Name: הליך ליטוגרפית רך לייצור מכשירים Microfluidic פלסטיק עם יציאות תצוגה שקוף לאור גלויים ולא אינפרא-אדום (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: למד שיטת ליטוגרפיה רכה לייצור מכשירים מיקרו-פלואידיים מפלסטיק תואמים למיקרוספקטרוסקופיית אינפרא-אדום. הטכניקה מאפשרת הדמיית תאים חיים ללא תוויות ומיפוי ביוכימי מפורט.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחברים להכיר בהכרת תודה תמיכה כספית MBI.

1. הכנה של סיליקון העיקרי עובש הערה: photomask נדרש עבור הכנת כייר העיקרי. Photomask יכול להיות לרכוש מספקי עצמאית או מפוברק בארגון באמצעות הליכי ייצור מסכת אופטי סטנדרטי. Photomask עם קוטביות שדה בהיר משמש במקרה זה ( איור 2 ).
<ol><li>תבנית הגדרת <ol><li>ספין מעיל רקיק צורן 4 אינץ עם סו-8 3010 photoresist שלילי-2,300 סל"ד ל 30 ס</li>
		<li>רך-אופים photoresist על פלטה חמה ב- 65 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות ולאחר מכן ב 95 מעלות צלזיוס במשך 8 דקות</li>
		<li>לחשוף את photoresist לאור UV (i-line, 365 ננומטר) דרך photomask תחת המסכה aligner עבור מנה האנרגיה הכוללת של 100-120 mJ/cm 2; מצב קשר קשה הוא העדיפו להגיע לפתרון טוב יותר.</li>
		<li>הסר את לחם הקודש ולהחיל פוסט החשיפה אופים ב 65 ° C עבור 1 דקות ולאחר מכן ב 95 ° C עבור 2 דק.</li>
		<li>לפתח את photoresist באמצעות מפתח SU-8 בטמפרטורת החדר, ולאחר מכן לשטוף עם אלכוהול איזופרופיל, ולפוצץ בעדינות יבש עם חנקן; עובי התבנית נמדד צריך להיות 10 מיקרומטר ומטה. ראה איור 2 b עבור התמונה התבנית סיליקון בפועל.</li>
	</ol></li> <li>Silanization סיליקון עובש <ol><li>לטפל בתבנית סיליקון עם חמצן פלזמה 60 W ב-30 s עם 20 sccm של זרימת חמצן. הגדר את הלחץ תא mbar 1-10 במהלך התהליך.</li>
		<li>מניחים את התבנית בתוך צנצנת ואקום עם 50 µL של silane ולהשאיר את הצנצנת במדינה ואקום (1-10 mbar) לפחות 2 ה 
		הערה: תהליך silanization יוצר ציפוי פני השטח הידרופובי אשר מונעת PDMS נשאר עם תבנית ה- 15. שימו לב כי העובש הראשי יכול גם להיות מפוברק באמצעות שיטה חלופית, שכרוך איכול יבש של הסיליקון. במקרה זה, photomask יהיה מול קוטביות (שדה אפל), הגדרת התבנית בשלב 1.1 ישתמש photoresist חיובי של.</li>
	</ol></li></ol> 2. הכנה של עובש משני PDMS <ol><li>PDMS ערבוב <ol><li>לערבב את PDMS elastomer ריפוי סוכן, 10:1; הסכום הכולל הוא כזה עובי PDMS המתקבל הוא כ 1 ל 1.5 מ מ.</li>
		<li>לאחר ערבוב יסודי, דגה את התערובת על ידי השארת אותו בתוך צנצנת ואקום במדינה ואקום (1-10 mbar) למשך כ- 15 דקות או עד אין בועות גלוי; זו כדי להסיר את כל האוויר לכודה בתוך התערובת.</li>
	</ol></li> <li>עובש שכפול <ol><li>שופכים את התערובת PDMS על העובש סיליקון מפוברק בשלב 1, דגה את התערובת כדי להסיר את כל האוויר לכודה את אותן הגדרות כמו שלב 2.1.2. חום-70 מעלות צלזיוס במשך שעתיים על פלטה חמה כדי לרפא את התערובת.</li>
		<li>להסיר את PDMS נרפא הכיריים ולתת לזה להתקרר עד לטמפרטורת החדר. עם סכין גילוח, לחתוך את PDMS לאורך שולי התבנית סיליקון.</li>
		<li>עם זוג מספריים, קמצוץ באחת מפינות החתך PDMS ו קלף בזהירות את העותק המשוכפל PDMS את העובש הסיליקון; התבנית microfluidic וכתוצאה מכך על זה עובש משנית היא בליטה, אשר קוטביות הפוכה של (עובש הראשי איור 2 ג).</li></ol></li> <li>Silanization של העותק המשוכפל PDMS (כמו שלב 1.2) <ol><li>מתייחסים כייר PDMS עם חמצן פלזמה 60 W ב-30 s עם 20 sccm של זרימת חמצן. הגדר את הלחץ תא mbar 1-10 במהלך התהליך.</li>
		<li>המקום כייר בוואקום צנצנת עם 50 µL של silane ולעזוב את הצנצנת במדינה ואקום (1-10 mbar) לפחות 2 ח'</li>
	</ol></li></ol> 3. הכנת תבניות PDMS הערה: כדי לתקנן את הצורה והגודל של המכשירים הסופי וכדי להקל את היישור של התכונות העיקריות של שני החצאים, שתי תבניות PDMS נפרד שימשו, המגדיר את הגיאומטריה של המכשיר, מיקום חלון שקוף וב - ו -out - let החיבורים. התבנית הראשונה PDMS מסייע הזיוף של המחצית עם דוגמה של המכשיר, בעוד השני מסייע להקל על הזיוף של המחצית שטוח של המכשיר-
<ol><li>עיצוב התבניות באמצעות תוכנת העיצוב (CAD) באמצעות מחשב. איור 3 מציגה את לפרוס הממדים של התבנית המשמשת כדי לפברק את החצי עם דוגמה של המכשיר. ולהמציא חצי שטוח של המכשיר, להסיר את החורים בקוטר 1.5 מ מ בעיצוב.</li>
	<li>לרכוש את התבניות של ספק חיצוני או באמצעות וטכני פנימי של אם הוא זמין. 
	הערה: אקריליק שימש כמו התבנית גשמי בשל קלות פבריקציה נוספת, נמוכה עלות השגה בסדנה סטנדרט כלשהו. קיימות אפשרויות חלופיות, כגון הדפסה תלת-ממדית.</li>
	<li>לערבב את PDMS elastomer, ריפוי סוכן 10:1; הקפד להכין כמות מספקת של PDMS לחלוטין ומטביעים את התבניות.</li>
	<li>לאחר ערבוב יסודי, דגה את התערובת על ידי השארת אותו בתוך צנצנת ואקום במדינה ואקום (1-10 mbar) למשך כ 15 דקות, או עד אין בועות גלוי (מביניהם מאוחר יותר); זה כדי להסיר את כל האוויר לכודה בתוך התערובת.</li>
	<li>שופכים את התערובת PDMS על תבניות אקריליק עד פני השטח העליון שלהם שקוע כ- 1 מ מ מתחת לפני השטח נוזלי. דגה את PDMS שוב כדי להסיר את כל האוויר לכודה את אותן הגדרות כמו 3.4. לחמם? את זה ב 60 מעלות צלזיוס במשך שעתיים על פלטה חמה מפולס כדי לרפא את התערובת.</li>
	<li>להסיר את PDMS נרפא הכיריים ולתת לזה להתקרר עד לטמפרטורת החדר. עם סכין גילוח, לחתוך את PDMS לאורך קצות התבניות אקריליק.</li>
	<li>עם זוג מספריים, קמצוץ באחת מפינות החתך PDMS ו קלף בזהירות את PDMS את התבניות אקריליק. 
	הערה: איור 3 b מציג את לפרוס ואת הממדים של העותק המשוכפל PDMS נהגה לפברק את החצי עם דוגמה של המכשיר-</li>
	<li>להתכונן המשוכפל השני PDMS בדיית הדירה חצי של המכשיר על ידי וחזור על שלבים 3.3 ל 3.7 אלא באמצעות התבנית אקרילי ללא החורים בקוטר 1.5 מ מ.</li>
