Name: שימוש במבחנה לחיות תאים הדמיה כדי לחקור Chemotherapeutics מועברת על ידי חלקיקים המבוססת על שומנים בדם (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: חקור שיטת הדמיית תאים חיים לניטור קליטה והפצה של סוכני כימותרפיה בזמן אמת. שיטה זו מונעת שיבושי קיבוע ומאפשרת הערכה דינמית של מנגנוני משלוח תרופות בתאי גידול.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המתקנים מיקרוסקופ המשמש חלק המרכז דימות אופטי ארסמוס, אנחנו רוצים להודות לצוות OIC עבור שירותיהם.

1. הכנה <ol><li>להרכיב לחדר ההדמיה, אשר מורכב משני חלקים-
	<ol><li>מקום 25-מ מ כיסוי זכוכית ( איור 1 א'-1) בחלק התחתון של החדר ( איור 1 א'-2), להבריג את החלק העליון בחלק התחתון ( איור 1 א'-3). לא להדק חזק מדי, כפי יכול לשבור את הזכוכית. אוטוקלב התא כולו ( איור 1 א' -4).</li>
	</ol></li> <li>להכין בינוני התרבות התא על-ידי שכשהם Dulbecco &#39; s נשר שונה &#39; s בינוני (DMEM) ללא פנול אדום עם 10% חום-לא פעיל עגל עוברית סרום (FCS) ולא 1 מ"מ-גלוטמין בתנאים סטריליים. החנות 4 ° C וחמים עד 37 ° C לפני השימוש.</li>
	<li>לשמור על התאים עם תא תרבות במדיום culturing מבחנות בטכניקות תרבות תא רגיל. 
	הערה: כאן, שתי שורות תאים העכבר, מלנומה B16BL6 11 ולואיס ריאות קרצינומה (LLC), ואת שני מלנומה אנושיים, BLM ו- 1F6 12, שימשו.</li>
	<li>הופכים את הג'לטין 0.1% על ידי שקילה המסת הג'לטין בתוך באגירה פוספט תמיסת מלח (PBS) ב 37 מעלות צלזיוס למשך הלילה. לעקר את הפתרון על-ידי סינון זה דרך מסנן 0.22-מיקרומטר ואחסן אותו ב-4 מעלות צלזיוס</li>
</ol> 2. צלחת תאים <ol><li>להסיר תא הדמיה של השקית עיקור ב- cabinet זרימה שכבתית, בזהירות להדק את התא, ולמקם אותו בצלחת פטרי. 
	הערה: כדי למנוע זיהום, להשאיר לחדר ההדמיה בצלחת פטרי עד החדר ניתן למקם תחת המיקרוסקופ.</li>
	<li>מעיל הזכוכית של תא הדמיה עם 1 מ"ל של ג'לטין סטרילי 0.1% במשך 20 דקות-CO של 37 ° C ו- 5%-2- 
	הערה: פעולה זו תאפשר יותר מצורף תא.</li>
	<li>להסיר את המדיום המבחנות התרבות התא (ראה שלבים 1.2 ו- 1.3), לשטוף פעם עם 1 x PBS ולנתק את התאים באמצעות טריפסין 0.25%. בטל את טריפסין על-ידי הוספת תא תרבות בינוני לאסוף את התאים, ספין אותם למטה ב g x 1,100 במשך 5 דקות, resuspend בגדר ב 5 מ של התא תרבות בינונית.</li>
	µL <li>µL 20 לדלל תא השעיה עם 20 של trypan blue (אשר תועבר ידי תאים מתים). ספירת מספר התאים חי וגם מת באמצעות hemocytometer; מספר תאים מתים לא יעלה על 10%.</li>
	<li>תשאף הג'לטין, צלחת התאים לדילול המאפשר לכל היותר 70% כיסוי בתוך 24 שעות. לדוגמה, השתמש לדילול של 5 x 10 4 או 10 x 10 תאים 4 ב 1 מ"ל. לאפשר את התאים לדבוק ב 5% CO 2 ו- 37 מעלות צלזיוס במשך ה 24</li>
</ol> 3. זמן לשגות מיקרוסקופ ( איור 2) הערה: כאן, השתמשו מיקרוסקופ קונפוקלי עם בעל שלב בהזמנה אישית, למרות מייצרת רוב מציעים מגוון של חממות עבור תאים חיים הדמיה זה הם מתאים גם לחקור משלוח הסמים nanoparticulated.
<ol><li>להעריך את התאים במיקרוסקופ confluency, מורפולוגיה הסלולר של זיהום. מקם את התא בחזרה בחממה 2 CO. 
	הערה: confluency לא יעלה על 70%. אם המורפולוגיה הסלולר הוא לא עקבי (קרי, התאים אינן מתיישבות) או זיהום מזוהה, למחוק תא הדמיה-</li>
	<li>לעבור על מיקרוסקופ קונפוקלי ( איור 1E-1), אור פלורסנט ( איור 1E-2) ומחשב ( איור 1E-3)-</li>
	<li>להתחבר החימום עדשה המטרה ולהגדיר אותו עד 35 ° צ' ( איור 1E -4 + insert).</li>
	<li>להכין את היחידה דגירה, כפי שמוצג באיור 1B. 
	הערה: יחידה זו מורכבת שלב מחוממת ( איור 1B-1), שלב זרימה עם מחבר עבור 2 CO הצינורות ( איור 1B-2) ו- CO 2 בדיקה ( איור 1B -3), ואת כתם אדום הסגירה ( איור 1B-4). תיקון זה משמש כדי לסגור באופן זמני את יחידת עד לחדר ההדמיה מושם.</li>
	<li>מקום ביחידה אינקובציה על הבמה מיקרוסקופ וחבר בו -out - flow CO 2 הצינורות ( איור 1E-5). לפתוח את השסתום 2 CO המרכזי ( איור 1E-6) ולעבור בבקר 2 CO ( איור 1E-7). בדוק הבקר מוגדר כ- 5% CO 2. 
	הערה: עבור לחות, CO 2 עובר דרך מכשיר לחות ( איור 1E -8). לניסויים היפוקסיה, הרגולטור 2 O נפרד ( איור 1E-9) נכלל בכיוונון.</li>
	<li>להגדיר את הטמפרטורה הבמה 37 ° C ( איור 1E-10). לניסויים היפרתרמיה, הגדר את הטמפרטורה 42 ° C. אפשר יחידת הדגירה כדי להגיע טמפרטורה שנבחר, CO 2 אחוז.</li>
	<li>לקחת לחדר ההדמיה של המפקד הראשי חממה 2 ומובילים התא בצלחת פטרי לחדר מיקרוסקופ.</li>
	<li>מקום לחדר ההדמיה ( איור 1A-4) בהזמנה אישית, 35 מ מ קוטר הבמה מחזיק ( איור 1 א'-5) ולסגור את התא עם מכסה איטום בהזמנה אישית ( איור 1A-6). 
	הערה: המכסה מאפשר CO 2 לעבור ומונעת אידוי וזיהום.
	<ol><li>לפתוח ביחידה אינקובציה, החלף את התיקון אדום לחדר ההדמיה, וסגור את יחידת ( איור 1C). . תעשה את זה מהר ככל האפשר כדי למנוע את הקירור של התאים ודא כי ללא כבלים תקועים בין הבמה לבין המיקרוסקופ.</li>
	</ol></li> <li>לעזוב את היחידה להתאקלם במשך 30 דקות</li>
	<li>לפתוח את התוכנה ולעבור על הלייזרים. 
	הערה: כאן, 488 ננומטר ארגון, 543 nm הליום-ניאון, 633 ננומטר הליום-ניאון לייזרים שימשו.</li>
	<li>להפוך מסד נתונים חדש על-ידי לחיצה על &#34; ניו &#34; תחת הכרטיסיה קובץ שם ולשמור את מסד הנתונים.</li>
	<li>להגדיר את התצורה באמצעות לחיצה על &#34; Config &#34; תחת הכרטיסיה ידרשו בחר &#34; מצב ערוץ &#34;, &#34; מסלול יחיד &#34; כדי להעריך את fluorophore של יחיד או &#34; רב המסלול &#34; עבור מספר fluorophores. בחר את הלהקה המתאים-לעבור מסננים תואמים את fluorophore (למשל, 560 כדי 615 ננומטר מסנן לעבור הלהקה dox ו Dox-NP; ראה התוצאות נציג לקבלת דוגמאות נוספות). בחרו בערוץ שדה בהיר אחד של המסילה.</li>
	<li>להגדיר את הפקד סריקה באמצעות לחיצה על &#34; סרוק &#34; תחת הכרטיסיה ידרשו להגדיר גודל המסגרת (1,024 x 1,024), מהירות סריקה (אופטימלי), לסרוק כיוון (8 סיביות, יחיד), ולאחר סרוק ממוצע (4) על-ידי לחיצה &#34; מצב. &#34; להגדיר את חריר (200 מיקרומטר), לזכות והיסט ( למשל, 580 700, 835; ראה איור 3), לייזר כוח (488 = 10%, 543 = 100%, 633 = 100%) על ידי לחיצה &#34; ערוצים. &#34;</li> <li>לשמור הגדרות אלה על-ידי לחיצה על &#34; Config &#34; בתצורה טאב ולשמור אותם במסד הנתונים של התצורה.</li>
	<li>להגדיר מואץ על ידי לחיצה &#34; X זמן רב &#34; ( איור 1D) היחידים מאקרו לחץ &#34; יחיד מיקום &#34;.</li>
	<li>לשמור את התאים בפוקוס, בחר את הפוקוס האוטומטי המאקרו על-ידי לחיצה על &#34; פוקוס אוטומטי. &#34; 
	הערה: פוקוס אוטומטי מושגת עם 633 ננומטר לייזר באמצעות ההשתקפות של הזכוכית כנקודת התייחסות.</li>
	<li>להחיל את התצורה שנשמרה על-ידי לחיצה על &#34; מסלול יחיד &#34; או &#34; רב המסלול, &#34; גלילה לתצורה הנדרשת במסד הנתונים של התצורה, הגדרת את מרווח הזמן (למשל, 15 דקות), מספר סריקות (למשל, 97), לחיצה על &#34; טען Config. &#34; הערה: באמצעות הגדרות אלה, זמן-סדרת 97 x 15 min = 24 שעות ייעשה.</li>
	<li>שם מואץ ב &#34; שם קובץ בסיס &#34;, בחר את מסד הנתונים (שנעשתה בשלב 3.11) על ידי לחיצה &#34; בסיס הנתונים של תמונת &#34; לשמירת מואץ. להגדיר תיקייה זמנית על-ידי לחיצה על &#34; Tmp תמונת התיקיה. &#34; הערה: אם המערכת מפסיקה או קורסת מכל סיבה שהיא, התמונות ממוקמים בתיקיה זו.</li>
	<li>פתח את יחידת ומוכנסות, הרם את הטבעת הדמיה, להוסיף טיפה של שמן טבילה המטרה, וסגור את יחידת מהר ככל האפשר. להתמקד ולבחור עמדה בבית הבליעה הדמיה- 
	הערה: עמדה זו מכילה תאים טפט, עם מינימום של 70% confluency, המאפשר ההדמיה של תאים בודדים.</li>
	<li>לבדוק את הגדרות התצורה עבור הרקע ולתקן במידת הצורך. 
	הערה: ניתן לתקן את הרקע על-ידי הפחתת הכוח רווח או לייזר. כל שינוי בתצורה צריך להינצל (ראה שלב 3.17) והוא טעון (ראה שלב 3.18) שוב במאקרו.</li>
	<li>ב זרימה שכבתית cabinet, לדלל סמים חינם או חלקיקים ריכוז סמים µg/mL 5 או µmol 0.05 של ליפידים במדיום התרבות תאים. לסנן דרך מסנן מזרק 0.22-מיקרומטר אם הסמים/חלקיקים אינם סטריליים.</li>
	<li>פתח את התא ומוכנסות, הרם את המכסה איטום, להסיר את המדיום של התאים, להוסיף 1 מ"ל של סמים מדולל/חלקיקים, וסגור את יחידת מהר ככל האפשר.</li>
	<li>מתמקדים התאים ואת ההתחלה מואץ על ידי לחיצה &#34; שעת התחלה &#34; במאקרו X זמן רב.</li>
	<li>לבדוק באופן קבוע כדי לראות אם התאים נמצאים עדיין בפוקוס או להשתמש את פוקוס אוטומטי (ראה שלב 3.16). התוכנית שומר באופן אוטומטי מואץ במסד הנתונים; לא לסגור את מסד הנתונים בעת הפעלת התוכנית.</li>
</ol> 4. ניתוח נתונים <ol><li>בהתאם שאלת המחקר המקורי, להשתמש בתוכנות כגון ImageJ לניתוח נתונים (עיין בסעיף התוצאות לדוגמאות).</li></ol>

