7 בספטמבר 2017
חדשות שהתגלו מחמצנים צורות של 5-methylcytosine (oxi-mCs), 5-hydroxymethylcytosine (5hmC), 5-formylcytosine (5fC), 5-carboxylcytosine (5caC) עשוי לייצג שינויים ברורים DNA עם תפקידים פונקציונליים ייחודיים. כאן מתוארת זרימת עבודה כמותית למחצה עבור ויזואליזציה של התפוצה המרחבית של oxi-mCs, פרופיל עוצמת האות ו colocalization.
המטרה הכוללת של טכניקה זו היא לספק כלי חישובי להערכת ההתפלגות המרחבית ועוצמת האות של שינויים ב-DNA, המומחשים על ידי צביעה חיסונית בתוך גרעינים. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום האפיגנטיקה, ולאפשר בחינה של לוקליזציה גרעינית ורמות יחסיות של שינויים ב-DNA במערכות מודל שונות. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא ששינויי ה-DNA נמדדים על ידי גודל אות הבוט ולאחר מכן התפלגות.
אחת ההשלכות של טכניקה זו היא שהיא מקלה על ההבנה שלנו של שורות פונקציונליות פוטנציאליות של שינויים ב-DNA במערכות ביולוגיות שונות. לטכניקה זו יש גם יישום נוסף של ניתוח חישובי של אפיטופים אחרים הניתנים לזיהוי על ידי אימונוהיסטוכימיה. כדי להתחיל, פתח את הקבצים בפורמט LSM של תמונת המיקרוסקופיה הקונפוקלית.
בחר עיבוד תמונה ולאחר מכן בחר את התמונה הרצויה לניתוח. שימו לב, שכאשר משווים פרופילי עוצמה בין דגימות, עוצמת הלייזר והרווח חייבים להיות עקביים כדי לבצע השוואות ישירות. לאחר מכן, לחץ על הצג הכל, כדי להפוך את כל הפקדים הגרפיים לגלויים, ולאחר מכן בחר בכרטיסייה הגרפית ובחר בכלי המלבן כדי לבחור אזור המכיל את הגרעינים המעניינים.
לאחר מכן השתמש בפקודה גזור אזור כדי לבודד את אזור העניין. כעת שמור את התמונה בשם חדש ובפורמט LSM או CZI ופתח מחדש את הקובץ בתוכנת Zen Blue. פתח את שולחן ZEN ב-Zen Blue, ולאחר מכן השתמש בפקודה שלח ל-ZEN ב-Zen Black כדי לפתוח את הקובץ ב-Zen Blue.
לאחר מכן, הפעל את הכרטיסייה שכותרתה 2.5d כדי לאפשר הדמיה של התמונה ב-2.5d. לחץ על הצג הכל כדי להפוך את כל הפקדים הגרפיים לגלויים ולשנות את ההגדרות באמצעות ארבעת הפסים האפורים. הסורגים שולטים בזום, בסיבוב, בהטיית הציר ובהתרחבות ובהתכווצות של פסי קנה מידה.
בחר את מצב הרינדור כדי להמחיש בצורה הטובה ביותר את הפסגות הבודדות, ולאחר מכן שנה את המרחק הגדול על ידי שינוי האחוזים. ככל שהאחוז נמוך יותר, כך כל פסגה בודדת מוגדרת יותר. כעת לפני שמירת התמונה 2.5d, הסתר את רשימת הקבצים ואת הכלים הגרפיים על ידי לחיצה על החץ האפור מתחת לתרשים 2.5d.
לאחר מכן שמור את העלילה כצילום מסך באמצעות מקש מסך ההדפסה במקלדת. פתח את אפשרות עיבוד התמונה בתוכנה ופתח את הקובץ המבוקש. לאחר מכן, בחר בכרטיסיית הפרופיל ובחר בכרטיסייה הצג הכל כדי לגשת לכל אפשרויות העיצוב.
בכרטיסיית הפרופיל, בחר באפשרות הטבלה ובלחצן החץ. כעת השתמש בעכבר כדי לבחור נקודת התחלה ולצייר קו על מספר רציף של תאים, לאחר מכן נוצרת תרשים עוצמה עבור התאים לאורך קו זה, יחד עם טבלת מדידות העוצמה. שימו לב שהטבלה מספקת גם את המרחק שבו עוצמת הפיקסלים היא אדומה עבור הקרינה האדומה, הירוקה והכחולה.
היחידה היא מיקרון. כדי לייצא נתונים אלה, לחץ לחיצה ימנית על הטבלה, בחר שמור טבלה ושמור אותה כקובץ טקסט. כדי לשמור את פרופיל העוצמה, בחר באפשרות הייצוא, בחלון המוקפץ, החלף שתי אפשרויות, קובץ תמונה מתויג, פורמט ותוכן של חלון תמונה, חלונית בודדת, נתונים.
לאחר מכן עקוב אחר ההנחיות כדי לשמור את הקובץ. כעת חזור על תהליך זה עבור כל פרופיל עוצמה נדרש. בתוכנה, בחר עיבוד תמונה ובחר את קובץ התמונה המעניין.
