13 באוגוסט 2017
פרסום זה מציג פרוטוקול מציג כיצד למדוד את פעילותו של חלבון רקומביננטי פוספטאז 2A קטליטי יחידה משנית (PP2Ac) בתגובה רקומביננטי α-synuclein, β-synuclein או שימוש assay ערכי צבע מוחלטים פשוטה של חלבונים וγ-synuclein. אנו מראים הממצאים לגבי ירידה לפרטים α-synuclein לכיוון PP2Ac במוח העכבר.
אלפא, בטא וגמא סינוקלאאינים רקומביננטיים מעוררים את פעילות תת-היחידה הקטליטית של โปรטאין פוספטאז 2A בבדיקות ללא תאים. שלום, שמי סוואנאראק לק. אני סטודנט לרפואה במרכז המדעי של אוניברסiteten טקסס טק, אל פאסו, בית הספר לרפואה ע"ש פול ל. פוסטר.
בסרטון זה, אדגים בדיקה קולורימטרית דו-כיוונית לפוספטאז של חלבונים באמצעות חלבוני סינוקלאין רקומביננטיים. הכנת תמיסות בופר וריאגנטים. הכנת בופר p-Nitrophenol Phosphate.
להכנת 50 mils של בופר pNPP, המיסו Trizma base ב-25 mils של מים דה-יוניים אולטרה-טהורים בתוך כלי כימי. הוסיפו מגנט ערבוב נקי והניחו על מערבל מגנטי. לאחר התמוססות ה-Trizma, הוסיפו calcium chloride תוך כדי ערבוב רציף.
כוון את ה-pH ל-7.0. העבר את התמיסה למשורה. השלם את הנפח הסופי ל-50 mils באמצעות מים דה-יוניים אולטרה-טהורים.
הכנת תמיסת מאלאכיט גרין (Malachite green). תמיסת מאלאכיט גרין דורשת שלושה תמיסות, חלקים A, B ו-C. תמיסה A היא חומצה הידרוכלורית בריכוז 4 M. תמיסה B היא שילוב של אמוןיום מוליבדאט פלוס תמיסה A. תמיסה C היא מלח מאלאכיט גרין אוקסלט בריכוז 0.045%.
להכנת תמיסה D, ערבבו חלק אחד מ-B עם שלושה חלקים מ-C, ביחס של 1:3. ערבבו במשך שעה אחת בטמפרטורת החדר. לבסוף, סננו את תמיסה D דרך ממברנה של 22 µm ואחסנו בטמפרטורה של 4 °C.
יש להגן מאור. הכנת המפעיל. המפעיל הוא תמיסת Tween 20 בריכוז 1%.
העבירו בפיפט 10 µL של Tween 20 לתוך 990 µL של מים דה-יוניים טהורים במיוחד. ערבבו במכשיר vortex עד להמסה מלאה של ה-Tween 20. הכנת תמיסת עבודה של malachite green עם Tween 20.
הוסיפו מפעיל לתמיסה D ביחס של 1 ל-100. הכנת פוספופפטיד של תרנין. להכנת תמיסת מלאי של pT בריכוז 2 mM, הוסיפו 550 microliters של מים דה-יוניים ברמת ultrapure ל-1 milligram של pT.
ערבבו במכשיר וורטקס עד להמסה מלאה של הפוספופפטיד. הניחו על קרח לשימוש מיידי. שמרו מנות נוספות של pT בטמפרטורה של 20- מעלות צלזיוס.
הכנת סינוקלאין. השהו מיליגרם אחד של סינוקלאין במי ultrapure דה-יוניים בריכוז סופי של מיליגרם אחד למיליליטר. ערבבו בעדינות במכשיר vortex להמסה.
יש להשתמש באופן מיידי ולאחסן מנות שלא נעשה בהן שימוש במינוס 80 מעלות צלזיוס. הכנת סטנדרטים של פוספט. שלב ראשון להכנת סטנדרטים של פוספט.
להכנת תמיסת סטוק של פוספט בריכוז 1 mM, המסיחו פוטסיום פוספט במים דה-יוניים אולטרה-טהורים בתוך כוס כימית עם מוט ערבוב. העבירו למשורה והביאו את הנפח הסופי ל-100 mils. זוהי תמיסה בריכוז 10 mM.
סננו את הפתרון כולו דרך מסנן של 22 µm באמצעות מזרק גדול. דללו תמיסה זו ביחס של 1 ל-100 כדי להכין תמיסת פוספט בריכוז 1 mM לשימוש כסטנדרטים לבדיקה. שלב שני לסטנדרטים של פוספט.
הוסיפו את הכמות המתאימה של פוספט בתוספת מים דה-יוניים רב-מזוקקים למבחנות של 1.5 מיליליטר בהתאם לטבלה. פעולה זו תניב מבחנות של 150, 300, 600, 1,200 ו-2,400 pmol פוספט. אחסנו את המנות בטמפרטורה של 20- מעלות צלזיוס.
בדיקת פעילות PP2A. יש להכין את בדיקת ה-PP2A באנבובי 1.5 מ"ל על קרח. יש להוסיף 43 µL מתוסף pNPP.
