Name: שימוש של מערכת הרדמה דיגיטלית זרימה נמוכה עבור עכברים וחולדות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: למדו שימוש במערכת הרדמה דיגיטלית זרימה נמוכה עבור עכברים וחולדות. השיטה מאפשרת שליטה מדויקת באספקת איזופלורן בקצבי זרימה נמוכים לשמירת רווחת בעלי החיים במהלך הניסויים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

למחברים אין אישורים.

כל המחקרים הושלמו בהתאם להנחיות רגולציה ומוסדיות. ההיבטים חיה המחקר הוערכו על ידי תוכנית השתמש קנט מדעי Corporation בעלי חיים, אושר על ידי ועדת טיפול בבעלי חיים פרדו ושימוש (PACUC), וביצע בהתאם מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה 22. הערה: מערכת ההרדמה דיגיטלית הזרימה הנמוכה בשימוש בפרוטוקול זה מצויד oximeter דופק משולב. 1. להגדיר את מערכת הרדמת הזרימה הנמוכה עם Oximeter הדופק המשולב <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור משלוח Isoflurane <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר מקור גז מוביל. כדי לנצל את משאבת האוויר הפנימית, להתיר כניסת נמל על גב, ומאפשר המשאבה הפנימית לאוויר חדר צריך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר מיכל פחם למצות הנמל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר מתאם Y כדי קדמית של הזרימה הנמוכה, מערכת הרדמה דיגיטלית. השתמש קליפים בצבעים לחבר את הענפים הלבנים ל- tהוא חרטומו, וענפים כחולים לתא האינדוקציה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מלחציים קליפ לבן סגורים קליפ כחול פתוח מלחציים לכוון זרימת אוויר לתא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר מזרק 2 מ&quot;ל. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לניטור פיסיולוגי, שימוש Oximeter הדופק המשולב <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את חיישן כפה הדופק oximeter לנמל בגב המערכת הרדמה זרימה נמוכה, שכותרתו &quot;AUX&quot;. </li></ol></li></ol> 2. הגדר את הגדרות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור הרדמה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את מערכת ההרדמה, ואת לגשת לתפריט הגדרה. העיתונות שהוצבה כדי לגשת לתפריט ראשי&gt; הרדמה&gt; Setup באדום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את סוכן הרדמה. לחץ על Set Up כדי להדגיש סוג Anest באדום. השתמש בחצים למעלה ולמטה כדי לבחור Isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת גודל המזרק. העיתונות שהוצבה כדי להדגיש גודל Syr. השתמש בחצים למעלה ולמטה כדי לבחור מזרק 2 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת מיקום רוקן. לחץ על Set עד highlight קבוצה ריק באדום. Secure מזרק הכוס הריקה, מדוכא לגמרי בבלוק שייר מזרק על ידי הצבת את המזרק כך קלאמפ Holding מזרק יושב על צווארון המתכת של מזרק. הקש על חץ למעלה או למטה כדי להזיז את בלוק Pusher כך בלוק Pusher יוצר קשר אור עם החלק העליון של הבוכנה במזרק. לחץ על בחירה כדי לקבוע עמדה ריקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העיתונות שהוצבה כדי להדגיש סר באדום. הסר את המזרק למלא את המזרק עם isoflurane באמצעות מתאם העליון בקבוק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את המזרק למערכת ההרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראש בצינור אספקת הרדמה. העיתונות שהוצבה כדי להדגיש Tube ממשלה באדום. לחץ כלפי מטה עד ההרדמה עוברת דרך המזרק לתוך הולם השחורה על הבלוק המאדה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר הרדמה. העיתונות שהוצבה כדי להדגיש אפשר באדום. השתמש בחצים למעלה ולמטה כדי לבחור כן. לחץ על הפעלה / חזרה כדי לחזור לתפריט הראשי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר אאספקת ir ונפח דקות. לחץ על Set Up כדי להדגיש אייר סופליי באדום. השתמש בחצים למעלה ולמטה כדי לבחור משאבה פנימית. העיתונות שהוצבה כדי להדגיש כרך דק באדום. קצב הזרימה נקבע ל -250 מ&quot;ל / דקה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לניטור פיסיולוגי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר את קצב לב זוהה מינימום העכבר (240). העיתונות שהוצבה כדי לגשת לתפריט ראשי&gt; MouseStat. השתמש בחצים מעלה ומטה כדי להגדיר קצב לב מינימום. </li></ol></li></ol> 3. בגין משלוח הרדמה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשרות את העכבר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחץ על הפעלה / חזרה פעמיים כדי להיכנס למצב הפעלה ולהתחיל זרימת האוויר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר בתא אינדוקציה, סגירת המכסה בחוזקה. התאם את ידית ריכוז סוכן ההרדמה עד 3%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג עד שהעכבר הגיע המטוס הרצוי של הרדמה, נקבע על ידי אובדן ליישר רפלקס. התאם את ריכוז סוכן ההרדמה לפי צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר שבעל החיים מאבדים את רפלקס ליישר שלהnd הוא הרדים מספיק, סובב את חוגת ריכוז הרדמה ל -0%. המחברים מצאו בעבר כי מתן זרימת האוויר כדי לשטוף בחדר האינדוקציה 30-60 שניות מספיקות כדי לטהר את החדר בלי היפוך עומק הרדמת 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפתיחה מהירה של מלחציים הלבן לכוון את האוויר אל facemask, ולסגור את מלחציים הכחול המוביל לתא האינדוקציה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את תא הרחק חוקר, הסר את העכבר, ומיד להתאים את חרטומו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מרכז את החיה על כרית חימום אינפרא אדומה, להגדיר כדי לשמור על טמפרטורת גוף על 37 מעלות צלזיוס באמצעות בדיקה רקטלית על לולאת משוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר סמן העכבר נמצא יציב על חרטומו, להתאים את ריכוז isoflurane ל -1.5% או לפי צורך בתחזוקה על ידי סיבוב ידית ריכוז סוכן ההרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפחתת נפח דק עבור תחזוקה. קצב זרימת המינימום לתמוך החיה שווה פעמים 1.5-2.2 נפח הדקות של החיה (עבור עכבר 30 גרם,מינימום של 52 מ&quot;ל / דקה). עיין בהוראות היצרן עבור קצב זרימת הגדרה מומלץ ספציפי לסגנון החרטום ולהתאים לפי צורך. העיתונות שהוצבה כדי לגשת לתפריט הראשי, ולאחר מכן לחץ על Set עד הכרך דק הוא מסומן באדום. השתמש בחצים למעלה ולמטה כדי להתאים את זרימת היעד. לחץ על הפעלה / חזרה לחזור למסך הראשי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אשר עומק ההרדמה כפי שנקבע על ידי חוסר רפלקס נסיגה במהלך קמצוץ interdigital. החל משחת עיניים לעיניים למניעת יובש במהלך הרדמה. </li></ol></li></ol> 4. בגין ניטור פיסיולוגי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח חיישן על בלוק של כפה אחורית. מקם את החיישן כך שהאור האדום הוא מתחת הכפה ומאיר את הכף. השתמש בחצים מעלה ומטה על המסך כדי להציג את oxiwave. החיה כעת הוא מורדם בבטחה באמצעות זרימה נמוכה, מונחה מזרק, מאדה דיגיטלית. </li></ol> 5. הסר את החיה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כבה אתמשלוח הרדמה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לעצור את המסירה של הרדמה, להפוך ידית ריכוז סוכן ההרדמה לקבוע מינימום (או 0%) ולהסיר מן החי facemask. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג את העכבר במהלך התאוששות הרדמה. לאחר העכבר הפך אמבולטורי מלא, להחזיר אותו לכלוב. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Damen, F. W., Adelsperger, A. R., Wilson, K. E., Goergen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+traditional+and+integrated+digital+anesthetic+vaporizers%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Comparison of traditional and integrated digital anesthetic vaporizers.</a> JAALAS. 54 (6), 756-762 (2015).</li>