<ol><li>Duggan, S. T., Keating, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pegylated+liposomal+doxorubicin%3A+a+review+of+its+use+in+metastatic+breast+cancer%2C+ovarian+cancer%2C+multiple+myeloma+and+AIDS-related+Kaposi%27s+sarcoma%5BTitle%5D)+AND+%22Drugs%22%5BJournal%5D)">Pegylated liposomal doxorubicin: a review of its use in metastatic breast cancer, ovarian cancer, multiple myeloma and AIDS-related Kaposi's sarcoma.</a> Drugs. 71 (18), 2531-2558 (2011).</li>
<li>Gabizon, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+circulation+time+and+enhanced+accumulation+in+malignant+exudates+of+doxorubicin+encapsulated+in+polyethylene-glycol+coated+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Prolonged circulation time and enhanced accumulation in malignant exudates of doxorubicin encapsulated in polyethylene-glycol coated liposomes.</a> Cancer Res. 54 (4), 987-992 (1994).</li>
<li>Ten Hagen, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-dose+tumor+necrosis+factor-alpha+augments+antitumor+activity+of+stealth+liposomal+doxorubicin+%28DOXIL%29+in+soft+tissue+sarcoma-bearing+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Low-dose tumor necrosis factor-alpha augments antitumor activity of stealth liposomal doxorubicin (DOXIL) in soft tissue sarcoma-bearing rats.</a> Int J Cancer. 87, 829-837 (2000).</li>
<li>Hoving, S., Seynhaeve, A. L., van Tiel, S. T., Eggermont, A. M., Ten Hagen, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Addition+of+low-dose+tumor+necrosis+factor-alpha+to+systemic+treatment+with+STEALTH+liposomal+doxorubicin+%28Doxil%29+improved+anti-tumor+activity+in+osteosarcoma-bearing+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anticancer+Drugs%22%5BJournal%5D)">Addition of low-dose tumor necrosis factor-alpha to systemic treatment with STEALTH liposomal doxorubicin (Doxil) improved anti-tumor activity in osteosarcoma-bearing rats.</a> Anticancer Drugs. 16 (6), 667-674 (2005).</li>
<li>Gabizon, A. A., Lyass, O., Berry, G. J., Wildgust, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+safety+of+pegylated+liposomal+doxorubicin+%28Doxil%2FCaelyx%29+demonstrated+by+endomyocardial+biopsy+in+patients+with+advanced+malignancies%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Invest%22%5BJournal%5D)">Cardiac safety of pegylated liposomal doxorubicin (Doxil/Caelyx) demonstrated by endomyocardial biopsy in patients with advanced malignancies.</a> Cancer Invest. 22 (5), 663-669 (2004).</li>
<li>Muggia, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposomal+encapsulated+anthracyclines%3A+new+therapeutic+horizons%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Oncol+Rep%22%5BJournal%5D)">Liposomal encapsulated anthracyclines: new therapeutic horizons.</a> Curr Oncol Rep. 3 (2), 156-162 (2001).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Triggered+content+release+from+optimized+stealth+thermosensitive+liposomes+using+mild+hyperthermia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Triggered content release from optimized stealth thermosensitive liposomes using mild hyperthermia.</a> J Control Release. 143 (2), 274-279 (2010).</li>
<li>Lu, T., Lokerse, W. J., Seynhaeve, A. L., Koning, G. A., ten Hagen, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formulation+and+optimization+of+idarubicin+thermosensitive+liposomes+provides+ultrafast+triggered+release+at+mild+hyperthermia+and+improves+tumor+response%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Formulation and optimization of idarubicin thermosensitive liposomes provides ultrafast triggered release at mild hyperthermia and improves tumor response.</a> J Control Release. 220, 425-437 (2015).</li>
<li>Seynhaeve, A. L., Dicheva, B. M., Hoving, S., Koning, G. A., Ten Hagen, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intact+Doxil+is+taken+up+intracellularly+and+released+doxorubicin+sequesters+in+the+lysosome%3A+Evaluated+by+in+vitro%2Fin+vivo+live+cell+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Intact Doxil is taken up intracellularly and released doxorubicin sequesters in the lysosome: Evaluated by in vitro/in vivo live cell imaging.</a> J Control Release. 172 (1), 330-340 (2013).</li>
<li>Dicheva, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cationic+Thermosensitive+Liposomes%3A+A+Novel+Dual+Targeted+Heat-Triggered+Drug+Delivery+Approach+for+Endothelial+and+Tumor+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Cationic Thermosensitive Liposomes: A Novel Dual Targeted Heat-Triggered Drug Delivery Approach for Endothelial and Tumor Cells.</a> Nano Lett. 13 (6), 2324-2331 (2012).</li>
<li>Brouckaert, P. G., Leroux-Roels, G. G., Guisez, Y., Tavernier, J., Fiers, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+anti-tumour+activity+of+recombinant+human+and+murine+TNF%2C+alone+and+in+combination+with+murine+IFN-gamma%2C+on+a+syngeneic+murine+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">In vivo anti-tumour activity of recombinant human and murine TNF, alone and in combination with murine IFN-gamma, on a syngeneic murine melanoma.</a> Int J Cancer. 38 (5), 763-769 (1986).</li>
<li>Van Muijen, G. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigen+expression+of+metastasizing+and+non-metastasizing+human+melanoma+cells+xenografted+into+nude+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Exp+Metastasis%22%5BJournal%5D)">Antigen expression of metastasizing and non-metastasizing human melanoma cells xenografted into nude mice.</a> Clin Exp Metastasis. 9 (3), 259-272 (1991).</li>
<li>Das, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+TIMP3+expression+affects+tumor+progression+and+angiogenesis+in+melanomas+through+regulation+of+directionally+persistent+endothelial+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Angiogenesis%22%5BJournal%5D)">Differential TIMP3 expression affects tumor progression and angiogenesis in melanomas through regulation of directionally persistent endothelial cell migration.</a> Angiogenesis. 17 (1), 163-177 (2013).</li>
<li>Brouckaert, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+necrosis+factor-alpha+augmented+tumor+response+in+B16BL6+melanoma-bearing+mice+treated+with+stealth+liposomal+doxorubicin+%28Doxil%29+correlates+with+altered+Doxil+pharmacokinetics%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Tumor necrosis factor-alpha augmented tumor response in B16BL6 melanoma-bearing mice treated with stealth liposomal doxorubicin (Doxil) correlates with altered Doxil pharmacokinetics.</a> Int J Cancer. 109 (3), 442-448 (2004).</li>
<li>Chen, V. Y., Posada, M. M., Zhao, L., Rosania, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+doxorubicin+efflux+from+the+nucleus+of+drug-resistant+cancer+cells+following+extracellular+drug+clearance%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Rapid doxorubicin efflux from the nucleus of drug-resistant cancer cells following extracellular drug clearance.</a> Pharm Res. 24 (11), 2156-2167 (2007).</li>
<li>Parslow, A., Cardona, A., Bryson-Richardson, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sample+drift+correction+following+4D+confocal+time-lapse+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Sample drift correction following 4D confocal time-lapse imaging.</a> J Vis Exp. (86), (2014).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mild+hyperthermia+triggered+doxorubicin+release+from+optimized+stealth+thermosensitive+liposomes+improves+intratumoral+drug+delivery+and+efficacy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Mild hyperthermia triggered doxorubicin release from optimized stealth thermosensitive liposomes improves intratumoral drug delivery and efficacy.</a> J Control Release. 168 (2), 142-150 (2013).</li>
<li>Pedrosa, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+intracellular+Doxorubicin+delivery+through+nanoliposomes+equipped+with+selective+tumor+cell+membrane+permeabilizing+short-chain+sphingolipids%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Improving intracellular Doxorubicin delivery through nanoliposomes equipped with selective tumor cell membrane permeabilizing short-chain sphingolipids.</a> Pharm Res. 30 (7), 1883-1895 (2013).</li>
<li>Pedrosa, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-chain+glycoceramides+promote+intracellular+mitoxantrone+delivery+from+novel+nanoliposomes+into+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Short-chain glycoceramides promote intracellular mitoxantrone delivery from novel nanoliposomes into breast cancer cells.</a> Pharm Res. 32 (4), 1354-1367 (2015).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

