Name: פרוטוקול מעקב וידאו מסך ההרתעה Chemistries עבור דבורים דבש (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 19 s
Description: למדו פרוטוקול מעקב וידאו לבחינת כימיקלים מרתיעים בדבורי דבש Apis mellifera L. השיטה מאפשרת סינון מהיר של תרכובות המרחיקות דבורים ממקורות מזון, ותומכת בפיתוח אסטרטגיות להגנת מ pollinators מפני חומרי הדברה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

ברצוננו להודות לד&quot;ר תומאס קוהר על השימוש בתוכנות מעקב ויזואליות. אנו מודים ג&#39;יימס וילסון וסקוט אוניל על העזרה הטכנית שלהם.

1. הכן קוביות סוכר agarose <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול את 8 גרם של סוכר ומכניסים לתוך בקבוק 50 מ&quot;ל Erlenmeyer. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממלאים את בקבוק Erlenmeyer עם 20 מ&quot;ל של מים מיונן. ממיסים את הסוכר על ידי swirling את הבקבוק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול 170 מ&quot;ג של agarose ולהוסיף אותו לפתרון הסוכר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחממים את פתרון הסוכר agarose במיקרוגל גבוה עבור 25 s. ממיסים את agarose לתוך פתרון הסוכר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר את הבקבוק ואת פתרון סוכר agarose להתקרר. הערה: הבקבוק צריך להיות מגניב למגע, אבל לא מאפשרים את הפתרון כדי לחזק. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להכין קוביית סוכר agarose לטיפול בשליטה, יוצקים את הפתרון למחצה סוכר- agarose סוכר לתוך עובש סירה שוקל. הערה: במשקל סירה עובש יש את הממדים 1.5 x 1.5 x 0.3 ס&quot;מ 3 . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להכין קוביית סוכר- agarose המתחם לטיפול דוחה, להוסיף את הכמות הרצויה של המתחם לפתרון חצי מקורר ( למשל , 1% DEET באגר-agarose פתרון (v / v)). מערבולת את הבקבוק לערבב את המתחם ולאחר מכן לשפוך את הפתרון לתוך עובש סירה שוקל. הערה: שמונה תבניות שליטה ושמונה תבניות בדיקה יהיה מוכן בשלב זה. תבניות בקרה אינן מכילות דוחה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מגניב את קוביות סוכר agarose בתבניות במקרר 5-10 דקות. הסר את קוביות סוכר agarose מוצק מן שקילה סירות עובש ומכניסים אותם לתוך מיכל פלסטיק עם מגבת נייר לחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המיכלים למקרר לאחסון. קוביות סוכר agarose יש להשתמש תוך 7 ימים של הכנה. </li></ol> 2. תכנות תוכנת מעקב וידאו והתקנה ניסיונית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תחת הגדרות ניסוי בסרגל Explorer אקספלורר (בתוכנת המעקב, ראה טבלת חומרים), הממוקם בצד שמאל של המסך, ודא כי המצלמה הנכונה נבחרה וכי הקלטת וידאו מרוכז על זירות צלחת פטרי.<ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם הקלטת הווידאו צריכה להיות מרוכזת, להיכנס להגדרות של המצלמה תחת בקרות AOI ובחר את מרכז X ואמצע Y אפשרויות. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תחת הגדרות ניסוי, שנה את מספר הזירות ל -16. תחת תכונות מעקב, בחר באפשרות איתור נקודות מרכזיות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר הגדרות ארנה כדי להגדיר את הזירה הרצוי assay. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את 16 צלחות פטרי בדפוס 4 x 4 על גבי תיבת אור, ממוקם מתחת למצלמה ( איור 1 ). הערה: כלים אלה משמשים ליצירת זירה הקלטה ריקים. </li></ol></li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/55603/55603fig1.jpg" /> איור 1: הסדר צלחת פטרי על תיבת האור. צלחות פטרי מסודרות בבלוק בגודל 4 x 4 מעל תיבת האור. סידור זה מספק זיהוי קל של טיפולי הבקרה והדוחה עבור vפרוטוקול מעקב אחר. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="4" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ב ארנה הגדרות, להשתמש בלחצן רקע לתפוס, הממוקם על לוח בצד ימין, כדי לצלם תמונה של 16 צלחות פטרי. זה ישמש את התבנית כדי להגדיר את הזירה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;צור אליפסה&quot; מסרגל הכלים בחלק העליון של המסך הגדרות ארנה וליצור עיגול התואם את הקוטר של אחד צלחות פטרי בתמונה תפס. מניחים את סמן ארנה 1 לתוך המעגל ( איור 2 ). </li></ol><img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/55603/55603fig2.jpg" /> איור 2: צילום מסך של הגדרות הזיהוי של תוכנת המעקב החזותי. תצפית של פסים אלכסוניים בתוך המעגל מספק אישור של אזור איתור במעגל. א<html> אזור 1 סמן מסופק עבור כל ריבוע ומגדיר את אזור היעד עבור כל צלחת פטרי. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="6" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;אזור קבוצה 1&quot; הממוקם תחת Arena 1 בחלונית הכלי בצד ימין. בחר &quot;צור מלבן&quot; מסרגל הכלים בחלק העליון של המסך. צור ריבוע בגודל 30 x 30 פיקסלים באמצעות אותו ולאחר מכן הצב אותו במרכז המעגל שנוצר בשלב הקודם. בחר &quot;הוסף אזור&quot; מסרגל הכלים העליון ולאחר מכן לחץ באמצע הריבוע. הזז את סמן אזור 1 כך שהוא בכיכר. הערה: הכיכר שנוצרה היא אזור הזנה ואין זו דרישה שאזור ההזנה יהיה בדיוק באותו גודל כפי שרשום כל עוד הוא גדול מעט מקוביית הסוכר. </li></ol>Les / ftp_upload / 55603 / 55603fig3.jpg &quot;/&gt; איור 3: צילום מסך של הגדרות ארנה שהושלמו. הגדרות הזירה שהושלמו צריכות להיראות כמו בדוגמה זו. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="7" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;ארנה 1&quot; בחלונית כלי בצד ימין ולאחר מכן לחץ על זירה מלאה משוכפל. מהתפריט הנפתח בחר &quot;All Arenas&quot; ולאחר מכן לחץ על אישור. להעביר את setups זירה כפולות על מנות פטרי הנותרים בתמונה חטף (איור 3). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;Arena 1&quot; ולאחר מכן בחר &quot;כיול קנה מידה&quot; על סרגל הכלים העליון. צייר את קו כיול על פני קוטר של ארנה 1 צלחת פטרי. לשנות את המדידה בקוטר ל 9 ס&quot;מ (קוטר של צלחות פטרי בשימוש). בחר &quot;אימות הגדרות ארנה&quot; בחלונית הכלי בצד ימין. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;הגדרות איתור &quot;בשורת הבקרה בצד שמאל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;הגדרות זיהוי 1&quot; ולאחר מכן בחר &quot;גריי קנה מידה&quot; בתפריט הנפתח הממוקם בצד ימין תיבת הכלים. תחת זיהוי, להגדיר את טווח כך שהוא 0 עד 83 ( איור 4 א ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחץ לחיצה ימנית על &quot;הגדרות איתור&quot; ולעשות הגדרה חדשה בשם &quot;הגדרות זיהוי 2&quot;. ודא כי &quot;גריי אפור&quot; עדיין נבחר, אך לא לשנות את הפרמטרים האחרים. הערה: יהיו עיגולים גדולים צהוב בחלון הווידאו מעל הזירות. זה יסייע בהסדרת מנות פטרי לתפקידים הנכונים לפני ההקלטה ( איור 4 ב ). </li></ol><img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/55603/55603fig4.jpg" /> איור 4: צילום מסך של הגדרות הזיהוי 1 ו- 2. ( א ) מראה כיצד תיראה הזירה עם קנה המידה האפור שתוקן עבורדבש דבש נושא בצלחת פטרי. ( ב ) מציג את אזור הזירה זיהוי כך המיקום של מנות פטרי ניתן לעשות בין הניסויים. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="11" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;רשימת ניסיון&quot; בסייר ניסיוני ולחץ על &quot;הוסף משתנה&quot; בסרגל הכלים העליון. שם המשתנה המוגדר על ידי המשתמש כ&quot;טיפול &quot;. בחר בסרגל הנפתח &quot;ערכים מוגדרים מראש&quot; בעמודת הטיפול המוגדרת על ידי המשתמש והוסף C (control) ו- T (טיפול) כערכים מוגדרים מראש. בחר בלחצן &#39;הוסף ניסיונות&#39; הממוקם בסרגל הכלים העליון. הוסף שני ניסויים, ולאחר מכן עבור כל זירה לבחור אם היא זירת שליטה (C) או זירת הטיפול (T) ( איור 5 ). </li></ol><img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/55603/55603fig5.jpg" /> FiGure 5: תמונת מסך של רשימת המשפטים. תיוג הזירות נכון הוא חשוב כאן כמו התוכנית משתמשת במידע כאן כדי להפריד את הנתונים כדי לנתח את זה סטטיסטית. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="12" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;פרופיל נתונים&quot; בחלונית &#39;ניסוי Explorer&#39;. בעמודה השמאלית, בחר &quot;טיפול&quot; הממוקם תחת הכותרת &quot;משתנים עצמאיים המוגדרים על ידי המשתמש&quot;. פעולה זו תוסיף תיבת &quot;מסנן&quot; לאזור עם תרשים הזרימה. בחר &quot;C&quot; בתיבה המוקפצת ולאחר מכן למקם את המסנן החדש שנוצר בין תיבת &quot;התחל&quot; ו &quot;תוצאה 1&quot; התיבה. החצים תרשים זרימה צריך להתאים כך שהם נקודת מתוך תיבת ההתחלה למסנן ולבסוף לתוצאה 1. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלב 2.12, אולם הפעם בחר &quot;T&quot; עבור המסנן ולאחר מכן בחר&quot;תוצאה&quot; בקטע &quot;אלמנטים משותפים&quot;. העבר את הקופסאות שנוצרו לאחרונה לאזור תרשים זרימה וחבר את הקופסאות לחצים ( איור 6 ). </li></ol></li></ol><img alt="איור 6" src="/files/ftp_upload/55603/55603fig6.jpg" /> איור 6: צילום מסך של פרופיל נתונים. זה מראה כיצד תרשים זרימה צריך להיות מוגדר כדי לקבל את ההפרדה המתאימה בניתוח סטטיסטי. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55603/55603fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <ol start="13" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור את הקובץ. </li></ol> 3. איסוף דבש דבש אנשים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ללבוש בגדים מגן לבחור כוורת לאסוף דבורים דבש (בעיקר foragers). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הכיסוי החיצוני והפנימי של הכוורת. השתמש בכלי כוורת כדי לבחור מסגרת מתוך גוף הכוורת העליון שאינו מכיל צנרת.בעדינות להרים את המסגרת מתוך תיבת כוורת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את המסגרת של הדבורה המלכה דבש. אם היא לא שם, לטאטא את הדבורים דבש מן המסגרת לתוך מיכל להובלה. לאסוף מספיק אנשים כדי להיות מסוגל להפעיל שני ניסויים מלאים עבור כל מתחם להיבדק (16 אנשים מנוצלים לכל משפט עם שולטת). הערה: אנשים שנאספו צריך להיות בעיקר foragers; עם זאת, עשויים להיות אנשים אחרים בגילאי כגון דבורים אחות הכלולים באוסף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לרשום את הזמן שבו דבורים הדבש הוסרו. מעבירים אותם לתוך 9 ס&quot;מ x 7 ס&quot;מ x 9 ס&quot;מ תיבת פלסטיק המכילים חורים האוויר ומכניסים אותם לתוך חממה ב 32 ° C ו 70% לחות יחסית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרעיב את דבורי הדבש במשך 15 שעות. הערה: זה בדרך כלל עובד הכי טוב אם דבורים הדבש נאספים הערב לפני שנבדקו. </li></ol> 4. ביצוע Visual Assay מעקב <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את תוכנית המעקב החזותי ופתח את השמירהD קובץ ניסיוני שנוצר עבור assay זה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר &quot;הגדרות זיהוי 2&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים קוביות סוכר agarose סוכר למרכזי 8 של 16 צלחות פטרי. חזור על תהליך זה עם קוביות סוכר-agarose מתחם (הרתעה) קוביות 8 הנותרים מנות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש מלקחיים כדי להסיר דבש אחד דבש מהקופסה פלסטיק ומניחים אותו לאחד הכלים פטרי שליטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלב 4.4 עבור 15 מנות פטרי הנותרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את כל הכלים על תיבת האור וממקמים אותם כך אזור הזירה זיהוי (המוצג על מסך המחשב בעת הגדרת הגדרה 2 נבחר) להתאים לכל אחד זירות צלחת פטרי. להאיר את תיבת האור מלמטה על ידי מערך של נורות LED מוגדר הספקטרום האדום. הקיפו את כל התיבה ואת המצלמה עם סדין פלסטיק שחור לחסל את האור החיצוני ולהפחית צללים בתוך הזירות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר צלחות פטרי הוגדרו, ודא &quot;זיהוי הגדרות 1&quot; הוא- הגדרה שנבחרה. הערה: בשלב זה תוכנת מעקב ויזואלי צריך להיות להרים רק את דבש הדבש בתוך זירות צלחת פטרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר באפשרות &quot;רכישה&quot; מתוך סייר הניסוי. לחץ על הלחצן &quot;התחל ניסיון&quot; הירוק הממוקם בתיבה בקרת רכש מוקפץ בצד ימין כדי להתחיל להקליט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את assay במשך 10 דקות ולאחר מכן לחץ על כפתור &quot;עצור משפט&quot; האדום על בקרת רכישה pop up כדי לעצור את ההקלטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את האנשים מן הצלחות פטרי ומכניסים אותם לתוך מיכל נפרד, כך שהם לא נבדקו פעמיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבים 4.4-4.10 עבור המשפט השני על אותו מתחם. הערה: שיטה זו יכולה להיות שונה כדי להגדיל את מספר הדבש דבש לכל טיפול לפי הצורך על ידי המשתמש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר בסטטיסטיקה בסייר הניסוי ולאחר מכן לחץ על חשב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לייצא את הנתונים לתוכנות מנהל נתונים ולאחר מכן לנתח את הנתונים עבור משמעות באמצעות באמצעות אחד wAy ניתוח של שונות עם הבדיקה של Tukey שלאחר הבדיקה, ו unaired T- מבחן באמצעות תוכנה מועדפת סטטיסטית. </li></ol>

