Name: כלי אולטראסוניות גיאן לחסום במודלים עכברים סוכרתיים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: למד כיצד לחסום באופן זמני את הולכת העצבים הפריפריים בעכברים סוכרתיים באמצעות אולטראסוניות ממוקדת בעוצמה גבוהה. שיטה זו מציעה גישה לא פולשנית לטיפול בכאב נוירופתיה סוכרתית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחקר נתמך על ידי משרד המדע, הטכנולוגיה (פרוייקט ביותר 105-2221-E-400-001) את נבחרת הבריאות מכוני מחקר (פרוייקט בסון-105-PP-10), טייוואן.

טיפול בעלי חיים מוסדיים והוועדה שימוש ממכוני המחקר הבריאות הלאומי בטייוואן אושרו כל הפרוטוקולים בעלי חיים-
 1. אינדוקציה דגם סוכרתית ב ספראג למבוגרים זכר - חולדות Dawley (SD) <ol><li>להסיר עכברושים מזון כדורי מן הכלוב חולדות SD מהר זכר (300-350 גר') במשך 6 שעות לפני הגיוס STZ.</li>
	מאגר <li>הכן סודיום ציטרט (0.1 M, pH 4.5).
	<ol><li>1.05 להמיס g monohydrate חומצה ציטרית (C 6 H 8 O 7 · H 2 O; mol. wt. 210.14) ב- 50 מ ל מזוקקים מים כדי ליצור פתרון חומצה ציטרית 0.1 M.</li>
		<li>1.47 להמיס g ציטראט trisodium וגופרית והרכבו (ג 8 H 5 או 7 נה 3 · 2 H 2 O; mol. wt. 294.12) ב- 50 מ ל מזוקקים מים כדי ליצור פתרון סודיום ציטרט 0.1 M.</li>
		<li>להוסיף 25 מ ל חומצה ציטרית פתרון פתרון סודיום ציטרט 25 מ. לנטר את סודיום ציטרט מאגר רמת החומציות (pH 4.5) באמצעות מד pH. 
		הערה: המאגר נעשית מול על ידי תוספת של אמצעי אחסון המתאים של הפתרון סודיום ציטרט 0.1 M.</li>
	</ol></li> <li>לפזר STZ במאגר סודיום ציטרט 0.1 M להניב תשואה 50 מ"ג/מ"ל STZ פתרון. 
	הערה: הפתרון STZ הוא רגיש אור, לכן, לכסות את הפתרון STZ ברדיד אלומיניום ולהשתמש תוך 15-20 דק...</li>
	<li>לצייר את הפתרון STZ 50 מ"ג/ק"ג לתוך מזרק אינסולין או טוברקולין 1 מ"ל עם 26 - 28 מד המחט. נקיים ההזרקה עם רכיב pad אתנול, intraperitoneally להזריק את הפתרון STZ לתוך הרביע הימני. התחתון של הבטן כדי למנוע נזק אברי הבטן. </li> <li>לספק חולדות עם 10% סוכרוז מים כמו מקור המים הבלעדי המשמש 48 שעות לאחר ההזרקה STZ למניעת היפוגליקמיה.</li></ol>
 2. אישור של סוכרת בחולדות STZ-induced <ol><li>צג ריכוז הגלוקוז בצום הפלסמה של כל החולדות מוזרק על ידי רופא STZ פוסט 72 h עם מד הסוכר.
	<ol><li>מהר העכברושים סוכרת הנגרמת STZ עבור h 15 לפני מדידה צום דם רמת גלוקוז.</li>
		<li>לרסן את החולדות בשקית איפוק ולחשוף את הזנב לאיסוף דם במהלך המדידות גלוקוז בדם.</li>
		<li>השתמש אזמל מנתחים דם כדי לדקור את קצה הזנב כדי לקבל טיפה קטנה של דם. מניחים את טיפת דם על רצועה בדיקת גלוקוז. להקליט את רמות הגלוקוז בצום פלזמה. 
		הערה: מד הסוכר מזהה ומציגה רמת הסוכר בדם ביחידות של mg/dL. אל תכלול את החולדות עם רמות הגלוקוז בדם בצום מתחת 150 מ"ג/ד"ל לאחר 2 שבועות של STZ-אינדוקציה-</li>
	</ol></li></ol> 3. הערכה של נוירופתיה סוכרתית בחולדות סוכרתית <ol><li>להעריך allodynia מכני עם פריי פון אלקטרונית.
	<ol><li>Habituate STZ-induced סוכרתית חולדות בכלוב על רצפת מתכת רשת שינוי בקוטר 1 ס מ במשך 30 דקות לפני הערכת האחוריות כף של תגובת נסיגה.</li>
		<li>בדיקה אלקטרונית של פון פריי עם טיפ נוקשה (0.8 מ"מ קוטר) כדי להחיל באופן ידני לחץ פני plantar הכפה האחוריות של החולדות ושימוש בהדרגה להגביר את הלחץ עד לתגובה נסיגה כפת נתפסת.</li>
		<li>להקליט את הלחץ זה מראה על המערכת וחזור על המדידה 5 פעמים לכל עכברוש, עם מרווח s 30 בין כל אחת מהמידות.</li>
	</ol></li> <li>להעריך את hyperalgesia חום עם צלחת חמה.
	<ol><li>Habituate העכברושים סוכרתית STZ-induced בצלחת חמים (24 ± 0.5 מעלות צלזיוס) למשך 10 דקות לפני שמעריכים את התגובה לכאב.</li>
		<li>להסיר, מקם את החולדות בחזרה לתוך הכלובים אחרי habituation, מחממים את הכיריים ולתחזק את הכיריים &#39; s טמפרטורה ± 0.5 55 מעלות צלזיוס</li>
		<li>במקום העכברוש על פלטה מחוממת בעת הפעלת בו זמנית את הטיימר.</li>
		<li>כאשר העכברוש תערוכות התנהגויות שונות, כגון ליקוק כף האחוריות או באופן חריג יתנגש האחוריות כף, לעצור את שעון העצר ולהקליט ההשהיה גמילה. 