</ol> 4. ייצור המכשיר Microfluidic <ol><li>פבריקציה נוספת של המחצית עם דוגמה של המכשיר (כלומר, עם התקן פריסה) <ol><li>התייחס לחלון 2 קפה עם חמצן פלזמה 60 W ב-30 s עם 20 sccm של זרימת חמצן. זאת במטרה לשפר את הזרימה של נועה במהלך הזיוף הבאה. 
		הערה: השלב זה אינו חובה.</li>
		<li>המקום בזהירות PDMS התבנית הראשונה (אחד עם העמודים בקוטר 1.5 מ מ) על משטח שטוח, למשל, סודה לימון צלחת ( איור 4 ). למקם חלון 2 CaF ממורכז מעל התקע PDMS, לחץ בעדינות את החלון כך נמצא קשר טוב עם התקע ( איור 4 b).</li>
		<li>לקחת את התבנית PDMS שנעשו בשלב 2 ומניחים צלחת UV שקופים דק (בתוך התיק הזה, צלחת קוורץ, עבה 500 מיקרומטר, 1.5 ס"מ x 1.5 ס"מ בגודל) על הישבן של העובש, מיושר עם המיקום של החדר המרכזי ( איור 4 c). לוודא כי המשטח קוורץ הוא בקשר טוב עם העובש PDMS. 
		הערה: Thצלחת קוורץ e מונע האזור לא רצויים של העובש בקלות במגע עם חלון 2 CaF.</li>
		<li>הנח בעדינות את הפנים עובש PDMS למטה לעבר החלון 2 קפה עם תא fluidic מיושר למרכז החלון 2 CaF. ודא כי כל המרכיבים (תבנית, כייר ו חלון) הם בקשר טוב, מיושר ( איור 4 c-4 d).</li>
		<li>בהדרגה לוותר על טיפות של נועה בב-תנו של התבנית PDMS, תנו לו לאט למלא את חלל הבטן. ברגע השרף בא במגע עם הקצה של החלון, הזרם נימי ימלא את הפער דק (~ 10 מיקרומטר) בין PDMS עובש חלון 2 CaF ( איור 4 e-4f).</li>
		<li>לאחר החלל מתמלא לגמרי, לרפא את נועה על ידי חשיפה לאור UV (למשל, עם מערכת חשיפה UV-LED, איור 4 g)- 
		הערה: זמן החשיפה עשויים להשתנות בהתאם עם האנרגיה של המקור UV. מערכת חשיפה UV-LED, אשר מספק צפיפות כוח של mW/cm 24 2, דורש בסביבות 90 s ב 100% כוח ומצב חשיפה מתמשכת.</li>
		<li>הסר בזהירות את הצלחת קוורץ דק מהחלק האחורי של העובש PDMS, ואז מקלפים בעדינות את התבנית PDMS מהחלק העליון של השכבה נועה ( איור 4 h). בסופו של דבר, להסיר את שכבת נועה מהתבנית PDMS ( איור 4 אני). 
		הערה: הפריסה שתיווצר התקן על נועה נרפא יש קוטביות זהה של התבנית ב כייר סיליקון העיקרית.</li>
	</ol></li> <li>פבריקציה נוספת של המחצית שטוח של המכשיר (כלומר, ללא התקן פריסה) <ol><li>מתייחסת לחלון 2 קפה עם חמצן פלזמה 60 W ב-30 s עם 20 sccm של זרימת חמצן. 
		הערה: השלב זה אינו חובה.</li>
		<li>במקום בזהירות את התבנית PDMS השני (אחד ללא עמודי בקוטר 1.5 מ מ) על משטח שטוח, למשל, צלחת סודה לימון. למקם חלון 2 CaF ממורכז מעל התקע PDMS, לחץ בעדינות את החלון כך נמצא קשר טוב עם התקע.</li>
		<li>מקום סדין PDMS בעובי 1 מ מ בגודל 5 ס"מ x 3.5 ס"מ מעל החלון 2 האפריקאית, עם הסדין PDMS מיושר למרכז התבנית PDMS. ודא כי הסדין PDMS על קשר טוב עם החלון.</li>
		<li>בהדרגה לוותר על טיפות של נועה בב-תנו של התבנית PDMS ולתת לו לאט למלא את החלל.</li>
		<li>לאחר החלל מתמלא לגמרי, לרפא את נועה על ידי חשיפה לאור UV (למשל, עם מערכת חשיפה UV-LED). 
		הערה: זמן החשיפה עשויים להשתנות בהתאם עם מקור האנרגיה UV. עם מערכת חשיפה UV-LED, אשר מספק צפיפות כוח של mW/cm 24 2, זה דורש בסביבות 50 s ב 100% כוח ומצב חשיפה מתמשכת.</li>
		<li>פיל הגיליון PDMS מהחלק העליון של השכבה נועה לסירוגין הסר בזהירות את השכבה נועה נרפא מן התבנית PDMS.</li>
	</ol></li> <li>מליטה של שני החצאים של המכשיר <ol><li>ליישר את שני החצאים של ההתקן כזה כי מיושרים CaF 2 החלונות. בעדינות אצבע-press שני החצאים בפינה של הרבדים נועה כזה כי המיקום של שני החצאים קבועים.</li>
		<li>גזור שני דיסקים מעגלית מתוך 1 מ מ עבה PDMS גיליון באמצעות של 8 מ מ קוטר ניקוב ( איור 5 ).</li>
		<li>חותכים שני מלבנים באותו הגודל של המכשיר (4 ס מ x 2.5 ס מ) עם מגליון PDMS בעובי 1 מ מ. על שני מלבנים PDMS, לחתוך פתחים התואם את הערוצים ו בתן/out-let של המכשיר- 
		הערה: הפתחים חתוכות מראש המלבנים PDMS נועדו למנוע את הערוצים קורסת במהלך דחופים.</li>
		<li>מחסנית הבאות סדר מלמטה: מלבן אחד PDMS עם פתחים חתוכות מראש, one דיסק PDMS (במגע עם החלון התחתון, לחתוך בשלב 4.3.2), שני החצאים מכבישה האצבע של המכשיר, הדיסק PDMS השני (יושב על החלון העליון), ולבסוף המלבן PDMS השני עם פתחים חתוכות מראש ( איור 5 b).</li>
		<li>למקם הרכבה זו בכיוונון מכבשי וואקום כזה כי זה דחוקה בין שתי צלחות, לסגור את השקית פלסטיק ( איור 5 c). הפעל את משאבת ואקום ולאחר לפנות את ההרכבה. . תן את משאבת ואקום להגיע לחצה על בסיס או להחיל את הואקום במשך לפחות 10 דקות 
		הערה: הלחץ הבסיס מושגת תלוי משאבת ואקום המשמש ואיכות אטימה של שקית הניילון.</li>
		<li>לחשוף את מכלול פונו כדי UV עם מנורת גז פס רחב Hg ב 270 W עבור 15 דקות להפוך את משאבת ואקום ולתת מכלול לאט לפרוק לחץ אטמוספירי לפני הסרת ההתקן האחרון מההרכבה.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Holman, H. -Y. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchrotron+infrared+spectromicroscopy+as+a+novel+bioanalytical+microprobe+for+individual+living+cells%3A+cytotoxicity+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22BIOMEDO%22%5BJournal%5D)">Synchrotron infrared spectromicroscopy as a novel bioanalytical microprobe for individual living cells: cytotoxicity considerations.</a> BIOMEDO. 7 (3), 417-424 (2002).</li>
<li>Liu, K. Z., Xu, M., Scott, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomolecular+characterisation+of+leucocytes+by+infrared+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Biomolecular characterisation of leucocytes by infrared spectroscopy.</a> Br J Haematol. 136 (5), 713-722 (2007).</li>
