Name: רצף ללכוד מתיל-DNA מחייב עבור רקמות חולות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-31T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 40 s
Description: חקור את הנוף האפיגנטי בקהילות חולים גדולות באמצעות טכנולוגיית MBDCap-seq. שיטה זו מאפשרת זיהוי ביומרקרים חדשים לטיפול ואבחון מחלות בצורה יעילה וחסכונית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

העבודה נתמכת על ידי CPRIT ומחקר הדרכה פרס RP140105, כמו גם נתמך בחלקו על ידי ארה&quot;ב National Institutes of Health (NIH) מעניק R01 GM114142 ועל ידי ויליאם &amp; Ella אוונס רפואי Research Foundation.

כל הרקמות מתקבלות לאחר אישור ועדת דירקטוריון הסקירה המוסדית וכאשר כל המשתתפים הסכימו הם בניתוחים מולקולריים ומחקרים ומעקב. הפרוטוקולים מאושרים על ידי ועדת לימודי האדם באוניברסיטת למדעי הבריאות מרכז טקסס בסן אנטוניו. 1. לכידת DNA מתיל-מחייב (MBDCap) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף דגימת DNA ובידוד <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אסוף גידול בתפזורת או דגימות רקמה נורמליות מן דגימות רקמה מוטבעת פרפין חולה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש ערכת מיני DNA מסחרית לבודד הדנ&quot;א הגנומי מן דגימות הרקמה מוטבעת פרפין על פי הפרוטוקול של היצרן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש ערכת העשרה DNA מפוגלת עם ההליך המתואר כאן על פי הפרוטוקול של היצרן. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף חרוז ראשוני הערה: חרוזים משמשים זוג עם חלבון MBD-ביוטין, אשר מזהה מתילציה DNA על הגנום. חרוזים בדרך כלל מושעיםבתמיסת מניות. השתמש בשלבים הבאים כדי לשטוף את הנוזל. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend את המניה של חרוזים streptavidin (ראה לוח חומרים) על ידי pipetting בעדינות מעלה ומטה כדי לקבל השעיה הומוגנית. אין לערבב את החרוזים על ידי vortexing. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראשית מיקרוגרם של ה- DNA קלט, add10 μL של חרוזים לצינור עם 90 μL של 1x לאגד / הצפת לשטוף. סובב דקות 1. אל תערבב ידי vortexing. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור (ים) על מדף מגנטי עבור 1 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הנוזל עם טפטפת וזורקים את הנוזל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 250 μL של 1x לאגד / הצפה לשטוף את החרוזים ולסובב דקות 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבי 1.2.3 - 1.2.5 פעמים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צימוד חלבון MBD-ביוטין חרוזים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור 1.2 מיקרוגרם של ה- DNA קלט, להוסיף 7 μL (3.5 מיקרוגרם) של חלבון MBD-ביוטין על צינור אחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף 93 μL של 1x לאגד / הצפה לשטוף לחלבון לעשות נפח סופי של 100 μL. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים את חלבון חרוזיםתערובת על מערבל סיבוב ב RT במשך שעה 1. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הקטועה DNA (קלט) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> DNA Sonicate על ידי הוספת 1.2 מיקרוגרם של ה- DNA הגנומי הכולל 96 μL של חיץ TE ו -24 μL של 5x לאגד / לשטוף חיץ לבצע פתרון 120 μL. לשימוש כוח של 30 ו OFF כוח 30 s במהלך sonication, 20 - 25 פעמים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל 1 μL של פתרון ה- DNA sonicated באמצעות מערכת bioanalyzer עם ערכת DNA מסחרי רגישות גבוהה כדי לבדוק את גודל שברי להיות בטווח של 150 - 350 נ&quot;ב על פי פרוטוקול של היצרן. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטוף את-חרוזי MBD <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור המכיל MBD-חרוזים על מתלה מגנטי 1 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר וזורקים את הנוזל עם טפטפת בלי לגעת חרוזים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend את החרוזים עם 250 μL של 1x לאגד / הצפה לשטוף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים את החרוזים על מערבל סיבוב ב RT במשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבי 1.5.1 - 1.5.4 פעמים. </li&gt; </ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תגובה ללכוד DNA מקוטע (DNA קלט 1 מיקרוגרם) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את התערובת דנ&quot;א / הצפת הצינור המכיל את החרוזים MBD. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים את-חרוזים MBD עם ה- DNA על מערבל סיבוב של 1 ש &#39;ב RT. לחלופין, לערבב O / N ב 4 מעלות צלסיוס </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסרת DNA הלא שנתפסו מן החרוזים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר ערבוב דנ&quot;א MBD-חרוזים, במקום צינור על המדף המגנטי דקות 1. לרכז את כל החרוזים על הקיר הפנימי של הצינור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הנוזל supernatant עם טפטפת ולשמור אותו צינור microcentrifuge DNase ללא נקי כמו DNA nonmethylated. אחסן מדגם זה על הקרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 200 μL של 1x לאגד / הצפה לשטוף את החרוזים כדי לשטוף את החרוזים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים את החרוזים על מערבל סיבוב 3 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור על מתלה מגנטי 1 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הנוזל עם טפטפת ולשמור אותו צינור microcentrifuge. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שווהture התגובות של ≤1 מיקרוגרם של ה- DNA קלט, חזור על שלבים 1.7.3 - 1.7.6 עבור 2 שברים לשטוף יותר בסך הכל. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Elution חלק יחיד <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים חיץ דלת מלח עם חיץ גבוה מלח (1: 1) כדי לקבל חיץ elution (1,000 מ&quot;מ NaCl). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend את החרוזים 200 μL של חיץ elution (1,000 מ&quot;מ NaCl). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה חרוזים על מערבל סיבוב 3 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור על מתלה מגנטי 1 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם הצינור במקום על המדף המגנטי, להסיר את הנוזל עם טפטפת בלי לגעת חרוזים עם קצה פיפטה, ולשמור אותו צינור 1.5 מ&quot;ל microcentrifuge DNase ללא נקי. אחסן מדגם זה על הקרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבים 1.8.1 - 1.8.4 פעם, איסוף הדגימה השנייה באותו צינור (הנפח הכולל יהיה 400 μL). חנות המדגם ונקווה על הקרח. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממטרי אתנול (ניקוי DNA) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכל noncaptured, לשטוף, ו elution חלק from על השלבים הקודמים, להוסיף 1 גליקוגן μL (20 מיקרוגרם / μL, כלולים בערכה), 1/10 מדגם נפח של נתרן אצטט 3M, pH 5.2 (למשל, 40 μL לכל 400 μL של המדגם) ו -2 כרכים מדגם של 100% אתנול (למשל, 800 μL לכל 400 μL של המדגם). ההיקף הכולל הוא 1,241 μL. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבבים היטב דגירה ב -80 מעלות צלסיוס לפחות h 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה הצינור במשך 15 דקות ב 11,363 XG ב 4 מעלות צלסיוס </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות להתעלמות supernatant מבלי להפריע גלולה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 500 μL של אתנול 70% קר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה הצינור במשך 5 דקות ב 11,363 XG ב 4 מעלות צלסיוס </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות להתעלמות supernatant מבלי להפריע גלולה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבי 1.9.6 - 1.9.7 פעם וסרה supernatant שיורית הנותרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אוויר יבש גלולה עבור ~ 5 דקות. אין לייבש את הגלולה לחלוטין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend גלולה DNA ב 37.5 μL של מים ללא DNase או אחריםהיקף המאגר מתאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את ה- DNA על הקרח או לאחסן את ה- DNA ב -20 מעלות צלסיוס או מתחת עד לשימוש נוסף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק כי הסכום הכולל של ה- DNA הוא מעל 20 ng, (למשל, להשתמש במערכת quantitation fluorometric, ראה לוח חומרים). </li></ol></li></ol> רצף 2. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש שברי הדנ&quot;א שנמצא הליך MBDCap על רצף. עבור כל דגימה כדי להיות רצף, בסכום כולל של 20 - 40 DNA ng נדרש הכנת ספרייה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להכנת ספרייה-seq DNA להשתמש במערכת בניית ספרייה אוטומטית לחלוטין (ראה לוח חומרים) ופעל לפי הפרוטוקול הסטנדרטי המסופק על ידי היצרן. קטעי דנ&quot;א בחר בגודל 200 - נ&quot;ב 400 להכנת הספרייה. המערכת כן ספריית האוטומציה מאפשרת סטנדרטיזציה של הליך הכנת הספרייה ומזעור הווריאציה על פני הדגימות בשל הכנה ידנית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממשלת מתאם השתמשrs ו לדלל את ריכוז 100x. מתוך זה, השתמש 10 μL עבור כל דגימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעקבות צעד 2.2, להוציא את התגובה, ולכמת את הספרייה seq-דנ&quot;א באמצעות מערכת quantitation fluorometric (ראה לוח חומרים). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת הליך הגברת PCR. הבחירה של שילוב הורים PCR היא לשפר את יעילות ה- PCR של אזור מועשר GC של הגנום. בתוך צינור PCR, להוסיף 15 μL הספרייה DNA-seq, 25 תמהיל מאסטר μL PCR (ראה לוח חומרים), 2 תערובת פריימר μL PCR (ראה לוח חומרים), ו -8 μL H 2 O. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בהתאם להמלצת PCR מיצרן של מיקס מאסטר PCR, שינוי פעמי אופניים וטמפרטורות עבור חומרי מוצא אינם אחידים: 98 o C למשך 45 שניות, מחזורי X של 98 o צלזיוס למשך 15 שניות, 65 o C למשך 30 שניות, 72 o צלזיוס למשך 30 s ולאחר מכן 72 מעלות צלסיוס 1 דקות. חזק ב 4 מעלות צלסיוס <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> PerfORM מספיק מחזורים כדי בסופו של דבר עם 2 - 10 ננומטר של ה- DNA ספריה (8 - 10 מחזורים). </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנקות תגובת PCR עם 1: 1 יחס של חרוזי טיהור PCR על פי הפרוטוקול של היצרן (ראה לוח חומרים). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Elute עם 20 - חיץ elution 30 μL. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברקוד מדגם וברכת 4 דגימות יחד לנתיב אחד של תא זרימה. השתמש בפרוטוקול הקריא ליחיד 50 נ&quot;ב עבור סידור (ראה לוח חומרים). </li></ol> 3. ביואינפורמטיקה ניתוח הערה: תהליך נוסף קבצי fastq הגלם המתקבלים רצף לבצע בקרת איכות ומיפוי רצפי דנ&quot;א הקצר (כניסות) לגנום. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש Bowtie קצר לקריאה aligner, כלי מיפוי הגנום על כל קובץ מדגם fastq למפות את מקריא הגנום התייחסות. כלי מיפוי קריאה רבים זמינים לבצע שלב זה וניתן להשתמש בו על בסיס העדפה אישית. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר עד 2 חוסר התאמה של וולדואר קורא תוך מיפוי הגנום ההתייחסות. דווח עד 20 המערכים טובים ביותר עבור כל אחד מהם קראו. לדוגמה, השתמש עניבת פרפר -v 2 --best -k 20 --chunkmbs 200 &lt;ebwt&gt; &lt;fastqFile&gt; &lt;alignFile&gt;. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש LONUT 9 לשחזר את להכפיל ממופה קורא לשיפור זיהוי של האזורים המועשרים. עבור כל קריאה, לכל היותר יישור אחד יהיה התאושש כאשר היא קרובה מספיק לכל הפסגות בשם לעיל. לדוגמה, השתמש: perl lonut.pl -G hg19 -w 250 -p 99 &lt;alignFile&gt; &lt;outputPath&gt;. LONUT יבצע את הפעולות הבאות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערכי פיצול ממופים באופן ייחודי קוראים להכפיל ממופה קורא. שיא על Call ממופה באופן ייחודי קורא באמצעות מתקשר שיא חגורת 11. האפשרות -w 250 -p 99 בפקודה למשל הם עבור חגורה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשלב באופן ייחודי ממופה קורא עם התאושש קורא המתקבל LONUT, ואת בשילוב קורא, בפורמט BED, ישמש לניתוח נוסף. לחשב את מספר COMBINאד קורא לנורמליזציה בעתיד. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סל קורא. חלץ קורא האזור של עניין באמצעות סקריפט perl: perl methyPipeline.pl &lt;sampleInfoFile&gt; &lt;refGeneFile&gt; -up &lt;הזרם הארכת אורך&gt; -dn &lt;במורד אורך הארכת&gt;. עבור כל קובץ מיטה המפורט sampleInfoFile, תסריט פרל מבצע את המשימות שלהלן. הערה: ראה קובץ קידוד משלים סקריפט Perl. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סל קורא לתוך גודל סל קבוע, למשל, 100 נ&quot;ב, עבור 24 כרומוזומים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור כל גן המפורט refGeneFile, לחלץ את הפחים סביב אתר תחילת שעתוק (TSS), עד אורך ההרחבה המתאים אפשרות -up ו -dn. לדוגמה, לחלץ את הנתונים באזור זה מלמעלה ועד למטה 4 kb של TSS. ב- BP סל גודל 100, זה חילוץ יש נתונים 81 פחים, ואת סל המרכז תואם את TSS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור הגן על גדיל antisense, להעיף באזור חילוץ משמאל לימין כך פחי הזרם הם תמיד PLACED בצד שמאל עם סקריפט Perl. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בהמשך לפצל באזור TSS ± ​​4 kb לשלושה אזורים תת: שמאל, נגד הזרם 4 kb כדי במעלה הזרם 2 kb; התיכון, מעלה kb 2 במורד הזרם; נכון, זרם 2 kb עד 4 קילו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור כל דגימה, לחלק את הספירה של קורא כל סל במספר הכולל של משולב ממופה קורא מחושב ב 3.3.3. הנורמליזציה תבטל את ספציפיים המדגם לקרוא הבדלים ומאפשרת להשוות את הקורא ברחבי מדגמים שונים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להריץ את הסקריפט bash (כמצוין קובץ סקריפט) לבצע בדיקה סטטיסטית על מנורמל קורא המתקבל באזור שמאלה, כדי לזהות מתילציה הפרש בין קבוצה הנורמלית במקרה באזורים המתוארים באזור האגף. הערה: עיין קובץ הקידוד משלים את תסריט bash. בהתבסס על אזורים כי הם מפוגל דיפרנציאלי, ישנם שבעה שילובים: האזור כולו: מתילציה ההפרש ברחבי האזור kb ± 4 TSS MiddleLeft: מתילציה ההפרש בשני באזור האמצעי ויצא MiddleRight: מתילציה ההפרש בשני באזור באמצע וימינה מתילציה הפרש בשני באזור על ימין ועל שמאל: צלע מתילציה הפרש באזור נותר רק: שמאל מתילציה הפרש באזור נכון יחיד: תקין מתילציה הפרש באזור אמצעי יחיד: תיכון </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש באותו סקריפט bash כדי להמחיש את מתילציה דיפרנציאליים עלילת טורנדו. עלילת הגנים המפוגלים Hyper היפו בפנל נפרד, ולמיין לפי סדר שילוב באזור כמתואר 3.4, בהתאמה. </li></ol>