הוסיפו מיקרוליטר אחד של PP2Ac רקומביננטי אנושי. הוסיפו synuclein והדגירו את ה-PP2A יחד עם ה-synuclein למשך 30 דקות ב-Nutator בטמפרטורה של ארבע מעלות צלזיוס. לאחר מכן, הוסיפו 16 מיקרוליטר של pT בריכוז 2mM.
דגרו במשך 10 דקות בטמפרטורה של 30 degrees Celsius באמבט מים. בלוחיות 96-well בעלות תחתית שטוחה, הוסיפו 25 µL מכל אחד מהתמיסות הסטנדרטיות של הפוספט, בשניפליקאט, מהריכוז הנמוך לגבוה. העבירו בפיפט 24 µL מכל בדיקת PP2A, בשניפליקאט, לאותה לוחיות 96 well שבה נמצאים הסטנדרטים.
העבירו בפיפט 75 µL של תמיסה D המכילה Tween 20 לכל דגימה ולסטנדרט. עם הוספת MGT, ייראה שינוי בצבע בבארים כאשר נוכחים פוספטים חופשיים. ניתוח פוטומטרי.
בצע ניתוח בספקטרופוטומטר המכוון ל-630 nanometers. תוצאות מייצגות. כאן מוצג ביצוע מייצג של בדיקת PP2A והגרף המדגים את עקומת הסטנדרט.
משמאל נמצאים סטנדרטים של פוספט. ככל שמרחקי הבארים מכילים יותר פוספט, כך גוון הירוק יהיה כהה יותר. מימין נמצא PP2A שדגרו עם alpha, beta או gamma synucleins בריכוזים מולריים שונים.
ריכוזים גבוהים יותר היו יעילים יותר בגירוי פעילות תת-היחידה הקטליטית של PP2A. כאן אנו רואים את הייצוג הגרפי של פעילות PP2A בתגובה לריכוזים משתנים של אלפא-סינוקלאין, בטא-סינוקלאין וגמא-סינוקלאין. אלפא-סינוקלאין, בטא-סינוקלאין וגמא-סינוקלאין היו כולם מעוררים משמעותיים של פעילות PP2A בריכוז של 1 עד 2 µM.
רק alpha synuclein ו-beta synuclein היו מעוררים משמעותיים של פעילות PP2A בריכוז של 0.5 micromolar. איור 3 מציג את האינטראקציה של PP2Ac עם סינוקלאינים אנדוגניים במוח של עכבר. בחלק A, alpha, beta ו-gamma synucleins רקומביננטיים מוצגים כביקורות חיוביות.
ב-B, בוצע שיקוע חיסוני משותף (co-immunoprecipitation) באמצעות הנוגדן 1D6 הספציפי ל-PP2Ac, אשר שיקע את PP2Ac וכן שיקע כמות ניכרת של alpha synuclein המקיף אותו, אך כמעט לא שיקע beta synuclein. לא שקע gamma synuclein יחד עם PP2Ac בשיקוע החיסוני המשותף. נתונים אלו משיקוע חיסוני משותף מצביעים על כך ש-alpha synuclein הוא המודולטור האנדוגני של PP2Ac in vivo.
אנו רוצים להודות לכל מי שסייע לנו בהכנת סרטון זה. לסיכום, כאן רות פרז. סונאווראק לק.
חביאר ורגאס. מאחל לכם הצלחה רבה. להתראות ובהצלחה.
פרסום זה מציג פרוטוקול למדידת הפעילות של תת-היחידה הקטליטית של הפסופטאז החלבוני רקומביננטי 2A (PP2Ac) בתגובה לחלבונים רקומביננטיים מסוג α-synuclein, β-synuclein או γ-synuclein באמצעות בדיקה קולורימטרית. הממצאים מצביעים על הספציפיות של α-synuclein כלפי PP2Ac במוח של עכבר.
מחקר זה מבסס בדיקה נטולת תאים (cell-free assay) להערכת הוויסות של פעילות PP2Ac המתווך על ידי סינוקלאין, ובכך מספק כלי מכניסטי לתיקוף מטרות במחקר של מחלות נוירודגנרטיביות. על ידי הדגמה ששלוש איזופורמות הסינוקלאין יכולות לעורר את PP2Ac in vitro, השיטה תומכת בבדיקת היפותזות בנוגע להומולוגיה תפקודית שמורה והשלכותיה על הפחתת סיכונים במסלול (pathway de-risking). נתוני ה-co-immunoprecipitation מזקקים עוד יותר את סגוליות המטרה, ומדגישים את $\alpha$-synuclein כווסת האנדוגני in vivo, דבר המסייע בתעדוף היפותזות טיפוליות aוצמצום העמימות המכניסטית בשלבי הגילוי המוקדמים.
הבדיקה משתלבת ברצף השלבים המוקדמים של הגילוי, ותומכת בתיקוף המטרה ובזיהוי מובילים (leads) על ידי אספקת תוצאות כמותיות מבוססות-מכניזם, המנחות החלטות לגבי המשך התהליך (go/no-go) לפני השקעה משמעותית באופטימיזציה של התרכובות.