Name: חיתוך, צביעה של השחלות הגולמי דרוזופילה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-02T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: למדו שיטה לחיתוך וצביעה של שחלות גולמיות בדרוזופילה לחקר ביולוגיה התפתחותית ותאי גזע. הפרוטוקול משתמש בכלים מותאמים אישית להתמודדות עם גודלן הקטן ושקיפותן של השחלות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

מחקר זה נתמך על ידי מכוני הבריאות הלאומיים (RO1 GM079351 כדי D.K.). אנו מודים דורותיאה מפציר על לה עצות מועילות על השחלה הגולמי והניתוחים בהתבסס על הפרוטוקול המקורי שלה. אנו מודים גם איימי Reilein לה סיוע והערות על כתב היד.

1. EggLaying
<ol><li>לשלב כ זכר עשר חמש עשרה הנשי דרוזופילה הזבוב הבוגר של גנוטיפ הרצוי בבקבוקון של אוכל עשיר לטוס רגיל בתוספת שמרים. כדי למנוע צפיפות יתר את המבחנה, לאפשר ובסיומה הנקבות להטיל ביצים לא יותר 2 – 4 h14.</li>
	<li>להעביר את המבוגרים מ המבחנה לתוך בקבוקון חדש על-ידי הקשה את המבחנה פתיחה נגד בקבוקון שונים עם אוכל לעוף. אפשר כי הביצים מתפתחות לזחלים בטמפרטורת החדר במשך 3-4 ימים.</li>
</ol>2. בחירת הזחלים הנשי
<ol><li>בעזרת מברשת לחה בסדר עם זיפים רכים, לבצע תנועה מתגלגל עם המברשת לאורך החומה של הבקבוקון כדי להעביר נודד הזחלים השלישי-לחלל המבחנה לכוס טוב מלא עד הקצה עם 1 x באגירה פוספט תמיסת מלח (PBS). לשטוף את פסולת המזון את הזחלים על ידי העברת אותם לשני טוב מלא 1 x PBS.</li>
	<li>הפרד את הזחלים זכר ונקבה באמצעות מלקחיים. זיהוי הזחלים זכר על-ידי זוג האשכים גדולות ועגולות, ולאחר שקוף מוטבע בתוך הגוף השמן על הצד הלטראלי של הגוף כשני שליש למטה מן הקצה הקדמי שלה15. הזחלים הנשי הן בממוצע יותר גדול, פחות שקוף מאשר גברים, יש גונדות קטן הרבה יותר, כי הם יותר קשה לזהות.</li>
	<li>בחר נגד הזחלים זכר כדי לאסוף את הזחלים הנשי. לאסוף לפחות עשרה נקבות מן הבאר. למקם את הזחלים נשית נפרדת טוב מלא 1 x PBS.</li>
	<li>שימוש מלקחיים להעביר את הזחלים הנשי בעדינות לתוך בקבוקון חדש של אוכל לעוף טרי בתוספת שמרים.</li>
	<li>מניחים את הצנצנת עם הזחלים הנשי במיקום כהה כדי להקל על pupariation16. לאורך כל היום, לנטר את הזחלים עבור pupariation. כל זחל עוצר, מתפתח prepupa, להקיף את prepupa נגד המבחנה, לרשום את הזמן המשוער מתי זה קודם מטופסי prepupa. לזהות prepupae על-ידי על בליטה של anterior spiracles והתזמון של היווצרות puparium17. אפשר את prepupae לפתח לנקודת הזמן הרצויים (נמדד בשעות לאחר היווצרות puparium, APF). הערה: כל חיה עוברים puparium היווצרות בתוך מרווח h כ 10 יכול להיחשב של prepupa. השלב הגולמי מתחיל כ 12 שעות לאחר היווצרות puparium אחרי הנשירה פנימי התרחש.</li>
</ol>3. הכנת הגלמים נוגדן מכתים
<ol><li>
טופס על pipet זכוכית אותה לשימוש מאוחר יותר שלבים, מרוקן את הגוף השמן הגולמי.