<li>Moss, D. A., Keese, M., Pepperkok, R. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/journal/09242031/38">IR microspectroscopy of live cells.</a> Vibrational Spectroscopy. 38 (1-2), 185-191 (2005).</li>
<li>Rahmelow, K., Hubner, W. <a target="_blank" href="https://www.osapublishing.org/as/abstract.cfm?uri=as-51-2-160">Infrared Spectroscopy in Aqueous Solution: Difficulties and Accuracy of Water Subtraction.</a> Appl Spectrosc. 51 (2), 160-170 (1997).</li>
<li>Kazarian, S. G., Chan, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ATR-FTIR+spectroscopic+imaging%3A+recent+advances+and+applications+to+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">ATR-FTIR spectroscopic imaging: recent advances and applications to biological systems.</a> Analyst. 138 (7), 1940-1951 (2013).</li>
<li>Loutherback, K., Chen, L., Holman, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-channel+microfluidic+membrane+device+for+long-term+FT-IR+spectromicroscopy+of+live+adherent+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Open-channel microfluidic membrane device for long-term FT-IR spectromicroscopy of live adherent cells.</a> Anal Chem. 87 (9), 4601-4606 (2015).</li>
<li>Loutherback, K., Birarda, G., Chen, L., Holman, H. -Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+approaches+to+synchrotron+radiation-based+Fourier+transform+infrared+%28SR-FTIR%29+spectral+microscopy+of+living+biosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Pept+Lett%22%5BJournal%5D)">Microfluidic approaches to synchrotron radiation-based Fourier transform infrared (SR-FTIR) spectral microscopy of living biosystems.</a> Protein Pept Lett. 23 (3), 273-282 (2016).</li>
<li>Dousseau, F., Therrien, M., Pézolet, M. <a target="_blank" href="https://www.osapublishing.org/as/abstract.cfm?uri=as-43-3-538">On the Spectral Subtraction of Water from the FT-IR Spectra of Aqueous Solutions of Proteins.</a> Appl Spectrosc. 43 (3), 538-542 (1989).</li>
<li>Tobin, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924203110000299">FTIR spectroscopy of single live cells in aqueous media by synchrotron IR microscopy using microfabricated sample holders.</a> Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 34-38 (2010).</li>
<li>Birarda, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924203110000184">Infrared microspectroscopy of biochemical response of living cells in microfabricated devices.</a> Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 6-11 (2010).</li>
<li>Vaccari, L., Birarda, G., Businaro, L., Pacor, S., Grenci, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infrared+microspectroscopy+of+live+cells+in+microfluidic+devices+%28MD-IRMS%29%3A+toward+a+powerful+label-free+cell-based+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Infrared microspectroscopy of live cells in microfluidic devices (MD-IRMS): toward a powerful label-free cell-based assay.</a> Anal Chem. 84 (11), 4768-4775 (2012).</li>
<li>Mitri, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SU-8+bonding+protocol+for+the+fabrication+of+microfluidic+devices+dedicated+to+FTIR+microspectroscopy+of+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">SU-8 bonding protocol for the fabrication of microfluidic devices dedicated to FTIR microspectroscopy of live cells.</a> Lab Chip. 14 (1), 210-218 (2014).</li>
<li>Birarda, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IR-Live%3A+fabrication+of+a+low-cost+plastic+microfluidic+device+for+infrared+spectromicroscopy+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">IR-Live: fabrication of a low-cost plastic microfluidic device for infrared spectromicroscopy of living cells.</a> Lab Chip. 16 (9), 1644-1651 (2016).</li>
<li>Wehbe, K., Filik, J., Frogley, M. D., Cinque, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+optical+substrates+on+micro-FTIR+analysis+of+single+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Bioanal+Chem%22%5BJournal%5D)">The effect of optical substrates on micro-FTIR analysis of single mammalian cells.</a> Anal Bioanal Chem. 405 (4), 1311-1324 (2013).</li>
<li>Helmut, S., et al. <a target="_blank" href="http://iopscience.iop.org/article/10.1088/0957-4484/16/5/007/meta">Controlled co-evaporation of silanes for nanoimprint stamps.</a> Nanotechnology. 16 (5), 171(2005).</li>
<li>Loewen, E. G., Popov, E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLoewen%2C+EG+%22Diffraction+Gratings+and+Applications%22">Diffraction Gratings and Applications</a>. , Taylor, Francis. (1997).</li>
<li>Technical Note: Optical Materials. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.newport.com/n/optical-materials">https://www.newport.com/n/optical-materials</a> (2017).</li>
<li>Cai, D., Neyer, A., Kuckuk, R., Heise, H. M. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022286010002814">Raman, mid-infrared, near-infrared and ultraviolet-visible spectroscopy of PDMS silicone rubber for characterization of polymer optical waveguide materials.</a> J Mol Struc. 976 (1-3), 274-281 (2010).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

