13 בספטמבר 2017
כתב יד זה מתאר כיצד להבחין בין נמטודות שונים באמצעות שדה רחוק עקיפה חתימות. אנו משווים את ומכניקה של 139 108 "רולר" C. elegans וסוג הפרוע מאת ממוצע של תדרים המשוייך לחתימה עקיפה פראונהופר טמפורלית במקום אחד באמצעות לייזר מתמשך wave.
המטרה הכוללת של ניתוח עקיפה מבוסס פורייה זה היא לאפיין את התנועה של C elegans בזמן אמת כאשר המין נע בחופשיות במרחב תלת מימדי. שיטה זו יכולה לענות על שאלות מפתח בתחום הנוירוביולוגיה על ידי תיאור תגובות מינים לצפיפות שונה של מוטציות תמיסה או תנועה. שיטה זו משמשת כקו בסיס לניתוח פורייה של מינים מיקרוסקופיים.
יש לו יתרון שלכל מין מיקרוסקופי יהיה ספקטרום פורייה ייחודי משלו. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי התנועה של C elegans, ניתן ליישם אותה גם על מיקרואורגניזמים אחרים. בדרך כלל, אנשים חדשים בשיטה זו יתקשו מכיוון שמציאת הנמטודה בקובט, מתחת לקרן הלייזר יכולה להיות מאתגרת.
הרעיון לשיטה זו עלה לראשונה בניסיון ללמוד על התנהגות שחייה מאות העקיפה הרקתית, כשלעצמו, אות רועש. כדי להתחיל, אבטח לייזר ניאון הליום ליד הפינה השמאלית האחורית של שולחן העבודה האופטי וחבר אותו למקור חשמל. הנח מסנן צפיפות ניטרלית בין הלייזר למיקום הדגימה, כך שקרן הלייזר תעבור דרך המסנן לפני שתגיע לדגימה.
באמצעות שתי מראות היגוי אלומיניום קדמיות, בנה פריסקופ על ידי אבטחת המראה הראשונה לאחר מסנן הצפיפות הנייטרלית. לאחר מכן, אבטח את המראה השנייה כ-10 סנטימטרים מתחת למראה הראשונה כדי לתת מקום לנווט את קרן הלייזר. הכנס קובטה בין המראות ויישר את קרן הלייזר והקובטה כך שקרן הלייזר תעבור אנכית דרך הקובטה.
לאחר מכן, אבטח את דיודת הצילום ישירות מול המראה השנייה כך שהחיישן שלה פונה למראה. לאחר מכן, הניחו קובטה מלאה במים על מעמד. כוונן את גובה המעמד ואת זוויות המראות אחת ושתיים כך שקרן הלייזר תעבור דרך הקובט ותכוון קרוב אך לא ישירות לדיודת הצילום.
השתמש במנוף כדי להבטיח שהמעמד יוצר משטח ישר לקובטה. אם המעמד אינו מפולס, בצע את ההתאמות המתאימות עד ליישור. לבסוף, חבר את דיודת הצילום לאוסילוסקופ הדיגיטלי באמצעות כבל ה- USB המצורף וחבר אותה למחשב.
טען את תוכנת האוסילוסקופ והגדר את קצב הדגימה לשמונה הרץ לפחות כדי לפתור את מחזור האשפה של התולעת בצורה מספקת. השתמש בחוט פלטינה דק ושטוח כדי להעביר ארבע נמטודות בוגרות לצלחת פטרי טרייה במילוי אגר NGM. לאחר מכן, הוציאו קובטה חד פעמית מפלסטיק מהאריזה שלה, והקפידו לגעת רק בקובט בצדדים המרוכסים שלה.
לאחר מכן, השתמש במיקרופיפטה כדי לפפט מים מזוקקים לקובטה עד שהקובטה מתמלאת בכ-80% במים מזוקקים. מניחים את צלחת הפטרי המכילה את ה- C elegans תחת טווח ניתוח. לאחר מכן, השתמש בפיק הפלטינה כדי להסיר C elegans בוגר אחד מצלחת הפטרי ולהטביע את הפיק בקובטה.
הזז את הבחירה במעגלים כדי לעקור את הנמטודה במידת הצורך. טפל בנמטודות בעדינות ואל תנער את הקובטה. ניעור הקובט עלול לגרום לתולעים להפסיק להגיב.
כדי למנוע היווצרות בועות בקובטה, מלאו את הקובט במים מזוקקים עד שהוא זז מעט מעל החלק העליון של הקובטה. לאחר מכן, מלאו את הפקק במים והניחו במהירות את הכובע על הקובטה. בעזרת נייר עדשה, הסר טיפות מים שעלולות להישפך על הקובטה.
בנוסף, השתמש בנייר עדשה כדי להסיר טיפות קטנות שנותרו. הפעל את לייזר ניאון ההליום והתאם את הגדרת התדר כך שהוא יפיק קרן אדומה. לאחר מכן, הפעל את החיישן.
החזיקו את הקובט על דפנותיה המרוכסות והטו אותה בעדינות עד שהנמטודה נמצאת בערך במרכז הקובטה. לאחר מכן, הנח את הקובט על המעמד במערכת האופטית, ומרכז את התולעת בתוך קרן הלייזר הנעה ממראה אחת למראה שתיים. לאחר מכן, מקם את דיודת הצילום בתבנית העקיפה כך שמיקום דיודת הצילום והמקסימום המרכזי של דפוס העקיפה לא יהיו חופפים.