	<ol>
<li>ממיסים את קצה זכוכית pipet פסטר מעל מבער בונזן. הזכוכית נמס, להשתמש מלקחיים למשוך את הטיפ אופקית משאר pipet כדי ליצור טיפ דק יותר.</li>
		<li>לאחר קירור להתפרק רק חלק קטן של קצה pipet כדי ליצור חור עגול מסודר. לצרף נורה הקצה השני של pipet.</li>
		<li>טען את pipet עם 1 x PBS.</li>
	</ol>
</li>
	<li>כדי לקצור את הגלמים, אשר מודבקות לקיר של הבקבוקון, החל טיפת מים לאורך אזור קשר בין גולם בקבוקון קטן. לחכות 1 – 2 דקות כדי לתת החלבון הדבק מתמוסס ולהבהיר בעדינות הגולם מהקיר עם מברשת בסדר לח. העברת הגולם טוב לכוס מלאה 1 x PBS. להקדיש לבאר בודדת לכל גולם כדי למנוע צפיפות יתר הבאר.</li>
	<li>תוך אוחז בקצה האחורי של הגולם עם זוג מלקחיים, בזהירות לקרוע את החלק הקדמי של המקרה הגולמי עם זוג נוסף עד ראש הגולם יהיה גלוי.</li>
	<li>אחיזה בקצה הקדמי ביותר של הראש הגולמי עם מלקחיים ומשוך בעדינות את הגולם מהתיק הגולמי שלה. הערה: חלק של שומן הגוף יכול להישפך החוצה בתהליך זה.</li>
	<li>להפריד ולמחוק את החצי הקדמי של הגולם של החצי האחורי עד נשאר רק השק בטן.</li>
	<li>
לחלץ את תאי הגוף השמן מן השק בטן.
	<ol>
<li>לתפוס את השק בטן בתחתית הבאר עם מלקחיים ביד אחת תוך החזקת את pipet זכוכית מלאים 1 x PBS ביד אחר.</li>
		<li>מטרת הטיפ pipet דק לכיוון הפתח של שק, לאט pipet 1 x PBS לתוך. חלל הבטן כדי לשטוף את תאי שומן הגוף סביב השחלות הגולמי. הערה: השחלות הן זוג מבנים קטנים, שקוף, מפוספס, מלבני שצריך להישאר בתוך השק בטן.</li>
		<li>לשטוף את שומן הגוף תאים עד לפחות שני שלישים של שומן הגוף נעלם או עד השחלות גלויים ליד הפתח של השק בטן. חשוב מאוד לבצע שלב זה לאט כדי לא לשטוף את השחלות מתוך הבטן בטעות.</li>
	</ol>
</li>
	<li>לבחון את הבאר כדי לבדוק אם השחלות שפכתי החוצה במהלך לשטוף תא את שומן הגוף. אם השחלות אינם גלויים בתוך הבאר, הם צריכים להישאר בחלל הבטן. אם השחלות יש לצאת, במקום גולם חדש בבאר, חזור על שלב זה.</li>
	<li>להעביר את הבטן לתוך תא coverglass ברור מלא עם קיבוע מאגר (1 x PBS, 4% paraformaldehyde) ומניחים את המכסה למעלה. כדי להבטיח מספר מספיק של השחלות לעמוד על צביעת ותהליך הרכבה, לנתח השחלות יותר מכפי הצורך. זהירות: החומר הממתן קיבוע מכיל paraformaldehyde אשר הוא רעיל. בבקשה ללבוש הגנות מתאימות כגון כפפות, בטיחות משקפיים, וכו '.</li>
</ol>4. אימונוהיסטוכימיה
<ol><li>לאורך כל התהליך מוכתמים, להשתמש מלקחיים לדחוף בעדינות את השחלות צף כל לתחתית הבאר כיסוי זכוכית כדי להבטיח כי השחלות שקועים לחלוטין בפתרון נוגדן.</li>
	<li>המקום רצועות סרט הדבקה דו-צדדי על גבי משטח שטוח של Nutator ולאחר מכן מקם את coverglass chambered על פני השטח דבק.</li>
	<li>דגירה השחלות במאגר קיבוע מהשלב 3.7 למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>לשטוף את השחלות שלוש פעמים ב- PBS 1 x 1% טריטון X-100 עבור 5, 10 ו- 45 דקות (h 1 סה כ), בהתאמה, כדי לאפשר permeabilization יסודית.</li>
	<li>לחסום את השחלות בנסיוב עז נורמלי 10% ב- PBS 1 x עם 0.5% טריטון X-100 למשך 30 דקות.</li>
	<li>דגירה השחלות ללון ב- 600 µL של נוגדן ראשוני של בחירה מדולל לריכוז המתאימה ב- PBS 1 x עם 0.5% טריטון X-100 ב 4 º C.</li>
	<li>לשטוף את השחלות שלוש פעמים במשך 5 דקות ב- PBS 1 x עם 0.5% טריטון X-100.</li>
	<li>דגירה השחלות עבור 2 h ב- 600 µL של נוגדנים משניים של בחירה מדולל לריכוז המתאימה ב- PBS 1 x עם 0.5% טריטון X-100 בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>יש לשטוף את השחלות פעמיים במשך 5 דקות ב- PBS 1 x עם 0.5% טריטון X-100 ופעם אחת למשך 5 דקות ב- 1 x PBS.</li>
</ol>5. לנתח והרכבה השחלות הגולמי
<ol><li>במקום טיפה קטנה של PBS 1 x לשקופית מיקרוסקופ. מלקחיים להשתמש כדי להעביר את השק בטן מלוח coverglass chambered כוס טוב מלא 1 x PBS. להקדיש לבאר בודדת לכל גולם כדי למנוע צפיפות יתר הבאר.</li>