		הערה: אם עכברוש לא להביע התנהגויות ברורים לאחר 20 s (זמן ניתוק s 20), לסיים את המבחן פלטה ולהסיר את העכברוש הכיריים.</li>
	</ol></li></ol> 4. אין ויוו עצבים הולכה חסימה עם מתמר HIFU הערה: הניסוי ויוו מתחיל בשבוע 5 לאחר ההזרקה STZ 50 מ"ג/ק"ג.
<ol><li>לבצע הליכים בעלי חיים לפני חסימת CMAPs עם HIFU sonication.
	<ol><li>לחטא כלים כירורגיים (אזמל, מספריים, מלקחיים ו זכוכית הוק) ב החיטוי לפני הניתוח.</li>
		<li>עזים ומתנגד החולדות עם הזרקת בקרום הבטן של תערובת tiletamine/zolazepam (40 מ"ג/ק"ג), חריגות השירותים הווטרינריים (10 מ"ג/ק"ג) או באמצעות אינהלציה של 1.75% איזופלוריין ויה איזופלוריין מאדה. מניחים את החולדות על כרית החימום כדי לשמור על טמפרטורת הגוף.</li>
		<li>למקם את החולדות לניתוח ב- recumbency הגחון. להחיל את המשחה בעין. להרחיב את הרגל של העכברוש וצבטתי השטח plantar של כף הרגל עם הציפורניים כדי לברר את עומק ההרדמה. אם החולדות הצגת התגובות גמילה, להחיל הרדמה נוספים-</li>
		<li>להסיר שיער מן הירך והורד האחורי של החולדות עם קוצץ חשמלי. החלת יוד נוזלי עם גזה נקייה באתר כירורגית ולעבור באופן מעגלי הגזה כלפי חוץ של האתר כירורגית. השתמש כרית אלכוהול לנגב יוד נוזלי באותה תנועה מעגלית. ניסוי זה מתבצע באתר כירורגי ישר ושמאלה. חזור על הפעולות באתר כירורגיים אחרים מתי לבצע את השלב הבא של הליך.</li>
		<li>השתמש מספריים כירורגיים סטרילי או אזמל לבצע חתך של העור הירך הגבי. שימוש בוטה מספריים כירורגיים בקפידה להפריד את רקמת מתחת לעור ולאבטח את העור עם ווים העור. עצם הירך ניתן לראות בתוך השרירים.</li>
		<li>להשתמש המספריים הפרד בזהירות את השרירים במקביל הירך עד הסיבים בעצב הירך אמצע המוטבעות השרירים גלויים. להשתמש בזהירות קרס זכוכית להפריד את אמצע הירך בעצב רקמות החיבור שמסביב ואת השרירים.</li>
	</ol></li> <li>למקם בעצב באזור מוקד HIFU באמצעות fixator של העצב בהזמנה אישית ( איור 1, איור 3). 
	הערה: fixator עצב בהזמנה אישית כולל 3 רכיבים ( איור 3). כל הרכיבים עשויים polymethylmethacrylate שקוף (PMMA). החוט החיצוני של המבנה העליון של רכיב אני נמצא בגובה 2.5 מ"מ ו- M10XP0.7 ( איור 4A). הבאר המרכזית היא 4.0 מ"מ-קוטר חור דרך הרכיב. הפתח התחתון של הבאר חתומה על ידי גיליון של נייר דבק. הקוטר של החריץ הוא 1.2 מ מ, מ מ 3.1. המרחק בין המטוס המרכזי של החריץ המשטח העליון של רכיב אני הוא הרכיב השני מורכב הגוף העיקרי, ארבע רגליים ו המבנה התחתון ( איור 4B). החוט הפנימי של המבנה התחתון הוא בגובה 2.5 מ"מ ו- M10XP0.7 כדי להתאים את החוט החיצוני של רכיב אני. קוטר החור המרכזי הוא זהה לבאר המרכזית של רכיב אני. ממדי הגוף העיקרי הם 32 מ מ קוטר ו- 5.4 מ מ עובי. ארבע רגליים נפרסות באופן סימטרי. שתי רגליים קצרות זהה מיועדים יישור ולעבוד שתי רגליים ארוכות זהים על זנות על הרכיב השלישי. הקוטר החיצוני והגובה של הרכיב השלישי הם 41 מ מ 9.2 mm. החוט הפנימי הוא M36XP1.0 והוא החור עד 27.5 מ מ קוטר (< מחלקה חזקה = "xfig"> 4C איור). קונוס הוא נר חלול עם הפתח העליון של 84 מ מ קוטר, הפתח התחתון של 27.5 מ מ קוטר. הגובה הוא 57.5 מ"מ ( איור 5A).
	<ol><li>לפני הניסוי, להשרות את fixator עצב אקריליק מחוייט אקונומיקה-פתרון עבור 30-60 דקות ולאחריו השריה במים סטריליים.</li>
		<li>בעזרת וו זכוכית, להרים את העצב בזהירות ושים אותו בחריץ של רכיב א</li>
		<li>בורג לרכיב השני רכיב אני מילוי המרכזי טוב של רכיב אני עם צלצול &#39; s פתרון לשימור הפצת ועצב אולטראסוניות.</li>
		<li>בורג לרכיב השלישי HIFU דיור קונוס. Dock הרכיב השלישי עם הרכיב השני דרך ארבע הרגליים של הרכיב השני. 
		הערה: המרכז גיאומטרי של שלושת הרכיבים ו המתמר מיושרים. המרחק בין העצב המתמר שווה לאורך המוקד, אשר מבטיח העצב בתוך אזור מוקד HIFU.</li>
	</ol></li> <li>להוסיף זוג אחד של דיקור מחטים לתוך המקור בעצב את הזוג השני לתוך שריר הסובך. להתחבר לכל זוג מחטים אלקטרופיזיולוגיה רכישת המערכת דרך כבל קואקסיאלי חשמל ( איור 1). 