כפי שנצפו בעבר, קיבוע יכול להרוס liposomal nanocarriers כמעט מיד, חייה של DXR שוחררה טופס אלה נהרסה ליפוזומים עדיין היה לי זמן להיכנס לגרעין, שהופך את הפרשנות של נתונים קשה מאוד אפילו מטעה. עם כמה שינויים מיקרוסקופיים, גורל כימותרפיות חיים תאים ורקמות ניתן באופן שגרתי ייבדקו כדי לאשר או להפיל את התצפיות היסטולוגית. עיתון האחרונות הראו את ספיגת שחרור, לוקליזציה של חייה של DXR בתאים לטפל בעזרת dox בחינם, שעברו אנקפסולציה באמצעות הדמיה בצילום מואץ לחיות תאים9. עבודה זו מתארת את הגדרת הניסוי בפירוט רב יותר. באמצעות מודל זה, אפשרי לדמיין את הובלת מיידית dox את הגרעין, איפה זה ברציפות מצטבר עד התא ימות בסופו של דבר. לעומת זאת, כאשר נעשה שימוש Dox-NP, רק כמויות קטנות של dox המשוחררים נמצאים בגרעין. למרות חשיפה מתמשכת תוצאות הצטברות חייה של DXR רציפה, האות פלורסנט הוא נמוך בהרבה ב Dox-NP-לעומת תאים שטופלו dox, המציין הבדל ריכוז הסלולר לבין cytotoxicity הבאים. יתר על כן, באמצעות סמנים לחיות תאים, זה הוצג, בעת חשיפת לתאים Dox-NP, חייה של DXR את nanocarrier ממוקמים על ליזוזום. אפשרות זו מציינת ליפוזום מלאה הוא נלקח על ידי התא ומדגים במעורבות מסלול endocytic במהלך ספיגת של חלקיקים אלה. חייה של DXR בגרעין ברור מן המשוחררים dox. באמצעות שיטה זו, כמו חייה של DXR והן המוביל לשפה משותפת ולא נראה להיות לכודים בתוך lysosomes, זאת עדיין חד משמעית אם זה עוברת אנקפסולציה או משוחרר dox. זה אפשרי כי יציבות פנימית ננו-חלקיק מונע שחרור dox כאשר מותאמים לשפה את ליזוזום.
ב פרוטוקול זה, הוכח הדמיה לחיות תאים באמצעות מלכודת מיקרוסקופיים ספציפי, בעל שלב בהזמנה אישית (המפרט יכול להיות נתון על פי בקשה). עם זאת, מייצרת מיקרוסקופ קונפוקלי ביותר מציעים מגוון רחב של חממות לבצע הדמיה לחיות תאים. שמירה על תנאי התרבות התא (כלומר, טמפרטורה, CO2, pH, לחות ו עקרות) הוא הקריטריון העיקרי של חממות אלה ואינה דורשת כמה בדיקות מקדימות כדי לקבוע את תנאים נאותים, אשר בהמשך מוסברת. גם יכולה להיות מועברת תוכניות רכישה אוטומטית נתונים באתר לפי יצרנים אותו. אפשרות "ריבוי מיקום" מאפשרת לך תמונה במספר תפקידים בבית הבליעה אותה, זיקוק ניתוח סטטיסטי. עם זאת, אפשרות זו בפקודת המאקרו שצוין בכתב היד מחייבת עמדות XYZ קבוע, לפיו האפשרות לתיקון Z-להיסחף אובד. סריקה Z-הממד יכולים להיכלל זה מאקרו, שימושים מוקד מטוס לניתוח. עם זאת, הדבר דורש סריקה נוספת, להגדיל את האפשרות של phototoxicity, הלבנת.
כמו עם כל המדידות פלורסנט, חשיפת יתר היא בעיה, במיוחד בעת השוואת שני מתחמים עם ספיגת הסלולר שונה. עוצמת פלורסנט אינה תלויה על האות מהותי של המתחם, אלא גם על קצב ספיגת, הריכוז, ואת הזמן חשיפה לסמים בלבד. כפי שמוצג באיור 3, גרעיני חייה של DXR תוכן של תאים שטופלו dox הוא כבר גלוי, ואילו אין אות נתפסת בתאים Dox NP-שטופלו. רק על ידי הגדלת הרווח את חייה של DXR בתאים Dox NP-שטופלו ניתן לאבחן, שמוביל חשיפת יתר בתאים שטופלו dox. יתר על כן, אפילו intracellularly, Dox-NP heterogeneously מופץ, אשר יכול לגרום נמנעת תחת- או חשיפת יתר. במיוחד כאשר חוקרים את מלכודת חייה של DXR הסלולר, הרווח צומצם באופן משמעותי כדי להבחין organelles בודדים (דמויות 5B ו- 5 C). לפיכך, המידות המיוצג על-ידי צפיפות פיקסלים חייבים להיות מלווים את התמונות נציג לפרשנות הראויה של תוצאות.
Phototoxicity, הלבנה, יחס אות לרעש נמוך הם גם נושאים חשובים במיקרוסקופ פלואורסצנטי, יש ליצור פשרה בין איכות התמונה ורכישת תמונות. עם זאת, גם כאשר ההגדרה של מיקרוסקופ תהיה אופטימלית, איכות התמונה גם במידה רבה נקבעת לפי האיכות של התאים, המתחם שנוספו. חייה של DXR נותן אות חזק, עם נעשים, הלבנת לא נצפתה, גם לאחר תקופות ארוכות יותר (עד 72 שעות). עם זאת, צמצום של האות פלורסנט יכול להיות גם תוצאה של בזרימת. בזרימת תופעה חשובה ההתנגדות סמים15 , מתרחשת כאשר התאים לשאוב התרופה מאתר תאיים של פעולה. ירידה של האות פלורסנט לאורך זמן ולכן ניתן גם תוצאה של dox בזרימת9. השוואה בין האות פלורסנט של מקום שאינו סרוקים בסוף הניסוי עם התמונה האחרונה מתוך הסדרה זמן לשגות תדגים הלבנת (קרי, האות יהיה גבוה יותר במיקום שאינו סרוקים) או בזרימת (קרי, שניכם אותות יהיו זהים). קיימות מספר אפשרויות הענישה (למשל, הרקע, סחיפה, הלבנה, וכו ') בתוכניות כמו ImageJ16. בנוסף, ככל האינטנסיביות פלורסנט לאורך זמן, הגדרות התצורה ניתן מראש הערכה בניסוי פיילוט כדי למזער חשיפת יתר בסוף זמן לשגות (השלב 3.21). לחלופין, ניתן להשתמש תא הדמיה עם תאים כבר נחשף לסם-בתקופה הרצויה כדי לאתחל את ההגדרות. לבסוף, עבור סוג זה של ניתוח, הסם ריכוזי (שלב 3.22) להימנע והקימו מראש באמצעות ביו-מבחני קונבנציונלי.
תאים תרבותי ומתוחזק באופן רציף במדיום בלי פנול אדום. פנול אדום שזוהר בחלק האדום של הספקטרום, יכול להיות שנצפו ב- organelles הסלולר, lysosomes ככל הנראה, הצגת מידע חיובי-false (שלב 1.2). כדי לאפשר פיקוח על תאים בודדים, תא זרימה לא יעלה על 70% (שלב 3.1.). CO2 הזרימה-המהירות (שלב 3.5) צריך להיות מוסדר בניסוי אימות כאשר נרכש הציוד או אחרי תחזוקה. כאשר המהירות גבוהה מדי, בינוני יתפוגג. כאשר המהירות נמוכה מדי, יגדיל ה-pH של המדיום, אשר יכולה להשפיע על גדילת התאים. המדיום הוא ללא השינויים אינדיקטור פנול אדום pH pH לא יכול להיות שנצפו, ולכן התעלמו בקלות. ברגע הזרם2 CO מאומת, הגדרות אלה יכול לשמש כל ניסויים עתידיים.
באמצעות השיטה המתוארת כאן, גורלו של חלקיקים יכול בקלות ייחקרו באמצעות הדמיה לחיות תאים ומיקרוסקופיה זמן לשגות. בהליך זה, שימשו חלקיקים זמינים מסחרית. עם זאת, גורל thermosensitive17, ליפוזומים cationic10; ליפוזומים מועשר shingolipids קצר-שרשרת18; חלקיקים לבצע סמים אחרים8,19 נחקרו גם באופן זה גידול, תאים נורמליים.