<li>Chakravarti, S., Basu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modern+Anaesthesia+Vapourisers%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Modern Anaesthesia Vapourisers.</a> Indian J Anaesth. 57 (5), 464-471 (2013).</li>
<li>Carroll, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarroll%2C+G+%22Small+Animal+Anesthesia+and+Analgesia%22">Small Animal Anesthesia and Analgesia</a>. , Blackwell Publishing. Ames, IO. (2008).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Lumb+and+Jones%27+veterinary+anesthesia+and+analgesia%22">Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia</a>. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).</li>
<li>Ambrisko, T. D., Klide, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+isoflurane+and+Sevoflurane+vaporizers+over+a+wide+range+of+oxygen+flow+rates%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Vet+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluation of isoflurane and Sevoflurane vaporizers over a wide range of oxygen flow rates.</a> Am J Vet Res. 67 (6), 936-940 (2006).</li>
<li>McKelvey, D. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcKelvey%2C+DH+%22Veterinary+Anesthesia+and+Analgesia%22">Veterinary Anesthesia and Analgesia</a>. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).</li>
<li>Thomas, J., Lerche, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThomas%2C+J+%22Anesthesia+and+Analgesia+for+Veterinary+Technicians%22">Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians</a>. , 4th ed, Mosby. St. Louis, MI. 335(2011).</li>
<li>Flecknell, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlecknell%2C+P+%22Laboratory+animal+anaesthesia%22">Laboratory animal anaesthesia</a>. , Academic Press, Elsevier. London, UK. (2009).</li>
<li>Mapleson, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+rebreathing+in+various+semiclosed+anaesthetic+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Brit+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">The elimination of rebreathing in various semiclosed anaesthetic systems.</a> Brit J Anaesth. 26 (5), 323-332 (1954).</li>
<li>Ward, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+principles+and+maintenance%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthetic+equipment%22%5BJournal%5D)">Physical principles and maintenance.</a> Anaesthetic equipment. , W. B. Saunders. London. (1985).</li>
<li>El-Attar, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guided+isoflurane+injection+in+a+totally+closed+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Guided isoflurane injection in a totally closed circuit.</a> Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).</li>
<li>Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-controller+closed+anaesthetic+breathing+system%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A computer-controller closed anaesthetic breathing system.</a> Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).</li>
<li>Lowe, H. J., Cupic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-regulated+automated+anesthesia+%28Abstract%29%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Clin.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Dose-regulated automated anesthesia (Abstract).</a> Br. J. Clin. Pharmacol. 12 (2), 281-282 (1971).</li>
<li>Soro, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+accuracy+of+the+anesthetic+conserving+device+%28Anaconda%29+as+an+alternative+to+the+classical+vaporizer+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anes+Analg%22%5BJournal%5D)">The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia.</a> Anes Analg. 111 (5), 1176-1179 (2010).</li>
<li>Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uptake+of+desflurane+during+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Uptake of desflurane during anaesthesia.</a> Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).</li>
<li>Weingarten, M., Lowe, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+circuit+injection+technic+for+syringe-measured+administration+of+methoxyflurane%3A+a+new+dimension+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anes+Analg%22%5BJournal%5D)">A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia.</a> Anes Analg. 52 (4), 634-642 (1973).</li>
<li>Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+device+to+reduce+the+consumption+of+a+halogenated+anaesthetic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent.</a> Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).</li>
<li>Kelly, J. M., Kong, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+ten+isoflurane+vaporisers+in+current+clinical+use%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use.</a> Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NARCOBIT+-+A+newly+developed+inhalational+anesthesia+system+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Anim%22%5BJournal%5D)">NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice.</a> Exp Anim. 56 (2), 131-137 (2007).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+newly+developed+inhalation+anesthesia+system+and+intraperitoneal+anesthesia+on+the+hemodynamic+state+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Pharm+Bull%22%5BJournal%5D)">Comparison of newly developed inhalation anesthesia system and intraperitoneal anesthesia on the hemodynamic state in mice.</a> Biol Pharm Bull. 30 (9), 1716-1720 (2007).</li>
<li>Voightsverger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sevoflurane+ameliorates+gas+exchange+and+attenuates+lung+damage+in+experimental+lipopolysaccharide-induced+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury.</a> Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).</li>
<li>Garber, J., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGarber%2C+J+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th edn, The National Academic Press. Washington DC. (2011).</li>
</ol>