<ol><li>Gallai, N., Salles, J. M., Settele, J., Vaissière, B. E. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0921800908002942">Economic valuation of the vulnerability of world agriculture confronted with pollinator decline.</a> Ecol Econ. 68 (3), 810-821 (2009).</li>
<li>van Engelsdorp, D., Meixner, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+historical+review+of+managed+honey+bee+populations+in+Europe+and+the+United+States+and+the+factors+that+may+affect+them%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invertebr+Pathol%22%5BJournal%5D)">A historical review of managed honey bee populations in Europe and the United States and the factors that may affect them.</a> J Invertebr Pathol. 103, Suppl 1. S80-S95 (2010).</li>
<li>Aizen, M. A., Harder, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Global+Stock+of+Domesticated+Honey+Bees+Is+Growing+Slower+Than+Agricultural+Demand+for+Pollination%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biol%22%5BJournal%5D)">The Global Stock of Domesticated Honey Bees Is Growing Slower Than Agricultural Demand for Pollination.</a> Current Biol. 19 (11), 915-918 (2009).</li>
<li>Smith, K. M., Loh, E. H., Rostal, M. K., Zambrana-torrelio, C. M., Mendiola, L., Daszak, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogens%2C+Pests%2C+and+Economics+Drivers+of+Honey+Bee+Colony+Declines+and+Losses%5BTitle%5D)+AND+%22Ecohealth%22%5BJournal%5D)">Pathogens, Pests, and Economics Drivers of Honey Bee Colony Declines and Losses.</a> Ecohealth. 10, 434-445 (2014).</li>
<li>Mullin, C. A., Frazier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+Levels+of+Miticides+and+Agrochemicals+in+North+American+Apiaries%3A+Implications+for+Honey+Bee+Health%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">High Levels of Miticides and Agrochemicals in North American Apiaries: Implications for Honey Bee Health.</a> PLoS ONE. 5 (3), (2010).</li>
<li>Li, Y., Kelley, R. A., Anderson, T. D., Lydy, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+comparison+of+two+multi-residue+methods+for+the+analysis+of+select+pesticides+in+honey+bees%2C+pollen%2C+and+wax+by+gas+chromatography+-+quadrupole+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Talanta%22%5BJournal%5D)">Development and comparison of two multi-residue methods for the analysis of select pesticides in honey bees, pollen, and wax by gas chromatography - quadrupole mass spectrometry.</a> Talanta. 140, 81-87 (2015).</li>
<li>Kakumanu, M. L., Reeves, A. M., Anderson, T. D., Rodrigues, R. R., Williams, M. A., Williams, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Honey+Bee+Gut+Microbiome+Is+Altered+by+In-Hive+Pesticide+Exposures%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Honey Bee Gut Microbiome Is Altered by In-Hive Pesticide Exposures.</a> Front Microbiol. 7, 1-11 (2016).</li>
<li>Katz, T. M., Miller, J. H., Hebert, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insect+repellents%3A+Historical+perspectives+and+new+developments%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Acad+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Insect repellents: Historical perspectives and new developments.</a> J Am Acad Dermatol. 58 (5), 865-871 (2008).</li>
<li>Dickens, J. C., Bohbot, J. D. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0048357513000308">Mini review: Mode of action of mosquito repellents.</a> Pestic Biochem Phys. 106 (3), 149-155 (2013).</li>
<li>Lawrence, K. L., Achee, N. L., Bernier, U. R., Mundal, K. D., Benante, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Field+Evaluations+of+Topical+Arthropod+Repellents+in+North%2C+Central%2C+and+South+America%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Field Evaluations of Topical Arthropod Repellents in North, Central, and South America.</a> J Med Entomol. 51 (5), 980-988 (2014).</li>
<li>Collins, A. M., Rubink, W. L., Cuadriello Aguilar,, I, J., Hellmich Ii,, L, R. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/jee/article-abstract/89/3/608/2216379/Use-of-Insect-Repellents-for-Dispersing-Defending">Use of insect repellents for dispersing defending honey bees (Hymenoptera Apidae).</a> J Econ Entomol. 89 (3), 608-613 (1996).</li>
<li>Brown, M., Hebert, A. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9039177">Insect repellents: An overview.</a> J Am Acad Dermatol. 36 (2), 243-249 (1997).</li>
<li>Teeters, B. S., Johnson, R. M., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+video-tracking+to+assess+sublethal+effects+of+pesticides+on+honey+bees+%28Apis+mellifera+L.%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Toxicol+Chem%22%5BJournal%5D)">Using video-tracking to assess sublethal effects of pesticides on honey bees (Apis mellifera L.).</a> Environ Toxicol Chem. 31 (6), 1349-1354 (2012).</li>
<li>Vallet, A., Cassier, P., Lensky, Y. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/002219109190076C">Ontogeny of the fine structure of the honeybee (Apis mellifera L.) workers and the pheromonal activity of 2-heptanone.</a> J Insect Physiol. 37 (11), 789-804 (1991).</li>
<li>Free, J. B., Ja Pickett,, Ferguson, aW., Simpkins, J. R., Smith, M. C. <a target="_blank" href="https://www.cambridge.org/core/journals/journal-of-agricultural-science/article/div-classtitlerepelling-foraging-honeybees-with-alarm-pheromonesdiv/FCF9E5141FBEC584DBD2650E62522846">Repelling foraging honeybees with alarm pheromones.</a> J Agr Sci. 105 (2), 255(1985).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