היכולת לעקוב אחר תהליך ביולוגי, כגון תאים תאים אינטראקציות, אינטר-תחבורה תאיים, ספיגת מתחם ציטוטוקסיות ואת אינטראקציית חלבון של מולקולות יחיד בתוך החיים תאים ורקמות, צברה עניין רב במהלך האחרון עשור, כפי שהיא מספקת המימד הנוסף של "בזמן אמת". כתב יד זה, מתוארת שיטה כדי לעקוב אחר גורלם תאיים dox חינם ו dox שולבו חלקיקים (Dox-NP).
חלקיקים שימשו במשך עשרות שנים לטיפול סרטן מסוימים. Dox-NP אושרה לטיפול סרקומה קפוסי הקשורות לאיידס, מתקדם השחלות, השד סרטן, מיאלומה נפוצה1. זה היה אחד של חלקיקים liposomal הראשון פיתח והציג בסביבה קלינית. הצורה החופשית, dox, מנוקה במידה רבה של מחזור הדם, הגבלת הקיבולת שלו כדי להגיע לאתר הגידול בכמויות מספיקות. יתר על כן, טיפול זה מלווה חמורה והגבלת מינון תופעות לוואי, כגון stomatitis ואי ספיקת לב. כאשר מקופל לתוך pegylated liposomal חלקיקים זרימת הזמן מגביר דקות ימים2. סוג זה של כולסטרול המכילים ליפוזום היא די יציבה, יציבות זו קובעת את פרמקוקינטיקה של התרופה במארז.
עם זאת, קשיחות זו יש חיסרון. היכולת ציטוטוקסיות של תרכובת לכיוון תאים סרטניים הוא הראשון הערכה במבחנה, הוכח ש-dox הזה הוא יותר חזק ממה Dox-NP בציטוטוקסיות מבחני3,4. זה היה שיערו כי היציבות של המוביל מונע שחרור, ספיגת הסלולר של הסם, כדאי לחקור את התופעה הזו עוד יותר. המאפיינים liposomal מהותי, נבנה אחרונה המרכיבים אגרסיביות בזרם הדם ולהגיע לאתר הגידול ללא פגע, גרמו הביולוגית לקוי של הרכיב ציטוטוקסיות (קרי: dox) באתר היעד (קרי, הגידול גרעין התא). למרות Dox-NP דיברת שיפור התגובה לעומת הצורה החופשית, זה היה עדיין בעל ערך קליני, כמו עטיפת הקטינה באופן משמעותי את ההשפעות cardiotoxic5. בשנים הבאות, תרכובות אחרות היו אנקפסולציה ננו-נשאים6. בנוסף, שינוי נשאים, גרמו סמים מופעלות שחרור (קרי, באתר הגידול) אך שמר על יציבות ב-7,זרימת הדם8. למרות שנים של חקירה, שימוש קליני, גורל intratumoral nanocarriers כמו Dox-NP עדיין לא ברורות לגמרי בפרסום האחרון, זה הוצג כי ננו-חלקיק הוא נלקח כולו בעוד dox נשאר לכוד ב lysosomes9.
ספיגת הסלולר של שחרור nanoparticle וסמים הם תהליכים דינאמיים שניתן בצורה הטובה ביותר לפקח עליהם באמצעות הדמיה לחיות תאים. יתר על כן, היסטולוגיה קלאסי, שבו תאים מודגרת, לאחר מכן קבועה, יכול לתת תוצאות שגויות אם הקיבעון הורס המוביל liposomal ומציג חפצים. הדרישה המרכזית הדמיה לחיות תאים הוא חזותי, רצוי על ידי קרינה פלואורסצנטית, של התהליך הרצוי. תרכובות מסוימות, כמו dox, יש של פלואורסצנטי אדום פנימי. כמו כן, סמני פלורסנט יכולה להיות מוחדרים המוביל, האברונים ניתן לאבחן באמצעות סמנים לחיות תאים. בדרך זו, מערך של פרמטרים, כמו ספיגת של המוביל, שחרור התרופה, לוקליזציה הסלולר של הספק ושל סמים, יכול להיות עם תמונה, מנותח. . הנה, שיטה מתואר שבו המערכת גורל dox ו Dox-NP בתאי הגידול במספר מלווה בזמן אמת. בנוסף, שיטה זו ניתן להתאים בקלות ליצור תנאים אידיאליים עבור ממוקד (למשל, טעונה חלקיקים10) ועורר שחרור התרופה (למשל, היפרתרמיה7).