	<li>לקרוע לגזרים השק הבטן ואת כל הגוף השמן שנותרו עם מלקחיים. הערה: השחלות, אשר הם זוג של מבנים קטנים, שקוף, מפוספס, מלבני, צריך להיות גלוי בתוך הבאר. השחלות מוקפים לעיתים קרובות בחוזקה שומן הגוף, לכן חשוב לוודא כי כל הגוף השמן ביסודיות נקרע לגזרים.</li>
	<li>העברת השחלות מן הבאר לתוך הירידה של 1 x PBS בהמיקרוסקופ שקופית על-ידי אחיזה במרכז השחלות בין קצות המלקחיים. חשוב מאוד להשתמש אחיזה חזקה מבלי לסחוט את השחלות כדי לא להפסיד או להשמיד אותם במהלך ההעברה. הוסף מספר טיפות של PBS 1 x אל השקופית כאשר הפתרון מתייבש עם הזמן.</li>
	<li>לאחר כל השחלות גזור והעבירו אל השקופית מיקרוסקופ, pipet 40 µL של הרכבה בינונית על גבי coverslip 22 מ"מ x 22 מ"מ בעלת המקום coverslip בעדינות על השחלות. תן שקופית הלילה יבש לפני הדמיה.</li>
</ol>

<ol><li>Losick, V., Morris, L., Fox, D., Spradling, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21763616">Drosophila Stem Cell Niches: A Decade of Discovery Suggests a United View of Stem Cell Regulation.</a> Dev Cell. 21 (1), 159-171 (2011).</li>
<li>Kirilly, D., Xie, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+ovary%3A+an+active+stem+cell+community%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">The Drosophila ovary: an active stem cell community.</a> Cell Res. 17 (1), 15-25 (2007).</li>
<li>Dansereau, D. A., Lasko, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Development+of+Germline+Stem+Cells+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Method+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">The Development of Germline Stem Cells in Drosophila.</a> Method Mol Biol. 450, 3-26 (2008).</li>
<li>Pearson, J., López-Onieva, L., Rojas-Ríos, P., Gonzáles-Reyes, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+Drosophila+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Recent advances in Drosophila stem cell biology.</a> Int J Dev Biol. 53, 1329-1339 (2009).</li>
<li>Arwert, E. N., Hoste, E., Watt, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+stem+cells%2C+wound+healing+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Epithelial stem cells, wound healing and cancer.</a> Nat Rev Cancer. 12 (3), 170-180 (2012).</li>
<li>Barker, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crypt+stem+cells+as+the+cells-of-origin+of+intestinal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Crypt stem cells as the cells-of-origin of intestinal cancer.</a> Nature. 457 (7229), 608-611 (2009).</li>
<li>Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+myeloid+leukemia%3A+proving+ground+for+cancer+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Chronic myeloid leukemia: proving ground for cancer stem cells.</a> Cell. 119 (3), 314-316 (2004).</li>
<li>Reilein, A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28414313">Alternative direct stem cell derivatives defined by stem cell location and graded Wnt signaling.</a> Nat Cell Biol. 19 (5), 433-444 (2017).</li>
<li>Eliazer, S., Buszczack, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Finding+a+niche%3A+studies+from+the+Drosophila+ovary%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Finding a niche: studies from the Drosophila ovary.</a> Stem Cell Res Ther. 2 (6), 45(2011).</li>
<li>Godt, D., Laski, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+cell+rearrangement+and+cell+recruitment+in+Drosophila+ovary+morphogenesis+and+the+requirement+of+bric+%C3%A0+brac%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of cell rearrangement and cell recruitment in Drosophila ovary morphogenesis and the requirement of bric à brac.</a> Development. 121 (1), 173-187 (1995).</li>
