Name: שיטות בסיסיות לחקר אקולוגיה פוריות של דגים באקווריום (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: למד שיטות לשתלת תגיות זיהוי בדגים חיים ללא פגיעה, לצורך מחקר אקולוגיה פורייה באקווריום. טכניקת VIE מאפשרת מעקב אחר התנהגות רבייה וחברתית עם השפעה מינימלית על רווחת הדגים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים S. Yokoyama לעזרה עם איסוף דגים. אנו מודים גם ל W. Kawamura על עצות מועילות לגבי שיטות גידול. מחקר זה נתמך על ידי האגודה היפנית לקידום המדע (KAKENHI) באמצעות מענקים (מס &#39;24370006 ו 16K07507) הוענק TS

1. איסוף והובלת דגים חיים הערה: פרוטוקול זה מתאר כיצד לאסוף דגים שיש להם שלפוחית ​​גז, מעומק של 15 מ &#39;עד פני השטח. שינוע מהיר על פני השטח יגרום להרחבת שלפוחית ​​השתן על ידי שינוי בלחץ, אשר יכול לפגוע קשות או להרוג את הדג. זהירות היא מוצדקת, כמו הנזק שנגרם לדגים במהלך הצעד הראשון הזה ישפיע לרעה על הישרדותם ועל התנהגות מאוחר יותר. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני צלילה עם SCUBA, לאסוף את החומרים הבאים: יד ביד מתאים לכידת מינים ממוקד מתחת למים; כפול שקיות פוליאתילן כי הם גדולים מספיק עבור דגים; גומי (80 מ&quot;מ x 6 מ&quot;מ); גליל חמצן לניפוח שקיות האיסוף על פני השטח; את אלבגין, שהוא מיקרוביאלית 10% nifurstyrenate נתרן; תיבת קצף פוליסטירן שבו למקם את שקיות איסוף; פיפטות; ואם יש צורך (ראה צעד 1.4), חבל עם אורךשווה לעומק הצלילה המקסימלי, כמו גם משקל של לפחות 2 ק&quot;ג. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף מינים דגים ממוקד באמצעות יד ביד בעת צלילה; בעוד עדיין מתחת למים, במקום דגים שנתפסו בשקית פוליאתילן ולקשור את הפה של השקית עם גומי. אם יידרשו עוד יום להובלת הדגים לאקווריום, ישמרו גם על המים מהבית הטבעי בשקיות אחרות, וישמשו לחידוש המים הדגים. הערה: עבור בטיחות, משימות מתחת למים חייב להיות עובד על ידי לפחות שני אנשים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> משטח מנקודת האיסוף עם שקיות של דגים במהירות של לא יותר מ 1 מ &#39;/ דקה: בעוד בעומק של 10 מ&#39; או יותר, להפסיק לעלות 1 - 5 דקות כל 2 מ &#39;; ו מעומק של 10 מ &#39;לעצור את פני השטח עבור 1 - 5 דקות כל 1 מ&#39;. כאשר דגים בשבי אינם מסוגלים לשמור על הציפה שלהם בשקית ( כלומר , אם הם צפים עם שלפוחית ​​הגז מורחבת תוך עדיין מנסה לשחות לכיוון תחתית), או לשמור על עומק זהה עבור 1 - 5 דקות או דהל 1 - 2 מ &#39;עמוק יותר. פעם הדגים נראה להחלים שלהם ציפה, לחדש את העלייה אל פני השטח. הערה: אם קיימת אפשרות שהאוויר במיכל SCUBA ייגמר תוך כדי העלאה, הידוק חבל לשקית הפוליאתילן וצירוף משקל של 2 ק&quot;ג; לאחר מפעיל מתחת למים יש עלה בבטחה, למשוך את זה עד לפני השטח במהירויות זהה שנקבע לעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחוף או בסירה, להמיס 10 ppm אלבגין במים של כל שקית פוליאתילן לאחר השטח. הערה: למרות שדגים מסוימים לא יוכלו לשמור על הציפה שלהם רק לאחר הובאו אל פני השטח, רוב ניתן לצפות להתאושש בתוך יום אחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם צפיפות הדגים בשקית איסוף גבוהה, לחלק את הדגים בין שקיות יותר כדי למנוע מהם מזיקים זה לזה על ידי שפשוף אחד נגד השני במהלך ההובלה. אם הדג הוא מין אגרסיבי, לחלק אותם בנפרד בין שקיות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנפח את שקית איסוף עם חמצן ושוב לאטום את הפה של השקית באמצעות rUbberbands. כאשר החדרת החמצן לתוך השקית, להוריד את הזרבובית לתוך השקית של המים כדי להגדיל את התוכן חמצן מומס; את התיק המורחב צריך להיות 1/4 מלא עם מים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור את שקיות איסוף עם דגים בתיבת קצף פוליסטירן, כדי לשמור על טמפרטורת מים יציבה ולהפחית את הלחץ של דגים בתנאים חשוכים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם ייקח יום אחד להובלת הדגים לאקווריום, פעם ביום מחליפים 1/4 עד 1/3 מהמים בכל תיק שמירה על דגים, תוך שימוש במים שנשמרו מהבית גידול שאליו נוספה 10 עמודים לדקה אלבאגין , ו repack כל עם חמצן. בכל יום, להסיר דגים מתים ו excreta על התחתונה ביד נטו או פיפטה. הערה: אם מטוס המטוס מעורב, המתן לפחות יום אחד כדי להתאים את הדגים ללחץ האוויר על פני השטח לפני ההובלה, משום ששינוי שני שלבים בלחץ (מתחת לפני המים, ומשטח לאוויר עליון) בטווח הקצר עלול להשפיע לרעה הישרדות הדגים. </l<html> I </ol> 2. הדגמת הדג לאקווריום <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצוף את התיק המכיל דגים באקווריום במשך 30 דקות כדי להשוות את טמפרטורת המים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במשך תקופה של 10 דקות, החליפו את מי השקיה במי אקווריום, כדי להימנע מהלם שנגרם כתוצאה מהפרש פתאומי בכימיית המים ( למשל , pH, מליחות). הערה: דג שמזדעזע מהפרש גדול מדי בכימיה של המים עשוי להראות שינוי חריג בצבע הגוף ו / או בהתנהגותו. לפקח על זה בזהירות במהלך הסתגלות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים 10 ppm אלבגין במי האקווריום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מכן, פעם ביום במשך 3 ימים, לחדש 1/3 של מים אקווריום, לאחר שהוסיף 10 עמודים לדקה אלבקין למים החלופי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבסוף, להתחיל לחסל את אלבגין על ידי החלפת חצי מים אקווריום פעם ביום, עד צבע דוהה. </li></ol> 3. הזרקת גלאי אלסטומר גלוי (VIE) תג לזהות דגים בודדים T &quot;&quot; הערה: בעבודה זו, דגים בודדים מזוהים באמצעות תגי VIE, לדוגמה, ראה פרדריק 10 , אולסן ו Vøllestad 11 , ולבלנק ו Noakes 12. כמו כן, אם מינים המחקר גדול מספיק להחזיק ביד , את השולחן כירורגי בשימוש בשלב 3.2 לא יהיה צורך. