25 באוקטובר 2016
מיקרוגליה (תאים חיסוניים של המוח), משמשים כחיישן ביולוגי חלופי כדי לקבוע כיצד ננו-חלקיקים משפיעים על רעילות עצבית. אנו מתארים סדרה של ניסויים שנועדו לבחון את תגובת המיקרוגליה לננו-חלקיקים וחשיפה של נוירונים היפותלמוסיים לסופרנטנט ממיקרוגליה מופעלת כדי לקבוע רעילות עצבית.
המטרה הכוללת של פרוטוקול זה היא לתאר חיישן ביולוגי חלופי במבחנה לבדיקת תגובת מיקרוגליה לננו-חלקיקים. לאחר מכן נקבע רעילות עצבית בעקבות חשיפה למדיה מותנית ממיקרוגליה המגורה עם ננו-חלקיקים. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום מדעי המוח כגון כיצד ננו-חלקיקים מסוננים באופן פעיל לרעילות עצבית.
היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהמודל שלנו מספק את היכולת להפעיל ישירות מיקרוגליה ולקבוע אם גורמים סודיים הם נוירוטוקסינים ללא שימוש במחקרי מכרסמים יקרים לטווח ארוך. אם כי שיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי מוות תאים המושרה על ידי מיקרוגליה בעקבות חשיפה למיקרו-חלקיקים. ניתן ליישם אותו גם על מודלים אחרים של מחלות נוירודגנרטיביות בהקשר של בדיקת מזהמים סביבתיים נוירוטוקסיים פוטנציאליים.
בדרך כלל אנשים חדשים בשיטה זו יתקשו עם שלב סינון המדיה המצב. מכיוון שיעילות הסינון עשויה להשתנות בהתאם לגודל, לצורה ולריכוז הננו-חלקיקים. בהכנה לחמם את ה-DMEM בתוספת 10% FBS ו-1% PSN ל-37 מעלות צלזיוס.
לאחר מכן קחו תאי מיקרוגליה קפואים של BV2 שהתקבלו ממעברים 18 25, והפשירו אותם במהירות ב-37 מעלות צלזיוס. לאחר מכן, העבירו בעדינות את התאים המופשרים לבקבוק מאוורר בגודל 75 סנטימטר רבוע המכיל 10 מיליליטר מדיום ודגרו על הבקבוק. לאחר 24 שעות מחליפים את המדיום וממשיכים לגדל את התאים עד שהם מגיעים למפגש של 70-80%בשלב זה שואבים את המדיום ומוסיפים 500 מיקרוליטר של תמיסת EDTA חמה 1 ex trypsin.
לאחר שאפשרתם לבקבוק לדגור עוד כמה דקות, השתמשו במגרד כדי לאסוף את התאים ל-5 מיליליטר של DMEM חם. לאחר מכן מסננים את התאים מהבקבוק באמצעות מסננת 70 מיקרון. חזור על סינון זה שלוש פעמים באמצעות אותה מסננת ואסוף את התאים בצינור של 50 מיליליטר.
לאחר הסינון, ספרו את התאים ולאחר מכן זרעו צלחת תחתונה שקופה בעלת דופן שחורה עם 8000 תאים לבאר ב-200 מיקרוליטר של DMEM בתוסף. לאחר 24 שעות של דגירה, החלף את המדיום בבארות ב-DMEM ללא סרום כדי להרעיב את המיקרוגליה. לאחר 24 שעות נוספות של דגירה, המשך להפעיל את המיקרוגליה.
לשם כך, תחילה יש לדלל ננו-חלקיקי כסף ב-DMEM ללא סרום לריכוז העבודה הרצוי. לאחר מכן החלף 100 מיקרוליטר מדיום בתרכובת הטיפול. הקפד לכלול בקרה שלילית על תמיסת רכב מדולל ללא הננו-חלקיקים.
כעת המשיכו בדגירה למשך 24 שעות והמשיכו בניתוח. כדי להתחיל, אספו 200 מיקרוליטר של מדיום סופרנטנט מכל צלחת היטב והעמיסו אותו על מסנן שיסיר את הננו-חלקיקים המונחים על צינור מיקרו צנטריפוגה. חשוב לזכור שכאשר מסננים את הננו-חלקיקים, גודלם, צורתם וריכוזם מהווים גורם ליעילות ההיתוך.
לכן רצוי לבדוק את הסינון מראש. כעת סובב את הצינורות ב-14000 גרם בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות. לאחר מכן השליכו את הזרימה המכילה את הננו-חלקיקים והניחו את המסננים הפוכים בצינורות איסוף חדשים.