<table><tbody><tr><td>DMEM (ללא פנול-אדום)</td><td>Sigma</td><td>D1145</td><td>בתוספת 1 מ"מ L-גלוטמין ו-10% FCS</td></tr><tr><td>טריפסין-וורסן (EDTA)</td><td>Lonza</td><td>BE17-161E</td><td></td></tr><tr><td>סרום עגל עוברי</td><td>Sigma</td><td>F7524</td><td>מושבת בחום למשך 30 דקות ב-55 & C</td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Lonza</td><td>BE17-605E</td><td></td></tr><tr><td>ג'לטין מעור בקר</td><td>Sigma</td><td>G9391</td><td>הכינו תמיסה של 0,1% ב-PBS,</td></tr><tr><td>תמיסת מלח פוספט סטרילית (PBS)</td><td>Sigma</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>Stericup 0,22 &micro; מסנן M - 500 מ"ל&nbsp;</td><td>Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td></td></tr><tr><td>טריפאן-כחול</td><td>סיגמא</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>תאים: לואיס קרצימיומה של ריאות</td><td>ATCC</td><td>CRL-1642</td><td></td></tr><tr><td>תאים: B16BL6</td><td>ד"ר פ. ברוקארט, אוניברסיטת גנט</td><td>תרם</td><td>Ref.10</td></tr><tr><td>תאים: BLM ו-1F6</td><td>ד"ר ואן מויג'ן, אוניברסיטת ניימיכן</td><td>תרם</td><td>Ref.11</td></tr><tr><td>פטרי צלחת</td><td>גריינר</td><td>664160</td><td></td></tr><tr><td>דוקסורוביצין</td><td>אקטביס&nbsp;</td><td></td><td>מוזכר כדוקס בכתב היד</td></tr><tr><td>Doxil/Caelyx</td><td>Janssen-Cilag</td><td></td><td>המוזכר כ-Dox-NP בכתב היד</td></tr><tr><td>מסנן מזרק 0.2 ומיקרו; m</td><td>VWR international</td><td>10462200</td><td></td></tr><tr><td>Lysotracker-green DND-26</td><td>Invitrogen</td><td>L7526</td><td>מוזכר כסמן ליוזומלי (LM)-ירוק בכתב היד</td></tr><tr><td>Lysotracker-red DND-99</td><td>Invitrogen</td><td>L7528</td><td>מוזכר כסמן ליוזומי (LM)-אדום בכתב היד</td></tr><tr><td>טבעת תאים Attofluor</td><td>Invitrogen</td><td>A7816</td><td></td></tr><tr><td>כיסוי זכוכית 25 מ"מ #1</td><td>תרמו מדעי</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CB00250RA1 מחזיק במה + מכסה איטום</td><td>בהתאמה</td><td></td><td></td>אישית</tr><tr><td>ZEISS LSM 510 מיקרוסקופ</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>תוכנה LSM 510 גרסה 3.2 SP2</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Image J</td><td>NIH</td><td></td><td>https://imagej.nih.gov/ij/index.html</td></tr></tbody></table>