	הערה: על קצה אחד של הכבל הם שני סרטונים אליגטור קליפ שתי מחטים בנפרד, בקצה השני של הכבל הוא מחבר BNC לקשר את המערכת. הזוגות של מחטי אקופונקטורה לעבוד וגם אלקטרודות מגרה-בעצב האלקטרודות הקלטה לשריר הסובך.
	<ol><li>להגדיר את קצב הדגימה ואת רוחב הפס של מערכת רכישה אלקטרופיזיולוגיה כדי 50 הרץ ו 70 הרץ - 3 קילו-הרץ, בהתאמה. חלות גירוי העל-מקסימלי עם רוחב הדופק של 0.1 ms האלקטרודות מגרה על המקור של עצב.</li>
		<li>להקליט את CMAPs בין האלקטרודות הקלטה ומגבירים את CMAPs עם המגבר המובנה במערכת רכישת אלקטרופיזיולוגיה- 
		הערה: השתמש המגבר המובנה במערכת רכישת אלקטרופיזיולוגיה כדי להגביר את המסרים העצביים ולהקליט את CMAPs בין האלקטרודות הקלטה עם מערכת רכישה אלקטרופיזיולוגיה-</li>
	</ol></li> <li>שימוש מסחרי 2.68 MHz HIFU מתמר לדכא את CMAPs בחולדות נוירופתי סוכרתי. 
	הערה: המפרט של המתמר מתוארים כדלקמן: רכיב בודד כדורית קערה עם קוטר הצמצם של 6 ס מ, אורך מוקד של 5 ס מ, ואת אזור מוקד אליפסואיד של 4 מ מ לעומק של 0.8 מ מ רוחב בשטח חינם.
	<ol><li>Immerse קונוס כדורית, מתמר HIFU והחרוט מכסה למיכל מלא במים degassed. מכניסים את מתמר HIFU קונוס כדורית ותקן השער חרוט אל הפתח העליון של קונוס כדורית על ידי 6 ברגים ראש ( איור 5B). לאחר בועות קונוס כדורית מגורשים באופן טבעי בשל צפיפות נמוכה של בועות לעומת מים, חותם הפתח החזיתי של קונוס על ידי קלטת מ מ 0.03 נקודות שקוף עבה. בורג הרכיב השלישי על גבי כדורית קונוס.</li>
		<li>להוציא את מתמר HIFU עם חרוט כדורית, הרכיב השלישי ממיכל המים degassed. 
		הערה: מים אוסמוזה הפוכה השתמשו במחקר זה המים מטוהרת על-ידי התהליך של אוסמוזה הפוכה. מים אוסמוזה הפוכה מורתח לגרש את הגז. לאחר קירור המים degassed מתקבל במיכל אטום בודד.</li>
	</ol></li> <li>את רכיב אני אל החלל בין העצב לשריר בקפידה, ומקם את העצב בהפער של רכיב א לבצע צעדים 4.2.3 4.2.4 על מנת להבטיח כי העצב בתוך אזור מוקד של HIFU ( איור 3A < / חזק >).</li>
	<li>קישור מחולל אותות, מגבר כוח גלי רדיו. לחבר מגבר כוח את המתמר HIFU לדור של קרן HIFU. באופן ידני להגדיר הפלט מתח של מחולל HIFU מתמר דרך המגבר כוח. לבטל באופן ידני את הגנרטור פונקציה ברגע נגמר הזמן HIFU-חשיפה. להתבונן זמן שימוש בשעון עצר. 
	הערה: עוצמת האנרגיה של קרן HIFU השתמשו במחקר זה הם W/cm 2,810 2 ו- 84 מ"מ/J 2, בהתאמה.</li>
	<li>בו זמנית, לספק את הגירוי דרך מערכת רכישה electrophysiology (שלב 4.3) ואת HIFU קרן דרך מערכת HIFU (שלב 4.6) בעצב בזמן הקלטת את CMAPs. הארך בהדרגה את החשיפה HIFU בעצב 3 s, 5 s כדי 8 s עד נצפית ירידה או עיכוב של משרעת של CMAPs.
	<ol><li>שיא CMAPs פעם אחת לשניה במהלך מסירת HIFU קרן. לאחר התבוננות בשינוי משרעת של CMAPs, כבה את מנגנון HIFU, באופן ידני, לחץ על סמל הרשומה על התוכנה רכישת אלקטרופיזיולוגיה לרשומה CMAPs כל 2 דקות תוך עשר דקות מוקדם, כל 5 דקות 30 דקות רצופות, ואני בכל 10 דקות ב- שלב אחרון עד זמן ההקלטה מגיע ה' 2</li>
	</ol></li> <li>רכיב נפרד II ו- III של העצבים fixator ( איור 3) להסיר את המתמר HIFU החתך. רכיב נפרד השני ואני לשחרר בעצב מאובטחת. תפר באתר כירורגית של העכברוש סוכרתיים על ידי תפרים כרום 4-0 לאחר הקלטת את CMAPs. חלות יוד נוזלי באתר כירורגית למניעת זיהום.
	<ol><li>מקום הכלובים על כרית החימום ולאפשר העכברושים לשחזר בכלובים שלהם לפני החזרתם למתקן בעלי חיים. לספק את החולדות איבופרופן במי השתייה למשך 3 ימים או הזרקה בקרום הבטן של הבופרנורפין (0.05 - 0.1 מ"ג/ק"ג).</li>
	</ol></li> <li>להוסיף אלקטרודות מגרה, הקלטה ב המקור בעצב את שרירי הסובך ומורדמת חולדות נוירופתי סוכרתי כפי שתואר בשלבים 4.1.2 ו- 4.3 בימים 7, 14, ו- 28 לאחר sonication HIFU הראשונית. חזור על שלבים 4.3.1 ל 4.3.2.
	<ol><li>מקום הכלובים על כרית החימום ולאפשר העכברושים לשחזר בכלובים שלהם לפני העברת הכלובים למתקן בעלי חיים-</li>
	</ol></li> <li>המתת חסד העכברושים לאחר הניסוי. מקם את החולדה בחדר פחמן דו-חמצני. המתן כ 5 דקות על החולדות. תפסיק להתנשם. להבטיח כי הלב הפסיק לפעום.</li>
</ol>