על מנת להעריך ולמטב את פרוטוקול פבריקציה נוספת, השתמשנו פריסה פשוטה את דפוס microfluidic עם חדר מלבני גדול (5 מ"מ x 2.5 מ"מ גודל) במרכז, שני תאים מלבני קטן (גודל 5.5 מ"מ x 0.75 מ"מ) הופרדו המעגל הראשי על הצדדים עליון ותחתון, ועד 300 מיקרומטר רחב בתן/out-let ערוצים. החדר המרכזי משמש את זריעה, תצפית של התאים, בעוד התאים הקטנים מופרדים שני משמשים כדי למדוד את הרקע אוויר במהלך FTIR ניסויים כמו חדר הפניה, כפי שפורט הפרסום הקודם13. בתן, תן מחוץ לחבר החדר המרכזי למערכת fluidic חיצוניים.
<p class="jov...

אינפרא אדום צורה פורייה ספקטרו-מיקרוסקופ (FTIR) יש כבר מנוצל בהרחבה כמו טכניקה הדמיה לא פולשנית, ללא תווית לספק מידע מפורט כימי של מדגם. דבר זה מאפשר הפקת מידע ביוכימי כדי ללמוד את הכימיה של דגימות ביולוגיות, עם כמות מינימלית של הכנה מאז ספקטרום הבליעה של הדגימה נושא מהותי טביעות אצבעות של ההרכב הכימי שלה1 , 2. לאחרונה, FTIR יותר ויותר הוחל במחקר של דגימות ביולוגיות בשידור חי, למשל, תאים3. עם זאת, המים, המהווה האמצעי עבור תאים חיים ברוב המקרים, מראה של ספיגת חזקה באזור אמצע-IR. אפילו בתור שכבה דקה, נוכחותו יכול להציף לחלוטין את המידע המבני החשוב של דגימות.
במשך שנים רבות, הגישה הנפוצה היה תיקון או ייבוש דגימות לשלול לחלוטין את האות ספיגת מים בספקטרום. עם זאת, גישה זו אינה מאפשרת למדידות בזמן אמת על תאים חיים, שהוא חיוני ללמוד את השינוי של ההרכב הכימי שלהם תהליכים תאיים עם הזמן. דרך אחת להשיג אמין ספקטרום הבליעה של דגימות ביולוגיות בשידור חי, היא להגביל את אורך נתיב אופטי הכולל במדיום של קרן IR פחות מ- 10 מיקרומטר4.
בגישה ומבוססת חי ניסויים התא היה כה, השתקפות הכולל הקלוש (ATR)-FTIR הדמיה, אשר מאפשרת מדידות עצמאי של העובי לדוגמה, המאפשר לתאים להתקיים בשכבה עבה של מדיום מימית. עם זאת, עומק החדירה של הגל evanescent קטן מגבילה מדידות של דגימות רק מיקרונים אחדים הראשון מפני השטח של קריסטל ATR5.
לחלופין, יש כבר עקפו המגבלה ספיגת מים עם הופעתה של מערכות microfluidic שונים, אשר מסווגים בדרך כלל שתי קבוצות גדולות: ערוץ (איפה אחת של נוזל משטחים חשופים האווירה) פתוחות וסגורות ערוץ (ובו שני חלונות שקופים IR מופרדים באמצעות כרווח עם עובי מוגדר).
. Loutherback et al. פיתחה מכשיר ערוץ פתוח ממברנה המאפשרת זמן לטווח רציף IR מדידות של תאים חיים עד 7 ימים6. השיטה מחייבת לחות גבוהה בסביבה כדי למנוע אידוי של המדיום מפני השטח של התא. המערכת פועלת באופן הטוב ביותר עם תאים שגדלים באופן טבעי-ממשקי אוויר נוזלי, כגון רקמות אפיתל של העור, הריאות, ואת העיניים או חיידקים פתוגנים המועברים במזון7.
תצורה בערוץ סגור שואפת ליצור שכבה אחידה, דק בין שני חלונות שקופים IR מקביל, שבו תאים נשמרים בתקשורת מימית שלהם. העובי של חלל זה הוא האות ספיגת מים הוא מתחת רוויה. רקע מים ואז ניתן להפחית להשגת ספקטרום המדגם הנכון. רוב השיטות בערוץ סגור לנצל כרווח פלסטיק להפריד את שני חלונות כדי ליצור תא נוזלי מתקפל3,8,9. היתרון בשיטה זו הוא כי הוא אינו דורש מיקרו-מלאכותית; עם זאת, מבנים מורכבים יותר מאשר תא מדידה עם ערוצים, - ו -out - let קשים מאוד להבין, מרווח דק. יש גם בעיה עם הפארמצבטית אורך הנתיב בין מדידות IR בשל הסתמכותו על מחבר חובק למעקה מכני. על מנת להשיג שליטה מדויקת יותר של המרווח עבור רכישת אמין יותר הספקטרום, ליתוגרפיה אופטי שיטות יושמו במטרה דפוס photoresist על גבי המצע IR כדי להגדיר את מרווח9,10 , 11 , 12. אף-על-פי זה עושה את זה אפשרי עבור מבנים מורכבים יותר להגדיר את מרווח, השיטה דורשת גישה למתקן מיקרו-מלאכותית כדי לייצר את התבנית על כל המצע.
בנייר זה, אנו מציגים טכניקה פשוטה פבריקציה נוספת של התקן התואם ל- IR microfluidic, ועם במטרה להפחית את ייצור עלתה הדרישה של גישה מתקן מיקרו-מלאכותית. השיטה המוצגת כאן שימושים (ראה איור 1) תהליך הוקמה המכונה ליתוגרפיה רך. שתי תבניות נדרשות במקרה זה. כייר הראשי עשוי רקיק 4 אינץ סיליקון באמצעות תהליך רגיל של ליתוגרפיה UV. כייר המשני הוא משוכפל שלה עשוי PDMS, אשר יש של קוטביות הפוכה של התבנית כייר העיקרי סיליקון ומשמש, התבנית בסיס ייצור ההתקן הבאים.
למכשיר יש שתי שכבות נפרדות: שכבה ראשונה עם הפריסה microfluidic (אשר במקרה הציג מורכב של התעלה microfluidic, ב- / out תרשה תא תצפית עם אשנב2 CaF), שכבה נוספת עם (משטח שטוח אשר מורכב רק אשנב2 CaF).
כאן דבק אופטי UV-לריפוי, Norland אופטי דבק 73 (NOA73, באופן מקוצר כנועה מעתה ואילך), משמש כדי ליצור את הגוף פלסטיק העיקרי של המכשיר. ישנם מספר יתרונות של שימוש זה דבק אופטי: עלות ייצור נמוכה, קלות קישוריות עם מערכות חיצוניות, שקיפות אופטית טובה, צמיגות נמוכה, והכי חשוב, הביו13. CaF2 היא בחירה מתאימה כמו האשנב בשל התאימות שלה IR-שקיפות מעולה14.
עם גישה חדשה זו, גישה למתקן מיקרו-מלאכותית נדרשת אך ורק רק הזיוף של העובש העיקרי. תהליכי ייצור עוקבות עבור ההתקן microfluidic פלסטיק יכול להתבצע במעבדה כל מצויד עם מקור UV-תאורה.