<ol><li>Trimarchi, M. P., Mouangsavanh, M., Huang, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+epigenetics%3A+a+perspective+on+the+role+of+DNA+methylation+in+acquired+endocrine%5BTitle%5D)+AND+%22Chin.+J.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Cancer epigenetics: a perspective on the role of DNA methylation in acquired endocrine.</a> Chin. J. Cancer. 30, 749-756 (2011).</li>
<li>Nair, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+methyl-DNA+immunoprecipitation+%28MeDIP%29+and+methyl-CpG+binding+domain+%28MBD%29+protein+capture+for+genome-wide+DNA+methylation+analysis+reveal+CpG+sequence+coverage+bias%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenetics%22%5BJournal%5D)">Comparison of methyl-DNA immunoprecipitation (MeDIP) and methyl-CpG binding domain (MBD) protein capture for genome-wide DNA methylation analysis reveal CpG sequence coverage bias.</a> Epigenetics. 6, 34-44 (2011).</li>
<li>Zuo, T., Tycko, B., Liu, T. M., Lin, J. J., Huang, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+in+DNA+methylation+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenomics%22%5BJournal%5D)">Methods in DNA methylation profiling.</a> Epigenomics. 1, 331-345 (2009).</li>
<li>Clark, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+the+whole+genome+approach+of+MeDIP-seq+to+the+targeted+approach+of+the+Infinium+HumanMethylation450+BeadChip%28%28R%29%29+for+methylome+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A comparison of the whole genome approach of MeDIP-seq to the targeted approach of the Infinium HumanMethylation450 BeadChip((R)) for methylome profiling.</a> PLoS One. 7, e50233(2012).</li>
<li>Walker, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+methylation+profiling%3A+comparison+of+genome-wide+sequencing+methods+and+the+Infinium+Human+Methylation+450+Bead+Chip%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenomics%22%5BJournal%5D)">DNA methylation profiling: comparison of genome-wide sequencing methods and the Infinium Human Methylation 450 Bead Chip.</a> Epigenomics. , 1-16 (2015).</li>
<li>Huang, Y. W., Huang, T. H., Wang, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+DNA+methylomes+from+microarray+to+genome-scale+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Technol.+Cancer+Res.+Treat%22%5BJournal%5D)">Profiling DNA methylomes from microarray to genome-scale sequencing.</a> Technol. Cancer Res. Treat. 9, 139-147 (2010).</li>
<li>Serre, D., Lee, B. H., Ting, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MBD-isolated+Genome+Sequencing+provides+a+high-throughput+and+comprehensive+survey+of+DNA+methylation+in+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">MBD-isolated Genome Sequencing provides a high-throughput and comprehensive survey of DNA methylation in the human genome.</a> Nucleic Acids Res. 38, 391-399 (2010).</li>
<li>Brinkman, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-genome+DNA+methylation+profiling+using+MethylCap-seq%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Whole-genome DNA methylation profiling using MethylCap-seq.</a> Methods. 52, 232-236 (2010).</li>
<li>Wang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LOcating+non-unique+matched+tags+%28LONUT%29+to+improve+the+detection+of+the+enriched+regions+for+ChIP-seq+data%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">LOcating non-unique matched tags (LONUT) to improve the detection of the enriched regions for ChIP-seq data.</a> PLoS One. 8, e67788(2013).</li>
<li>Gu, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CMS%3A+a+web-based+system+for+visualization+and+analysis+of+genome-wide+methylation+data+of+human+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">CMS: a web-based system for visualization and analysis of genome-wide methylation data of human cancers.</a> PLoS One. 8, e60980(2013).</li>
<li>Lan, X., Bonneville, R., Apostolos, J., Wu, W., Jin, V. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((W-ChIPeaks%3A+a+comprehensive+web+application+tool+for+processing+ChIP-chip+and+ChIP-seq+data%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">W-ChIPeaks: a comprehensive web application tool for processing ChIP-chip and ChIP-seq data.</a> Bioinformatics. 27, 428-430 (2011).</li>
<li>Jadhav, R. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+DNA+methylation+analysis+reveals+estrogen-mediated+epigenetic+repression+of+metallothionein-1+gene+cluster+in+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Epigenetics%22%5BJournal%5D)">Genome-wide DNA methylation analysis reveals estrogen-mediated epigenetic repression of metallothionein-1 gene cluster in breast cancer.</a> Clin. Epigenetics. 7, 13(2015).</li>
<li>Hsu, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Promoter+hypomethylation+of+EpCAM-regulated+bone+morphogenetic+protein+gene+family+in+recurrent+endometrial+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Promoter hypomethylation of EpCAM-regulated bone morphogenetic protein gene family in recurrent endometrial cancer.</a> Clin. Cancer Res. 19, 6272-6285 (2013).</li>
<li>Wang, Y. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+Distal+and+Genic+Methylation+in+the+Development+of+Prostate+Tumorigenesis+Revealed+by+Genome-wide+DNA+Methylation+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Roles of Distal and Genic Methylation in the Development of Prostate Tumorigenesis Revealed by Genome-wide DNA Methylation Analysis.</a> Sci. Rep. , (2015).</li>
<li>Plongthongkum, N., Diep, D. H., Zhang, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+the+profiling+of+DNA+modifications%3A+cytosine+methylation+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Gen%22%5BJournal%5D)">Advances in the profiling of DNA modifications: cytosine methylation and beyond.</a> Nat Rev Gen. 15, 647-661 (2014).</li>
<li>Riebler, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BayMeth%3A+improved+DNA+methylation+quantification+for+affinity+capture+sequencing+data+using+a+flexible+Bayesian+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">BayMeth: improved DNA methylation quantification for affinity capture sequencing data using a flexible Bayesian approach.</a> Genome Biol. 15, R35(2014).</li>
</ol>