זה פרוטוקול מעקב ויזואלי מספק גישה פשוטה המסך ההרתעה כימית עבור דבורים דבש באופן מהיר וקל יחסית. אין פרוטוקולים מומלצים לבדיקות מעבדה של הרתעה כימית לדבורים. מחקרים קודמים בחצי-שדה ובדקו מחקרי דבש של דבש 14 , 15 ; אולם הפרוטוקולים המתוארים הם זמן רב, עבודה אינטנסיבי, ודורשים משאבים נוספים במתקן מחוץ למעבדה הכללית. פרוטוקול זה תוכנן כהערכה מוקדמת של ההרתעה הכימית לפני בדיקה חצי - מלאה או שדה מלא של תרכובות כאלה עם דבש דבורי...

דבש הדבש האירופי, Apis melliferaL. , הוא חרק כלכלי חשוב חקלאי המספק שירותי האבקה מוערכים ביותר מ 200 מיליארד דולר ברחבי העולם 1 . בארצות הברית ובאירופה, מספר מושבות הדבש של הדבש הולך ופוחת. ארצות הברית איבדה CA. 60% של מושבות דבורים מנוהלות מנוהל מ 1947-2008 בעוד אירופה איבדה CA. 27% מ 1961-2007 2 , 3 . ישנם מספר גורמים שעשויים להיות אחראים למספר גדל של הפסדי המושבה, כולל אך לא רק, טפילים טפיל, זיהומים פתוגן, שיטות דבורים, ושימוש בחומרי הדברה 2 - 4 . דבש עשוי להיות חשוף חומרי הדברה דרך שני מסלולים עיקריים. חשיפה לחומרי הדברה מחוץ לכוורת יכולה להתרחש כאשר אנשים מחפשים מזון באים במגע עם יבוליםרוססו בכימיקלים להגנה מפני מזיקים. חשיפה לחומרי הדברה בתוך הכוורת יכולה להתרחש כאשר כוורנים משתמשים בכימיקלים כדי לשלוט במזיקים ובפתוגנים, כגון קרדית, חיידקים ומיקרוספורדיה. שאריות חומרי הדברה זוהו בדגימות שעווה, אבקה ודבש דבש מ -24 מכונים בארצות הברית ובקנדה 5 , 6 . ההשפעות של מגע חומרי הדברה לדבורים דבש כוללים רעילות חריפה, כמו גם השפעות קטלניות כגון שיתוק, דיסאוריינטציה, ושינויים התנהגותיים ובריאותיים 1 , 7 . כמו החקלאות המודרנית מחייבת שימוש בחומרי הדברה כדי לשמור על התשואות היבול גבוהה, כימיקלים אלה ימשיכו להיות הסתמך על בעתיד 2 . על מנת להגן טוב יותר על דבורי הדבש מפני חשיפות חומרי הדברה, יש צורך בפיתוח פרוטוקולים ותקנות חדשים.גישה אפשרית אחת להגנה היא שימוש בדוחים כדי להפחית את החשיפה של דבורי דבש לחומרי הדברה בזמן חיפוש מזון. הדברה חרקים (IRs) שימשו בדרך כלל כאמצעי הגנה אישיים נגד נגיפי מחלת הפרקים 8 . הנפוץ ביותר והמוצלחת IR, שפותחה לפני יותר מ -60 שנה, הוא DEET 8 , 9 . זה נחשב תקן הזהב עבור בדיקות דוחה חרקים והוא משמש על ידי ארגון הבריאות העולמי הסוכנות להגנת הסביבה כביקורת חיובית עבור הרומן דוחה בדיקות 10 . בנוסף, DEET נמצא לפזר דבורי דבש מאיום המושבה שלהם 11 . התכונות הנוכחיות הקשורות IRs אישיים כוללים: (1) השפעה מתמשכת נגד מספר רחב של פרוקי רגליים; (2) שאינו מגרה למשתמש כאשר הוא מוחל על העור או על הבגדים; (3) חסר ריח אוריח נעים; (4) אין השפעה על בגדים; (5) לא מראה שמנוני כאשר מוחל על העור לעמוד בפני הזעה, כביסה, וניגוב על ידי המשתמש; (6) אין השפעה על פלסטיק נפוץ; ו (7) יציב מבחינה כימית ובמחיר סביר לשימוש נרחב 12 . דוחה המשמש דבורים דבש רק צריך כמה תכונות אלה כגון השפעות מתמשכות, לא מעצבן על המוליכים, ריח חסר ריח או נעים, יציב מבחינה כימית ובמחיר סביר לשימוש נרחב, ולא רעילים דבורים דבש. עם זאת, לפני בחינת תכונות אלה לעומק, יש צורך בשיטת סינון תרכובות לדחיית / הרתעה באופן תפוקה גבוהה. כאן, אנו מתארים פרוטוקול assay במעבדה כדי המסך compounds עבור ההרתעה של דבורים דבש, צעד חשוב בקביעת repellency. הפרוטוקול הבא שונה ממחקר קודם המתאר שיטת מעקב ויזואלי כדי להעריך את ההשפעות sublethal של חומרי הדברה על דבורים דבש 13 . HoweVer, פרוטוקול זה שונה בכך שהוא נועד למדוד את ההשפעות של repellents המועמד שעלול להרתיע דבורים דבש מן הדברה מטופלים יבולים. אין פרוטוקולים מומלץ עבור בדיקות מעבדה של ההרתעה כימית דבורים דבש, ובכך, פרוטוקול זה מספק גישה פשוטה המסך תרכובות כאלה.