שימוש במבחנה לחיות תאים הדמיה כדי לחקור chemotherapeutics מועברת על ידי חלקיקים המבוססת על שומנים בדם

Using In Vitro Live-cell Imaging to Explore Chemotherapeutics Delivered by Lipid-based Nanoparticles

טכניקות הדמיה שגרתיות יכול לספק מידע מפורט אודות תהליכים תאיים. עם זאת, מידע זה מבוסס על תמונות סטטיות בכל מערכת אחרת דינמי, שלבים רצופים בקלות להתעלם או שלא כהלכה. הדמיה לחיות תאים, מיקרוסקופ זמן לשגות, שבו תאים חיים יכול להיות בעקבות שעות או אפילו ימים באופן רציף יותר או פחות, ולכן הם מאוד אינפורמטיבי. הפרוטוקול המתואר כאן מאפשר החקירה על גורלם של חלקיקים כימותרפיות לאחר המסירה של דוקסורוביצין (dox) בתאים חיים. Dox הוא סוכן intercalating זה חייב להשתחרר מן nanocarrier שלה להיות פעילים ביולוגית. למרות רישומה קלינית במשך יותר משני עשורים, את ספיגת, התמוטטות, ושחרור סמים הם עדיין לא מובן במלואו. מאמר זה בוחן את ההיפותזה חלקיקים המבוססת על השומנים שנלקחה על ידי תאים סרטניים והשפילו הם לאט לאט. Dox שפורסמו אז translocated את הגרעין. כדי למנוע קיבוע חפצים, הדמיה לחיות תאים, מיקרוסקופ זמן לשגות, המתוארות בהליך זה ניסיוני, יכול להיות מיושם.

הדמיה לחיות תאים הוא כלי רב עוצמה כדי לחזות תהליכים דינאמיים. הבחינה של תאים קבוע מספק רק תמונות סטטיות, אשר יכול להוביל פירוש מוטעה ובלבול לגבי התהליך. עבודה זו מציגה שיטה ללמוד ספיגת התרופה שחרור, לוקליזציה תאיים של חלקיקים liposomal בתאים חיים.

שימוש במבחנה לחיות תאים הדמיה כדי לחקור Chemotherapeutics מועברת על ידי חלקיקים המבוססת על שומנים בדם

Conventional imaging techniques can provide detailed information about cellular processes. However, this information is based on static images in an ...