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקבוע את מיקום הזרקת צבע תג עבור כל אדם. האפשרות הבטוחה ביותר היא לבחור נקודת זריקה בחלק הגבי השרירי או בחלק הזנב של הגוף, וכדי למנוע הזרקת אותו לתוך הבטן שבה איברים פנימיים עשויים להיות פירסינג. הערה: מערכת מספור מתוארת באיור 1 : אם מינים המחקר גדולים מספיק להזרקת 8 מיקומים אפשריים, מערכת זו תאפשר זיהוי של 154 אנשים באמצעות צבע אחד. עשרה צבעים של תגים VIE זמינים מסחרית. בחר את הצבע להבדיל על בסיס צבע הגוף של דגים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> &lt;חזקה&gt; עבור דגים קטנים יותר מאשר ניתן להחזיק ביד, להכין טבלה כירורגית כדלקמן (עיין גם קינקל ואח &#39;13 ) ( איור 2 ). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את הספוג רך מדידה 5 ס&quot;מ L x 5 ס&quot;מ W, וזה לפחות 5-10 מ&quot;מ נמוך יותר מגובה של צלחת פטרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים חריץ ספוג של כ - 10 מ&quot;מ עומק, ולהתאים את רוחב זה של רוחב הגוף המשוער של הדג. חותכים את פוליוויניל כלוריד (PVC) הלוח (עובי 0.3 מ&quot;מ) ל 5 ס&quot;מ L x 5 ס&quot;מ W, ו לכופף אותו לקפל העמק (או M- צורה). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר את לוח מחורץ PVC על גבי ספוג מחור ולאחר מכן להגדיר את הספוג לתוך צלחת פטרי (ø 160 מ&quot;מ, עומק 30 מ&quot;מ). השתמש במים ממיכל ההחלמה כדי למלא את צלחת פטרי עד הלוח PVC שקוע כראוי. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את תגי VIE על פי מדריך תיוג VIE. מערבבים את חומרי האלסטומר ומוסיפים את התערובת לסרי 3 מ&quot;לNge עם מחט 29-מד, כפי הכלול בערכה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן שני מיכלי מים לשימוש בעת ביצוע זריקות תג: אחד עבור הרדמה ואחד להחלמה; להתאים את הטמפרטורה ואת ריכוז מליחות של אלה כדי להתאים את המים באקווריום גידול. השתמש במשאבת אוויר עם אבן אוויר כדי להפיץ את המים במיכל ההחלמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן נוזל הרדמה על ידי ערבוב 2-methylquinoline עם נפח שווה של 99.5% אתנול; מוסיפים את זה למיכל ההרדמה כדי להשיג ריכוז של 18 עמודים לדקה. הערה: הריכוז האופטימלי של נוזל הרדמה יהיה תלוי במינים וגודל הגוף של הפרטים. לכן, לבחון את הריכוז האופטימלי עבור מינים המחקר מראש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים דגים בודדים לטנק ההרדמה ומאפשרים להם להרדים: כלומר, לחכות עד שהדגים אינם מגיבים לנגיעה או לרטט מים כאשר טנקים חיצוניים. כמו צבע הגוף משתנה כאשר הוא aneshetiZed בדגים רבים, גם לפקח על צבע הגוף בזהירות לשפוט אם דגים הוא הרדים מן השינויים שלה. כי יש אפשרות כי דגים יכולים לקפוץ מתוך טנק הרדמה, לשמור אותו מכוסה באמצעות לוח אקרילי שקוף, לפחות עד הדגים מתחילים לנוע לאט. הערה: כוונן את הזמן הדרוש להרדים ו / או להתאים את הריכוז של נוזל הרדמה, בהתאם למין המחקר וגודלו. אם התנועה אופקולום הוא נעצר אי פעם על ידי ההרדמה, הדג יהיה בסיכון גבוה למוות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כמו דגים יחליש אם הגוף שלהם מחומם, לשמור על האצבעות במים קרים יחסית תוך הרדמה הדגים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם דג ממיכל ההרדמה ובמהירות למדוד אותו או לרשום את הנתונים הדרושים (אורך כולל, מין, וכו &#39; ). אם נראה שדגים מתאוששים בזמן המדידה, מיד להעביר אותו בחזרה טנק ההרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את הדגים לשולחן כירורגי. הגדר את הצד הגחון דגים למטה tהוא חריץ PVC. אם גודל הגוף הוא קטן מאוד, להשתמש מיקרוסקופ המשקפת בעת ביצוע ההזרקה. אם מינים המחקר גדול מספיק כדי להחזיק ביד, להזריק את התג VIE בזמן שהוא מוחזק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם את הצד המחודד של המחט כלפי חוץ והצביע על ראש הדג. הכנס את המחט תת עורית, פחות או יותר מקביל לגוף, וכמעט קרוב מתחת לעור ככל האפשר. התאם את עומק הכניסה בהתאם לגודל גוף הדגים ואת קלות לראות את התג. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק VIE תג בעת משיכת המחט, ולהפסיק את הזריקה לפני שפוע המחט מגיע לנקודת הכניסה המחט (זה יהיה קל להבחין אם הזרקת תג באזור רחב יחסית). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> על השלמת הזרקת תג, מיד להעביר את הדגים אל מיכל השחזור. אם ההתאוששות נראית איטית מדי, העבירו בעדינות את המים ביד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר ההחלמה, להחזיר את הדגים לאקווריום גידול, ולהמשיך להוסיף 10 עמודים לדקה אלBagin למים במשך 3 ימים. הערה: תחת תנאי נראות נמוכה עבור תגי VIE, אור UV מסונן יאפשר לזהות את התגים. </li></ol> 4. ספירת ביצים דבק דמרוסלי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי ליצור קינון מלאכותי, שהדיג יכול להפקיד בו ביצים דבקות, לחתוך צינור PVC אטום (5 ס&quot;מ, 6 ס&quot;מ) בחצי, בניצב לקוטר. הערה: גודל הצינור הנ&quot;ל מתאים להשרצת גובי קטן יחסית. לכן, להתאים את גודל צינור PVC וצורה כפי המתאים למין המחקר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הדפס רשת 5 מ&quot;מ x 5 מ&quot;מ על גיליון עמיד למים לחתוך אותו כדי להתאים את השטח הפנימי של צינור PVC. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקן את גיליון עמיד למים לתוך הצינור של PVC באמצעות גומי. הערה: אם זה קשה עבור נשים לצרף ביצים על גיליון עמיד למים, וביצים נופלים מן הסדין, להפוך את הסדין מרקם עם נייר זכוכית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכסים את קרקעית האקווריום בשכבת חול, 1- 2 ס&quot;מ עובי. הכנס כשליש של צינור PVC בעקיפין לתוך החול, עם הצד גיליון קבוע למטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר ההשרצה מוצלחת על ידי הדג, להסיר את הסדין עם המסה ביצה מן צינור PVC ומניחים אותו בצלחת פטרי עם מים אקווריום. לתקן גיליון חדש בתוך צינור PVC במקום זה בחזרה על החלק התחתון של האקווריום. לבסוף, לספור את הביצים על ידי צילום המסה ביצה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלופין, אם תצפיות של טיפול ביצים ההורים הם להתבצע לאחר הרבייה, להיזהר לא להביא את הביצים מן המים. במקום זאת, להשתמש בצלחת פטרי כדי לגרוף את הביצים ואת הסדין יחד עם מים האקווריום, לצלם את המסה ביצה במהירות, ולאחר מכן בזהירות את התיקון מחדש את הסדין עם המסה ביצה בחזרה לתוך צינור PVC זהה לפני החזרת הכל למיקום המקורי שלה על תחתית האקווריום. לבסוף, לספור את הביצים באמצעות התמונה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לספור את הביצים באמצעות ImageJ ( איור 3) </stroNg&gt;). אלה אוטומטית ספירה תא שיטות ספירה מוסברים בפירוט הבא: ספירה תא בסיסי (אוניברסיטת שיקגו, משולב אור מיקרוסקופית הליבה מתקן, http://digital.bsd.uchicago.edu/image_j.php); ניתוח החלקיקים (http://imagej.net/Particle_Analysis); מונה נייד (https://imagej.net/Cell_Counter). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחרת, אם ביצים מופקדים בצפיפות, להעריך את מספר הביצים על ידי חישוב יחס צפיפות האזור: לספור ביצים ברשת מודפס 5 x 5 מ&quot;מ 2 לחשב את צפיפות ביצה, למדוד את פני השטח המכוסה ביצים על ידי ImageJ, ולהעריך את המספר הכולל של ביצים מן הצפיפות מעל ליחידה שטח השטח. שיטת המדידה על פני השטח על ידי ImageJ מוסברת להלן: הגדר סולם ... (ענף שירותי מחקר, https://imagej.nih.gov/ij/docs/menus/analyze.html); הוא מסביר כיצד להגדיר את המרחב המרחבי של הדימוי; באמצעות ImageJ למדוד שטח שטח (Keene המדינה המכללה, אקדמיטכנולוגיה, https://dept.keene.edu/at/2011/04/15/by-matthew-ragan/). הערה: אם ביצים שקופות, גיליון המים השחור מתאים יותר לשיטת הספירה האוטומטית מכיוון ש- ImageJ יכול לזהות את קווי הביצים בנפרד. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Helfman, G., Collette, B. B., Facey, D. E., Bowen, B. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHelfman%2C+G+%22The+Diversity+of+Fishes%3A+Biology%2C+Evolution%2C+and+Ecology%22">The Diversity of Fishes: Biology, Evolution, and Ecology</a>. , Wiley-Blackwell. Oxford. (2009).</li>
<li>Davies, N. B., Krebs, J. R., West, S. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDavies%2C+NB+%22An+Introduction+to+Behavioural+Ecology%22">An Introduction to Behavioural Ecology</a>. , 4th ed, Wiley-Blackwell. Oxford. (2012).</li>
<li>Fukuda, K., Manabe, H., Sakurai, M., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s10164-016-0499-z">Monogamous mating system and sexuality in the gobiid fish, Trimma marinae (Actinopterygii: Gobiidae).</a> J Ethol. 35 (1), 121-130 (2017).</li>
<li>Manabe, H., Matsuoka, M., Goto, K., Dewa, S., Shinomiya, A., Sakurai, M., Sunobe, T. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/4536544?seq=1#page_scan_tab_contents">Bi-directional sex change in the gobiid fish Trimma sp.: does size-advantage exist?</a> Behaviour. 145 (1), 99-113 (2008).</li>
<li>Sakurai, M., Nakakoji, S., Manabe, H., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/227199940_Bi-directional_sex_change_and_gonad_structure_in_the_gobiid_fish_Trimma_yanagitai">Bi-directional sex change and gonad structure in the gobiid fish Trimma yanagitai.</a> Ichthyol Res. 56 (1), 82-86 (2009).</li>
<li>Sunobe, T., Nakazono, A. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/227870359_Sex_Change_in_Both_Directions_by_Alteration_of_Social_Dominance_in_Trimma_okinawae_Pisces_Gobiidae">Sex change in both directions by alteration of social dominance in Trimma okinawae (Pisces: Gobiidae).</a> Ethology. 94 (4), 339-345 (1993).</li>
<li>Wong, M. Y., Munday, P. L., Buston, P. M., Jones, G. P. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/beheco/article/19/2/353/213434/Monogamy-when-there-is-potential-for-polygyny">Monogamy when there is potential for polygyny: tests of multiple hypotheses in a group-living fish.</a> Behav Ecol. 19 (2), 353-361 (2008).</li>