פרויקט זה מומן עם ציוד ומימון על ידי קנט מדעי Corporation, איגוד הלב האמריקני כדי CJ Goergen (SDG18220010), ו Purdue University. המחברים קריסטה Bigiarelli ואירינה Toore הנם עובדי תאגיד מדעי קנט המייצר ציוד המשמש במאמר זה. פרסום גישה פתוח למאמר זה ממומן על ידי קנט מדעי חברה.

מערכת ההרדמה הדיגיטלית התזרים נמוך מאפשרת למשתמש להרדים עכברים ביעילות ברמות ספיקה נמוכה מאוד ללא שימוש כל גז דחוס. זה מאוד שונה מאדים פסיבית תקן, שרובם דורשים מקור גז דחוס ברמות ספיקה מינימלית של כ -500 מ&quot;ל / דקה. מאדים רגיל לנצל מחייג כי אינו מדייק בין דרגות, והם חייבים להיות שירות מדי שנה כדי לשמור על דיוק. מערכת הרדמה מונע מזרק יכולה לספק ריכוז מסוים של הרדמה בקצב זרימת הסט לחשב את מהירות דרושה המדויקת של משאבת המזרק. כיולים שיגרתי הם מיותרים, וכתוצאה מכך חיסכון בעלויות ובזמן נוסף. קצב הזרימה המינימאלי המומלץ לשמור חיה הנמצא במעגל הלא rebreathing הוא 1.5-2.2 פעמים את נפח הדקות של החיה. קצב הזרימה של 100 מ&quot;ל / דקה השתמשו במחקר זה עלה מינימלי זה למסור הרדמה מספיק לבעלי החיים. Settin קצב הזרימהGS הן קריטית עבור טכניקת משלוח הרדמה זו, כמו את קצב הזרימה קשור ישירות לכמות של isoflurane בשימוש למשך פרק זמן קצוב. כאשר נעשה שימוש ברמות ספיקה נמוכה, טכניקה זו יכולה לצמצם במידה ניכרת את כמות isoflurane נדרש במהלך שימוש, בעוד החיה עדיין היא מורדמת ביעילות 1,19-21. עלויות ציוד חדשות בין מאדים המסורתי ומכשירי אדים דיגיטליים זרימה נמוכה ניתנות להשוואה. עם זאת, מערכת ההרדמה הדיגיטלית הזרימה נמוכה יש את היכולת לספק גם isoflurane או sevoflurane. זו מבטלת את צורך isoflurane המיועד ומכשירי אדי דיוק sevoflurane, הפחתת עלויות ציוד ראשוניות לקבוצות הן באמצעות סוכני הרדמה. לאחרונה השוואות שפורסמו בין טכנולוגיות המאדות הציעו חיסכון בעלויות לאורך זמן כאשר באמצעות אידוי דיגיטלי זרימה נמוכה 1,19,20. תוצאות ההשוואות האלה אפשר להשתמש בו כדי לאמוד חיסכון בעלויות פוטנציאל במשך שנה. כפי שsuming הגדרות שימוש רגיל שבוצעו 2 במרווחים hr, 5 ימים בשבוע במשך 52 שבועות, מאדה isoflurane המסורתית יצרוך 3.8 ליטר של isoflurane, או שנים עשר 250 מ&quot;ל בקבוקים. מאדה דיגיטלי זרימה נמוכה בשימוש באותו התדר היה לצרוך רק 0.32 L, או שניים 250 מ&quot;ל בקבוקים. צריכת פחם מכל מצטמצמת גם. בהנחה שכל מכל מחזיק 50 גרם של גז פסולת מפסולת, מאדה מסורתית תמלא כ 21 בלוני פחם במשך שנה. לשם השוואה, מאדה דיגיטלית זרימה נמוכה תדרוש 6 או פחות. מאדה מסורתי היה נזקק כ 5 בלוני גז גדולים בשנה, כל אחד עם קיבולת של 9,500 ל משאבת האוויר הפנימית, זמינה בדגמים מסוימים של מאדים הדיגיטלי זרימה נמוכה, המייתר את צורך גז דחוס. אם גז דחוס היה אמור לשמש, המערכת תשתמש רק 1 גליל בשנה 1. הטכניקה ניתן לשנות בהתאם לצורך. vaporiz דיגיטלי זרימה נמוכהERS לאפשר למשתמש להתאים עומק ההרדמה במהירות ובדייקנות. אם עומק ההרדמה חייב להגדיל או להקטין, המשתמש יכול להגדיל את ריכוז ההרדמה במרווחים של 0.1% באמצעות החיוג על החלק העליון של המערכת. קצב הזרימה יכול להיות מותאם גם לפי הצורך לאורך כל ההליך. פרוטוקול זה מנצל מזרק 2 מיליליטר, למרות בגדלי מזרק גדולים זמינים עבור הליכים ארוכים יותר. משאבת האוויר הפנימית מציעה למשתמשים את האפשרות להרדים בעלי חיים ללא צורך מקור גז דחוס. עבור פרוצדורות מחייבות הזרמת גז דחוס או חמצן, יש למשתמש את האפשרות להתחבר למקור גז למערכת-הזרימה הנמוכה ולא באמצעות אוויר שמסביב. המשתמש יכול להמשיך לספק את מקור האוויר הנבחר לאורך כל ההליך, או יכול לעבור בין המשאבה הפנימית ומקור גז דחוס לפי צורך. לדוגמא, המשתמש יכול להגדיר את המערכת כדי לספק אוויר חדר דרך המשאבה הפנימית במהלך אינדוקציה ותחזוקה, אבל לספק אצטילן משלימהgen במהלך ההתאוששות. אמנם יש יתרונות רבים לשימוש מאדה דיגיטלי זרימה נמוכה, יש מגבלות גם כן. בגלל שסתום סומק אינו כלול, שטיפה לתא באופן ידני עם אוויר נקי לפני הפתיחה היא הדרך היחידה לטהר את תא האינדוקציה. מערכת זו מיועדת לפעול ברמות ספיקה נמוכה בלבד ואינו לספק הרדמה מעל ספיקות של 800 מיליליטר / דקה, שבו מאדים מסורתי אינו יכול להיות עם ספיקות עד 10 ליטר / דקה. המערכת המסוימת הזה ולכן הוא מתאים רק עבור מינים של בעלי חיים קטנים. בנוסף, המערכת מחזיקה פחות סוכן הרדמה לעומת מאדה מסורתית. ייתכנו מצבים שבהם מזרק חייב להיות ומילא במהלך הליך. עם זאת, עיכובים במהלך המילוי יכולים להיות מופחתים על ידי מראש מילוי מזרק שני סמוך כדי להחליף את המזרק הריק. בגדלי מזרק עד 10 מ&quot;ל זמינים כדי להפחית את הצורך למלא מזרקים באמצע ההליך. לבסוף, בניגוד מאדה מסורתית, את fl הנמוךמאדה דיגיטלית ow דורשת חשמל. סוללות זמינות לשימוש במקרים בם החשמל אינו זמין או במקרה של הפסקת חשמל. מחקרים קודמים הראו כי מערכות דיגיטליות זרימה נמוכה לצרוך פחות isoflurane, גז מוביל, ומכלי פחם לעומת מערכת הרדמה מסורתית 1,19,20. הפחתת גז הרדמה מפסולת גם יכולה לזהות ירידת גז הרדמה פסולת, למרות שנדרשת עוד עבודה רבה בתחומים אלו. ניתן להשתמש ספקטרוסקופיה גז אינפרא אדום כדי לפקח על ייצור isoflurane פסולת, ותגים מד מינון ניתן להשתמש כדי לכמת את החשיפה isoflurane ל אנשי המעבדה בהשוואות בעתיד. לסיכום, טכניקה זו למסירת הרדמה תהיה מועילה לקבוצות ביצוע הרדמה מכרסמת בשל בטיחות משופרת, יעיל, דיוק מעל מערכות מסורתיות.