פרוטוקול זה פותח במעבדות של ד&quot;ר טים הואנג וד&quot;ר ויקטור ג&#39;ין באוניברסיטת למדעי הבריאות מרכז טקסס בסן אנטוניו.

טכניקת MBDCap-seq היא גישת העשרת זיקת 3, נחשבת כאלטרנטיבה חסכונית כאשר חוקרים מחזורים עם מספר רב של חולים 15. הצינור המובא כאן מתאר גישה מקיפה מן רכש מדגם ניתוח נתונים ופרשנות. אחד הצעדים החשובים ביותר הוא הגדרת הליך הגברת PCR כדי לשפר את יעילות PCR של האזורים המועשרים GC בגנום כמו זה שבו מתילציה DNA מתרחשת. כמו כן, הוא חיוני כדי להבטיח כי לאחר רצף, כל דגימה יש לפחות יותר מ -20 מיליון ממופה באופן ייחודי מקריא הגנום. כיסוי זה צפוי לספק עומק העשרה או רצף מספיק כדי למפות את הגנום כו...

תקנה אפיגנטיים של גנים באמצעות מתילציה DNA היא אחד המנגנונים החיוניים הדרושים כדי לקבוע את גורל התא על ידי בידול יציב של סוגי רקמות שונים בגוף 1. חוסר ויסות של תהליך זה כבר ידוע לגרום למחלות שונות, כולל סרטן 2. תהליך זה בעיקר יהיה כרוך בתוספת של קבוצות מתיל על שאריות ציטוזין ב CPG dinucleotides של DNA 3. ישנן כמה טכניקות שונות המשמשים כיום כדי לחקור את המנגנון הזה, שלכל אחד מהם יתרונות משלהם כפי שמתואר מחקרים רבים 2-8. כאן נדונו באחת הטכניקות הללו בשם מתיל-כריכת רצף לכיד DNA (MBDCap-seq), שבו אנו משתמשים בטכניקת העשרת זיקה לזהות אזורים מפוגלים של ה- DNA. טכניקה זו בונה על היכולת מחייב מתיל של החלבון MBD2 להעשיר עבור קטעי דנ&quot;א גנומי המכיל אתרים CPG מפוגל. אנו מנצלים ערכת העשרה DNA מסחרית מפוגלתעבור הבידוד של אזורים המפוגלים אלה. המעבדה שלנו הוקרנה מאות דגימות חולות באמצעות טכניקה זו וכאן אנו מספקים פרוטוקול אופטימיזציה מקיף, אשר ניתן להשתמש בם כדי לחקור קבוצות גדולות של מטופלים. כפי שעולה עם כל טכנולוגית רצף של הדור הבא, MBDCap-seq גם דורש גישה ביואינפורמטיקה ספציפית על מנת לכמת את הרמות של מתילציה במדויק על פני הדגימות. נעשו מחקרים רבים שנערכו לאחרונה במאמץ כדי לייעל את תהליך הנורמליזציה וניתוח של נתוני רצף 9, 10. בפרוטוקול זה, אנחנו מדגימים באחת השיטות הבאות יישום גישת התאוששות קריאה ייחודית - LONUT - ואחריו נורמליזציה ליניארי של כל דגימה על מנת לאפשר השוואות משוחדות על פני מספר רב של דגימות חולות.

<table><tbody><tr><td>ערכת העשרת DNA Methylminer</td><td>Invitrogen</td><td>ME10025</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads M-280 Streptavidin</td><td>Invitrogen</td><td>112-05D</td><td></td></tr><tr><td>Bioruptor Plus Sonication Device</td><td>diagenode</td><td>B01020001</td><td></td></tr><tr><td>3 M נתרן אצטט, pH 5.2</td><td>Sigma</td><td>S7899</td><td>100 מ"ל</td></tr><tr><td>SPRIworks מערכת ספריית שברים I</td><td>בקמן קולטר</td><td>A50100</td><td>מערכת בניית ספרייה אוטומטית לחלוטין</td></tr><tr><td>מתאם פריימרים</td><td>Bioo Scientific</td><td>514104</td><td>PCR פריימר מיקס</td></tr><tr><td>Qubit</td><td>Invitrogen</td><td>Q32854</td><td>פלואורומטרי מערכת כימות</td></tr><tr><td>PCR מאסטר מיקס</td><td>KAPA מדעי</td><td>KK2621</td><td>PCR מאסטר מיקס</td></tr><tr><td>AMPure XP</td><td>בקמן קולטר</td><td>A63881</td><td>PCR טיהור חרוזים</td></tr><tr><td>EB מאגר</td><td>Qiagen</td><td>19086</td><td></td></tr><tr><td>HiSeq 2000 מערכת ריצוף</td><td>Illumina</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

רצף ללכוד מתיל-dna מחייב עבור רקמות חולות

Methyl-binding DNA capture Sequencing for Patient Tissues

מתילציה היא אחד השינויים אפיגנטיים החיוניים ל- DNA, האחראית על ויסות המדויק של הגנים דרושים התפתחות והתמיינות יציבות של סוגי רקמות שונים. חוסר ויסות של תהליך זה הוא לעתים קרובות סימן ההיכר של מחלות שונות כמו סרטן. כאן, אנו מתארים אחת טכניקות הרצף האחרונות, מתיל-כריכת רצף לכיד DNA (MBDCap-seq), המשמש לכמת מתילציה שונה רקמות בריאות ומחלות עבור קבוצות גדולות של מטופלים. אנו מתארים פרוטוקול מפורט של גישת העשרת זיקה זו יחד עם צינור ביואינפורמטיקה להשיג כימות אופטימלי. טכניקה זו נעשה שימוש כדי רצף מאות חולים ברחבי סוגי סרטן שונים כמו חלק מפרויקט methylome 1,000 (מערכת Methylome סרטן).