<ol><li>Abuaisha, B. B., Costanzi, J. B., Boulton, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acupuncture+for+the+treatment+of+chronic+painful+peripheral+diabetic+neuropathy%3A+A+long-term+study%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Res+Clin+Pract%22%5BJournal%5D)">Acupuncture for the treatment of chronic painful peripheral diabetic neuropathy: A long-term study.</a> Diabetes Res Clin Pract. 39 (2), 115-121 (1998).</li>
<li>Hamza, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+electrical+nerve+stimulation%3A+A+novel+analgesic+therapy+for+diabetic+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">Percutaneous electrical nerve stimulation: A novel analgesic therapy for diabetic neuropathic pain.</a> Diabetes Care. 23 (3), 365-370 (2000).</li>
<li>Ballantine, H. T. Jr, Bell, E., Manlapaz, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/13686380">Progress and problems in the neurologic applications of focused ultrasound.</a> J Neurosurg. 17, 858-876 (1960).</li>
<li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Image-guided+high-intensity+focused+ultrasound+for+conduction+block+of+peripheral+nerves%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Image-guided high-intensity focused ultrasound for conduction block of peripheral nerves.</a> Ann Biomed Eng. 35 (1), 109-119 (2007).</li>
<li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-intensity+focused+ultrasound+attenuates+neural+responses+of+sciatic+nerves+isolated+from+normal+or+neuropathic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">High-intensity focused ultrasound attenuates neural responses of sciatic nerves isolated from normal or neuropathic rats.</a> Ultrasound Med Biol. 41 (1), 132-142 (2015).</li>
<li>Young, R. R., Henneman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+block+of+nerve+conduction+by+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Neurol%22%5BJournal%5D)">Reversible block of nerve conduction by ultrasound.</a> Arch Neurol. 4, 83-89 (1961).</li>
<li>Lele, P. P. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0014488663900086">Effects of focused ultrasonic radiation on peripheral nerve, with observations on local heating.</a> Exp Neurol. 8 (1), 47-83 (1963).</li>
<li>Hong, C. Z. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1846738">Reversible nerve conduction block in patients with poly- neuropathy after ultrasound thermotherapy at therapeutic dosage.</a> Arch Phys Med Rehabil. 72 (2), 132-137 (1991).</li>
<li>Okada, A., Morita, Y., Fukunishi, H., Takeichi, K., Murakami, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+magnetic+resonance-guided+focused+ultrasound+treatment+of+uterine+fibroids+in+a+large+Japanese+population%3A+impact+of+the+learning+curve+on+patient+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Non-invasive magnetic resonance-guided focused ultrasound treatment of uterine fibroids in a large Japanese population: impact of the learning curve on patient outcome.</a> Ultrasound Obstet Gynecol. 34 (5), 579-583 (2009).</li>
<li>Huisman, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+consensus+on+use+of+focused+ultrasound+for+painful+bone+metastases%3A+current+status+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Hyperthermia%22%5BJournal%5D)">International consensus on use of focused ultrasound for painful bone metastases: current status and future directions.</a> Int J Hyperthermia. 31 (3), 251-259 (2015).</li>
<li>Dickinson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medium-term+Outcomes+after+Whole-gland+High-intensity+Focused+Ultrasound+for+the+Treatment+of+Nonmetastatic+Prostate+Cancer+from+a+Multicentre+Registry+Cohort%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Medium-term Outcomes after Whole-gland High-intensity Focused Ultrasound for the Treatment of Nonmetastatic Prostate Cancer from a Multicentre Registry Cohort.</a> Eur Urol. 70 (4), 668-674 (2016).</li>
<li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+high-intensity+focused+ultrasound+on+nerve+conduction%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Effects of high-intensity focused ultrasound on nerve conduction.</a> Muscle Nerve. 37 (2), 241-250 (2008).</li>
<li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+conduction+block+in+diabetic+rats+using+high-intensity+focused+ultrasound+for+analgesic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Nerve conduction block in diabetic rats using high-intensity focused ultrasound for analgesic applications.</a> Br J Anaesth. 114 (5), 840-846 (2015).</li>
<li>Donoff, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+regeneration%3A+basic+and+applied+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Rev+Oral+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Nerve regeneration: basic and applied aspects.</a> Crit Rev Oral Biol Med. 6 (1), 18-24 (1995).</li>
<li>Fawcett, J. W., Keynes, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peripheral+nerve+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Peripheral nerve regeneration.</a> Annu Rev Neurosci. 13, 43-60 (1990).</li>
<li>Nightingale, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuropathic+pain+market%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">The neuropathic pain market.</a> Nat Rev Drug Discov. 11 (2), 101-102 (2012).</li>
<li>Lipton, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-pulse+transcranial+magnetic+stimulation+for+acute+treatment+of+migraine+with+aura%3A+a+randomised%2C+double-blind%2C+parallel-group%2C+sham-controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Neurol%22%5BJournal%5D)">Single-pulse transcranial magnetic stimulation for acute treatment of migraine with aura: a randomised, double-blind, parallel-group, sham-controlled trial.</a> Lancet Neurol. 9 (4), 373-380 (2010).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