ישנם מכשירי אידוי דיוק רבים זמינים לשימוש וטרינרי הפועלות בין הספיקות של 0.5-10 ליטר / דקה 2. ספיקות אלה אינן אידיאליות מכרסמים, כמו הטווח הוא גבוה לעומת נפח דקת הנשימה הקטן שלהם. ספיקה גבוהה אינן מומלצת בפועל וטרינרים בשל לקידומם של היפותרמיה וייבוש של 3,4 בדרכי הנשימה. יתר על כן, מדריכי יצרן מאדה וטרינרים נפוצים רבים מזהירים כי ספיקות גבוהות עלולות לגרום לעלייה הקרה תנודות backpressure. כמו כן הוכח כי מאדים סטנדרטיים רבים להיות מדויק מתחת ספיקות של 500 מ&quot;ל / דקה, ושיעור זה נחשב קצב הזרימה מינימום בתחום וטרינרי 5-7. בעל חיים שאפשר לקיים מעגל T-piece או שונה במעגל ביין באמצעות קצב הזרימה נמוך כמו 1.5-2.2 פעמים את נפח דקות של החיה 8-10. ספיקות אלה נחשבים sufficient כדי למנוע rebreathing גזים פגו ולמנוע עלייה בריכוז הפחמן הדו-חמצני בדם 8. שימוש המלצת קצב הזרימה הזה, עכבר 30 גרם יכול להישמר בקצב זרימה נמוך כמו 52 מיליליטר / דקה, כמעט פי עשרה פחות ממינימום 500 מיליליטר / דקת המקובלים מאדה מסורתי. בעוד מאדה מסורתית תלוי זרימת גז ובלחץ אטמוספרי אידוי הרדמה פסיבי, מאדה הזרקה ישירה מודד את זרימת הגז הטריה הכוללת מזריק האדים ישירות לתוך זרם הגז 2. חלק במכשירי אידוי הזרקה ישירה לנצל משאבת מזרק כדי לנהל הרדמה לתוך זרם הגז. בקרות ממוחשבות לאפשר מערכות אלה כדי להתאים את מהירות משאבת מזרק אוטומטית להזריק נפח הסוכן נזיל הנדרש להגיע לריכוז הרצוי של הרדמה. מאדים מונע מזרק זמין ומאושר לשימוש קליני ילדים, תצורות דומות רבות כאלאסתטי שימור התקנים בקליניקה 11-16. זמן קצר לאחר אישורם, התקני שימור הרדמה עם מאדים משאבת מזרק הותאמו לשימוש במחקרים בבעלי חיים 8,17,18. בניגוד מאדה מסורתית, מערכת הזרקה ישירה ניצול משאבת מזרק אינה מוגבלת על ידי קצב זרימת מינימום כדי לשמור על דיוק. מסיבה זו, הטכנולוגיה הזו היא אידיאלית לשימוש הרדמה מכרסמת ומקרים אחרים בם ספיקות נמוכות נחוצות. היתרונות וחיסכון בעלויות פוטנציאליות הקשורות עיצוב מאדה זו השראה בפיתוח מערכות הרדמה חדשה שתוכננה במיוחד עבור מכרסמים 1,19,20. המערכת החדשה משלבת גם מובנה משאבת אוויר, המאפשר למשתמש לנהל הרדמה ללא צורך מקור גז דחוס. כיתרון נוסף, המערכת היא מראש מכויל לשימוש הן עם isoflurane ו sevoflurane. עם כניסתה של טכנולוגיה מאדה זה בתחום בחיות מעבדה, אניt כיום ניתן להרדים בחיות מעבדה קטנות ברמות ספיקה קרובות לרמות מומלצות ללא צורך גז דחוס.