<li>Kuwamura, T., Suzuki, S., Tanaka, N., Ouchi, E., Karino, K., Nakashima, Y. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/32901340_Sex_change_of_primary_males_in_a_diandric_labrid_Halichoeres_trimaculatus_Coexistence_of_protandry_and_protogyny_within_a_species">Sex change of primary males in a diandric labrid Halichoeres trimaculatus: coexistence of protandry and protogyny within a species.</a> J Fish Biol. 70 (6), 1898-1906 (2007).</li>
<li>Winterbottom, R. <a target="_blank" href="https://aqua-aquapress.com/two-new-species-of-the-trimma-tevegae-species-group-from-the-western-pacific-percomorpha-gobiidae-2/">Two new species of the Trimma tevegae species group from the Western Pacific (Percomorpha: Gobiidae).</a> Aqua J Ichthyol Aquat Biol. 10, 29-38 (2005).</li>
<li>Frederick, J. L. <a target="_blank" href="http://www.shafer-consulting.org/BMS1997.pdf">Evaluation of fluorescent elastomer injection as a method for marking small fish.</a> Bull Mar Sci. 61 (2), 399-408 (1997).</li>
<li>Olsen, E. M., Vøllestad, L. A. <a target="_blank" href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1577/1548-8675(2001)021%3C0967%3AAEOVIE%3E2.0.CO%3B2">An evaluation of visible implant elastomer for marking age-0 brown trout.</a> N Am J Fish Manag. 21 (4), 967-970 (2001).</li>
<li>Leblanc, C. A., Noakes, D. L. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/233754582_Visible_Implant_Elastomer_VIE_Tags_for_Marking_Small_Rainbow_Trout">Visible implant elastomer (VIE) tags for marking small rainbow trout.</a> N Am J Fish Manag. 32 (4), 716-719 (2012).</li>
<li>Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+injection+into+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal injection into adult zebrafish.</a> J Vis Exp. (42), e2126(2010).</li>
<li>Reavis, R. H., Grober, M. S. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/PL00012232">An integrative approach to sex change: social, behavioural and neurochemical changes in Lythrypnus dalli (Pisces).</a> Acta Ethol. 2 (1), 51-60 (1999).</li>
<li>Milinski, M., Bakker, T. C. <a target="_blank" href="http://www.nature.com/nature/journal/v344/n6264/abs/344330a0.html">Female sticklebacks use male coloration in mate choice and hence avoid parasitized males.</a> Nature. 344, 330-333 (1990).</li>
<li>Basolo, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogenetic+evidence+for+the+role+of+a+pre-existing+bias+in+sexual+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+R+Soc+Lond+B+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Phylogenetic evidence for the role of a pre-existing bias in sexual selection.</a> Proc R Soc Lond B Biol Sci. 259 (1356), 307-311 (1995).</li>
<li>Milinski, M. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/BF00300099">Optimal forging: the influence of intraspecific competition on diet selection.</a> Behav Ecol Sociobiol. 11 (2), 109-115 (1982).</li>
<li>Manabe, H., Ishimura, M., Shinomiya, A., Sunobe, T. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1095-8649.2007.01338.x/abstract">Field evidence for bidirectional sex change in the polygynous gobiid fish Trimma okinawae.</a> J Fish Biol. 70 (2), 600-609 (2007).</li>
<li>Stammler, K. L., Corkum, L. D. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s10641-004-5562-x">Assessment of fish size on shelter choice and intraspecific interactions by round gobies Neogobius melanostomus.</a> Environ Biol Fishes. 73 (2), 117-123 (2005).</li>
<li>Matsumoto, Y., Tawa, A., Takegaki, T. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1439-0310.2010.01868.x/abstract">Female mate choice in a paternal brooding blenny: the process and benefits of mating with males tending young eggs.</a> Ethology. 117 (3), 227-235 (2011).</li>
<li>McCormick, M. I. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1890/0012-9658(1998)079[1873:BIMSIA]2.0.CO;2/full">Behaviorally induced maternal stress in a fish influences progeny quality by a hormonal mechanism.</a> Ecology. 79 (6), 1873-1883 (1998).</li>
<li>Knaepkens, G., Bruyndoncx, L., Coeck, J., Eens, M. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1023/B:BIOC.0000048448.17230.40">Spawning habitat enhancement in the European bullhead (Cottus gobio), an endangered freshwater fish in degraded lowland rivers.</a> Biodivers Conserv. 13 (13), 2443-2452 (2004).</li>
<li>Shiogaki, M., Dotsu, Y. <a target="_blank" href="http://naosite.lb.nagasaki-u.ac.jp/dspace/handle/10069/30823">The life history of the gobiid fish, Zonogobius boreus.</a> Bulletin of the Faculty of Fisheries, Nagasaki University. 37, 1-8 (1974).</li>
<li>Meunier, B., Yavno, S., Ahmed, S., Corkum, L. D. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0380133009001695">First documentation of spawning and nest guarding in the laboratory by the invasive fish, the round goby (Neogobius melanostomus).</a> J Great Lakes Res. 35 (4), 608-612 (2009).</li>
</ol>

