-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
הערכת Neurogenesis יסודי Xenopus עוברים באמצעות Immunostaining
הערכת Neurogenesis יסודי Xenopus עוברים באמצעות Immunostaining
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Assessing Primary Neurogenesis in Xenopus Embryos Using Immunostaining

הערכת Neurogenesis יסודי Xenopus עוברים באמצעות Immunostaining

Full Text
10,179 Views
06:47 min
April 12, 2016

DOI: 10.3791/53949-v

Siwei Zhang*1,2, Jingjing Li*1,3, Robert Lea1, Enrique Amaya1

1The Healing Foundation Centre, Faculty of Life Sciences,University of Manchester, 2Department of Cell and Molecular Biology, Feinberg School of Medicine,Northwestern University, 3Department of Craniofacial Development and Stem Cell Biology, Dental Institute,King's College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a rapid method for visualizing different neuronal cell populations in the central nervous system of Xenopus embryos using immunofluorescent staining. This technique facilitates the observation of neural differentiation processes in a single experiment.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Developmental Biology
  • Immunofluorescence Techniques

Background

  • Understanding neuronal differentiation is crucial in developmental neuroscience.
  • Xenopus embryos serve as a model for studying neurogenesis.
  • Immunofluorescent staining allows for the visualization of specific neuronal populations.
  • This method can provide insights into the regulation of neural stem cells.

Purpose of Study

  • To develop a technique for simultaneous observation of neural stem-cell progenitors and differentiated neurons.
  • To facilitate the study of primary neurogenesis in Xenopus embryos.
  • To provide a reliable method for visualizing neuronal populations in the central nervous system.

Methods Used

  • Aspirating embryos and preparing them for cryosectioning.
  • Using a cryostat to obtain thin sections of the embryos.
  • Staining sections with specific antibodies to visualize neuronal populations.
  • Observing stained sections under a microscope to analyze results.

Main Results

  • Successful visualization of neural stem-cell pools and differentiated neurons.
  • Identification of specific neuronal populations in the forebrain, midbrain, hindbrain, and spinal cord.
  • Demonstration of the technique's efficiency, allowing completion in approximately two hours.
  • Validation of the method for future studies in developmental neuroscience.

Conclusions

  • This technique enhances the ability to study neuronal differentiation in Xenopus.
  • It provides a valuable tool for researchers in developmental neuroscience.
  • Future applications may lead to deeper insights into neurogenesis and related processes.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this technique?
The main advantage is the simultaneous observation of neural stem-cell progenitors and differentiated neurons in one experiment.
How long does the procedure take?
Once mastered, the technique can be completed in approximately two hours.
What model organism is used in this study?
Xenopus embryos are used as the model organism for this study.
What types of staining are used?
Immunofluorescent staining with antibodies such as Anti-Sox 3 and Anti-Acetylated Tubulin is used.
What are the key areas of science involved?
The key areas include neuroscience, developmental biology, and immunofluorescence techniques.

מאמר זה מציג שיטה נוחה ומהירה המאפשר הדמיה אוכלוסיות תאים עצביים שונים במערכת העצבים המרכזית של עוברי Xenopus באמצעות מכתים immunofluorescent על ​​הסעיפים.

המטרה הכוללת של ניסוי זה היא לאפשר הדמיה מהירה ונוחה של אוכלוסיות שונות של תאי עצב במוח העוברי המתפתח של קסנופוס. שיטות אלו יכולות לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום הנוירוגנזה הראשונית, כגון התבוננות בתהליך הוויסות של התמיינות עצבית במערכת העצבים המרכזית של קסנופוס. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהיא מאפשרת תצפית בו זמנית על מאגר האב העצבי של תאי גזע, כמו גם מאגר עצבי ראשוני מובחן בתוך ניסוי יחיד.

כדי להתחיל בהליך זה, שאפו בזהירות חמישה עד עשרה עוברים מבקבוקון הזכוכית באמצעות פיפטה מפלסטיק או זכוכית מבלי להכניס בועות אוויר. העבירו את העוברים לתא ההרכבה והתבוננו תחת סטריאוסקופ. מלאו את תא ההרכבה בתמיסת ג'לטין כדי להבטיח את קשיחות גוש הקטע.