<table><tbody><tr><td>ציוד הרדמה</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>SomnoSuite מערכת הרדמה דיגיטלית בזרימה נמוכה</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO</td><td>כוללת מתאם עליון לבקבוק נגד שפיכה ונגד אדים; צינורות מתאם Y; מסנן ניקוי פחם</td></tr><tr><td>עכבר STAT דופק אוקסימטר & מוניטור דופק</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-MSTAT-מודול</td><td>משולב בעכבר SomnoSuite</td></tr><tr><td>חיישן כפות עכבר</td><td>KENT Scientific Corporation</td><td>MSTAT-MSE</td><td></td></tr><tr><td>2 מ"ל מזרק זכוכית</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-2ML</td><td></td></tr><tr><td>תא אינדוקציה בעלות נמוכה, 0.5 ליטר</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-0705</td><td></td></tr><tr><td>מסכת פנים בפרופיל נמוך, x-small</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-0304</td><td></td></tr><tr><td>Animal Warming</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PhysioSuite מערכת ניטור פיזיולוגית עם התחממות הומותרמית RightTemp</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>PS-RT</td><td>כוללת כרית חימום אינפרא אדום, בדיקה רקטלית ובדיקת טמפרטורת כרית</td></tr><tr><td>חומרי הרדמה ותרופות</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>איזופלורן (בקבוק 250 מ"ל)</td><td>Piramal Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puralube משחה אופטלמית</td><td>פריגו</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

שימוש של מערכת הרדמה דיגיטלית זרימה נמוכה עבור עכברים וחולדות

Use of a Low-flow Digital Anesthesia System for Mice and Rats

וופורייזר מסורתי תלוי בגז זורם ובלחץ אטמוספרי לאידוי הרדמה פסיבית. מכשירי אידוי בהזרקה ישירה שפותחו לאחרונה משתמשים במשאבת מזרק כדי לתת חומרי הרדמה נדיפים ישירות לזרם גז. בניגוד לוופורייזר מסורתי, ניתן להשתמש בו בקצבי זרימה נמוכים מאוד, מה שהופך אותו לאידיאלי לשימוש על עכברים וחולדות. 
יכולת הציוד להשתמש בקצבי זרימה נמוכים עשויה לגרום לחיסכון משמעותי בעלויות עקב הצורך המופחת בחומרי הרדמה, גז דחוס ומסנני ניקוי פחם1. קצב זרימה נמוך יותר פירושו פחות בזבוז של גז הרדמה וככל הנראה מפחית את הסיכון לחשיפה לחומרי הרדמה לאנשי המעבדה. לפיכך, רמות הדיוק והבטיחות הגבוהות הקשורות למכשירי אידוי בהזרקה ישירה, יחד עם צורך מופחת בחומרי הרדמה, גז דחוס ומסנני פחם מועילים למחקר הדורש הרדמה של בעלי חיים קטנים. 
מטרת פרוטוקול זה היא להדגים את השימוש במכשיר אידוי בהזרקה ישירה המופעל על ידי מזרק כחלק ממערכת הרדמה דיגיטלית בזרימה נמוכה. הוופורייזר בהזרקה ישירה מסוגל לספק במדויק הרדמה בקצבי זרימה נמוכים מאוד בהשוואה לוופורייזר מסורתי, מה שהופך אותו לחלופה מבטיחה לאספקת הרדמה מבוקרת בגז למכרסמים.