המטרה הכוללת של טכניקת דימות תאיים חיים זו היא לעקוב אחר תהליכים תאיים, כגון ספיגה והפצה של חומרים כימותרפויטיים, ללא צורך בקיבוע. שיטות אלו יכולות לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחום הסרטן, כגון: כיצד חומרים כימותרפויטיים, הן בצורה חופשית והן כאשר הם encapsulated בננו-חלקיקים, נספגים על ידי תאי גידול. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא העובדה שאנו מדמים תאים חיים, ובכך מונעים ארטיפקטים של קיבוע ומאפשרים הערכה דינמית בזמן אמת.הרעיון לשיטה זו עלה לראשונה כאשר הבחנו שננו-חלקיקים התפרקו במהלך הקיבוע, דבר שהוביל לפרשנות שגויה של הולכת התרופה. כדי להרכיב את תא ההדמיה, מקמו זכוכית כיסוי במידה של 25 מילימטר בחלק התחתון של התא והבריגו את החלק העליון אל החלק התחתון. אין להדק חזק מדי, שכן הזכוכית עלולה להישבר.בצעו עיקור באוטוקלבה לתא כולו. לצורך זריעת התאים, הוציאו את תא ההדמיה משקית הסטריליזציה בתוך מCabin Laminar Flow. הידקו בזהירות את התא והניחו אותו בתוך Petri Dish.צפו את זכוכית תא ההדמיה במיליליטר אחד של ג'לטין סטרילי בריכוז 0.1% למשך 20 דקות בטמפרטורה של 37 °C וב-5% Carbon Dioxide. לאחר הסרת המצע מבקבוקי תרבית התאים, שטפו את התאים פעם אחת עם 1x PBS ונתקו את התאים באמצעות Trypsin בריכוז 0.25%. נטרלו את ה-Trypsin על ידי הוספת מצע לתרבית תאים.לאחר מכן, אספו את התאים וסובבו אותם ב-1,100 Gs למשך חמש דקות. השביו את המשקע ב-5 mL של מצע לתרבית תאים. לאחר ספירת התאים כפי שמתואר בפרוטוקול הכתוב, שאבו את הג'לטין והעבירו את התאים לצלוחית בדילול המאפשר כיסוי מקסימלי של 70% תוך 24 שעות.אפשרו לתאים להיקשר ב-5% Carbon Dioxide ובטמפרטורה של 37 °C למשך 24 שעות. בצעו הערכה של התאים תחת מיקרוסקופ כדי לבדוק התלכדות (confluency), מורפולוגיה תאית וזיהום. לאחר מכן, הפעילו את המיקרוסקופ הקונפוקאלי, את התאורה הפלואורסצנטית ואת המחשב.חברו את מחמם העדשה לעדשה וחממו אותה ל-35 מעלות. הכינו את יחידת האינקובציה כפי שמוצג בפרוטוקול הכתוב. הניחו את יחידת האינקובציה על במת המיקרוסקופ וחברו את צינורות הכניסה והיציאה של ה-Carbon Dioxide.פתחו את שסתום הפחמימה הראשי והפעילו את בקר הפחמימה. ודאו שהבקר מוגדר לחמישה אחוזים של Carbon Dioxide. תנאי תרבית תאים נאותים כגון טמפרטורה, CO2, pH, לחות וסטריליות הם קריטיים להדמיית תאים לטווח ארוך.לכן, יש לבחון כראוי כל אינקובטור. הגדירו את טמפרטורת הבמה ל-37 °C. המתינו עד שיחידת האינקובציה תגיע לטמפרטורה ולאחוז ה-Carbon Dioxide שנבחרו.הוציאו את תא הדימוג מהאינקובטור הראשי של פחמן דו-חמצני והעבירו את התא בתוך צלחת פטרי לחדר המיקרוסקופיה. הניחו את תא הדימוג במחזיק במה ייעודי בעל קוטר של 35 millimeter וסגרו את התא בעזרת מכסה איטום ייעודי. פתחו את יחידת האינקובציה, ובצעו את הפעולות במהירות רבה ככל האפשר כדי למנוע קירור של התאים; החליפו את הרפידה האדומה בתא הדימוג ולאחר מכן סגרו את היחידה.וודאו שאין כבלים שנתקעו בין הבמה לבין המיקרוסקופ. השאירו את היחידה להסתגל לטמפרטורה למשך 30 דקות. לאחר מכן, פתחו את התוכנה והפעילו את הלייזר.צור מסד נתונים חדש על ידי לחיצה על "New" תחת לשונית File. תן שם למסד הנתונים ושמור אותו. הגדר את הקונפיגורציה על ידי לחיצה על "Config" תחת לשונית Acquire.בחר ב-Channel Mode "וב-Single Track" כדי להעריך פלואורופור בודד. בחר ב-Multi Track עבור מספר פלואורופורים. לאחר מכן, בחר את מסנני ה-band-pass המתאימים, התואמים לפלואורופור.בחר את ערוץ השדה בהיר (bright field) באחד המסלולים. הסריקה נפגעת מהאיזון בין האות הפלואורסצנטי של התרכובות לבין איכות התמונה. חשיפת יתר, פוטובליצ'ינג (photobleaching), יחס אות לרעש, איכות התאים והתרכובות שהתוספו הם כולם גורמים שיכולים להשפיע על התוצאות ויש לבחון אותם כראוי.הגדירו את בקרת הסריקה על ידי לחיצה על "Scan" תחת לשונית ה-Acquire. לאחר מכן, לחצו על "Mode" כדי להגדיר את גודל הפריים, מהירות הסריקה, כיוון הסריקה וממוצע הסריקה. לחצו על "Channels" כדי להגדיר את ה-Pinhole, את ה-Gain וה-Offset, ואת הספק הלייזר.שמרו הגדרות אלו על ידי לחיצה על "Config" בלשונית ה-Configuration ושמרו אותן במסד נתוני ה-Configuration. הגדירו את צילום השזרירה (time-lapse) על ידי לחיצה על "Muti TimeX" בלשונית ה-Macro. לחצו על Single Location.החיל את התצורה השמורה על ידי לחיצה על Single Track וגלול לתצורה הדרושה במסד נתוני התצורות (Configuration database). הגדר את מרווח הזמן ואת מספר הסריקות. טען את התצורה על ידי לחיצה על Load Conf.נקוב בשם עבור סדרת הצילומים (time-lapse) בשדה שם קובץ הבסיס (Base File Name) ובחר את מסד הנתונים על ידי לחיצה על "Image Data Base" כדי לשמור את סדרת הצילומים. הגדר תיקייה זמנית על ידי לחיצה על "Temporary Image Folder". לאחר מכן, פתח את יחידת האינקובציה, הרם את טבעת הדימות, הוסף טיפה של שמן טבילה (Immersion Oil) לעדשה, וסגור את היחידה במהירות האפשרית. בצע פוקוס ובחר מיקום בתא הדימות.בתוך תא הזרימה הלמינרית, דללו תרופה חופשית או ננו-חלקיקים בריכוז של 5 µg/mL של התרופה או 0.05 µmol של ליפידים במצע לתרביות תאים. סננו באמצעות מסנן מזרק של 0.22 מיקרון אם התרופה או הננו-חלקיקים אינם סטריליים. פתחו את תא הדגירה והרימו את המכסה העליון.לאחר מכן, הסירו את המצע מהתאים, הוסיפו 1 mL של תרופה מדוללת או ננו-חלקיקים, וסגרו את היחידה במהירות המרבית. התמקדו בתאים ובצעו סריקה מהירה על ידי לחיצה על "Single" בלשונית Scan Control. כאשר תמונת השדה המואר (bright field) מראה תאים ממוקדים, התחילו את צילום הש czasie (time-lapse) על ידי לחיצה על "Start Time" במאקרו Multi TimeX.מספר החזרות והזמן שנותר מוצגים במקרו ובבתמונות. יש לבדוק באופן סדיר אם התאים עדיין נמצאים במיקוד, או להשתמש באוטופוקוס (Autofocus). התוכנה שומרת באופן אוטומטי את סרטון ה-time-lapse במסד הנתונים.אין לסגור את מסד הנתונים בעוד התוכנית פועלת. זהו סרטון Time-lapse של שלוש שעות של תאים שנחשפו ל-Doxorubicin חופשי. שימו לב לספיגה ולמעבר המיידי של Doxorubicin פלואורסצנטי אדום לגרעין.כאן, התאים מדגגרים למשך שלוש שעות עם Doxorubicin encapsulated. האות הפלואורסצנטי נמוך בהרבה וממוקם בציטופלזמה. האות בקושי נראה בגרעין התא.בעקביות עם העברת סרטי Time-lapse אלו ל-Image J, ניתן לסמן אזור עניין (ROI) סביב הגרעין ולמדוד את צפיפות הפיקסלים. הגרף המוצג כאן מראה את ההבדל בספיגה הגרעינית לאורך זמן בתאים שדגרו עם Doxorubicin חופשי או כזה העטוף בקפסולות. מוצגים כאן תאים שדגרו עם Doxorubicin עטוף, המסומנים בצבע אדום.האות הסגולה מייצגת את הנשא, והליזוזומים צבועים במסמן ירוק לתאי חיים. השוואה בין שני סוגי התאים מראה הבדל בפיזור הליזוזומי. הליזוזומים בתאי B16BL6 מפוזרים ברחבי הציטופלזמה.בעוד שליזוזומים בתאי BLM ממוקמים קרוב לגרעין, שניים מסלולי התאים מראים קולוקליזציה גבוהה של סיגנל אדום וסגול בליזוזומים, המעידה על כך ש-Doxorubicin והנשא שלו כלואים באברונים אלה. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיו בעלי הבנה טובה לגבי האופן שבו ניתן לדמות את הספיגה של סוכני כימותרפיה ומרקרים פלואורסצנטיים אחרים בתאים חיים למשך מספר שעות או אפילו ימים.