חלקית, זמנית דיכוי של action potentials של העצבים נוירופתי עכברים סוכרתיים ויוו , מופע מיידית של השפעת החסימה לאחר הטיפול HIFU שניהם נצפו. מחקר מעקב 28 יום על CMAPs הוכיח כי מצור בטוח של תסמונת גיאן יכול להתבצע בדלפק חשיפה HIFU המתאים. כתוצאה מכך, הפרוטוקול הנ של הטיפול HIFU יכול לספק פתרון חלופי עבור הבלוק בהולכה הפיך ממוגלה העצבים בחולדות סוכרתית.
בשיטה זו, יש אין התנוונות מערכת העצבים, העצבים החישה תוכל להתאושש לחלוטין על פני תקופה של שעות עד כמה ימים העצבים מתון פציעות<sup class="...

תרופות דרך הפה, דיקור סיני1, גירוי עצבי חשמלי2 שימשו לטיפול של פולינוירופתיה של סוכרתית כואבת. עם זאת, תופעות לוואי של תרופות דרך הפה, פעולה פולשנית של דיקור סיני, גירוי עצבי חשמלי ה"בלתי את היעילות הטיפולית ואת הדבקות של המטופל. אולטרסאונד בלוק של העצבים ההיקפיים במודלים של בעלי חיים נחקר במשך עשרות שנים-3,-4,-5. הולכה של במבחנה ממוגלה עצבים של הצפרדע הירוקה גדול היה עכבות הפיכה לאחר הטיפול של 10-20 פולסים של אולטרסאונד חשיפה של 0.4 - 1.0 s6. גורם אחד כדי לחסום גיאן הוא עליית הטמפרטורה המושרה על ידי אולטרסאונד7. עבור חולי פולינוירופתיה של, הדיכוי של פוטנציאל פעולה השריר מורכבים (CMAPs) בוצעה ב שיתוק נחשפים אולטרה סאונד בעוצמה נמוכה 2 דקות8. הפעם החלמה מלאה הייתה בתוך 5 דקות.
לאחרונה, מינהל המזון והתרופות של ארצות הברית אישרה HIFU לטיפול פולשני גידולים שרירנים ברחם9, כאב palliations של עצם גרורות10וסרטן הערמונית11. מתמר HIFU פולט קרני אקוסטית מחוץ לגוף, ואת הקורות לשדר במדיומים שונים של רקמות מתכנסים הגידול היעד על המוקד. אזור מוקד נוצר באופן מיידי כדי ליצור אפקטים מותאמים לשפות אחרות על גידולים היעד מבלי לפגוע ברקמות שמסביב. HIFU הוחל גם לעכב את הובלת העצבים או לגרום עצב denervation ויוו ניסויים של חולדות רגילה ספראג-Dawley (SD)12. בנוסף, ההשפעות לטווח קצר ולטווח ארוך של HIFU על העצבים נוירופתי כבר ובדוקים13. התוצאות הקודמות הפגינו הבלוק הפיך או קבועה של הובלת העצבים החישה יכולה להיות מושגת על ידי HIFU עם פרמטרים מתאימים. מלבד יישומים להרגעה, HIFU עשויה לשמש ככלי לחקור את התרומה היחסית של רכיבים היקפיים ומרכזי העצבים המצור הולכה מחקר בסיסי לנוירולוגיה והתפתחות של משכחי כאבים. לכן, נדרשת HIFU חסימה טכנולוגית פלטפורמה ספציפיות עבור העצבים ההיקפיים במודלים של בעלי חיים. מטרת מאמר זה היא כדי להדגים את ההליכים לחסימת באופן חלקי או מלא של פוטנציאל פעולה של העצבים ההיקפיים בחולדות נוירופתי סוכרתי מאת HIFU. עכברים סוכרתיים מודלים והערכת סימפטומים נוירופתי היקפיים הוקמו. פלטפורמה HIFU ותהליכים ניסיוני ספציפי לטיפול בבעיות עצבים ממוגלה עכברוש מוצגים.

<table><tbody><tr><td>סטרפטוזוטוצין</td><td>סיגמא</td><td>85882</td><td></td></tr><tr><td>חומצת לימון מונוהידרט&nbsp;</td><td>סיגמא</td><td>C1909</td><td></td></tr><tr><td>טריסודיום ציטראט דיהידראט</td><td>סיגמא</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>מדי גלוקוז</td><td>Roche Accu-Check Active</td><td>GC</td><td></td></tr><tr><td>מכשיר פון פריי אלקטרוני</td><td>IITC Life Science</td><td>2390</td><td></td></tr><tr><td>פלטה חמה</td><td>IITC Life Science</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biopac MP36 מערכת רכישה</td><td>Biopac Systems, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מתמר HIFU</td><td>Sonic Concepts</td><td>H108</td><td></td></tr><tr><td>מחולל פונקציות</td><td>Agilent</td><td>33250A</td><td></td></tr><tr><td>מגבר כוח</td><td>אלקטרוניקה & חדשנות</td><td>1040L</td><td></td></tr><tr><td>חולדות&nbsp;</td><td>Biolasco טייוואן</td><td>Sprague-Dawley</td><td></td></tr><tr><td>Puralube משחה וטרינרית</td><td>Dechra</td><td></td><td></td></tr><tr><td>isoflurane וופורייזר</td><td>Parkland Scientific</td><td>V3000PS</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurance</td><td>Attane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Restraint bag (Decapicones)</td><td>Braintree Scientific</td><td>DC 200</td><td></td></tr></tbody></table>

כלי אולטראסוניות גיאן לחסום במודלים עכברים סוכרתיים

An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models

עצב בלוק בהולכה עם מתמר אולטרסאונד ממוקד בעוצמה גבוהה (HIFU) בוצעה במודלים של בעלי חיים נורמליים, סוכרת לאחרונה. HIFU הפיכה לחסום את הולכה של העצבים ההיקפיים ללא פגיעה בעצבים תוך שימוש פרמטר אולטראסוניות המתאים. בלוק זמני וחלקי פוטנציאל פעולה של עצבים מראה כי HIFU יש פוטנציאל להיות טיפול קליני יעיל להקלה בכאבים. עבודה זו ממחישה את נהלי לדכא את פוטנציאל פעולה של עצבים נוירופתי עכברים סוכרתיים ויוו באמצעות מתמר HIFU. השלב הראשון הוא ליצור למבוגרים זכר חולדות נוירופתי סוכרתי בזריקה streptozotocin (STZ). השלב השני הוא להעריך את נוירופתיה סוכרתית בחולדות סוכרת הנגרמת STZ על ידי בדיקה אלקטרונית של פון פריי צלחת חמה. השלב הסופי הוא שיא ויוו חוץ-תאית פעולה פוטנציאל של עצב חשוף HIFU sonication. השיטה שהראתי כאן יכולים ליהנות המחקר של יישומים כאבים אולטרסאונד.