בעלי חיים עכברות 3 מבוגרים C57 / BL6NTac (Taconic, גיל 6-7 שבועות; משקל 15 +/- 1 גרם) היו מורדמים ומתוחזק עם isoflurane 1.3-1.5% בעוד קצב הלב, ריווי חמצן, ואת קצב הנשימה נוטרו. כל העכברים היו Murine הפתוגן חינם כפי שנקבע על ידי בדיקה שגרתית הספק לפני ההגעה למתקן. החיות היו שוכן קבוצה caging microisolation ובתנאים-גישה חופשית צ&#39;או מכרסמים רגיל ומים בבקבוק. שימוש isoflurane מערכת הרדמת הזרימה הנמוכה מודדת את כמות סוכן הרדמה הנותר בתוך המזרק בזמן שימוש. ההיקף בתוך המזרק, כפי שהיא נמדדת על ידי מערכת ההרדמה צוין החיה הועברה חרטומו, ושוב בסוף תקופת האחזקה. ההיקף הסופי wכמו מפחית את הנפח הראשוני כדי לכמת את כמות הרדמה הצורכת במהלך תקופת האחזקה (איור 1). פרמטרים פיזיולוגיים קצב פעימות הלב, SpO 2, וקצב הנשימה נוטרו במהלך תחזוקה באמצעות הדופק oximetry (איורים 2 - 4). טמפרטורת גוף נשמרה 37.5 ° C באמצעות כרית חימום אינפרא אדומה. כל עכבר נשמרה בהצלחה ברמות ספיקה נמוכה של 100 מ&quot;ל / דקה של אוויר החדר תחת מטוס כירורגית של הרדמה במשך 60 דקות, כפי שנקבע על ידי חוסר רפלקס הנסיגה צביטה interdigital. העכבר לא ער או להגיב צובט interdigital להחיל לסירוגין במהלך תקופת האחזקה. קצב הלב של החיות (איור 2), חמצן בדם (איור 3), ואת קצב נשימה (איור 4) נשאר relat<html> ively יציבה לאורך כל תקופת המחקר. בשל מיצוב בעלי חי חיישן, אות קצב הנשימה מעכבר 1 ועכבר 3 הייתה מקוטעים נקטעה המדידה. כאשר המיצוב של החיה הותאם, האות משופרת ואת קצב הנשימה הנמדד היה דומה לאחרים בנקודות זמן דומים. מערכת ההרדמה דיגיטלית הזרימה הנמוכה בשימוש ממוצע של 0.63 מיליליטר של isoflurane במהלך 60 הדקות של תקופת אחזקה (איור 1). <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/54436/54436fig1.jpg" /> איור 1:.. שימוש Isoflurane כמות isoflurane המשמשת מיליליטר במשך שלושה עכברים שונים מעל 1 שעות של תחזוקת הרדמה באמצעות מערכת הרדמה הדיגיטלית זרימה נמוכה <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <html> o: keep-together.within-page = &quot;1&quot;&gt; <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/54436/54436fig2.jpg" /> איור 2:.. Heart Rate קצב הלב של שלושה עכברי פעימות לדקה (BPM) 5-60 דקות לאחר אינדוקצית הרדמה ראשונית עם מערכת הרדמת הזרימה נמוכה הדיגיטלית <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/54436/54436fig3.jpg" /> איור 3:.. ריווי חמצן רמות רוויון חמצן בדם (%) של שלושה עכברים 5-60 דקות לאחר אינדוקצית הרדמה ראשונית עם מערכת הרדמת הזרימה נמוכה הדיגיטלית <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> e = &quot;1&quot;&gt; <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/54436/54436fig4.jpg" /> איור 4:.. נשימת דרג קצב הנשימה של שלושה עכברי נשימות לדקה (BPM) 5-60 דקות לאחר אינדוקצית הרדמה ראשונית עם מערכת הרדמת הזרימה נמוכה הדיגיטלית <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54436/54436fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

כאן, אנו מציגים פרוטוקול למתן גז הרדמה לעכברים בצורה בטוחה ויעילה יותר באמצעות מערכת הרדמה דיגיטלית בזרימה נמוכה המשתמשת במכשיר אידוי בהזרקה ישירה המופעלת על ידי מזרק.

A traditional vaporizer depends on flowing gas and atmospheric pressure for passive anesthetic vaporization. Newly developed direct injection vaporizers ...