<table><tbody><tr><td>בקבוק 50 מ"ל ארלנמאייר</td><td>Kimax</td><td>26500-50</td><td>המשמש להכנת קוביות הסוכר/אגרוז</td></tr><tr><td>סוכר</td><td>קרוגר</td><td></td><td>כל מוצר דומה יספיק</td></tr> מים <tr><td>דה-יונים</td><td></td><td></td><td>שנרכשו בבית</td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Apex</td><td>20-102</td><td>המשמש להכנת קוביות הסוכר/אגרוז</td></tr><tr><td>עובש לקוביות אגרוז (סירת שקילה)</td><td></td><td></td><td>כל תבנית שתספק לחוקר קוביית סוכר/אגרוז בגודל 1.5 ס"מ x 1.5 ס"מ x 0.3 ס"מ תספיק</td></tr><tr><td>לתוכנת מעקב חזותי</td><td>EthoVision XT</td><td>Noldus</td><td></td></tr><tr><td>633 ננומטר נוריות</td><td>Cyron</td><td>HTP904E</td><td>אורות אלה הוצבו בקופסת אור בנויה כדי להאיר את הזירות מלמטה. הקופסה הייתה מבנה עץ פשוט עם כיסוי פלסטיק חלבי/זכוכית פרספקס שאיפשר לאור להתפזר כלפי מעלה ללא כל סנוור.</td></tr><tr><td>מחשב נייד או מחשב</td><td>אישי Dell</td><td>Inspiron One 2305</td><td>הכרחי לתוכנת מעקב וידאו. כל מכשיר מחשב המסוגל להפעיל תוכנת מעקב חזותית יספיק</td></tr><tr><td>דבורה שמירה על ביגוד מגן</td><td>Dadant & Sons Inc</td><td>V0126</td><td>כל מכסה מנוע וז'קט מגן יספיקו</td></tr> כלי <tr><td>כוורת</td><td>Dadant & Sons Inc</td><td>M00757</td><td>המשמש לפתיחת כוורת דבורי דבש</td></tr><tr><td>מיכל לדבורי</td><td></td><td></td> דבש <td>כל מיכל המתאים לדיור ואחסון דבורי דבש יספיק</td></tr><tr><td>מלקחיים במשקל נוצה קצה צר</td><td>Bioquip</td><td>4748</td><td>המשמש לבחירת דבורי דבש בודדות</td></tr><tr><td>9 ס"מ (קוטר) צלחת פטרי</td><td>פישר סיינטיפיק&nbsp;</td><td>זירת S01778</td><td>שימשה להכיל דבורי דבש בודדות במהלך מעקב וידאו</td></tr><tr><td>מכשיר הקלטה (מצלמה)</td><td>Basler</td><td>acA-1300-60gm</td><td>כל מכשיר שיכול להקליט את הנושא בצורה ברורה ולהעביר את הקובץ למחשב יספיק</td></tr><tr><td>GraphPad</td><td>Prism Graphpad</td><td></td><td>כל חבילת תוכנה סטטיסטית תספיק</td></tr></tbody></table>

פרוטוקול מעקב וידאו מסך ההרתעה chemistries עבור דבורים דבש

Video Tracking Protocol to Screen Deterrent Chemistries for Honey Bees

דבורת הדבש האירופית, אפיס מליפרה ל &#39; , היא מאבקה חשובה מבחינה כלכלית וחקלאית שמייצרת מיליארדי דולרים בשנה. מספר דבש מושבות הדבש כבר בירידה בארצות הברית ובמדינות רבות באירופה מאז 1947. מספר גורמים לשחק תפקיד זה ירידה, כולל חשיפה מכוונת של דבורים דבש לחומרי הדברה. פיתוח שיטות ושיטות חדשות מוצדקות להפחתת החשיפה לחומרי הדברה למאובנים אלו. גישה אחת היא השימוש של chemistries דוחה כי להרתיע דבורי דבש לאחרונה טיפול בחומרי הדברה. כאן, אנו מתארים פרוטוקול להבחין ההרתעה של דבורי דבש חשופים chemistries דוחה לבחור. דבורים דבורים דבש נאספים ומרעב בן לילה באינקובטור 15 שעות לפני הבדיקה. דבשי דבש בודדים ממוקמים לתוך צלחות פטרי שיש להם קוביית סוכר-אגרוזה (טיפול בשליטה) או קוביית סוכר- agarose- מתחם (טיפול דוחה)לאמצע המנה. צלחת פטרי משמש בזירה כי הוא ממוקם תחת מצלמה בתיבה אור כדי להקליט את הפעילות דבורה דבש הדבש באמצעות תוכנת מעקב וידאו. סך של 8 טיפולים ו 8 דוחה נותחו במשך 10 דקות עם כל טיפול היה כפולות עם דבש דבש חדש. כאן אנו מדגימים כי דבורי הדבש נרתעות מקוביות הסוכר-אגרוס עם טיפול מורכב ואילו דבורי הדבש נמשכות לקוביות הסוכר-אגרוס ללא תרכובת נוספת.