אין ויוו המחקר הראה כי, עם מנה HIFU של 3 s sonication בעוצמה W/cm 2,8102, CMAPs דוכאו על-ידי 20% של הבסיס, אבל הם היו התאושש לגמרי לאחר 30 דקות (איור 2 א, יהלומים) והיו כמעט קבוע בתקופה של 28 ימים (איור 2B, יהלומים). 5 s HIFU החשיפה מעוצמת אותה, CMAPs ירד ל- 65.4% (9.5%) של הבסיס ב 4 דקות, התאושש 73.7% (12.6%) של תוכנית בסיסית על ידי 120 דקות (איור 2 א, ריבועים). CMAPs לא החזיר לר...

עבודה זו מציגה את המתודולוגיה של החלת אולטרסאונד ממוקד בעוצמה גבוהה כדי לחסום את פוטנציאל פעולה של עצבים נוירופתי סוכרתי.

Nerve conduction block with a high intensity-focused ultrasound (HIFU) transducer has been performed in normal and diabetic animal models recently. HIFU ...

המטרה הכללית של טכניקת האולטרסאונד הזו היא לבצע חסימה זמנית של הולכה בעצב פריפרי, באמצעות אפקט תרמי של אולטרסאונד. שיטה זו עשויה לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בתחום ניהול הכאב, כגון אלגזיה של נוירופתיה פריפרית סוכרתית. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שחשיפת העצב המטרה לאולטרסאונד היא מקומית וניתנת לחזרה.ההשלכות של טכניקה זו נוטות לעבר אלגזיה של כאב נוירופתי בבני אדם, מכיוון שטיפול באולטרסאונד הוא תהליך ממושך ובטוח מאוד. את הפרוצדורה ידגימו Cheng Jung-Sung ו-Tan Joo-Shin יחד עם עוזרי מחקר מהמעבדה. לאחר הצמיה של חולדות זכר Sprague-Dawley או SD והכנת תמיסת STZ בהתאם לפרוטוקול הכתוב, השתמשו במחט בכיל 26 או 28 כדי לשאוב את תמיסת ה-STZ בריכוז 50 milligram per kilogram למזרק אינסולין או טוברקולין של 1 milliliter.השתמשו בפד אתנול כדי לנקות את אתר ההזרקה בחולדות והזריקו את תמיסת ה-STZ לבטנו של בעל החיים. 72 שעות לאחר ההזרקה, מדדו את ריכוז הגלוקוז בבלאזמה בצום של כל החולדות שהוזרקו, באמצעות דקירה של קצה הזנב בעזרת לנסט לדם כדי להשיג טיפה קטנה של דם. הניחו את טיפת הדם על פס בדיקת גלוקוז והכניסו אותו למד גלוקוז לפני רישום רמות הגלוקוז בבלאזמה בצום.כדי להרגיל חולדה סוכרת שדומהה באמצעות STZ, העבירו אותה לכלוב בעל רצפת רשת מתכת בקוטר של one centimeter למשך 30 דקות. לאחר מכן, כדי להעריך את תגובת נסיגת כף הרגל האחורית, השתמשו ב-Von Frey Probe אלקטרוני בעל קצה קשיח כדי להפעיל לחץ ידני על המשטח הפלנטרי של כף הרגל האחורית של החולדות, והגבירו את הלחץ בהדרגה עד שנצפית תגובת נסיגה של כף הרגל. רשמו את הלחץ והמתינו 30 שניות לפני חזרה על המדידה.חמישה שבועות לאחר הזרקת STZ, לאחר הרדמת החולדות וביצוע צביטה של שטח כף הרגל התחתון בהתאם לפרוטוקול הכתוב, השתמש במכונת תספורת חשמלית כדי להסיר את הפרווה מהירך ומגב הגב. מרח יוד נוזלי על העור באתר הניתוח. לאחר מכן, השתמש בפד אלכוהול כדי לנגב את יוד הנוזל.באמצעות סקלפל סטרילי, בצעו חתך בעור באזור הירך הדורסלית. השתמשו במספריים כירורגיים כדי להרחיב את הרקמה מתחת לעור והשתמשו בווים לעור כדי לקבע אותו. באמצעות המספריים, הפרידו בזהירות את השרירים במקביל לפמור עד שסיבי העצב הסיאטיק (sciatic nerve) במרכז הירך, המוטמעים בשרירים, יהיו גלויים.השתמש בזהירות בוו זכוכית כדי להפריד את עצב הסיאטיק (sciatic nerve) מאזור אמצע הירך מהרקמה החיבורית ומהשרירים שסביבו. לאחר מכן, כדי למקם את עצב הסיאטיק במוקד של האולטרהסאונד הממוקד בעוצמה גבוהה (HIFU focal zone), השתמש בקוצב עצבים בהתאמה אישית; הרם בזהירות את העצב באמצעות וו זכוכית והנח אותו בחריץ של רכיב מספר אחת של המכשיר. לבסוף, הברג את רכיב מספר שתיים אל רכיב מספר אחת.לאחר מכן, השתמש ב-Ringer's Solution כדי למלא את הבאר המרכזית של רכיב מספר אחת לצורך הפצה אולטרסונית ושימור העצב. הברג את רכיב מספר שלוש אל קונוס המעטפת של ה-HIFU. לאחר מכן, דרך ארבע הרגליים של רכיב מספר שתיים, חבר את רכיב מספר שלוש לרכיב מספר שתיים.לאחר החדרת זוג אחד של מחטי דיקור לראשית העצב הסיאטי והזוג השני לשריר הגסטרוכנמיוס (gastrocnemius), חברו כל זוג מחטים למערכת הרכישה האלקטרופיזיולוגית באמצעות כבל קואקסיאלי חשמלי. הגדירו את קצב הדגימה ואת רוחב הפס של מערכת הרכישה האלקטרופיזיולוגית ל-50 kilohertz ול-70 hertz עד 3 kilohertz, בהתאמה. לאחר מכן, בראשית העצב הסיאטי, התיקו גירוי סופר-מקסימלי ברוחב פולס של 0.1 milliseconds לאלקטרודות הגירוי.