סובב את המסננים הפוכים ב-1000 גרם למשך שתי דקות כדי לאסוף מדיום מרוכז המכיל ציטוקינים. לאחר מכן, הגדל את נפח האוסף ל -400 מיקרוליטר עם DMEM משלים טרי ואחסן את הצינורות על קרח. כדי להבטיח הסרת ננו-חלקיקי גופרית שיוריים ממדיה מסוננת, הכינו תקני ננו-חלקיקים לא מסוננים בטווח ריכוזים מריק עד 0.2 מיקרוגרם למיליליטר ב-DMEM נטול סרום.
לאחר מכן יש להקצות 50 מיליליטר מהדגימות המסוננות ומכל תקן לתוך צלחת תחתונה שקופה בעלת דופן שחורה ולמדוד את הספיגה בין 390 ל-410 ננומטר. כדי למדוד את ריכוז TNF-alpha בדגימות, השתמש במחצית מהנפח הנותר שלהן בערכה זמינה מסחרית. לצורך בדיקה זו יש להקים תאים היפותלמוסיים ממלאי קפוא.
שימוש באותן שיטות שתוארו להקמת תרביות מיקרוגליה. בסופו של דבר השתמש בהם כדי לזרוע צלחות תחתונות שקופות עם קירות שחורים עם 5000 תאים לבאר ב -200 מיקרוליטר של DMEM בתוסף. לאחר 24 שעות של תרבית, הסר 100 מיקרוליטר של מדיום והחלף אותו ב-100 מיקרוליטר של מדיום מסונן ומרוכז שנאסף מתרביות תאי המיקרוגליה המופעלים ואז דגר על הצלחת למשך 24 שעות בתנאים סטנדרטיים.
למחרת מוסיפים 22 מיקרוליטר מגיב רזזורין לכל באר וממשיכים את הדגירה למשך 20 דקות. לאחר מכן, בעזרת ספקטרופוטומטר מולטי-מוד, קח מדד פלואורסצנטי כדי להעריך את כדאיות התאים במונחים של יחידות פלואורסצנטיות יחסיות. עם הפרוטוקול המתואר, פונקציית מיקרוגליה יכולה לשמש כחיישן ביולוגי חלופי לתגובת המוח לננו-חלקיקים.
הפרשת TNF-alfa על ידי מיקרוגליה גדלה באופן משמעותי בעקבות חשיפה לננו-חלקיקים רסיסים. כאשר נוירונים היפותלמוסיים נחשפו למדיום מותנה ממיקרוגליה המופעלת על ידי ננו-חלקיקי כסף, יכולת הקיום של הנוירונים הופחתה משמעותית. באופן עקרוני, חשיפה לננו-חלקיקי הכסף הפעילה את המיקרוגליה למצב פרו-דלקתי M1.
לאחר מכן הציטוקינים הפרו-דלקתיים המשוחררים תורמים למוות התאים שמסביב. לאחר צפייה בסרטון זה אתם אמורים להבין היטב כיצד להשתמש במיקרוגליה כחיישן ביולוגי חלופי לבדיקת תגובה לננו-חלקיקים ואם תגובה זו היא נוירוטוקסית. לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך שלושה או ארבעה ימים אם היא מבוצעת כראוי.
בעקבות הליך זה, ניתן לבצע שיטות אחרות כגון פרופיל ציטוקינים מופרשים אחרים לאחר הפעלת מיקרוגליה על מנת לפנוטיפ מצבי הפעלה של מיקרוגליה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה בוחן את השימוש במיקרוגליה כבסנסור ביולוגי חלופי להערכת ההשפעות הנוירוטוקסיות של ננו-חלקיקים. באמצעות בחינת תגובת המיקרוגליה לחלקיקים אלו, חוקרים שואפים להבין את הפוטנציאל הנוירוטוקסי של מזהמים סביבתיים.
פרוטוקול זה מבסס ביו-חיישן תחליפי in vitro המשתמש במיקרוגליה להערכת נוירו-טוקסיות המושראת על ידי ננו-חלקיקים, ובכך נותן מענה לפער קריטי בהערכת בטיחות בשלבים מוקדמים עבור תרכובות בעלות פעילות עצבית. על ידי קישור הפעלת המיקרוגליה להישרדות נוירונלית במורד המסלול, השיטה מספקת תובנה מכניסטית לגבי נתיבים של דלקת עצבית (neuroinflammatory pathways) שיכולה לסייע בתיקוף מטרות ובאסטרטגיות להפחתת סיכונים. גישה זו תומכת בביטחון ניבוי בזיהוי רעלים עצביים סביבתיים לפני ביצוע מחקרי in vivo יקרים, ובכך תואמת את צרכי התעדוף של תיקי פיתוח בשלב הגילוי.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי על ידי אספקת קריאה תפקודית מוקדמת של הפוטנציאל לנוירו-דלקת בעקבות חשיפה לתרכובת או לננו-חלקיק, ובכך מסייעת בקבלת החלטות לגבי זיהוי מועמדים מובילים.