פרוטוקול זה מדגים את השימוש במאייד להזרקה ישירה המופעל על ידי מזרק כחלק ממערכת הרדמה דיגיטלית בעלת זרימה נמוכה. המאייד להזרקה ישירה מספק הרדמה במדויק בקצבי זרימה נמוכים מאוד בהשוואה למאייד מסורתי, מה שהופך אותו לחלופה מבטיחה למתן חומרי הרדמה מבוקר למכרסמים. קיימים מאיידים מדויקים רבים הזמינים לשימוש וטרינרי הפועלים בין 5 ל-10 ליטרים לדקה.ספיקות זרימה אלו אינן אידיאליות עבור מכרסמים, שכן הטווח גבוה בהרבה מהנפח הנשימי הדקיקה הנמוך שלהם. היתרון המרכזי של מאייד זה הוא שניתן להחזיק בעל חיים באמצעות קונו לאף תוך שימוש בספיקת זרימה נמוכה עד פי 1 1/2 מהנפח הדקיקה של בעל החיים. לפיכך, ניתן להחזיק עכבר במשקל 30 גרם בספיקת זרימה נמוכה עד 52 milliliters per minute.ראשית, בחרו מקור גז נשא. כדי להשתמש במשאבת האוויר הפנימית, שחררו את פתח הכניסה האחורי, ובכך אפשרו למשאבה הפנימית לשאוב אוויר מהחדר. לאחר מכן, חברו מיכל פחם לפתח הפליטה.בשלב הבא, חברו את צינור ההגשה למערכת ההרדמה. השתמשו בתפסים בעלי קוד צבע כדי לסמן את הענפים עבור קליפת האף ותא ההשראה. פתחו את התסמיכים כדי להזרים את זרימת האוויר אל התא.לצורך ניטור פיזיולוגי, חברו את חיישן כף הרגל של מד הדופק והחמצן (pulse oximeter) לחלק האחורי של מערכת ההרדמה בעלת הזרימה הנמוכה. הפעילו את מערכת ההרדמה בעלת הזרימה הנמוכה כדי להגדיר את ההגדרות. נווטו לתפריט הגדרות ההרדמה (Anesthesia Setup) ובחרו ב-isoflurane.בשלב הבא, הגדירו את גודל המזרק על ידי לחיצה על Set Up כדי להדגיש את Syringe Size. השתמשו בכפתורי הכיוון כדי לבחור מזרק של 2 mL. חשוב להשתמש במזרק בגודל המתאים לבעל החיים ולאורך הפרוצדורה.מערכת זו תואמת למזרקים של 2, 5 ו-10 מיליליטר כדי להתאימה למגוון יישומים. לאחר בחירת גודל המזרק, הגדירו את תנוחת הריק של המזרק. כעת,יצבו את מזרק הזכוכית הריק והלחוץ במלואו בתוך בלוק עיגון המזרקים.מקם את המזרק כך שתסמיך ההחזקה תהיה מונחת על הטבעת המתכתית של המזרק. כוון את בלוק הדחיפה כך שיהיה במגע קל עם החלק העליון של בוכנת המזרק. שמור את מיקום הריק.הסר את המזרק. לאחר מכן, מלא אותו ב-isoflurane באמצעות מתאם פתח הבקבוק. לאחר המילוי, החזר את המזרק לבלוק העיגון וחבר את צינור ההגשה.בשלב הבא, הכינו את צינורות הולכת חומר ההרדמה על ידי לחיצה על כפתורי הכיוון. המערכת תדחף את הבוכנה של המזרק עד שחומר ההרדמה יגיע אל בלוק האידוי. חשוב להקפיד לא להזרים כמות מופרזת של חומר מהמזרק.לאחר הגדרת כל ההגדרות, הפעילו את אספקת ההרדמה. כעת, בחרו באספקת אוויר (Air Supply) של אוויר חדר ואת נפח הדקה (Minute Volume) ל-250 milliliters per minute. לצורך ניטור פיזיולוגי, הגדירו את קצב הדופק המינימלי שניתן לזיהוי ל-Mouse.התחילו את זרימת האוויר כדי להשרות הרדמה בעכבר. הניחו את העכבר בתא ההשראה, סגרו את המכסה היטב, וכוונו את חוגת ריכוז חומר ההרדמה למתן 3%. עקבו אחר העכבר עד להשגתו של מישור ההרדמה הרצוי, שייקבע על סמך אובדן רפלקס היצריות. לאחר שהחיה הורדמה מספיק, סובב את חוגת ריכוז חומר ההרדמה למתן 0%. לאחר מכן, פתחו את הת clamps כדי להפנות את זרימת האוויר למסכת האף, וסגרו את ה-clamps המובילים לתא ההשראה.הוצא את העכבר מהתא, והנח אותו מיד על קונו האף. לאחר מכן, מרכז את החיה על משטח חימום אינפרא-אדום, המכוון לשמירה על טמפרטורת הגוף ב-37 degrees Celsius באמצעות חיישן רקטלי בלולאת משוב. כאשר העכבר ממוצב על קונו האף, כוונן את ריכוז ה-isoflurane ל-1.5%. כעת, הפחת את נפח הדקה לתמיכה בשמירה על ההרדמה.יש לאשר את עומק ההרדמה על ידי בדיקת היעדר רפלקס נסיגה בזמן צביטה בין-אצבעית. יש למרוח משחה עינית על העיניים כדי למנוע התייבשות במהלך ההרדמה. יש להתחיל בניטור פיזיולוגי באמצעות הנחת החיישן על כרית כף רגל האחורית.מקם את החיישן כך שהאור האדום יאיר את כף הרגל. הצג את ה-oxiwave כדי להדמיות את אות החיישן. סובב את חוגת ריכוז חומר ההרדמה (Anesthetic Agent Concentration) למצב Minimum כדי לספק 0% והוצא את בעל החיים מהקונוס של האף.יש לעקוב מקרוב אחר העכבר במהלך ההתאוששות מההרדמה. ברגע שהעכבר מסוגל לנוע באופן מלא, יש להחזירו לכלוב. איור זה מציג את כמות ה-isoflurane שבה נעשה שימוש במיליליטרים עבור שלושה עכברים נקבות מסוג C57 Black 6 בני שש עד שבעה שבועות, לאורך שעה אחת של תחזוקת הרדמה באמצעות מערכת ההרדמה הדיגיטלית בעלת הזרימה הנמוכה.בשל קצבי הזרימה הנמוכים, המאדה digital vaporizer המונע על ידי מזרק לזרימה נמוכה צרך פחות מ-1 ml של isoflurane במהלך שעה אחת. קצב הלב של שלושת העכברים, שנמדד בפעימות לדקה באמצעות pulse oximetry בטווח של 5 עד 60 דקות לאחר ההשראה, מוצג כאן. קצבי הלב של בעלי החיים נותרו יציבים ועקביים יחסית לאורך תקופת התחזוקה.איור זה מציג את רמות רוויית החמצן של שלושת העכברים לאורך אותה תקופה. לבסוף, מוצג כאן קצב הנשימה של העכברים בנשימות לדקה בין חמשה ל-60 דקות לאחר השראת הרדמה באמצעות מערכת הרדמה דיגיטלית בעלת זרימה נמוכה. משאבת האוויר הפנימית מציעה למשתמשים את האפשרות להרדים בעלי חיים ללא צורך במקור גז דחוס.עבור פרוצדורות הדורשות גז דחוס או חמצן משלים, למשתמש יש את האפשרות לחבר מקור גז למאייד בעל זרימה נמוכה במקום להשתמש באוויר. מאיידים המונעים על ידי מזרק בעלי זרימה נמוכה מסוגלים להגיע לקצבי זרימה נמוכים עד כדי 10 milliliters per minute, תוך אספקת ריכוזי הרדמה מדויקים. לפיכך, טכניקה זו תהיה מועילה לקבוצות המבצעות הרדמה למכרסמים הודות לשיפור בבטיחות, ביעילות ובדיוק לעומת מערכות מסורתיות.