במערכת הרכישה האלקטרופיזיולוגית, רשמו את פוטנציאלי הפעולה המורכבים של השריר או CMAPs באמצעות אלקטרודות ההקלטה, והגבירו את ה-CMAPs בעזרת המגבר המובנה. כדי להשתמש במתמר HIFU מסחרי בתדר של 2.68 millihertz לדיכוי ה-CMAPs בחולדות עם נוירופתיה סוכרתית, טבלו את החרוט הכדורי, את מתמר ה-HIFU ואת כיסוי החרוט במיכל מלא במים מנווננים. הכניסו את מתמר ה-HIFU לתוך החרוט הכדורי והשתמשו בשישה ברגי ראש כדי לקבע את כיסוי החרוט לפתח העליון של החרוט הכדורי.לאחר שהבועות בקונוס הכדורי יפלטו באופן טבעי בשל צפיפותן הנמוכה בהשוואה למים, השתמשו בסרט שקוף בעובי 0.03 מילימטר כדי לאטום את פתח הקדמי של הקונוס. לאחר מכן, הברגו את רכיב שלוש אל הקונוס הכדורי והוציאו את מתמר ה-HIFU יחד עם הקונוס הכדורי ורכיב שלוש ממיכל המים מנוקי הגזים. הכניסו בזהירות את רכיב אחת אל החלל שבין העצב לשריר ומקמו את העצב במרווח של רכיב אחת.כדי להבטיח שהעצב נמצא במוקד ה-HIFU כפי שהודגם קודם לכן, הברגו את רכיב שתיים אל רכיב אחת. לאחר הברגת רכיב שלוש אל חרוט המארז של ה-HIFU, דרך ארבע הרגליים של רכיב שתיים, חברו את רכיב שלוש לרכיב שתיים והשתמשו ב-Ringer's Solution למילוי הבאר המרכזית של רכיב אחת לצורך התפשטות אולטרסאונית ושימור העצב. חברו גנרטור פונקציות ומגבר הספק בתדר רדיו.חבר את מגבר ההספק למתמר ה-HIFU ליצירת קרן ה-HIFU. לאחר מכן, הגדר ידנית את מתח המוצא של מחולל הפונקציות (Function Generator) למתמר ה-HIFU באמצעות מגבר ההספק, והפעל טיימר למדידת זמן החשיפה ל-HIFU. כבה ידנית את מחולל הפונקציות עם סיום זמן החשיפה ל-HIFU.העבירו בו-זמנית את הגירוי באמצעות מערכת רכישת האלקטרופיזיולוגיה ואת קרן ה-HIFU באמצעות מערכת ה-HIFU אל העצב הסיאטיק תוך כדי הקלטת ה-CMAPs. הגבירו בהדרגה את חשיפת ה-HIFU של העצב הסיאטיק משלוש שניות, חמש שניות, ולאחר מכן לשמונה שניות, עד שנצפה בירידה או בעיכוב של אמפליטודת ה-CMAPs. הקליטו את ה-CMAPs פעם בשנייה במהלך הפעלת קרן ה-HIFU.לאחר התבוננות בשינוי באמפליטודה של ה-CMAPs, כבו את מערכת ה-HIFU ולחצו ידנית על סמל ההקלטה (Record) בתוכנת הרכישה של האלקטרופיזיולוגיה כדי להקליט CMAPs למשך שעתיים. לאחר הסרת רכיבי מקבע העצב, תפירה של אתר הניתוח בחולדה הסוכרתית ומתינת זמן להתאוששות החולדות, בימים השביעי, ה-14 וה-28 לאחר הסוניקציה הראשונית ב-HIFU, הכניסו אלקטרודות גירוי והקלטה בחולדות הסוכרתיות עם נוירופתיה תחת הרדמה כפי שנעשה קודם לכן, והקליטו CMAPs נוספים כפי שהודגם מוקדם יותר בסרטון זה. המחקר in vivo המוצג בסרטון זה הראה כי עם מינון של אולטרסאונד ממוקד בעוצמה גבוהה, או HIFU, של שלוש שניות של סוניקציה בעוצמה של 2810 watts per square centimeter, ה-CMAPs דוכאו ב-20% מהקו הבסיס (baseline), אך הם התאוששו לחלוטין לאחר 30 דקות.עבור חשיפה ל-HIFU למשך חמש שניות באותה עוצמה, ה-CMAPs ירדו ל-65.4% מערך הבסיס לאחר ארבע דקות, והתאוששו ל-73.7% מערך הבסיס תוך 120 דקות. ה-CMAPs לא חזרו לרמות הבסיס עד ליום ה-14. כאשר זמן הסוניקציה של ה-HIFU הועלה ל-8 שניות תחת אותה עוצמה, ה-CMAPs פחתו ל-26% מערך הבסיס לאחר ארבע דקות, אך עלו ל-38% מערך הבסיס לאחר 120 דקות, ועלו בהדרגה ל-74% מערך הבסיס עד ליום ה-28.ברגע שהטכניקה נשלטת, ניתן לבצעה בשעה אחת אם היא מבוצעת כראוי. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לזכור להתייחס לעצב בזהירות רבה. לאחר הליך זה, ניתן לבצע שיטות אחרות, כגון זיהוי פשוט של המותג, כדי לענות על שאלות נוספות כגון אינטראקציה סנסורית פריפריאלית.לאחר פיתוחה, סללה טכניקה זו את הדרך עבור חוקרים בתחום ניהול הכאב לבחון מודליות אנרגטית חדשה לטיפול בכאב בנוירופתיה פריפרית. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיה לכם הבנה טובה לגבי אופן מיפוי ההולכה של עצבים בנוירופתיה סוכרתית במודל של חולדה באמצעות אולטרסאונד. זכרו כי עבודה עם מגבר הספק עלולה להיות מסוכנת ביותר, ויש לנקוט תמיד באמצעי זהירות, כגון חבישת כפפות עבודה מבודדות, בעת ביצוע הליך זה.