פרוטוקול מעקב ויזואלי פותח כדי להקליט את כמות הזמן הדבורים הדבש בילה באזור היעד עם סוכר או agarose (טיפול שליטה) או סוכר agarose- מתחם קוביה (טיפול הרתעה). הזמן המוקלט נותח באמצעות תוכנה סטטיסטית ואת הזמן הממוצע בילה ± שגיאת תקן באזור היעד הוא דיווח כגרף עמודות. DEET, תקן הזהב עבור דוחה חרקים / בדיקות ההרתעה, שימש פרוטוקול זה כביקורת חיובית. דבורי הדבש שסופקו עם קוביית סוכר-אגרוס (שליטה שלילית) בילו 343 ± 26 שניות באזור המטרה ואילו דבורי הדבש שסופק...

אובדן מושבות דבש הדבש מהווה אתגר לשירותי האבקה של היבול. ההמלצות הנוכחיות להגנה על המאבקים מחייבות גישה חלופית למזעור המגע של דבורי דבש לחומרי הדברה מזיקים באמצעות chemistries דוחה. כאן, אנו מספקים שיטות מפורטות עבור פרוטוקול מעקב חזותי כדי ההרתעה המסך עבור דבורים.

פרוטוקול מעקב וידאו מסך ההרתעה Chemistries עבור דבורים דבש

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey ...