למחברים אין מה לגלות.

אקולוגיה הרבייה של דגים רבים התגלה לעתים קרובות באמצעות גידול ניסיוני. במיוחד, שינוי מין 6 , 8 , 14 , חבר הבחירה 15 , 16 ו intraspecific תחרות 7 , 17 היו נושאים תכופים של חקירות מפורטות באמצעות דגים השמורה באקווריום. יתר על כן, כמה תוצאות שנצפו באקווריום אושרו מאוחר יותר ב...

האבולוציה הסתגלותית מרהיבה ניכרת במורפולוגיה, האקולוגיה וההתנהגות של דגים 1 . במיוחד, תכונות אקולוגיות הקשורות רבייה הם מגוונים במיוחד, ורוב אלה יכולים להיות מושפעים ישירות על ידי כושר אישי 2 . כדי לקבל תובנה ללחצים סלקטיביים שהביאו להתפתחות של תכונות ייחודיות במינים שונים של דגים, תצפית ישירה של התנהגויות פוריות וחברתיות באמצעות דגים חיים מועילה לעיתים קרובות לבסס השערות תיאורטיות. עם זאת, תצפיות שדה רציף של דגים עשויים לדרוש ציוד תת מימי מיוחד ומתקנים שקשה לשמור. במקרים אלה, תצפיות של דגים שנלכדו בפראות אקווריום יכול להיות מועיל 3 , 4 , 5 . בנוסף, תצפיות יעילות של התנהגויות דגים, כי הם נדירים או אחרתUlt כדי לצפות בתנאים טבעיים יכול להיות אפשרי על ידי מניפולציות ניסויים באקווריום 6 , 7 , 8 . גידול דגים בתנאים טובים על ידי צמצום מתח מלאכותי ופגיעה פיזית הוא קריטי עבור חקירות אקולוגיות מדויקות. הגובי פיגמי טרימה מרינה מגיע 23-25 ​​מ&quot;מ אורך הכולל והוא מופץ במערב האוקיינוס ​​השקט, שם הוא נמצא במפרץ שקט, מוגן, בעומקים של 9-26 מ &#39; 9 . בעבודה זו, T. Marinae משמש כמודל כדי לתאר סדרה של טכניקות בסיסיות לאיסוף דגים באמצעות מנגנון נשימה מתחת למים עצמית (SCUBA), הובלת דגים, והתאקלמות הדגים לאקווריום לצורך תצפית ישירה של התנהגות המינים ואקולוגיה של המחקר.

