטרי.
ומכסים אותם ב -500 מיקרוליטר של מדיום DNase טרי. השתמש באזמל כדי להסיר את החניכיים מכל גוש רקמה. והעבירו את כל תכולת המנה למסננת תאים של 70 מיקרון על גבי צינור של 50 מיליליטר.
שוטפים את צלחת הפטרי והמסננים עם 3 עד 5 מיליליטר מדיום DNase טרי. ואז השתמש בבוכנה של מזרק סטרילי של 3 מיליליטר כדי לרסק את רקמת החניכיים כנגד רשת המסננת. שוטפים את המסננת עם 30 עד 35 מיליטרים של מדיום DNase קר, וצנטריפוגה את המסנן.
לאחר מכן השעו מחדש את החך במיליליטר אחד של מדיום שלם, וקבעו את מספר התאים הקיימאים. הבידוד והעיבוד של תאי מערכת החיסון כפי שהודגם זה עתה, מניב מספר מספיק של תאים כדי לבצע גירוי ex-vivo ואפיון של דפוסי הפרשת ציטוקינים של תאי חניכיים הן מבעלי חיים פראיים והן מבעלי חיים רגישים לדלקת חניכיים. ואכן, ניתן לנתח את הרכב תאי חיסון החניכיים של העכברים כפי שמודגם בתרשים צפיפות אלה המעריכים את תאי ה-t ותאי ההרג הטבעיים בעכברי נוקאאוט LFA רגישים לדלקת חניכיים.
באמצעות אסטרטגיות השער המתאימות, ניתן לקבוע גם את ייצור הציטוקינים התוך תאיים של תאי TCR beta CD4 חיוביים, TCR beta CD8 חיובי ו-TCR גמא דלתא חיוביים, כמו גם NK, ותאי לימפה מולדים. לאחר השליטה, ניתן לבודד את התאים תוך שלוש שעות לצביעה חיסונית אם הטכניקה מבוצעת כראוי. בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור להשלים את כל השלבים ביעילות ובמהירות, תוך שמירה על התאים על הקרח בכל פעם שהם לא עוברים מניפולציה.
בעקבות הליך זה, ניתן לבצע שיטות אחרות, כמו מיון תאים, כדי לענות על שאלות נוספות הקשורות לתפקוד של תת-קבוצות התאים הספציפיות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג טכניקה לבידוד ואפיון תאי חיסון מחניכיים של עכבר. השיטה שואפת לשפר את ההבנה של חסינות דרך הפה ודלקת חניכיים.
Precise isolation and functional profiling of gingival immune cells enables mechanistic de-risking in oral immunology and supports target validation for inflammatory disease research. This workflow provides high-viability cell populations for quantitative phenotyping and ex vivo functional assays, strengthening predictive confidence in early discovery and translational studies. The approach is positioned to inform portfolio decisions in immunology and oral health R&D by enabling robust interrogation of tissue-resident immune networks.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by supplying high-quality immune cell preparations for both mechanistic studies and functional screening in oral disease models.