לאחר מכן, סדרו את העוברים זה לצד זה בעזרת זוג מלקחיים דקים. סמן את כיוון הראש על ידי ציור חץ על שפת החדר באמצעות טוש תואם קריוגני. עבור קבוצות מרובות של עוברים, רשום את התיאור של כל קבוצה על שפת החדר המתאים.

לאחר מכן, הניחו בזהירות את החדר אופקית בקופסת קצף מלאה למחצה בקרח יבש. סגור את המכסה ואפשר לתא ההרכבה להקפיא בזה אחר זה למשך חמש עד עשר דקות. לאחר מכן, המשיכו בהקפאה או שמרו דגימות קפואות בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס למשך שבוע עד שבועיים לפחות מבלי לאבד את החיסוניות.

בהליך זה, הסר את גוש הדגימה הקפוא מהתא על ידי לחיצה על תחתית החדר באמצעות מקל קהה או אצבע. לאחר מכן, הוסף כמה טיפות של מדיום מקפיא רקמות על דיסק החזקת הדגימה. הרכיבו את בלוק הדגימה כשהקצה הקדמי של העוברים פונה כלפי מעלה והניחו לבלוק המותקן לעמוד בתוך תא הקריוסטט למשך כדקה, או עד שהמדיום מקפיא הרקמות הופך אטום.

התקן מיד את הדיסק המחזיק דגימה על המיקרוטום כשהצד התחתון של בלוק הדגימה פונה כלפי מעלה. חתוך חלק מבלוק הדגימה באמצעות להב כאשר בלוק הדגימה עדיין רך יחסית. לאחר מכן, השאירו את הדיסק המחזיק את הדגימה על המיקרוטום למשך חמש דקות לפחות כדי לאפשר לטמפרטורה שלו להגיע לשיווי משקל.

לאחר מכן, חתוך בהדרגה את גוש הדגימה כלפי מטה עד שראשי הראשנים נראים דרך הג'לטין השקוף. כדי להגביר את מהירות החיתוך, הגדל את עובי הקטע. עקוב אחר ביצועי הקריוסטט, כגון החדות והזווית של הלהב, כדי להבטיח שהחלקים הבאים נוצרים ברצועה ארוכה.

לאחר שראשי הראשנים נראים לעין, התאם את הגדרות הקריוסטט בחזרה לקדמותן, כדי לוודא שהפרוסות המוגמרות יכולות ליצור רצועות ואינן חופפות או נדבקות ללהב. לאחר מכן, המשיכו לקצץ עד שראשי הראשנים כמעט חשופים. צחצחו את כל חלקי השאריות על הבמה לפני שתתחילו לאסוף את חלקי הדגימה.

צרו כ-10 עד 15 חלקים ותנו להם ליצור רצועה ארוכה. הפוך את צלחת זכוכית הכיסוי העבה הצידה והסר בעדינות את הרצועה מהלהב בעזרת מברשת עדינה. לאחר מכן, סדרו אותו על הבמה כשהציר הארוך מקביל ללהב.

צרו 10 עד 15 חלקים ותנו להם ליצור רצועה ארוכה מבלי להישבר. זה אולי לא קל ודורש תרגול. טריק אחד הוא לנסות לא להפעיל את המהירות גבוהה מדי על גלגל היד.

במקום זאת, סובב את גלגל היד בזהירות ובאטיות. לאחר מכן, בחר שקופית אחת טעונה חיובית בטמפרטורת החדר ותייג אותה בעיפרון. לאחר מכן, לחץ אותו במהירות ובחוזקה על הרצועה כשהצד המסומן כלפי מטה.

לאחר מכן, הסר את השקופית מתא הקריוסטט. חזור על שלב זה כדי לסדר 20 עד 30 פרוסות במקביל בכל שקופית. יבש את הצדדים באוויר למשך 10 דקות, ולאחר מכן המשך מיד להליך הצביעה החיסונית או אחסן את השקופיות בקופסת שקופיות בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס עד שלושה עד שישה חודשים לפני ביצוע הליך הצביעה החיסונית.