המטרה הכללית של הליך זה היא להעריך חומרי הרחקה כימיים עבור דבורי דבש. שיטה זו יכולה לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחום האנטומולוגיה, כגון אילו כימיקלים מניעים את התנהגות דבורי הדבש להתרחק ממקור מזון. היתרון המרכזי של פרוטוקול זה הוא שהוא מספק גישה פשוטה לסריקת חומרי הרחקה כימיים עבור דבורי דבש באופן מהיר וקל יחסית.כדי להכין קוביית סוכר-אגרוז עבור טיפול הבקרה, יש לשפוך תמיסת סוכר-אגרוז שהתקררה חלקית לתוך תבנית של כלי שקילה. עבור טיפול הדחייה, יש להוסיף את הכמות הרצויה של התרכובת לתמיסת האגרוז שהתקררה חלקית. בהדגמה זו, נעשה שימוש בריכוז סופי של 1% DEET.סובבו את הבקבוק כדי לערבב את התרכובת ולאחר מכן שפכו את התמיסה לתבנית של סירה לשקילה. לאחר קירור קוביית הסוכר-אגרז, הוציאו את הקוביות שהתגבשו מתבניות השקילה והניחו אותן בתוך מיכל פלסטיק עם נייר סופג לח. הניחו את המיכלים במקרר לצורך אחסון.בתוכנת המעקב, נווט להגדרות הניסוי בסרגל סייר הניסויים, הממוקם בצד שמאל של המסך. ודא שהמצלמה הנכונה נבחרה ושהקלטת הווידאו ממרכזת את זירות פטרי.תחת הגדרות הניסוי (experiment settings), שנו את מספר הזירות ל-16. תחת מאפיינים למעקב (tracked features), בחרו בזיהוי נקודת מרכז (center point detection). לאחר מכן, בחרו בהגדרות זירה (arena settings) כדי להגדיר את הזירה הרצויה עבור הבדיקה.מקמו את 16 צלחות הפטרי בתבנית של ארבע על ארבע מעל תיבת תאורה הממוקמת מתחת למצלמה. בהגדרות הזירה, השתמשו בכפתור grab background הנמצא בלוח הכלים בצד ימין כדי לצלם את 16 צלחות הפטרי. תמונה זו תשמש כתבנית להגדרת הזירה.בחר באפשרות ליצירת אליפסה (create ellipse) מסרגל הכלים בחלק העליון של מסך הגדרות הזירה, וצור מעגל התואם את הקוטר של אחת מ sebelumnya Petri dishes בתמונה שנלכדה. מקם את סמן זירה אחת (arena one marker) בתוך המעגל. לאחר מכן, בחר בקבוצת אזור אחת (zone group one), הממוקמת תחת זירה אחת (arena one) בפאנל הכלים בצד ימין.בחר באפשרות "צור מלבן" (create rectangle) מסרגל הכלים בחלקו העליון של המסך. צור ריבוע של 30 על 30 פיקסלים באמצעות כלי זה, ולאחר מכן מקם אותו במרכז העיגול שנוצר בשלב הקודם.בחרו "add zone" מסרגל הכלים העליון ולאחר מכן לחצו במרכז הריבוע. העבירו את האזור סימן אחד כך שיהיה בתוך הריבוע. לאחר מכן, בחרו "arena one" בלוח הכלים בצד ימין ולחצו על "duplicate complete arena".מהתפריט הנפתח, בחרו את כל שאר הזירות ולאחר מכן לחצו על OK. העבירו את הגדרות הזירה המשוכפלות לשאריות צלחוני הפטרי בתמונה שנבחרה. לאחר מכן בחרו את זירה אחת ובחרו בכיול קנה מידה (calibrate scale) בסרגל הכלים העליון. שרטטו את קו הכיול לאורך הקוטר של צלחון הפטרי של זירה אחת.שנו את מדידת הקוטר לתשעה סנטימטרים. בחרו ב-validate arena settings בפאנל הכלים בצד ימין. לאחר מכן, בחרו ב-detection settings בסרגל הבקרה בצד שמאל.בחרו ב-"detection settings one" ולאחר מכן בחרו ב-"gray scaling" בתפריט הנגלל הממוקם בתיבת הכלים בצד ימין. תחת "detection", הגדירו את הטווח כך שיהיה מאפס עד 83. לחצו קליק ימני על "detection settings" וצרו הגדרה חדשה בשם "Detection Settings Two".וודאו שסולם אפור (gray scaling) עדיין נבחר, אך אל תשנו את שאר הפרמטרים. בחרו ברשימת הניסויים (trial list) בסייר הניסויים ולחצו על "הוסף משתנה" (add variable) בסרגל הכלים העליון. תנו למשתנה המוגדר על ידי המשתמש את השם Treatment.בחר את תפריט הדרופ-דאון של הערכים המוגדרים מראש (predefined values) בעמודת הטיפול שהגדיר המשתמש, והוסף את "בקרה" (control) ו"טיפול" (treatment) כערכים מוגדרים מראש. לחץ על כפתור הוספת ניסויים (add trials) הנמצא בסרגל הכלים העליון והוסף שני ניסויים. לאחר מכן, עבור כל זירה, בחר אם זוהי זירת בקרה או זירת טיפול.בשלב הבא, בחרו ב-data profile תחת פאנל ה-experiment explorer. בעמודה השמאלית, בחרו ב-treatment, הנמצא תחת הכותרת user defined independent variables. פעולה זו תוסיף תיבת סינון לאזור שבו נמצא תרשים הזרימה.בחרו ב-C בתיבת הבחירה ולאחר מכן מקמו את המסנן שנוצר בין תיבת ההתחלה לתיבת התוצאה הראשונה. חצי חיצי הזרימה צריכים להתעדכן כך שיצביעו מתיבת ההתחלה אל המסנן ולבסוף אל התוצאה הראשונה. חזרו על שלב זה, אך הפעם בחרו ב-T עבור המסנן ולאחר מכן בחרו ב-result תחת סעיף האלמנטים המשותפים.העבירו את התיבות שנוצרו לאזור תרשים הזרימה וחברו ביניהן באמצעות חצים, ושמרו את הקובץ. הפעילו את תוכנת המעקב הוויזואלי ופתחו את קובץ הניסוי השמור שנוצר עבור בדיקה זו. בחרו בהגדרות זיהוי מספר שתיים.לאחר מכן, מקמו קוביות ביקורת של סוכר-אגרוז במרכזים של שמונה מתוך 16 צלחות הפטרי. חזרו על תהליך זה עם קוביות תרכובת הסוכר-אגרוז בשמונה הצלחות שנותרו. השתמשו בפינצטה כדי להוציא דבורת דבש אחת מהקופסה מפלסטיק והניחו אותה באחת מצלחות הפטרי של הביקורת.חזרו על שלב זה עבור 15 פטריות הפטרי שלושת הנותרות. הניחו את כל הפטריות על שולחן האור. האירו את שולחן האור מלמטה באמצעות מערך נורות LED המכוונות לספקטרום האדום, ומקמו אותן כך שאתרי זיהוי הזירה יתאימו לכל אחת מזירות הפטריות.עטפו את כל הקופסה והמצלמה בגיליון פלסטיק שחור כדי למנוע אור חיצוני ולהפחית הצללים בתוך הזירות. לאחר הצבת פטריות הפטרי, ודאו שהגדרות זיהוי 1 הן ההגדרות שנבחרו. בשלב זה, תוכנת המעקב הוויזואלי צריכה לזהות רק את דבורי הדבש בתוך זירות פטריות הפטרי.לאחר מכן, בחרו ב-acquisition מחלונית ה-experiment explorer. לחצו על כפתור ה-start trial הירוק הממוקם בתיבת הבקרה של ה-acquisition מצד ימין כדי להתחיל בהקלטה. הפעילו את הבדיקה למשך 10 דקות ולאחר מכן לחצו על כפתור ה-stop trial האדום בתיבת הבקרה של ה-acquisition כדי להפסיק את ההקלטה.כאן מוצגות תוצאות מייצגות של השפעת DEET על התנהגות ההזנה של דבורי דבש בודדות. פרטים שנחשפו לקוביות הביקורת שהו בממוצע 343 שניות באזור ההזנה, לעומת 16 שניות עבור פרטים שנחשפו לקוביות עם DEET. כאן מוצגות תוצאות מייצגות של השפעתם של שני תרכובות שונות על התנהגות ההזנה של דבורי דבש בודדות.פרטים שנחשפו לתרכובת שאינה דוחה שהו בממוצע 282 שניות באזור ההאכלה, בהשוואה לקבוצות הביקורת, ששהו שם כ-352 שניות. חשיפה לתרכובת דוחה גורמת לכך שפרטים יבלו זמן קצר משמעותית, כ-23 שניות, באזור ההאכלה, בהשוואה לקבוצות הביקורת ששהו באזור זה בממוצע של 493 שניות.ברגע שהטכניקה נלמדת היטב, ניתן לבצעה בתוך 20 דקות אם היא מבוצעת כראוי. בעת ניסוי פרוצדורה זו, חשוב לזכור להכין הכל מראש ולהרעיב את דבורי הדבש למשך פרק זמן הולם. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיה לכם הבנה טובה כיצד לקבוע את ההשפעות של תרכובת המוחדרת למקור מזון על דבורי דבש בודדות באמצעות תוכנה למעקב וידאו.בעקבות פרוצדורה זו, ניתן לבצע שיטות אחרות, כגון בדיקות שדה ובדיקות בקרבת השדה, כדי לענות על שאלות נוספות הנוגעות להשפעת תרכוב מסוים ברמת המושבה. לאחר פיתחו, סללל טכניקה זו את הדרך עבור חוקרים בתחום האנטומולוגיה לחקור תרכובים כימיים חדשניים ואת השפעתם על התנהגות ההאכלה בדבורי דבש. אין לשכוח כי עבודה עם תרכובים עלולה להיות מסוכנת ביותר, ויש לנקוט תמיד באמצעי זהירות, כגון לבישת ציוד מיגון אישי, בעת ביצוע פרוצדורה זו.

video-tracking-protocol-to-screen-deterrent-chemistries-for-honey-bees

Research

JoVE Journal

Environment

סביבה

בפרוטוקול זה אנו מראים כיצד מצב רתמו דבורי דבש לגירויי מישוש ולהציג את טכניקת לכידת תנועת 2D לניתוח קינמטיקה של דפוס דגימת מחושים בקנה מידה זעירה.