השתמשנו MBDCap-seq ללמוד שינויים מתילציה DNA במספר רב של חולים בסוגי סרטן שונים, כולל השד 12, רירית הרחם 13, הערמונית 14, וסרטן הכבד בין היתר. כאן אנו מדגימים כמה פרטים ממחקר סרטן השד פרסם 12 לאחרונה. במקרה זה, השתמשנו גישת רצף הגנום כולו לזהות איי CPG כי הם מפוגלים דיפרנציאלי גידול ביחס נורמלי על פני אזורים גנומית שונים. החקירה העלתה כי מתוך הסך נחקרת איי CPG ממוקמים יזמי גן (n = 13,081), 19.5% הראו מתילציה הפרש בגידולים לעומת רגיל. בדומה לכך, מתוך 6,959 אי...

כאן אנו מציגים פרוטוקול לחקור מתילציה DNA בגנום רחב במחקרים לסקירת חולים קליניים בקנה מידה גדול באמצעות רצף לכידת DNA מתיל-Binding (MBDCap-seq או MBD-seq) טכנולוגיה בצנרת ניתוח ביואינפורמטיקה שלאחר מכן.

רצף ללכוד מתיל-DNA מחייב עבור רקמות חולות

Methylation is one of the essential epigenetic modifications to the DNA, which is responsible for the precise regulation of genes required for stable ...