an-ultrasonic-tool-for-nerve-conduction-block-in-diabetic-rat-models

Research

JoVE Journal

Bioengineering

הנדסה ביולוגית

כאן אנו מתארים הליך אמין ופשוט מהירה כדי לקבוע את הטמפרטורה הנמוכה ביותר שבה חולדות או עכברים מראים התנהגות...

קביעה מהירה של סף nociceptive תרמי בעכברים סוכרתיים

מקור: Lee, Y. F., et al. כלי אולטראסוני לחסימת הולכה עצבית במודלים של חולדות סוכרתיות. J. Vis. Exp. (2017)סרטון זה מדגים את השימוש באולטרסאונד ממוקד בעוצמה גבוהה (HIFU) כדי לחסום פוטנציאל פעולה מהעצב הסיאטי לשריר הגסטרוקנמיוס במודל חולדה סוכרתית. עם העברת קרן ה-HIFU לעצב, ירידה באות השריר מאשרת את הפוטנציאל של HIFU כטיפול לא פולשני לשיכוך כאבים נוירופתיים סוכרתיים.

אולטרסאונד ממוקד בעוצמה גבוהה לחסימת פוטנציאל פעולה עצבית במודל חולדה סוכרתית 

מדידות של נכסי הולכה עצביות in vivo מדגימות כלי רב עוצמה כדי לאפיין מודלים של בעלי חיים שונים של מחלות neuromuscular. כאן, אנו מציגים פרוטוקול קל ואמין, שבאמצעותו ניתן לבצע ניתוח אלקטרו על עצבי הירך של עכברים מורדמים.

במדידות Vivo אלקטרו על עצבים העכבר השת

טכניקות דעתנית עצב לספק כלי רב עוצמה כדי לבחון פתופסיולוגיה ושינויים biophysical שקודמים אירועים ניוונית בלתי הפיך. כתב יד זה מדגים את השימוש של טכניקות אלה על עצם הגומד של חולדות מורדם.

אין ויוו מדידות אלקטרופיזיולוגיות של עצב הגומד עכברוש עם הבדיקות דעתנית עצב

מחקר זה יוצר מודל ניסיוני של נוירופתיה טהור סיבים קטנים עם resiniferatoxin (RTX). מנה ייחודית של RTX (50 µg/kg) היא אופטימלית לפיתוח מודל נוירופתיה סיבים קטנים המחקה מאפייני המטופל יכול לעזור לחקור את המשמעות nociceptive המולקולרי שבבסיס כאב נוירופתי.

הקמת מודל העכבר של נוירופתיה סיבים קטנים טהור עם אגוניסט Ultrapotent פוטנציאלי קולטן ארעי Vanilloid סוג 1

הקלטה של סיב יחיד היא טכניקת אלקטרופיסיולוגית יעילה הישימה במערכות העצבים המרכזיות וההיקפית. יחד עם הכנת DRG שלם עם העצב המכניסטי, מנגנון כשל ההולכה נבדק. שני הפרוטוקולים משפרים את ההבנה של היחסים בין מערכת העצבים ההיקפית לכאב.

השימוש ב Vivo הקלטה חד-סיבים ושורש השורש שלמות עם העצב מוצמד לבחון את המנגנון של כשל הולכה

פרוטוקול זה מתאר את ההכנה של רקמת עצב סיאטית שלמה של חולדה לגירוי אלקטרופיזיולוגי ex vivo ורישום באמבט מלוחים בעל שני תאים מווסתים סביבתית.

הכנת עצב סיאטי חולדה לנוירופיזיולוגיה Ex Vivo

אנו מציגים פרוטוקול לשימוש במחט התת עורית של פו במודל של פגיעה כרונית בהיצרות כדי לגרום לכאב עצבי סיאטי בחולדות.

יעילות המחט התת עורית של פו על כאב עצבי סיאטי: שינויים התנהגותיים ואלקטרופיזיולוגיים במודל חולדה של פגיעת התכווצות כרונית

כאן אנו מציגים שיטה להערכת הפעלה וחסימת אקסונים סנסוריים בעצבים היקפיים בניסויים חריפים ומורדמים בחולדות בחיים באמצעות שני סוגי מדידות אלקטרופיזיולוגיות של עמוד שדרה שיכולות להבחין בפעילות תת-סוגים של סיבי עצב: פוטנציאלי שדה מקומיים והקלטות נוירונים בודדים בטווח דינמי רחב.

שיטות אלקטרופיזיולוגיות להערכת חסימת כאב היקפית בעכברוש מונשם

פרוטוקול זה מציג מודל חולדה הניתן לשחזור באמצעות עצבים תחושתיים כדי לחקות כאבי נוירומה אנושיים ולהעריך טיפולים כירורגיים, ומציע כלי רב ערך למחקר נוירומה תרגומית.

מודל מכרסם כירורגי חדשני לחקר אפשרויות טיפול בכאב נוירומה באמצעות עצבוב שרירים ממוקד דרך העצב הספנוס

למד כיצד לחסום באופן זמני את הולכת העצבים הפריפריים בעכברים סוכרתיים באמצעות אולטראסוניות ממוקדת בעוצמה גבוהה. שיטה זו מציעה גישה לא פולשנית לטיפול בכאב נוירופתיה סוכרתית.

כלי אולטראסוניות גיאן לחסום במודלים עכברים סוכרתיים

גלה סרטונים נוספים