<table><tbody><tr><td>רשת ידנית</td><td>Nisso</td><td>AQ-17</td><td>בחר עבור גודל מין היעד.</td></tr><tr><td>שקית פוליאתילן</td><td>San-U Fish Farm</td><td>8194</td><td></td></tr><tr><td>גומייה</td><td>ESCO Co. LTD.</td><td>78-0420-64</td><td>&oslash; 80 מ"מ x 6 מ"מ</td></tr><tr><td>גליל חמצן</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>צילינדר אוקסגן לחליפות ציוד צלילה.</td></tr><tr><td>אלבגין</td><td>יפן עיצוב חיות מחמד ושות 'בע"מ</td><td>75950</td><td>פפורזין F (מסופק מאותה חברה) היא תרופה מקבילה לאלבגין.</td></tr><tr><td>קופסת קצף פוליסטירן</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>פיפטה</td><td>AS ONE</td><td>1-8625-04</td><td></td></tr><tr><td>חבל</td><td>Mizukami Kinzoku Co. בע"מ</td><td></td><td></td>95301601</tr><tr><td>משקל</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>משקל לחליפות ציוד צלילה.</td></tr><tr><td>מיכל מים</td><td>N/A</td><td>N/A משאבת</td><td></td></tr><tr><td>אוויר</td><td>KOTOBUKI</td><td>4972814 062115</td><td></td></tr><tr><td>אייר סטון</td><td>KOTOBUKI</td><td>4972814 232204</td><td></td></tr><tr><td>2-מתילקינולין&nbsp;</td><td>Wako</td><td>170-00376</td><td></td></tr><tr><td>אתנול (99.5)</td><td>Wako</td><td>057-00456</td><td></td></tr><tr><td>ערכת תג אלסטומר שתל גלוי</td><td>Northwest Marine Technology</td><td>N/A</td><td>http://www.nmt.us/products/vie/vie.shtml</td></tr><tr><td>ספוג רך</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>לוח PVC</td><td></td><td></td><td>בעובי 0.3 מ"מ קל לשימוש.</td></tr><tr><td>צלחת פטרי</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>A גדולה, כגון&nbsp; &oslash; עומק 160 מ"מ ו-30 מ"מ, נוחה להזרקת תג VIE.</td></tr><tr><td>לוח אקרילי שקוף</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>UVA אור מסונן UVA&nbsp;</td><td>צינור N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>PVC</td><td>N/A N/A</td><td></td><td>&OSLASH; גיליון עמיד למים 5 ס"מ</td></tr><tr><td></td><td>SOMAR Corp.</td><td>3EKW03</td><td>הסרט למכונת הצילום הפשוטה.</td></tr><tr><td>חול</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ סטריאו</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>מצלמה</td><td>N/A N</td><td>/A</td><td></td></tr></tbody></table>

