December 14th, 2016
פרוטוקול זה מתאר את ההדמיה של התפתחות הביופילם לאחר חשיפה לגורמי מארח באמצעות מודל תא שקופיות. מודל זה מאפשר הדמיה ישירה של התפתחות ביופילם וכן ניתוח פרמטרים של ביופילם באמצעות תוכנות מחשב.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לדמיין ולכמת שינויים בביופילמים בתגובה לכיח ואנטיביוטיקה. שיטה זו יכולה לשמש חוקרים כדי להבין שאלות מפתח, כגון כיצד היעילות של אנטיביוטיקות שונות נגד ביופילמים חיידקיים יכולה להיות מושפעת מנוכחות ליחה. היתרון העיקרי של מתודולוגיה זו הוא שהיא מאפשרת לאנשים לראות שינויים המתרחשים בביופילמים בתגובה לגורמים שונים.
כדי להתחיל בניסוי, רשום את נפח דגימת הליחה שהושגה בעבר. הוסף מי מלח עם חוצץ פוספט, או PBS, הוסף פי שניים מנפח הדגימה. לאחר מכן, השתמש בפיפטת העברה כדי לערבב היטב את הדגימה.
מערבל את הדגימה בהגדרה הגבוהה ביותר למשך דקה אחת כדי לערבב אותה לגמרי. יש לצרף מיליליטר אחד מהתערובת לצינורות מיקרו-צנטריפוגה של 1.5 מיליליטר. ואז סובב את הצינורות.
לאחר הצנטריפוגה, שמור את הסופרנטנט והשליך את הגלולה. מסנן לעקר את הסופרנטנט דרך מסנן 0.22 מיקרון ולאסוף אותו בצינור מיקרו-צנטריפוגה נקי. אחסן את נוזל הליחה בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס לשימוש עתידי.
מניחים 40 מיקרוליטר של תרבית שהוכנה בעבר לארבעה מיליליטר של מרק לוריא טרי, או מדיה LB, ומגדלים את החיידקים לקבלת תרבית עם צפיפות אופטית של 0.55 ב-600 ננומטר. לאחר מכן, יש לדלל 100 מיקרוליטר של תרבית 0.5 OD ל-400 מיקרוליטר של תסנני כיח מוכנים של 10% ב-LB. השתמש ב -200 מיקרוליטר של הדילול כדי לזרוע את הבארות של תאי המגלשות. הניחו לחיידקים להיצמד במשך ארבע שעות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס מבלי לרעוד.
לאחר ארבע שעות, הסר את המדיה ושטוף בעדינות את הביופילם ב-1X LB טרי. החלף את המדיה הנותרת ב-200 מיקרוליטר של LB טרי. אפשרו לביופילם לגדול ב-37 מעלות צלזיוס מבלי לרעוד. החלף את המדיה כל 12 שעות ללא כביסה עד שהביופילם מוכן למיקרוסקופיה. חשוב מאוד לשטוף בעדינות את המגלשות כדי לא לשבש חיידקים מחוברים.
לאחר הצמיחה, הסר את המדיה מבארות התא ושטוף בעדינות כל תא פעמיים עם 300 מיקרוליטר PBS סטרילי. לאחר מכן, כדי להכין את תערובת צביעת הביופילם, הוסף מיקרוליטר אחד מכל צבע המסופק בערכת הכדאיות לכל מיליליטר של תמיסה הדרושה וערבב את התמיסה. הכמות האופטימלית של זמן הצבע והצביעה נקבעת באופן אמפירי עבור כל אורגניזם.
הוסף 200 מיקרוליטר מתערובת הצביעה לכל באר של זכוכית הכיסוי החדרית. דגרו את זכוכית הכיסוי. לאחר הדגירה, הוציאו את תערובת הצביעה מהתאים ושטפו כל באר עם 300 מיקרוליטר PBS סטרילי.
החלף את ה-PBS במדיה חדשה. לבסוף, המשך בהדמיה באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית. תמונות מייצגות של קומפלקס Burkholderia cepacia, או מבודדים קליניים של BCC, לאחר 48 שעות של צמיחה בזכוכית כיסוי תא עם מדיה בלבד או בנוכחות 10% תסנני כיח מדגימים כי נוכחותם יכולה לשנות את הארכיטקטורה של הביופילם.
התמונות נותחו באמצעות תוכנת Comstat כדי לקבל פרמטרים מרכזיים של ביופילם, כולל העובי הממוצע של הביופילם, שהוגדל כאשר טופלו ב-10% ליחה. על מנת להעריך את השפעות הגורמים השונים על צמיחת הביופילם, מבודדים קליניים גודלו במדיה בלבד או עם כיח וטופלו עם או בלי אנטיביוטיקה. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להיות בעל הבנה טובה כיצד ליצור ולטפל בביופילמים על זכוכית כיסוי תא ולהכין אותם לניתוח מכתים וקונפוקלי.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
פרוטוקול זה מתאר את ההדמיה והכימות של התפתחות ביוממברנה בתגובה לכיח ואנטיביוטיקה באמצעות מודל של תא שקופיות. מודל זה מאפשר תצפית ישירה על שינויים בביוממברנה ומאפשר ניתוח מפורט באמצעות תוכנת מחשב.
Quantitative visualization of biofilm development in the presence of host-derived sputum and antibiotics addresses a critical challenge in anti-infective discovery and translational model fidelity. This approach enables mechanistic de-risking by revealing how host factors modulate antibiotic efficacy and biofilm architecture, informing early-stage target validation and screening strategies. The method supports predictive confidence for portfolio decisions in infectious disease R&D.
This chambered coverglass model integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven testing of antibiotic efficacy in host-mimetic biofilm systems.