<table><tbody><tr><td><חזק>כימי</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>טריכלורו (1H, 1H, 2H, 2H-perfluorooctyl) סילאן 97%</td> <td>סיגמא אולדריץ'</td><td>448931-10G</td><td></td></tr><tr><td>סילגארד 184 ערכת אלסטומר סיליקון</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Polydimethylsiloxane או בקיצור, PDMS</td></tr><tr><td>Norland Optical Adhesive 73</td><td>Norland Products Inc.</td><td>7304</td><td></td></tr><tr><td>SU8 3010 פוטו-רזיסט</td><td>MicroChem</td><td>Y311060</td><td></td></tr><tr><td>SU8 מפתח</td><td>MicroChem</td><td>Y020100</td><td></td></tr><tr><td><חזק>חומר</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>סיליקון רקיקון, 4 אינץ', פריים דרגה</td><td>Bonda Technology Pte Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CaF2 חלונות בדרגת IR</td><td>Crystran, בריטניה</td><td>CAFP10-1</td><td>קוטר 10 מ"מ, 1 מ"מ עובי</td></tr><tr><td>תבניות</td><td></td><td></td> אקריליק <td>בהתאמה אישית</td></tr><tr><td><חזק>ציוד</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV-KUB 2 (מערכת חשיפה LED UV)</td> ספקטרום פליטה <td>KLOE</td><td></td><td>365 ננומטר &plusmn; מנורת UV ניופורט 5 ננומטר</td></tr><tr><td></td><td>ניופורט</td><td>דגם 66902</td><td>50-500 וואט כספית מנורת קשת</td></tr><tr><td>CEE ציפוי ספין</td><td>מבשלה מדע דגם</td><td>200x</td><td></td></tr><tr><td>MJB4 מסכה יישור</td><td>SUSS MicroTec</td><td></td><td></td></tr><tr><td>דיוק דיגיטלי פלטה חמה</td><td>הארי Gestigkeit GmbH</td><td>2860SR</td><td></td></tr><tr><td>פלזמה משטח טכנולוגיה</td><td>Diener אלקטרוני GmbH + Co. KG</td><td></td><td>עבור O2 טיפול פלזמה</td></tr><tr><td>IDP-3 גלילה יבשה ואקום משאבת</td><td>Agilent טכנולוגיות</td><td></td><td>לחץ אולטימטיבי 3.3 x 10-1 mbar</td></tr><tr><td>Bruker IFS 66v/s ספקטרומטר FTIR</td><td>Bruker</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

הליך ליטוגרפית רך לייצור מכשירים microfluidic פלסטיק עם יציאות תצוגה שקוף לאור גלויים ולא אינפרא-אדום

Soft Lithographic Procedure for Producing Plastic Microfluidic Devices with View-ports Transparent to Visible and Infrared Light

