31 ביולי 2017
פרוטוקול זה פותח כדי לזהות כמותית מרכיבים microenvironment הגידול ב resioblastoma החולה resections באמצעות אימונוהיסטוכימיה כרומוגנית ו ImageJ.
המטרה הכוללת של פרוטוקול זה היא לזהות כמותית רכיבי מיקרו-סביבה של גידול בכריתת חולי גליובלסטומה באמצעות אימונוהיסטוכימיה כרומוגנית ותמונה J. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום המיקרו-סביבה של הגידול, כגון כיצד רכיבים אלה נראים בדגימות חולים וכיצד אנו יכולים לקבוע יחסים רלוונטיים מבחינה פיזיולוגית של תאים. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהיא פשוטה לניתוח בדגימות מטופלים. ההשלכות של טכניקה זו משתרעות לקראת הבהרת המיקרו-סביבה המורכבת של גידול גליובלסטומה.
בדרך כלל, אנשים חדשים בשיטה זו יתקשו מכיוון שיש לעקוב מקרוב אחר תזמון ההתפתחות הכרומוגנית כדי למנוע התפתחות יתר ורוויה של הרקמה. התחל את הפרוטוקול על ידי ביצוע השטיפות המפורטות בפרוטוקול הטקסט הנלווה. יש לדלל תמיסת חשיפת אנטיגן עם pH גבוה על בסיס טריס ומים מזוקקים באמצעות המלצות היצרנים.
עברו לאחזור אנטיגן בתיווך חום על ידי הוספת תמיסת הסרת המסכה המדוללת לכלי שאינו אטום למיקרוגל. הנח שקופיות לתוך הכלי. לאחר מכן הנח את הכלי מחליק למיקרוגל.
לאחר מכן, הרתיחו את הכלי למשך 20 דקות בעוצמה גבוהה. עקוב אחר רמות הנוזל לאידוי ומלא את הכלי במים מזוקקים לפי הצורך. הניחו לדגימות להתקרר בתמיסה למשך שעה בטמפרטורת החדר.
מתאר את דגימת הרקמה עם הידרופובי כדי למזער את נפח הריאגנטים הדרושים לכיסוי הדגימה. לאחר מכן, צנרת בתמיסת חדירה מספקת, 100 עד 200 מיקרוליטר כדי לכסות את דגימת הרקמה. הסר והשליך את התמיסה וכסה שוב את דגימת הרקמה בתמיסת חדירה.
דגרו את הדגימות בטמפרטורת החדר עם תמיסת חסימה למשך שעה. לאחר מכן, דגרו את הדגימות למשך הלילה בארבע מעלות צלזיוס עם נוגדנים ראשוניים מדוללים בתמיסת חסימה. למחרת, זהה נוגדנים ראשוניים באמצעות מגיב פולימרי פרוקסידאז חזרת המתאים לחיה המארחת העיקרית של הנוגדנים.
צנרת בתמיסת חדירות מספקת כדי לכסות את דגימת הרקמה ולדגור את הדגימה למשך חמש דקות. הסר והשליך את התמיסה וכסה את דגימת הרקמה בתמיסת חדירות פעם נוספת למשך חמש דקות. דגרו את המגלשות במי חמצן 0.3% ו-IX TBS למשך 15 דקות.
פתח את הדגימות עם מצע פרוקסידאז דיאמינובנזידין או דאב למשך שתיים עד 10 דקות עד להשגת עוצמת הכתם הרצויה. צבעו את הדגימות כדי לזהות גרעיני תאים, כגון עם המטוקסילין בהתאם לפרוטוקול היצרנים. לייבש דגימות עם 100% אתנול וקסילן.
לבסוף, הרכיב את הדגימות לצמיתות עם אמצעי הרכבה. שני אזורים מעניינים בכריתת הגידול שלנו, הגידול הראשוני בתפזורת והאזורים הסמוכים, המורכבים בעיקר מרקמה בריאה עם תאי סרטן פולשים מפוזרים, זוהו על ידי נוירופתולוג משתף פעולה על דגימות חולים מוכתמים בהמטוקסילין ואאוזין. אימונוהיסטוכימיה כרומוגנית זיהתה צביעה חיובית לאסטרוציטים, מיקרוגליה ואוליגודנדרוציטים בכל דגימת חולה.
ביצענו צביעה ללא נוגדן ראשוני לבקרה שלילית. היצרן המליץ על דילול נוסף לפני שהחליט על דילול של 1 עד 200 עקב צביעה חיובית אופטימלית של גוף התא ותהליך עם רקע מינימלי לנוגדנים נגד ALDH 1l1. באמצעות תמונה J, אחוז הכיסוי של צביעת אוליגודנדרוציטים חיוביים OSP-1 כומת כדי להשוות בסופו של דבר את ההבדלים באזורי העניין שלנו.
לאחר החלת הסף המתאים על התמונה, ניתן למדוד ולהשוות את אחוז הכיסוי מהסף עבור מספר חולים. חמישה אזורים סמוכים ובתפזורת של דגימות חולי גליובלסטומה או GBM, יחד עם רקמת מוח בריאה הושוו לכיסוי חלבון ספציפי לאוליגודנדרוציטים 1 או OSP1 אחוז. לאחר השליטה, ניתן לבצע את טכניקת הצביעה תוך ארבע שעות ביום הראשון ושעתיים ביום השני אם היא מבוצעת כראוי.
בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לעקוב מקרוב אחר עוצמת צביעת הרקמות והלחות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
פרוטוקול זה מתאר שיטה לזיהוי כמותי של מרכיבי מיקרו-סביבת הגידול בהסרות של חולי גליובלסטומה באמצעות אימונוהיסטוכימיה כרומוגנית והתוכנה ImageJ. טכניקה זו נועדה לספק תובנות לגבי מיקרו-סביבת הגידול המורכבת של הגליובלסטומה.
Quantitative analysis of the tumor microenvironment in patient-derived glioblastoma samples enables mechanistic de-risking of glial cell targets in neuro-oncology drug discovery. By providing reproducible, region-specific measurements of astrocytes, microglia, and oligodendrocytes, this method supports target validation and phenotypic screening in disease-relevant systems. It enhances predictive confidence in preclinical models by linking microenvironment composition to therapeutic response and resistance mechanisms.
This method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead optimization, particularly for neuro-oncology programs focused on microenvironment modulation.