המטרה הכללית של טכניקה זו היא לחקור באופן שיטתי את נוף מתילציה של ה-DNA ברחבי הגנום בקבוצות חולים גדולות. שיטה זו יכולה לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחום האפיגנטיקה, ובמיוחד בנוגע לאילו אזורים בנוף מתילציה של ה-DNA הופכים ללא מווסתים (deregulated) אצל חולים. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שניתן לבחון מספר גדול של חולים באופן יעיל מבחינה כלכלית.לטכנולוגיה זו עשויות להיות השפעות חיוביות על הטיפול והאבחון של המטופל, מכיוון שבאפשרותנו לחקור סממנים ביולוגיים קיימים וכן לזהות סממנים ביולוגיים חדשים. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי קבוצת מטופלים, ניתן להחילה גם על מערכות אחרים, כגון מתילציה של DNA בתאים המופקים מקווי תאים מתרבויות של דגימות ממקור עכברי. את הפרוצדורה ידגים מר Joseph Liu, טכנאי במעבדתנו, יחד עם ד"ר Ya-Ting Hsu.חלק הרצף יודגם על ידי גברת Dawn Garcia, טכנאית ביחידה לריצוף שלנו. לאחר בידוד DNA גנומי מרקמת גידול או רקמה נורמלית בהתאם לפרוטוקול הכתוב, הוסיפו 1.2 micrograms של DNA גנומי כולל ל-96 microliters של TE buffer ו-24 microliters של 5X bind wash buffer כדי להכין תמיסה בנפח של 120 microliter. בצעו סוניקציה לתמיסת ה-DNA למשך 30 שניות, ולאחר מכן המתינו 30 שניות.חזרו על הסוניקציה סך הכל 20 עד 25 פעמים. השתמשו במערכת bioanalyzer עם ערכה מסחרית ל-DNA ברגישות גבוהה לפי הפרוטוקול של היצרן, כדי להריץ מיקרוליטר אחד של תמיסת DNA שעברה סוניקציה, לצורך בדיקת גודל הפרגמנטים. עליהם להיות בטווח של 150 עד 350 base pairs.לביצוע אלוציה של פרקציה בודדת, הכינו תמיסת אלוציה על ידי יצירת תמיסה ביחס של אחד לאחד של בופר עם מלח בריכוז נמוך ובופר עם מלח בריכוז גבוה. השתמשו ב-200 microliters של תמיסת האלוציה כדי לסספנד מחדש את חרוזי ה-MBD או את ה-methyl-binding DNA והדגירו את הסספנסיה על מערבל סיבובי למשך שלוש דקות. לאחר הדגירה, הניחו את הפפלה על מעמד מגנטי למשך דקה אחת, לאחר מכן שאבו בזהירות את הנוזל מבלי שהקצה של הפפלה יגע בחרוזים, והעבירו אותו לפפלה נקייה למיקרוצנטריפוגה בנפח 1.5 milliliter שהיא DNase-free.שמור דגימה זו על קרח. חזור על תהליך האלוטציה עבור הדגימה השנייה ואסוף אותה לאותה מבחנה עם הדגימה הראשונה. לכל פרקציית שטיפה ודילול שלא נלכדה, הוסף מיקרוליטר אחד של גליקוגן, עשירית מהנפח של sodium acetate בריכוז 3 molar, pH 5.2, ושני נפחי דגימה של 100% ethanol.לאחר ערבוב טוב של התמיסה, הדגרימו בטמפרטורה של 80- °C למשך שעתיים לפחות. לאחר מכן, סובבו את התגובה בצנטריפוגה במהירות של 11,363 ×g ובטמפרטורה של 4 °C למשך 15 דקות. השליכו בזהירות את העל-משקע מבלי להפריע למשקע והוסיפו 500 µL של 70% ethanol קר.סובבו את המבחנה שוב לפני חזרה על שטיפת האתנול. ייבשו את המשקע באוויר למשך חמש דקות. לאחר מכן, השתמשו במים או בבופר נטולי DNase כדי לסספנד אותו מחדש.בדקו שכמות ה-DNA הכוללת היא מעל 20 nanograms בהתאם לפרוטוקול הכתוב. לאחר מכן, הניחו את ה-DNA על קרח או שמרו בטמפרטורה של 20- מעלות צלזיוס עד לשימוש הבא. להכנת ספריית ריצוף DNA, השתמשו במערכת אוטומטית מלאה לבניית ספריות ופעלו לפי הפרוטוקול הסטנדרטי המסופק על ידי היצרן.בחר מקטעי DNA באורך של 200 עד 400 זוגות בסיסים להכנת הספריה. לאחר הכנת ספריית רצף ה-DNA, הסר את התגובה והשתמש במערכת כימות פלואורומטרית כדי לכמת את ספריית רצף ה-DNA. להקמת תגובת הגברה של PCR, הוסף לפרוטוקול PCR 15 microliters של ספריית רצף DNA, 25 microliters של PCR master mix, שני microliters של תערובת פריימרים ל-PCR ושמונה microliters של מים.השתמשו בתוכנית המתוארת בפרוטוקול הטקסט, תוך ביצוע התאמות במידת הצורך על פי המלצות יצרן תערובת ה-PCR. בצעו מספר מחזורים מספיק כדי להפיק 2 עד 10 millimolar של DNA של הספריה. לאחר ניקוי תגובות ה-PCR, הוסיפו ברקוד לכל דגימה וקבצו ארבע דגימות יחד לנתיב אחד של תא זרימה (flow cell).השתמשו בפרוטוקול הסטנדרטי של קריאה בודדת באורך 50 זוג בסיסים של הרצף שלנו. בצעו את הביואינפורמטיקה בהתאם לפרוטוקול הטקסט. באמצעות MBD cap, במטרה לזהות CpG islands באזורים גנומיים שונים המהילתים באופן דיפרנציאלי בגידול בהשוואה לרקמה נורמלית, מחקר זה חשף כי מתוך סך כל ה-CpG islands הממוקמים בקידומות של גנים, 19.5% הראו מתילציה דיפרנציאלית בגידולים בהשוואה לרקמה נורמלית.באופן דומה, 55.2% מהאיים של CpG תוך-גניים שנבדקו הראו מתילציה דיפרנציאלית. פרומוטורים תוך-גניים הראו 28.1%, ועבור פרומוטורים של גנים ללא איים של CpG, 1.8% הראו מתילציה דיפרנציאלית. מפת חום זו מציגה בבירור אזורים בעלי מתילציה דיפרנציאלית ב-77 גידולי שד, 10 רקמות שד נורמליות ו-38 קווי תאים של סרטן השד.באיור זה, רמת המתיליציה מכומתת בשני תתי-סוגים של סרטן רירית הרחם, לא-חוזר לעומת חוזר, בשתי מטופלות באתרים שונים של CpG באי של CpG בפרומוטר של הגן מטרה שזוהה, SFRP1. לאחר רכישת המיומנות, ניתן לבצע טכניקה זו בארבעה עד חמישה ימים, במידה שהיא מבוצעת כראוי.בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור לבחון תחילה את איכות ה-genomic DNA הנבדק. בעקבות פרוצדורה זו, ניתן לבצע שיטות נוספות כגון pyrosequencing כדי לענות על שאלות כגון, אילו הם ה-CpGs המדויקים באזורים בעלי העשרה דיפרנציאלית שזוהו ואשר השתנו? לאחר פיתוחה, סללה טכניקה זו את הדרך עבור חוקרים בתחום האפיגנטיקה לחקור מתילציה של DNA בקבוצות גדולות של מטופלים.לאחר צפייה בסרטון זה, תהיו בעלי הבנה טובה של אופן חקירת מתילציה של DNA ברחבי הגנום בדגימות חולים באמצעות טכניקת MBD cap sequencing. שימו לב, לעיתים עשוי להיות קשה להשיג DNA באיכות גבוהה מדגימות כגון FFPE ודגימות DNA, לכן תמיד נערך הערכה נאותה של ה-genomic DNA בעת ביצוע הפרוצדורה.

methyl-binding-dna-capture-sequencing-for-patient-tissues

Research

JoVE Journal

Genetics

גנטיקה

וידאו זה מדגים את פרוטוקול ה-DNA immunoprecipitation מפוגל (MeDIP). MeDIP היא הליך יומיים כי סלקטיבי תמציות שברי DNA מפוגל ממדגם הדנ"א הגנומי באמצעות נוגדנים עם ספציפיות עבור 5-methylcytosine (אנטי 5 MC).