אינפרא-אדום (IR) ספקטרו-מיקרוסקופיה של דגימות ביולוגיות החיים היא הקשו את הספיגה של המים בטווח אמצע-IR ועל ידי חוסר התקנים מתאימים microfluidic. כאן, הוכח פרוטוקול על הזיוף של התקני פלסטיק microfluidic, שבו שיטות ליטוגרפיה רך משמשים להטבעת שקוף סידן פלואורי (CaF2) תצוגה-יציאות בקשר תצפית chamber(s). השיטה מבוססת על הגישה הליהוק של עותק משוכפל, כאשר תבנית polydimethylsiloxane (PDMS) הוא מיוצר באמצעות הליכים ליטוגרפית סטנדרטיים ו ואז להשתמש בו כתבנית כדי לייצר התקן פלסטיק. המכשיר מפלסטיק כולל אולטרה סגול/גלויה/אינפרא-אדום (UV/מול/IR) - בחלונות שקופים גלוי של CaF2 כדי לאפשר התבוננות ישירה עם ואור אינפרא-אדום. היתרונות של השיטה המוצעת כוללים: צורך מופחת גישה מתקן מיקרו-ייצור בחדר נקי, נוף-ביציאות מרובות, חיבור קל ופסיביות למערכת השאיבה חיצוני דרך הגוף פלסטיק, הגמישות של העיצוב, למשל , פתוח/סגור ערוצים, ותצורה של אפשרות להוסיף תכונות מתוחכמות כגון ממברנות nanoporous.

איור 6 מציג את ספקטרום להדמיה של CaF2 חלון חדש, החצי בדוגמת של המכשיר, ואת המכשיר מלאה. הספקטרום שלושה להפגין שקיפות מעולה כדי IR באמצע עם להדמיה הגדולים מ- 80%. תבנית ההתאבכות גלוי הספקטרום של המכשיר מלאה (צהוב עיקול באיור) נגרמת על ידי הפער אוויר בטווח של 9-10 מיקרומטר בין שני חלונות. ספקטרה אלה מדגימים כי הגישה פבריקציה נוספת המובאת כאן לא לשנות את השקיפות של CaF2 בטווח אינפרא-אדום באמצע.
<p class="jove_content" fo:keep-together.w...

פרוטוקול עבור הזיוף של התקנים microfluidic פלסטיק עם תצוגה שקוף-יציאות עבור הדמיה אור גלוי, אינפרא-אדום מתואר.

הליך ליטוגרפית רך לייצור מכשירים Microfluidic פלסטיק עם יציאות תצוגה שקוף לאור גלויים ולא אינפרא-אדום

Infrared (IR) spectro-microscopy of living biological samples is hampered by the absorption of water in the mid-IR range and by the lack of suitable ...