<li>King, R. C., Aggarwal, S. K., Aggarwal, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+the+female+Drosophila+reproductive+system%5BTitle%5D)+AND+%22J+Morphol%22%5BJournal%5D)">The development of the female Drosophila reproductive system.</a> J Morphol. 124 (2), 143-166 (1968).</li>
<li>Vlachos, S., Jangam, S., Conder, R., Chou, M., Nystul, T., Harden, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Pak-regulated+cell+intercalation+event+leading+to+a+novel+radial+cell+polarity+is+involved+in+positioning+of+the+follicle+stem+cell+niche+in+the+Drosophila+ovary%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A Pak-regulated cell intercalation event leading to a novel radial cell polarity is involved in positioning of the follicle stem cell niche in the Drosophila ovary.</a> Development. 142 (1), 82-91 (2015).</li>
<li>Irizarry, J., Stathopoulos, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+signaling+supports+Drosophila+fertility+by+regulating+development+of+ovarian+muscle+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">FGF signaling supports Drosophila fertility by regulating development of ovarian muscle tissues.</a> Dev Biol. 404 (1), 1-13 (2015).</li>
<li>Maimon, I., Gilboa, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+and+Staining+of+Drosophila+Larval+Ovaries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection and Staining of Drosophila Larval Ovaries.</a> J Vis Exp. (51), e2537(2011).</li>
<li>Kerkis, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Growth+of+the+Gonads+in+DROSOPHILA+MELANOGASTER%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The Growth of the Gonads in DROSOPHILA MELANOGASTER.</a> Genetics. 16 (3), 212-224 (1931).</li>
<li>Yamanaka, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroendocrine+Control+of+Drosophila+Larval+Light+Preference%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Neuroendocrine Control of Drosophila Larval Light Preference.</a> Science. 341 (6150), 1113-1116 (2013).</li>
<li>Bainbridge, S., Bownes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staging+the+metamorphosis+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster.</a> Development. 66, 57-80 (1981).</li>
<li>Courdec, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bric+%C3%A0+brac+locus+consists+of+two+paralagous+genes+encoding+BTB%2FPOZ+domain+proteins+and+acts+as+a+homeotic+and+morphogenetic+regulator+of+imaginal+development+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The bric à brac locus consists of two paralagous genes encoding BTB/POZ domain proteins and acts as a homeotic and morphogenetic regulator of imaginal development in Drosophila.</a> Development. 129, 2419-2433 (2002).</li>
<li>Arrese, E. L., Soulages, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((INSECT+FAT+BODY%3A+ENERGY%2C+METABOLISM%2C+AND+REGULATION%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Entomol%22%5BJournal%5D)">INSECT FAT BODY: ENERGY, METABOLISM, AND REGULATION.</a> Annu Rev Entomol. 55, 207-225 (2011).</li>
<li>Zhang, Y., Xi, Y. <a target="_blank" href="https://www.omicsonline.org/open-access/fat-body-development-and-its-function-in-energy-storage-and-nutrient-sensing-in-drosophila-melanogaster-2157-7552.1000141.php?aid=36443">Fat Body Development and its Function in Energy Storage and Nutrient Sensing in Drosophila melanogaster.</a> J Tissue Sci Eng. 6 (1), (2014).</li>
<li>Wong, L. C., Schedl, P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2504450/">Dissection of Drosophila Ovaries.</a> J Vis Exp. (1), e52(2006).</li>
</ol>

המחברים יש שאין ניגודי אינטרסים להכריז.