ה-DNA מפוגל immunoprecipitation

תקן הזהב עבור ניתוח מתילציה DNA הוא רצף של דנ"א גנומי המרה bisulphite. שיטה זו מנצלת את רגישות מוגברת של ציטוזין, לעומת 5-methylcytosine (5-MEC) כדי bisulphite deamination בתנאים חומציים. Cytosines Unmethylated ניתן להבחין בין cytosines מפוגל לאחר הגברה PCR של הדנ"א הגנומי היעד.

מתילציה DNA: Bisulphite שינוי וניתוח

זרימת עבודה יעילה ללמוד מתילציה דנ"א ביטוי שינויים גנטיים על הלחץ מוקדם בחיים מוצג. החל מ הפרידה מן האם של עכברים בני יומם ובידוד של רקמות מוח נפרדים, אנחנו מייצגים את הפרוטוקול בו זמנית לבודד DNA ו-RNA של אגרופים רקמות המוח רצף bisulfite עתידיים RT-PCR ניתוח.

ניתוח אופטימיזציה של מתילציה דנ&quot;א ביטוי גנים מ, אזורים קטנים אנטומית מוגדרים של המוח

תאר הוא תהליך תיוג שני שלבי שימוש (β-GT) β-glucosyltransferase להעביר תזיד-גלוקוז ל5-HMC, ואחרי לחץ כימיה להעביר מקשר ביוטין להעשרה קלה וצפיפות בלתי תלויה. שיטת תיוג יעילה וספציפית זו מאפשרת העשרה של 5-HMC עם רקע נמוך ביותר ומיפוי epigenomic תפוקה גבוהה באמצעות רצף של הדור הבא.

לכידה סלקטיבית של 5-hydroxymethylcytosine מהדנ&quot;א הגנומי

סרטון זה מדגים את הליך שינוי ביסולפיט של DNA גנומי מדגימות סרטן מערכת העיכול. הטכניקה מועילה לחקר הקשר בין דפוסי המתילציה של גנים וביסוס תרומתם לסרטן.

המרת ביסולפיט של DNA גנומי: שיטה לחקר מתילציה של DNA בדגימות DNA גנומיות מרקמת סרטן מערכת העיכול

ייצוג מופחת משופר ריצוף ביסולפיט הוא שיטה להכנת ספריות ריצוף לניתוח מתילציה של DNA המבוססת על עיכול אנזימי הגבלה בשילוב עם המרת ציטוזין ביסולפיט. פרוטוקול זה דורש 50 ננוגרם של חומר התחלתי ומניב נתוני רזולוציית זוגות בסיסים באזורים גנומיים עשירים ב-GC.

משופר מופחת ייצוג Bisulfite רצף להערכה של DNA מתילציה ברזולוציה בסיסי זוג

Bisulfite amplicon sequencing (BSAS) היא שיטה לכימות מתילציה של ציטוזין באזורים גנומיים ממוקדים של עניין. שיטה זו משתמשת בהמרת ביסולפיט בשילוב עם הגברת PCR של אזורי יעד לפני ריצוף הדור הבא כדי לייצר כימות מוחלט של מתילציה של DNA ברמה ספציפית לבסיס.

ממוקד DNA מתילציה ניתוח על ידי רצף של הדור הבא

עבודה זו מתארת ​​פרוטוקול רצף של methyl-cpG-bonding (MBD) של פרוטוקול רצף וציר חישובי, כדי לזהות אזורים עשירים ב- CpG באופן דיפרנציאלי בחולי לוקמיה כרונית של לימפוציטים (CLL).

ניתוח מקיף מתילציה DNA באמצעות Methyl-CpG מחייב דומיין לכידת מבוסס שיטה בחולים לוקמיה לימפוציטית כרונית

להלן, אנו מתארים הליך לניתוח גנום רחב של מתילציה DNA בסרטן מערכת העיכול. ההליך רלוונטי למחקרים החוקרים קשרים בין דפוסי מתילציה של גנים וגורמים התורמים מסרטן בסרטן מערכת העיכול.

ניתוח גנום רחב של מתילציה DNA בסרטן מערכת העיכול

המחקר הנוכחי מתאר את זרימת העבודה לניהול נתוני מתילציה DNA המתקבלים על ידי טכנולוגיות microarray. הפרוטוקול מדגים שלבים מהכנה מדגמית לניתוח נתונים. כל ההליכים מתוארים בפירוט, והסרטון מציג את השלבים המשמעותיים.

הכנת מדגם לניתוח ביואינפורמטיקה של מתילציה DNA: אסטרטגיית האגודה להשמנת יתר ומחקרי תכונות נלוות

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לבחירה חוץ גופית של מדכאי שעתוק מהונדסים (ETR) עם יעילות השתקה גבוהה, ארוכת טווח, יציבה, על המטרה ופעילות נמוכה מחוץ למטרה. תהליך עבודה זה מאפשר לצמצם רפרטואר ראשוני ומורכב של תעודות סל מועמדות לרשימה קצרה, המתאימה להערכה נוספת במסגרות רלוונטיות מבחינה טיפולית.

במבחנה בחירת מדכאי שעתוק מהונדסים להשתקה אפיגנטית ממוקדת

חקור את הנוף האפיגנטי בקהילות חולים גדולות באמצעות טכנולוגיית MBDCap-seq. שיטה זו מאפשרת זיהוי ביומרקרים חדשים לטיפול ואבחון מחלות בצורה יעילה וחסכונית.

רצף ללכוד מתיל-DNA מחייב עבור רקמות חולות

גלה סרטונים נוספים