כאן, אנו יכולים לראות את מישורי החתך המתאימים של המוח הקדמי, המוח האמצעי, המוח האחורי וחוט השדרה של ראשן קסנופוס אשר ישמשו כדי לספק הפניות מיקום לתמונות הבאות. החתכים המתאימים, שנצבעו באנטי-סוקס 3, טובולין אנטי-אצטיל ו-DAPI מראים את המיקומים היחסיים של מאגרי תאי גזע עצביים כמו גם נוירופילמנטים בתוך הצינור העצבי. והנה חתכי הרוחב המתאימים המוכתמים ב-Anti-MyT1 ו-DAPI המציגים את המיקומים היחסיים של הנוירונים הראשוניים המובחנים בתוך הצינור העצבי.

לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך שעתיים אם היא מבוצעת כראוי. בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור להבטיח זמן קירור מספיק עבור בלוק הדגימה בקרח יבש. אחרת, ייתכן שבלוק הדגימה לא יהיה קשה מספיק ולכן קשה לחתוך אותו.

לאחר פיתוחה, טכניקה זו סללה את הדרך לחוקרים בתחום מדעי המוח ההתפתחותיים לחקור את ההתמיינות העצבית במערכות העצבים המרכזיות של קסנופוס. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד ליצור קטעים, ולהתבונן במאגרים ספציפיים של תאים עצביים במערכת העצבים המרכזית של קסנופוס.

Explore More Videos

Neuroscience גיליון 110 Xenopus פיתוח מערכת העצבים המרכזית immunostaining והבחנה עצבית נוירוגנזה העיקרי

Related Videos

Live-תא הדמיה וניתוח כמותי של תאים אפיתל עובריים ב Xenopus laevis

06:51

Live-תא הדמיה וניתוח כמותי של תאים אפיתל עובריים ב Xenopus laevis

Related Videos

15.5K Views

טרנסלוקציה מקוטב של חלבוני ניאון ב Xenopus האאקטודרם בתגובה איתות Wnt

06:55

טרנסלוקציה מקוטב של חלבוני ניאון ב Xenopus האאקטודרם בתגובה איתות Wnt

Related Videos

11.2K Views

תרבויות Explant עצביות מן Xenopus laevis

10:05

תרבויות Explant עצביות מן Xenopus laevis

Related Videos

13.3K Views

Dissection, תרבות וניתוח של Xenopus laevis רקמת רשתית עוברית

10:22

Dissection, תרבות וניתוח של Xenopus laevis רקמת רשתית עוברית

Related Videos

14.4K Views

סימולטני טרום והקלטת אלקטרו פוסט סינפטי מ Xenopus עצבי שרירי Co-תרבויות

08:13

סימולטני טרום והקלטת אלקטרו פוסט סינפטי מ Xenopus עצבי שרירי Co-תרבויות

Related Videos

11.4K Views

הבנת organogenesis המוקדם שימוש פשוטה באתר הכלאת פרוטוקול ב Xenopus

14:50

הבנת organogenesis המוקדם שימוש פשוטה באתר הכלאת פרוטוקול ב Xenopus

Related Videos

39.6K Views

כמו תא גזע Xenopus Explants העובריים לחקר תכונות המוקדמות עצבי התפתחותית במבחנה ו In vivo

11:13

כמו תא גזע Xenopus Explants העובריים לחקר תכונות המוקדמות עצבי התפתחותית במבחנה ו In vivo

Related Videos

8.5K Views

טכניקה לכוון Microinjection אל פיתוח Xenopus כליה

11:29

טכניקה לכוון Microinjection אל פיתוח Xenopus כליה

Related Videos

12.2K Views

ויזואליזציה וניתוח כמותי של אנגיוגנזה עובריים ב Xenopus טרופי

06:05

ויזואליזציה וניתוח כמותי של אנגיוגנזה עובריים ב Xenopus טרופי

Related Videos

8.9K Views

הזרקת דנ א לתוך eyebuds ב xenopus זריזה העוברים והדמיה של gfp המבטא האופטי axonal הביע בשלמותו, חי xenopus tadpoles

06:32

הזרקת דנ א לתוך eyebuds ב xenopus זריזה העוברים והדמיה של gfp המבטא האופטי axonal הביע בשלמותו, חי xenopus tadpoles

Related Videos

6.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code