לאחר מכן בחר את הכרטיסייה שכותרתה coloc לניתוח לוקליזציה משותפת ובחר הצג הכל כדי לגשת לכל אפשרויות העיצוב. מארבע הכרטיסיות בחצי התחתון של המסך, בחר לוקליזציה משותפת ובחר את אפשרויות הטבלה והתמונה. לאחר מכן בחר את הסמל השלישי לאורך החלק העליון של הכרטיסייה, המזוהה על ידי הטקסט המוקפץ, הבסיר הסגור.
השתמש בכלי זה כדי להקיף גרעין יחיד. לאחר מכן יופיעו ערכים בטבלה ונוצרת תרשים פיזור עבור פלואורסצנטיות אדומה לעומת ירוקה. הציר של חלקה זו ניתן להזזה וזה שולט בשער הזיהוי.
כל עוצמות הפיקסלים בתוך הגרעין צריכות להיחשב כאותות חיוביים. מכיוון שרמות השינויים בדנ"א משתנות על פני הגרעין, כדי לקחת בחשבון אותות חלשים, איננו מגדירים את הנתונים. נדגיש כאן, שאפשר להתווכח אם יש לכלול את ערכי הרקע בניתוח.
חשוב לציין, מקדם החפיפה אינו תלוי בהבדלים בעוצמות האות בין שני הערוצים. בעוד שמקדם מתאם אדם מניח קשר ליניארי בין האותות. כעת חזור על תהליך זה של הקפת גרעינים על מנת להשלים את מערך הנתונים.
לאחר מכן כדי לייצא את הנתונים, לחץ באמצעות לחצן העכבר הימני על הטבלה ופעל לפי האפשרויות לשמירת הנתונים. כדי לשמור תמונת לוקליזציה משותפת, השתמש בפקודת הייצוא עם שתי האפשרויות, קובץ תמונה מתויג, עיצוב ותוכן של חלון תמונה חלון יחיד, נתונים, ולאחר מכן בצע את האפשרויות לשמירת הקובץ. ההתפלגות המרחבית של שני נגזרות מחומצנות של חמישה מתיל ציטוזין נבדקה בהבחנה בין אבות הפדיים, תוך שימוש בפרוטוקול המתואר.
אותות אדומים וירוקים מייצגים את שני שינויי הדנ"א השונים. האותות מוגדרים היטב עם חפיפה מוגבלת. בהתאם לציפיות, הפרופילים של שתי עוצמות האות והתא המתאים, אינם חופפים זה לזה.
הדפוס המובהק מצביע על כך שחמצון תלוי ברז של חמישה מתיל ציטוזין יכול ליצור נגזרות מחומצנות שונות באזורי כרומטין ספציפיים. השוואה דומה בין שני שינויי ה-DNA נעשתה בתאי מדולובלסטומה של Daoy ובתאי BXD ependymoma. שתי שושלות התאים הן מגידולי מוח בילדים.
כימות מגלה שתאי BXD מציגים רמות נמוכות משמעותית של שני האותות בהשוואה לתאי דאוי. הקו-לוקליזציה הבאה של הנגזרות המחומצנות של 5MC, נבדקה ב-hiPSCs לא מובחנים. תוך 24 שעות לאחר השראת התמיינות אנדודרם בכבד ו-hiPSCs.
בניתוח זה, לוקליזציה משותפת של אותות השתנתה באופן משמעותי עם אינדוקציה של התמיינות, שאולי מיוחסת לגודל מופחת של חמישה CAC בתאים הלא ממויינים. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד ליצור עלילות ופרופילים בעוצמה של 2.5d וכיצד לייצר נתוני לוקליזציה משותפת. כלי ניתוח התמונה וההדמיה המתוארים כאן, תורמים למחקר אפיגנטי, ומספקים דרך מהירה יחסית להשוות אותות של שינויים שונים ב-DNA בקבוצות ניסוי שונות.
לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך כשעה אם היא מבוצעת כראוי. חשוב להימנע מחשיפת יתר ולהשתמש באותן הגדרות עבור קבוצות ניסוי שונות במהלך המיקרוסקופיה. בועות אוויר בתושבת וטבילה לא מספקת עלולות לגרום לאובדן מקומי של הקרינה, לכן בדיקה ויזואלית של אזור הסריקה היא קריטית.
ניתן להפוך את ההליך לאוטומטי עוד יותר על ידי פילוח הגרעינים ויצירת אזורי עניין באמצעות Zen Blue. ניתן לייבא אזורים אלה ל-Zen Black, כדי לבצע ניתוח לוקליזציה משותפת על גרעינים מרובים.
מאמר זה מציג תהליך חצי-כמותי להמחשת צורות מחומצנות חדשות של 5-מתילציטוזין (oxi-mCs) והתפלגותן המרחבית בתוך גרעינים. השיטה מאפשרת הערכת עוצמת האות של שינויים ב-DNA והתמקמות משותפת, ותורמת להבנת תפקידיהם הפונקציונליים באפיגנטיקה.
This method enables biopharma R&D teams to quantitatively assess the spatial distribution and signal intensity of DNA modifications in nuclear contexts, supporting mechanistic de-risking in epigenetic target validation. By providing computational analysis of immunostained confocal images, it enhances predictive confidence in early discovery stages where understanding the localization of novel epigenetic marks informs therapeutic hypothesis interrogation. The workflow supports cross-functional collaboration through standardized, reproducible quantitative outputs that can be applied across diverse model systems.
The method integrates into the discovery continuum from Early Discovery to Lead Identification by providing quantitative imaging data that supports hypothesis testing and pathway clarification in epigenetics research.