המטרה הכוללת של פרוטוקול מיקרו-פבריקציה זה היא לייצר התקני מיקרופלואידיקה מפלסטיק התואמים למיקרו-ספקטרוסקופיה באינפרא-אדום בטרנספורמציית פורייה (Fourier transform infrared microspectroscopy) בדרך פשוטה וחסכונית. שיטות אלו יכולות לסייע בהבנה רחבה של ביוכימיה תאית. הן מספקות לנו גישה פשוטה יותר למיקרו-ספקטרוסקופיה באינפרא-אדום, טכניקת דימות ללא סימון ולא פולשנית, המסוגלת להפיק מפות ביוכימיות של תאים חיים.היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהיא מפחיתה את הצורך בגישה למתקני מיקרו-פבריקציה והיא משתמשת בפלסטיק כרכיב העיקרי עבור המכשירים הסופיים. את הפרוצדורה תדגים מונה סוריאנה, עוזרת מחקר מהמעבדה שלנו. כדי להתחיל בפרוצדורה זו, הכינו את תבנית הסיליקון הראשית כפי שמתואר בפרוטוקול הכתוב.בשלב הבא, ערבבו את האלסטומר PDMS ואת חומר ההקשיה ביחס של 10 ל-1. הכמות הכוללת שמעורבבת היא כזו שה-PDMS שיתקבל יהיה בעובי של כ-1 עד 1.5 מילימטרים. לאחר ערבוב יסודי, העבירו את התערובת לצנצנת ואקום.הנמיקו את הלחץ עד שיהיה בין 1 ל-10 millibar. המתינו 15 דקות או עד שלא ייראו בועות כדי לנכש את הגזים מהתערובת. שפכו את ה-PDMS לאחר ניקוי הגזים על תבנית הסיליקון שהוכנה.העבירו את התבנית לצנצנת הוואקום והנמיכו את הלחץ למשך 15 דקות כדי לבצע ניתון גזים (degassing) של התערובת פעם נוספת. לאחר מכן, העבירו את התבנית לפלטה חמה או לתנור. חממו את התבנית בטמפרטורה של 70 °C למשך שעתיים כדי להקשות את התערובת.הוציאו את ה-PDMS המוקשה מהחימום והניחו לה להתקרר לטמפרטורת החדר. השתמשו בלהב תער כדי לחתוך את ה-PDMS לאורך קצוות תבנית הסיליקון. באמצעות פינצטה, תפסו פינה אחת וקלפו בזהירות את שכבת ה-PDMS מתבנית הסיליקון.בשלב הבא, העבירו את תבנית ה-PDMS למנקה פלזמה. הגדירו את לחץ התא בין 1 ל-10 millibar והעבירו את תבנית ה-PDMS טיפול בפלזמת חמצן בהספק של 60 watts למשך 30 seconds עם זרימת חמצן של 20 SCCM. לאחר מכן, הניחו את התבנית בצנצנת ואקום והוסיפו כ-50 µL של silane.השאירו את הצנצנת במצב של ואקום למשך שעתיים. להתחלה, תכננו או רכשו תבניות אקריליות, כפי שמתואר בפרוטוקול הכתוב, והכינו אלסטומר PDMS וחומר מעבדה כפי שמוצג בתחילת הליך זה. שפכו את תערובת ה-PDMS שנוקרה מהגזים על התבניות האקריליות עד שהמשטח העליון יהיה שקוע, כמילימטר אחד מתחת לפני הנוזל.לאחר מכן, העבירו את התבניות הטבולות לצנצנת ואקום. בצעו ניתון גזים (degassing) ל-PDMS באמצעות אותו תהליך כפי שבוצע קודם לכן. לאחר מכן, העבירו את התבניות הטבולות לפלטה חמה או לתנור.חממו בטמפרטורה של 60 °C למשך שעתיים כדי להקשות את התערובת. הסירו את ה-PDMS שהתקשה ממקור החום והניחו לו להתקרר לטמפרטורת החדר. בעזרת להב תער, חתכו את ה-PDMS לאורך קצוות תבניות האקריליק.כעת השתמשו בפינצטה כדי לתפוס פינה אחת וקלפו בזהירות את ה-PDMS. לאחר מכן, הכינו את העתק ה-PDMS השני כפי שמתואר בפרוטוקול הכתוב. כדי להתחיל בייצור החלק המודפס של ההתקן, טפלו בחלונית של calcium fluoride באמצעות פלסמת חמצן, בהספק של 60 watts למשך 30 seconds, עם זרימת חמצן של 20 SCCM.הנח בזהירות את תבנית ה-PDMS הראשונה, זו עם העמודים הקטנים, על משטח שטוח. לאחר מכן, הנח את חלונית פלוריד הסיסיום שעברה טיפול במרכז התבנית. לחץ בעדינות כדי להבטיח שהחלונית נמצאת במגע מלא עם ה-PDMS.בשלב הבא, הניחו פלטה שקופה ל-UV בצדו האחורי של תבנית ה-PDMS, כאשר היא מיושרת למיקום של התא המרכזי. לחצו בעדינות כדי להבטיח מגע מלא עם ה-PDMS. הניחו את התבנית על תבנית ה-PDMS כאשר הפנים של תבנית הזרימה פונה כלפי מטה והתא הפלואידי מיושר למרכז החלון.לאחר מכן, טפטפו בהדרגה טיפות של NOA בכניסה של תבנית ה-PDMS. אפשרו ל-NOA למלא לאט את החלל. לאחר שהחלל התמלא לחלוטין, הקשו את ה-NOA על ידי חשיפת התבנית לאור UV.הוצא בזהירות את הפלטה השקופה ל-UV מהתבנית. קלף בעדינות את תבנית ה-PDMS מחלקה העליון של שכבת ה-NOA. לאחר מכן, הסר את שכבת ה-NOA.כדי להתחיל בייצור החצי השטוח של ההתקן, יש לטפל בחלון סידן פלואוריד באמצעות פלזמה של חמצן בהספק של 60 watts למשך 30 שניות עם זרימת חמצן של 20 SCCM. מקמו בזהירות את תבנית ה-PDMS השנייה, זו ללא העמודים הקטנים, על משטח שטוח. מקמו את חלון הסידן פלואוריד המטופל במרכז התבנית.לחץ בעדינות כדי להבטיח שהחלון נמצא במגע מלא עם ה-PDMS. לאחר מכן, השג יריעת PDMS בעובי של 1 mm ובמידות של 5 cm על 3.5 cm. הנח יריעה זו מעל חלון סידן פלואוריד (calcium fluoride), במרכז התבנית.לחצו בעדינות כדי להבטיח שהדף נמצא במגע מלא עם החלון. טפטפו בהדרגה טיפות של NOA בכניסה של תבנית ה-PDMS. אפשרו ל-NOA למלא את החלל לאט.לאחר שהחלל מלא לחלוטין, פתח את ה-NOA על ידי חשיפת התבנית לאור UV. קלף את שכבת ה-PDMS. לאחר מכן, הסר בזהירות את שכבת ה-NOA המופתחת מתבנית ה-PDMS.הניחו מחצית אחת של המכשיר מעל השנייה, כך שחלונות ה-calcium fluoride יהיו מיושרים. לחצו בעדינות בפינות שכבות ה-NOA כדי לקבע את מיקומם של שני החלקים. לאחר מכן, הכינו דיסקים ומלבנים של PDMS כפי שפורט בפרוטוקול הכתוב.הנח את דיסקי ה-PDMS בפתחים המתאימים במכשיר. לאחר מכן, הנח את מלבני ה-PDMS עם הפתחים החתוres מראש על כל צד. העבר את המכלול כולו למכבש הוואקום, כאשר הוא דחוס בין שתי פלטות.לאחר מכן, אטמו את השקית מפלסטיק. הפעילו את משאבת הוואקום כדי לרוקן את המכל מהאוויר והניחו לה לעבוד במשך 10 דקות לפחות. בעזרת נורת אדי כספית רחבת פס בהספק של 270 watts, חשפו את המכל המרוקן לאור UV למשך 15 דקות.לאחר מכן, כבו את משאבת הוואקום והניחו למכלול להגיע באיטיות ללחץ אטמוספרי לפני הסרת המכשיר הסופי מהמכלול. בהליך זה, מיוצר מכשיר מיקרופלואידי מפלסטיק עם חלונות תצפית שקופים לאור נראה ולאור אינפרא-אדום. לאחר מכן נרכשים ספקטרומי נחירה (transmittance spectra) כדי להשוות בין חלון סידן פלוריד חדש, מחצית אחת מהמכשיר המיוצר והמכשיר השלם.כפי שניתן לראות, שלושתם מראים נקבלה (transmittance) של מעל 80% עד לאינפרא-אדום רחוק (mid-infrared), מה שמעיד על דרגה גבוהה של שקיפות בטווח זה. בעוד שהספקטרום של ההתקן המלא מראה תבנית התאבכות הנגרמת על ידי מרווח האוויר בין שני החלונות, ספקטרומים אלו מוכיחים שתהליך הייצור אינו משנה את השקיפות של חלונות סידן פלואוריד עד לטווח האינפרא-אדום רחוק. לאחר שילמדו את הטכניקה, ניתן לבצעה בשעה אחת אם היא מבוצעת כראוי והתבניות והתבניות הדרושות מוכנות.לאחר צפייה בסרטון זה, תרכשו הבנה טובה לגבי אופן הייצור של התקני מיקרופלואידיקה מפלסטיק התואמים לספקטרוסקופיית פוריيه בתחום האינפרה-אדום (Fourier transform infrared spectroscopy), באמצעות יציקת שכבה (replica molding) של PDMS ותהליך מילוי קפילרי עם שרפים הניתנים להקשחה ב-UV. זכרו כי עבודה עם סילאן ואור UV עלולה להיות מסוכנת ביותר; תמיד בצעו הערכות סיכונים המבוססות על הפרוטוקול והשתמשו בציוד מגן אישי מתאים בעת ביצוע הליך זה.

soft-lithographic-procedure-for-producing-plastic-microfluidic

Research

JoVE Journal

Bioengineering

הנדסה ביולוגית

מכשירים microfluidic יכול לשמש כדי לחזות תהליכים טבעיים מורכבים בזמן אמת על המאזניים פיזי המתאים. פיתחנו מכשיר microfluidic פשוט המחקה התכונות העיקריות של התקשורת נקבובי טבעי ללימוד הצמיחה הובלה של חיידקים מתחת לפני הקרקע.