שיטות בסיסיות לחקר אקולוגיה פוריות של דגים באקווריום

Basic Methods for the Study of Reproductive Ecology of Fish in Aquaria

תצפיות לגידול בשבי הן בעלות חשיבות לחשיפת היבטים של התנהגות דגים ואקולוגיה כאשר חקירות שדה רציף אינן אפשריות. הנה, סדרה של טכניקות בסיסיות מתוארים על מנת לאפשר תצפיות של התנהגות הרבייה של דג גובייד פראי נלכד, כמודל, שמרו באקווריום. השיטה מתמקדת בשלושה שלבים: איסוף, הובלה ותצפיות של אקולוגיה פוריות של המצע. היבטים חיוניים של איסוף דגים חיים ותחבורה הם: (1) מניעת פגיעה בדגים, וכן (2) הסתגלות זהירה לאקווריום. מניעת נזק באמצעות פציעות כגון שריטות או שינוי פתאומי של לחץ המים הוא הכרחי בעת איסוף דגים חיים, כמו כל נזק פיזי עשוי להשפיע לרעה על ההישרדות והתנהגות מאוחר יותר של הדג. הסתגלות קפדנית לאקווריום מפחיתה את שכיחות המוות ומקטינה את זעזוע התחבורה. תצפיות במהלך גידול שבוי כוללות: (1) זיהוי של אינדיבידואלים(2) ניטור הוליד ביצים ללא השפעות שליליות על דגים או ביצים, ובכך מאפשר חקירה מפורטת של אקולוגיה הרבייה של מינים המחקר. הזרקה תת-עורית של תגית אלסטומר גלוי (VIE) היא שיטה מדויקת לזיהוי הבא של דגים בודדים, וניתן להשתמש בה עם טווח רחב של דגים, עם השפעה מינימלית על הישרדותם והתנהגותם. אם מינים המחקר הוא ספוגנר המצע המפקיד ביצים דבק, אתר קן מלאכותי שנבנה מתוך צינור פוליוויניל כלור (PVC) עם תוספת של גיליון עמיד למים יהיה להקל על ספירה וניטור הביצים, הפחתת השפעת החוקר על הקן מחזיק ואת הביצה שמירה על התנהגות של דגים. למרות ששיטה בסיסית זו כרוכה בטכניקות שלעתים רחוקות מוזכרות בפירוט במאמרי מחקר, הן בסיסיות לביצוע ניסויים הדורשים גידול שבוי של דג בר.

בעקבות השיטות הנ&quot;ל, 41, 15 ו 96 אנשים של ט marinae נאספו באפריל 2014, 2015 ו 2016, בהתאמה, Offshore של סינמטק אושימה, פריפקטורה של קאגושימה, יפן (לוח 1). בכל מקרה, 25 (61%), 14 (93%) ו -91 (95%) אנשים חיו עד הפקדת ביצים באקווריום. כפי שדווח ב Fukuda et al . 3 , רק דג אחד נפטר לפני תום תקופת התצפית ב -2014, ודגים שהופיעו במקום החלו להופיע לאחר שבעה ימים לאחר שנלכדו, דבר המעיד על כך שגיד...

סדרה של שיטות בסיסיות כדי לאפשר את המחקר של אקולוגיה הרבייה של דגים שמורים באקווריום מתוארים. אלה הם פרוטוקולים שימושיים לאיסוף דגים באמצעות SCUBA, הובלת דגים חיים, והתבוננות בהתנהגות הרבייה של דגים שנלכדו באקווריום.

Captive-rearing observations are valuable for revealing aspects of fish behavior and ecology when continuous field investigations are impossible. Here, a ...

המטרה הכללית של הליך זה היא להשתיל תגים מזהים בדגים חיים ללא גרימת פגיעה, כדי לאפשר מחקרים אקולוגיים שונים באמצעות דגים שנתפסו בטבע ובאקווריום. שיטה זו יכולה לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחום האקולוגיה ההתנהגותית של דגים; כגון ההתנהגות הרבייתית והחברתית של דגים. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שניתן לבצע ניסויים בדגים ללא השפעה שלילית משמעותית על התנהגותם.סעיף זה מראה כיצד משתילים תגי VIE בדגים. אם לא ניתן להחזיק את הדג ביד מכיוון שהוא קטן מדי, יש לבנות שולחן ניתוחים להחזקת דגים כאלה. ראשית, חתכו ספוג רך לחלק של חמישה סנטימטרים רבועים, בגובה 20 עד 25 מילימטרים.לאחר מכן, חצקו חריץ בספוג בעומק של 5 עד 10 מילימטרים וברוחב התואם את הדג שיונח בו. כעת, גזרו חתיכה של polyvinyl chloride בעובי 0.3 מילימטר שתתאים בדיוק למעל הספוג. לאחר מכן, קפלו את ה-PVC קיפול פנימה (valley fold), והניחו אותו בתוך החריץ המרכזי.כעת העבירו את המכלול לצלחת בעלת קוטר 160 millimeter ודפנות בגובה 30 millimeter, ומלאו את הצלחת במים ממיכל ההשכמה עד שהלוח PVC יהיה טבול לחלוטין. בכך הושלם שולחן הניתוח. כעת עברו לתיוג דג.ראשית, בחרו אתר הזרקה וצבע תג. בטוח יותר להזריק לאזורים השריריים העבים של הגב או הזנב, מאשר להזריק לבטן שבה איברים פנימיים עלולים להיפגע. אם מין המחקר גדול מספיק, יהיו שמונה מיקומים סבירים להצבת תג.עם

basic-methods-for-the-study-of-reproductive-ecology-of-fish-in-aquaria

Research

JoVE Journal

Behavior

התנהגות

פרוטוקול זה מתאר תחזוקה וטיפול קבוע כדי לשמור על תנאים אופטימליים לגידול בעלי דג זברה. הסרטון מדגים את הפרוטוקול לתחזוקת מערכת, דיור רגיל, הזנה, רבייה, וגידול של זחלי דג זברה.