מיזוג מישוש וניתוח תנועה של אסטרטגיות דגימת מחושים בדבורי דבש (<em&gt; תפיס mellifera</em&gt; ל &#39;)

בפרוטוקול זה, אנו מתארים שתי אסטרטגיות שבו זמנית לדכא שני גנים (מציאה גן כפולה) בדבורי דבש. לאחר מכן אנו מציגים כיצד להשתמש בסיומת תגובת חוטם (PER) assay כדי לחקור את ההשפעה של מציאה גן כפולה על תפיסה התעוררה אצל דבורת דבש.

מציאה RNAi בתיווך זוגית ג&#39;ין ומדידה בחוש טעם בדבורי דבש (<em&gt; אפיס mellifera</em&gt;)

פרוטוקול ההתניה של Proboscis Extension Response (PER), שפותח עבור דבורת הדבש (Apis mellifera), מספק אמצעי רלוונטי מבחינה אקולוגית וניתן לכימות בקלות לחקר מספר מנגנוני למידה שונים במיני חרקים רבים.

תגובת פרוטוקול חוטם הרחבה לחקירת פלסטיות התנהגות בחרקים: בקשה ליסוד, ביו רפואית, ומחקר חקלאי

סרטון זה מתאר זיהוי בתדר רדיו (RFID) ושיטות הקלטת וידאו רגישות לתנועה לניטור התנהגות הבחירה של דבורי בומבוס.

זיהוי תדר רדיו ווידאו Motion רגיש ביעילות אוטומציה של ההקלטה של ​​התנהגות unrewarded בחירה על ידי צרעות

מניעת קולוניזציה של תיבות קינון ציפור ידי דבורי דבש Africanized פולשנית חשוב מאמצי שימור של ציפור מוגבלות קן באתר. אנו מספקים גישת טיפול משולבת במזיקים "לדחוף" דבורים הרחק תיבות קינון עם קוטל חרקים דוחה, פרמתרין, ו "למשוך" אותם לעבר מלכודות נחיל תגרת פרומון.

פרוטוקול Push-Pull כדי להפחית תיבות קינון Colonization של ציפור על ידי דבורי דבש

מבחן התנהגותי חדש מתואר לחקירת תגובות הטעם לטווח קצר של חלקי הפה של דבורי בומבוס הנעות בחופשיות (Bombus terrestris) כלפי חומרים מזינים ורעלים בתמיסה.

Assay רומן ההתנהגות לחקור תגובות Gustatory של הפרט, חופשי-נע דבורים Bumble (<em&gt; בומבוס האדמה</em&gt;)

כאן אנו מתארים הפרוטוקול המפורט שלנו לעריכת מושבות דבורים חד עוקבה - כלי שימושי לניתוח הפיסיולוגיה עובדת הקשורים התפקיד. כמו כן, אנו מתארים פרוטוקולים מפורטים לטיפול עובדים עם הורמון נעורי ecdysone להעריך את המעורבות של הורמונים אלה בויסות התנהגות עובד ו / או פיזיולוגיה.

הכנת מושבות אחת-עוקבה טיפול הורמונלי של דבורי הדבש Worker לנתח Associated פיזיולוגיה עם תפקיד ו / או המערכת האנדוקרינית

כתב יד זה מתאר כמה פרוטוקולים לניהול סוכנים תרופתיים כדי דבורי דבש, כולל בשיטות לא פולשניות פשוט לדבורים חינם-עף, כמו גם הגירסות פולשני יותר המאפשרות טיפול מקומי מדויק של דבורים מאופקות.

מניפולציה Neuropharmacological של מאופקים חינם-עף דבש דבורים,<em&gt; Apis mellifera</em

בזאת אנו מציגים   שיטה להאכיל מזון מזוהם דברה כדי הן דבורת דבש פרט מושבת כוורת. ההליך מעריך את השפעת הדברה על דבורים ודבש פרט על ידי in vivo האכלה של דיאטת זחל בסיסית גם על המצב הטבעי של מושבת כוורת.

הערכת ההשפעה של כימיקלים סביבתיים על התפתחות דבורת דבש מן הפרט אל רמת קולוני

מינונים לא קטלני של חומרי הדברה עלולה להשפיע על מושבות בדרכים שאינן קשה לזהות באמצעות שיטות תקופתיים או ויזואלי בלבד. שיטות למדידת מסה הכולל דבורה למבוגרים, דגירה, מקורות מזון על ידי שקילה כוורות וחלקים הכוורת, צילום מסגרות התקנת חיישנים, הינם מסופקים. ניתוח נתונים מופנית גם.

ניטור המושבה ברמת ההשפעה של ההדברה לא קטלני על דבש דבורים

פרוטוקול זה מתאר את השלבים עבור שימוש בתוכנה הרומן, SwarmSight, עבור מסגרת מעקב של עמדות אנטנה, חוטם חרקים מן האינטרנט המקובלת מצלמת וידאו באמצעות מחשבים קונבנציונלי. התוכנה בחינם, קוד פתוח מעבד מסגרות כ 120 פעמים מהר יותר מאשר בני אדם, מבצעת יותר דיוק אנושי.

SwarmSight: מעקב בזמן אמת של האנטנה חרקים תנועות רפלקס הרחבת חוטם באמצעות הכנה משותפת חומרה קונבנציונלי

למדו פרוטוקול מעקב וידאו לבחינת כימיקלים מרתיעים בדבורי דבש Apis mellifera L. השיטה מאפשרת סינון מהיר של תרכובות המרחיקות דבורים ממקורות מזון, ותומכת בפיתוח אסטרטגיות להגנת מ pollinators מפני חומרי הדברה.

פרוטוקול מעקב וידאו מסך ההרתעה Chemistries עבור דבורים דבש

גלה סרטונים נוספים