לאחר מכן, סובב את מסנני הצפיפות הנייטרלית כך שתהיה פלט מתח בולט מדיודת הצילום. הקפד להגביל את האור באמצעות מסנן הצפיפות הנייטרלית, כדי למנוע רוויה של דיודת הצילום. קו שטוח מעיד על רוויה יתר או חוסר עוצמה.
לאחר שדפוס העקיפה הנע גלוי, אסוף נתונים עם דיודת הצילום על ידי לחיצה על כפתור ההתחלה בתוכנה, שליטה באוסילוסקופ תוך ניטור תנועת התולעת. המשך לבצע מדידות עד שהתולעת יוצאת מקרן הלייזר ודפוס העקיפה נעלם. אם הקובט נשרט, השלך אותו ואת התולעת והתחל מחדש.
לאחר כ-20 שניות, הפסק את תהליך איסוף הנתונים על ידי לחיצה על כפתור העצירה בתוכנה של האוסילוסקופ. שמור את הנתונים של כל גירסת ניסיון בתבנית ערכים מופרדים באמצעות פסיקים או טקסט. אסוף לפחות 50 מערכי נתונים עבור כל פנוטיפ והשתמש בשמונה עד 10 בעלי חיים בכל ניסוי.
דוגמאות לתנועת תולעת רציפה ממודלים ודפוסי עקיפה תואמים מוצגות כאן. דפוסי העקיפה המודלים דומים מבחינה איכותית לדפוסי ניסוי ומצביעים על כך שהסימולציה מידלה בהצלחה את הנמטודה. בנוסף, ניתן להראות כמותית את חתימת העקיפה הזמנית של הרולר ו-c elegans מסוג פראי.
כפי שניתן לראות כאן, כל נמטודה מכה בקצבים ובמשרעות שונות. טרנספורמציות פורייה דיגיטליות ממוצעות מאפשרות לזהות את הנמטודה על ידי משרעת ספקטרום תדרי העקיפה שלהן. ספקטרום התולעת מסוג הבר נשלט על ידי תדרים נמוכים יותר מספקטרום תנועת הגליל.
הנה דוגמה לתנודת w שניתן לחשוב עליה כשתי תנועות ים מנוגדות. לעומת זאת, הרולר ייצור לרוב c בצד אחד ונראה כך. בבחינת התדרים, תנועת w מורכבת יותר, וחושפת יותר תדרים נמוכים משניים מאשר תנועת c.
לאחר השליטה, ניתן לאסוף מערך נתונים אחד תוך כשתי דקות אם הטכניקה מבוצעת כראוי. לוקח בערך 20 עד 30 דקות להגדיר את האופטיקה עבור סדרה של מערכי נתונים. בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לטפל ב-C elegans בזהירות, כדי לשמור על שלמות התנועה שלהם.
בעקבות הליך זה, אנו יכולים ליישם שיטות אחרות כגון שחזור טרקטור וניתוח לא ליניארי כדי ללמוד עוד על תנועת C elegans. לאחר פיתוחה, טכניקה זו סללה את הדרך לחוקרים בנוירוביולוגיה לחקור לעומק מוטציות תנועתיות ב-C elegans. אחרי הצפייה בסרטון הזה, אתם אמורים להבין די טוב כיצד ליצור דפוסי עקיפה עבור נמטודות חיות וכיצד לנתח אותן.
אל תשכח שעבודה עם לייזרים עלולה להיות מסוכנת ביותר ויש לנקוט באמצעי זהירות כגון אי תנועת הלייזרים בגובה העיניים בעת ביצוע ההליך.
מחקר זה מציג שיטה לניתוח עקיפה מבוססת פורייה לצורך אפיון התנועה של C. elegans בזמן אמת. באמצעות ניתוח חתימות עקיפת פראונהופר (Fraunhofer) זמניות, חוקרים יכולים להבחין בין פנוטיפ מסוג wild type לבין פנוטיפ "Roller" על בסיס דפוסי התנועה שלהם.
שיטה זו מאפשרת אפיון בזמן אמת, ללא סימון (label-free), של תנועת מיקרואורגניזמים באמצעות אנליזת פוריה של חתימות עקיפה, ובכך מספקת קריאה פנוטיפית כמותית ליישומים בתחומי הנוירוביולוגיה והביופיזיקה. היא תומכת בתיקוף מטרות על ידי קישור מוטציות גנטיות לתוצרי התנהגות מדידים, ובכך מקלה על הפחתת סיכונים מכניסטיים בשלבי הגילוי המוקדמים. גישה זו מציעה פלטפורמה ניתנת להרחבה ולשימוש חוזר לסריקת פנוטיפים של תנועה במינים מיקרוסקופיים, ובכך מחזקת את הביטחון החזוי במערכות מודל.
השיטה משתלבת בתהליכי עבודה של שלבי הגילוי המוקדמים, וממקמת את האפיון הפנוטיפי לאחר המניפולציה הגנטית ולפני זיהוי המולקולות המובילות, וזאת באמצעות אספקת נקודות קצה כמותיות של תנועה לצורך תיקוף מסלולים.