using-vitro-live-cell-imaging-to-explore-chemotherapeutics-delivered

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

אנו מציגים גישה חדשנית לכמת לוקליזציה nanoparticle ב vasculature של גידולים xenografted אנושי באמצעות דינמי, בזמן אמת הדמיה intravital במודל העובר העופות.

הערכה של ספיגת nanoparticle ב גידולים בזמן אמת באמצעות הדמיה Intravital

חלקיקים נגיפיים צמח (VNPs) מבטיחים פלטפורמות ליישומים ביו. כאן, אנו מתארים את ההליכים להתפשטות צמח VNP, טיהור, אפיון, וbioconjugation. לבסוף, אנו מראים את היישום של VNPs לביות והדמית גידול תוך שימוש במודל עכבר xenograft ודימות פלואורסצנטי.

חלקיקים נגיפיים עבור<em&gt; בחי</em&gt; הדמית גידול

אנו מתארים שיטה לתגובת הדמיה לטיפול נגד...

חי הדמיה של תגובות סמים בmicroenvironment הגידול במודלים עכבריים של סרטן השד

השימוש בפלואורופורים להדמיה in vivo יכול להיות מוגבל מאוד על ידי אופסוניזציה, פינוי מהיר, רגישות זיהוי נמוכה והשפעות ציטוטוקסיות על המארח. אנקפסולציה של פלואורופורים בליפוזומים על ידי הידרציה ואקסטרוזיה מובילה לכיבוי והגנה פלואורסצנטיים המאפשרים הדמיה in vivo עם רגישות גילוי גבוהה.

הקרינה-מרווה של Fluorophore הקרוב אינפרא אדום-כמוס liposomal ככלי ל In vivo דימות אופטי

מחקרים של ביומולקולות in vivo חיוניים להבנת תפקוד מולקולרי בהקשר ביולוגי. כאן אנו מתארים שיטה חדשה המאפשרת הפנמה של ביומולקולות פלואורסצנטיות, כגון DNA או חלבונים, למיקרואורגניזמים חיים. ניתוח נתונים in vivo שנרשמו על ידי מיקרוסקופיה פלואורסצנטית מוצג ונדון גם כן.

הפנמה והתבוננות של פלורסנט מולקולות ביולוגיים במיקרואורגניזמים שחיים דרך Electroporation

ננו-חלקיק גביש נוזלי (LCNP) nanocarrier מנוצלת ככלי עבור במסירה מבוקרת של מטען הידרופובי אל קרום הפלזמה של תאים חיים.

משלוח הממברנה ממוקד על Encapsulated מטענים הידרופובי בנושאת Nanoparticle קריסטל נוזלת

ההבנה הלקויה של הביצועים in vivo של ננו-תרופות מעכבת את התרגום הקליני שלהן. נהלים להערכת ההתנהגות in vivo של ננו-תרופות לסרטן ברמה מערכתית, רקמתית, חד-תאית ותת-תאית בעכברים בעלי יכולת חיסונית נושאי גידול מתוארים כאן. גישה זו עשויה לסייע לחוקרים לזהות ננו-תרופות מבטיחות לסרטן לתרגום קליני.

נוהל מקיף כדי להעריך את<em&gt; In vivo</em&gt; ביצועים של סרטן ננו-רפואה

הדמיה לחיות תאים מספק שפע של מידע על תאים בודדים או באוכלוסיות שלמות כי הוא בלתי ניתן להשגה על-ידי תא קבוע הדמיה לבד. כאן, מתוארים פרוטוקולי הדמיה לחיות תאים כדי להעריך את החלטות גורל התא לאחר הטיפול עם פקליטקסל סמים אנטי mitotic.

לטווח ארוך לחיות תאים הדמיה כדי להעריך את גורל בתגובה פקליטקסל

כאן נתאר פרוטוקול לדור של cationic nanoliposomes, אשר מבוססת על שיטת יבש-סרט והוא יכול לשמש עבור הכספת, אספקה יעילה של במבחנה עיבד RNA שליח.

דור של Cationic Nanoliposomes למסירה יעיל של במבחנה עיבד RNA שליח

מטרת פרוטוקול זה היא לסנתז ליפוזומים בעלי תווית פלואורסצנטית ולהשתמש בציטומטריית זרימה כדי לזהות לוקליזציה in vivo של ליפוזומים ברמה התאית.

הכנה, מתן והערכה של ספיגה תאית ספציפית לרקמת in vivo של ליפוזומים בעלי תווית צבע פלואורסצנטי

כאן מוצג פרוטוקול לניסוח ננו-חלקיקי שומנים (LNPs) המכילים mRNA המקודד לוציפראז גחלילית. LNPs אלה נבדקו על עוצמתם במבחנה בתאי HepG2 ו-in vivo בעכברי C57BL/6.

בדיקת יעילות In Vitro ו-In Vivo של ננו-חלקיקי mRNA-ליפידים שנוסחו על ידי ערבוב מיקרופלואידי

חקור שיטת הדמיית תאים חיים לניטור קליטה והפצה של סוכני כימותרפיה בזמן אמת. שיטה זו מונעת שיבושי קיבוע ומאפשרת הערכה דינמית של מנגנוני משלוח תרופות בתאי גידול.

שימוש במבחנה לחיות תאים הדמיה כדי לחקור Chemotherapeutics מועברת על ידי חלקיקים המבוססת על שומנים בדם

גלה סרטונים נוספים