use-of-a-low-flow-digital-anesthesia-system-for-mice-and-rats

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

אנו מתארים שיטה למקד תרופות למערכת העצבים המרכזית או על ידי השתלת קטטר או ביצוע הזרקת בולוס לתוך החדר לרוחב הנכון בעכברים. אנו מתמקדים באופן ספציפי על המשלוח של אנטיסנס. טכניקה זו היא להתאמה בקלות לתרופות אחרות ולחולדות.

משלוח תוך חדרי ישיר של תרופות למערכת העצבים המרכזית מכרסם

Radiotelemetry EEG ללא הרחקה הוא גישה מתודולוגית יקר להקליט in vivo פעילות המוח לזמן ארוך מתאגידים מכרסמים לנוע בחופשיות. פרוטוקול מפורט זה מתאר אפידורל stereotaxic ואת מיקום האלקטרודה תוך-מוחי עמוק באזורי מוח שונים על מנת להשיג הקלטות אמינות של מקצב CNS ושלבי התנהגותיות הקשורות במערכת עצבים המרכזית.

ללא הרחקה EEG Radiotelemetry: אפידורל ודיפ תוך-מוחי Stereotaxic EEG אלקטרודה מיקום

נייר זה מורה משתמשים ויוו הסורקים טומוגרפיה שחושב מיקרו (µCT) כיצד עזים ומתנגד, כראוי למקם לרסן את האיבר האחוריות של עכבר לתנועה מינימלי במהלך דימות ברזולוציה של עצם השוקה. התוצאה היא תמונות באיכות גבוהה ניתן לעבד לכמת במדויק את עצם מיקרו-ארכיטקטורה.

מיקום מתאים ואיפוק של איבר הינד עכברוש עבור הדמיה ברזולוציה גבוהה ממוקד של עצם באמצעות מיקרו-ארכיטקטורה In Vivo שחושב מיקרו טומוגרפיה

מחקר זה מתאר הליך כירורגי מפושטת עם טכניקה לביצוע גירוי עצבי חלול עם הבידוד של האלקטרודה העצב מורכבים באמצעות דבק סיליקון או תרופתי לחץ מידה.

גירוי עצבי חלול ורישום של תרופתי בלחץ עכברוש

פרוטוקול זה מתאר השרשה של חלון זכוכית אל חוט השדרה של העכבר כדי להקל על ההדמיה על ידי המיקרוסקופיה.

כריתת למינציה ואת חוט השדרה חלון השרשה בעכבר

Intratracheal (IT) המינהל של סוכנים ניסיוניים בעכברים לעתים קרובות מביא משלוח אסימטרי הריאות המרוחק.  בדוח זה, אנו מתארים גישה ישירה בלתי-מרורונצ'יאל (ליברות) כדי לאגור כל ריאה בעכברים חיים שאינם מבצעית.  גישה זו יכולה לשמש באופן סלקטיבי לניהול סוכנים לריאה אחת או להתאים כדי לשפר את מסירת הסוכן הסימטרי לשתי הריאות.

מינהל הארגון הישיר כדי לשפר את הסוכן הסלקטיבי התצהיר בתוך הריאה של העכבר

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לניהול בטוח ויעיל של גז הרדמה לעכברים באמצעות מערכת הרדמה דיגיטלית בזרימה נמוכה עם מודולי הנשמה וניטור פיזיולוגי משולבים.

שימוש במכשיר אידוי משולב בעל זרימה נמוכה, מאוורר ומערכת ניטור פיזיולוגית למכרסמים

כאן, אנו מציגים פרוטוקול המדגים את הטכניקה ואת הפקדים הדרושים עבור הדמיית זלוף דופלר לייזר כדי למדוד את זרימת הדם בעכבר hindlimb.

הדמיית זלוף דופלר לייזר בעכבר הינדלימב

אנו מציגים פרוטוקול לחשוף את גזע המוח של עכבר בוגר מהצד הגחוני. באמצעות עדשת מדד שבירה הדרגתית עם מיקרוסקופ מיניאטורי, ניתן להשתמש בהדמיית סידן כדי לבחון את הפעילות של סומטה עצבית זית נחותה ב- vivo.

אין ויוו הדמיית סידן בעכבר זית נחות

פרוטוקול זה מתאר שיטה לקבלת נתוני הדמיית תהודה מגנטית תפקודית יציבה של מצב מנוחה (rs-fMRI) מעכברוש המשתמש באיזופלוראן במינון נמוך בשילוב עם dexmedetomidine במינון נמוך.

רכישת נתוני הדמיית תהודה מגנטית תפקודית של מצב מנוחה בחולדה

למדו שימוש במערכת הרדמה דיגיטלית זרימה נמוכה עבור עכברים וחולדות. השיטה מאפשרת שליטה מדויקת באספקת איזופלורן בקצבי זרימה נמוכים לשמירת רווחת בעלי החיים במהלך הניסויים.

שימוש של מערכת הרדמה דיגיטלית זרימה נמוכה עבור עכברים וחולדות

גלה סרטונים נוספים