טיפול קבוע ותחזוקה של דג זברה (<em&gt; Danio rerio</em&gt;) מעבדה: מבוא

מתואר השימוש במערכת וידאו אוטומטית תלת מימדית שיכולה לעקוב אחר יחידים וקבוצות של דגי זברה. כדוגמה ליישום אנו בוחנים את ההשפעות של אנטגוניסט הקולטן NMDA MK-801 על דגי זברה.

שימוש במערכת מעקב תלת מימד אוטומטית לתיעוד פרטים ושל דגי זברה בוגרים

מוסברת שיטה חדשה להפחתת השונות בעת חשיפת דגים לתרופות.  דגים שנחשפו לדפוסים שונים של חשיפה לאתנול נמצאו כבעלי רמות חרדה שונות במהלך הגמילה במבחן סקוטוטקסי בהיר/כהה.

שיטה חדשה של תרופות אמריקניות לדג הזברה מרובה ( Rerio Danio) וכימות של נסיגה

בעבודה זו, אנו מתארים של bioassay אקוטית, כרונית, multigenerational ללמוד את ההשפעות של לחצים יחיד ומשולבים על דגים גמבוזיים טורקיז Nothobranchius furzeri. פרוטוקול זה תוכנן כדי ללמוד היסטוריה-החיים תכונות (התמותה, צמיחה, פוריות, משקל) ומקסימום תרמי קריטי.

פרוטוקול עבור סימן ובדיקות כרונית Ecotoxicity של דגים גמבוזיים טורקיז Nothobranchius furzeri

שימוש של ערכת הנפשה הרומן ' FishSim הכלים, נציג עבור פולשני מניפולציה חזותי של מידע ציבורי פרוטוקול בהקשר של חבר-הבחירה העתקה של מפרש mollies. FishSim ערכת הכלים אנימציה מספק מסגרת נוחה לשימוש עבור עיצוב, אנימציה, מצגת של דגים ממוחשבים גירויים לניסויים התנהגותיים עם מבחן חי דג.

באמצעות ערכת הנפשה של FishSim הכלים לחקור התנהגות דגים: חקר מקרה על חבר-הבחירה העתקה של מפרש Mollies

ב פרוטוקול זה, אנחנו מדגימים כיצד להתרבות Astyanax mexicanus מבוגרים, להעלות את הזחלים, לבצע כל-הר אימונוהיסטוכימיה על פוסט-זחל דגים כדי להשוות על הפנוטיפים של השטח, מערת morphotypes.

גידול של טטרה מקסיקנית Astyanax mexicanus עבור ניתוח של Post-larval פנוטיפים ואת כולה-הר אימונוהיסטוכימיה

הפריה חוץ גופית היא טכניקה בשימוש נפוץ עם מגוון רחב של אורגניזמים מודל לשמור על אוכלוסיות מעבדה לייצר עוברים מסונכרנים עבור יישומים במורד הזרם. כאן, אנו מציגים פרוטוקול המיישם טכניקה זו עבור אוכלוסיות שונות של הדגים טטרה מקסיקני, Astyanaxמקסיקני.

אוסף המשחק ו הפריה חוץ גופית של Astyanax מקסיאנוס

היבט בסיסי בהערכת רווחת בעלי החיים בשבי הוא לשאול אם לבעלי החיים יש את מה שהם רוצים. כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי לקבוע את העדפת הדיור ב-דג זברה (דניאו רריו) ביחס לנוכחות/העדר העשרה סביבתית וגישה להזרמת מים.

פרוטוקול מתוקננת עבור בדיקות העדפה להערכת הרווחה דגים

מאמר זה מתאר את תנאי המעבדה הבסיסיים ואת הפרוטוקולים למשטר טמפרטורה מצטבר כדי לעורר השרצה מקסימלית במקסיקו tetra Astyanax mexicanus, שהוא מודל מתפתח למחקרים התפתחותיים ואבולוציוניים.

שינויי טמפרטורה מצטברים לרבייה מקסימלית והשריצה באסטיאנקס מקסיקו

מאמר זה מתאר שתי שיטות מהירות ויעילות לאיסוף זרע מדאקה דג מודל קטן (Oryzias latipes), כמו גם פרוטוקול להערכה אמינה של איכות הזרע באמצעות ניתוח זרע בעזרת מחשב (CASA).

איסוף זרע וניתוח זרע בעזרת מחשב במודל הטלוסט מדאקה היפנית (Oryzias latipes)

למד שיטות לשתלת תגיות זיהוי בדגים חיים ללא פגיעה, לצורך מחקר אקולוגיה פורייה באקווריום. טכניקת VIE מאפשרת מעקב אחר התנהגות רבייה וחברתית עם השפעה מינימלית על רווחת הדגים.

שיטות בסיסיות לחקר אקולוגיה פוריות של דגים באקווריום

גלה סרטונים נוספים