חלון על המיקרו: מערכות Microfluidic פשוט לחקר התחבורה מיקרוביאלית בתווך נקבובי

מקור: קורץ, ד. ל. ואחרים. פלטפורמה מיקרופלואידית לחקר סגימה ביולוגית במדיה נקבובית. J. Vis. Exp. (2022)הסרטון מדגים את השימוש במכשיר מיקרופלואידי לחקר יצירת ביופילם. השעיה חיידקית מוכנסת לתעלה המיקרו, ואחריה אינקובציה לאפשר התפתחות ביופילם. לאחר מכן מתחדשת הזרימה, וניטור לחץ יחד עם הדמיה משמש לזיהוי היווצרות ביופילם וחסימת נקבוביות לאורך זמן.

מכשיר מיקרופלואידי להדמיה בזמן אמת ומעקב לחץ במהלך יצירת ביופילם

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לבידוד ותרבות תאים בודדים עם פלטפורמה מיקרופלואידית, המשתמשת בתפיסת עיצוב מיקרו-באר חדשה כדי לאפשר בידוד תא בודד ביעילות גבוהה ותרבית משובטת לטווח ארוך.

פלטפורמת Microfluidic עבור בידוד תפוקה גבוהה מתא בודד ותרבות

התקנים מיקרופלואידיים רב-שכבתיים כוללים לעתים קרובות ייצור של תבניות מאסטר עם גיאומטריות מורכבות לפונקציונליות. מאמר זה מציג פרוטוקול שלם עבור פוטוליתוגרפיה רב-שלבית עם שסתומים ומאפייני גובה משתנה הניתנים לכוונון לכל יישום. כהדגמה, אנו מייצרים מחולל טיפות מיקרופלואידיות המסוגל לייצר חרוזי הידרוג'ל.

פוטו-ליתוגרפיה גובה רב שלבי משתנה עבור Valved רב שכבתי מכשירים microfluidic

המטרה של הליך זה היא לייצר בקלות, במהירות מכשיר microfluidic עם גאומטריה להתאמה אישית והתנגדות נפיחות על ידי נוזלים אורגניים ללימודי שחזור שמן. תבנית polydimethylsiloxane שנוצר first, ואז השתמש להטיל את המכשיר על בסיס אפוקסי. הזחה נציג מחקר הוא דיווח.

מכשירי Microfluidic אפיון תהליכים אירוע בקנה מידה נקבובית בתקשורת נקבובי עבור יישומים התאוששות שמן

פרוטוקול זה מתאר את הזיוף של התקנים microfluidic מ- MY133-V2000 כדי לסלק חפצים שעולות לעתים קרובות microchannels עקב המדדים השבירה המאולתר בין מבנים microchannel של תמיסה מימית. פרוטוקול זה משתמש של מחזיק אקרילי כדי לדחוס את המכשיר שעברו אנקפסולציה, שיפור הדבקות הן מבחינה כימית והן מבחינה מכנית.

ייצור של התקנים השבירה-אינדקס-מתאימים עבור מיקרופלואידיקה ביו

הפרוטוקול הנוכחי מתאר פלטפורמה מיקרופלואידית לחקר התפתחות ביופילם במדיה נקבובית כמו-דו-ממדית על ידי שילוב של דימות מיקרוסקופיה ברזולוציה גבוהה עם מדידות הפרשי לחצים בו זמנית. הפלטפורמה מכמתת את ההשפעה של גודל הנקבוביות וקצב זרימת הנוזלים במדיה נקבובית על סתימה ביולוגית.

פלטפורמה מיקרופלואידית לחקר סתימה ביולוגית במדיה נקבובית

פרוטוקול זה מתאר ייצור של חלון הדמיה משולב מושתל באמצעות הדפסת לייזר תלת מימדית. החלון מורכב ממערכת של מיקרו-עדשות יחד עם מיקרו-פיגומים. השיטה כוללת פילמור דו-פוטוני (2PP) של הפוטו-רזיסט SZ2080 התואם ביולוגית ברצף רציף, תוך אופטימיזציה של יעילות הייצור והיישור בין הרכיבים השונים.

מיקרו-ייצור של אופטיקה מושתלת משולבת בחלון הדמיה מיקרו-מובנה להדמיה מתקדמת in vivo

פרוטוקול זה מפרט את התכנון והייצור של מכשיר מיקרופלואידי, המתאים לחקירת מכניקת פולימרים מיקרו-צינוריים. הסינתזה של מיקרו-ייצור, בקרת זרימה אוטומטית וטכניקות מידול חישוביות מאפשרת מערכת גמישה המתאימה באופן אידיאלי לחקירת השלד התאי במבחנה.

פיתוח גישה מבוססת מיקרופלואידיקה לחקר מכניקת פולימרים מיקרו-צינוריים

כאן אנו מתארים שיטה פשוטה functionalization תחמוצת ללא סיליקון גרמניום עם monolayers אורגני תגובתי ולהדגים דפוסים של מצעים עם הדפס של מולקולות חלבונים קטנים. הגישה לחלוטין מגן משטחים מפני התחמצנות כימית, מספק שליטה מדויקת מורפולוגיה תכונה, ומספקת גישה מוכן דפוסי מופלים כימית.

Functionalization לליתוגרפיות רך אוקסיד ללא דפוסים סיליקון גרמניום

למד שיטת ליטוגרפיה רכה לייצור מכשירים מיקרו-פלואידיים מפלסטיק תואמים למיקרוספקטרוסקופיית אינפרא-אדום. הטכניקה מאפשרת הדמיית תאים חיים ללא תוויות ומיפוי ביוכימי מפורט.

הליך ליטוגרפית רך לייצור מכשירים Microfluidic פלסטיק עם יציאות תצוגה שקוף לאור גלויים ולא אינפרא-אדום

גלה סרטונים נוספים