השלב הקריטי ביותר וקשה של פרוטוקול זה כרוך הכנה הגולמי השחלות לפני קיבוע. כדי להבטיח השחלות, קטן והיא קבורה על-ידי תאי שומן הגוף בבטן הגולמי, מוכתמים מספיק נוגדנים, חשוב לא רק תקרע חור גדול בתוך השק בטן עם מלקחיים, אבל גם לחלץ תאי שומן הגוף ההגנתיים החוסמים השחלות של הנוגדנים. ביצוע מוצלח של שלב זה דורש הפעלת לחץ עדין על הנורה pipet פסטר בעת שטיפת תאי שומן הגוף מתוך השק בטן (למשל 1-2 תאי שומן הגוף צריך להשאיר את הבטן לשניה במהלך שלב זה). כשל להשתמש בכוח עדין יגרום כנראה השחלות לשפוך מתוך הבטן, לתוך הכוס טוב. מכי...

מחקר תאי הגזע באמצעות דרוזופילה השחלות התרחב נרחב מאז התיעוד הראשון של תאי גזע נישה1,2,3,4. בעקבות הפיתוח של שושלת היוחסין מעקב גנטי כלים, השחלה דרוזופילה והניתוחים שימשו נפוץ לחקר תאי הגזע שושלות, איתות המסלולים המסדירים תאי גזע תחזוקה, התפשטות, גורל גומחת תאי גזע. הידע של איתות המסלולים האלה עשוי להניב תובנות סיבות פוטנציאליות של סרטן שמקורן בתאי גזע aberrant פעילות5,6,7. גם לאחרונה הוכח כי תאי גזע סומאטית בשחלה דרוזופילה , המכונה בתאי גזע זקיק (FSCs), חריפה דומים בתרבית של תאי גזע מעיים בהיבטים רבים של הארגון שלהם8. מסיבה זו, דרוזופילה שהשחלות מערכת מודל שימושי מאוד ללמוד התנהגות תאי גזע.
בעוד השחלות זחל, למבוגרים מציעים רמזים כדי התפתחות תאי גזע מוקדמת וארגון תאי גזע הסופי של הגומחה, בהתאמה, השחלה הגולמי הוא מבנה ביניים שבו germline ותאים סומטיים לארגן מחדש ולהקים את זהותם 9 , 10. על פי מספר מחקרים בחנו היבטים של התפתחות רקמת השחלה הגולמי10,11,12,13, שאלות נותרו לגבי בידול ו הארגון המרחבי של סוגי תאים השחלות במהלך הפיתוח הגולמי. בפרט, המפרט של FSCs מתרחשת בתקופה זו. פרוטוקול זה מתאר שיטה לנתח, צביעת השחלות הגולמי בנקודות הזמן הרצוי — טכניקה יכול לשמש בניסויים כמובן זמן לנתח התפתחות שחלה הגולמי בפירוט הזחל מ לבמה למבוגרים.
לקחת בחשבון גודל קטן, טבלתי, הנגישות של השחלה הגולמי בתוך הבטן הגולמי, פרוטוקול זה מנצל כלים כגון מחוייט דק-היטה פסטר pipet כדי להסיר רקמות הגוף השמן בבטן חוסם גישה נוגדן השחלות. ברור, תאיים coverglass בשימוש במהלך הנוגדן מכתים הצעות הניראות של הגלמים, פלטפורמה עדינה נדנדה השחלות על "Nutator". בהתבסס על פרוטוקול עבור השחלה זחל יחליט על ידי מימון, גלבוע14, ריכוז גבוה יחסית של טריטון X-100 ננקטה השלבים הראשונים של התהליך מכתימים כדי למקסם את קרום התא permeabilization נוגדנים גישה תאים בשחלות.

<table><tbody><tr><td>Dumont #5 מלקחיים, ביולוגיה</td><td>Fine Scientific Tools</td><td>11252-20</td><td></td></tr><tr><td>Nunc Lab-Tek Chambered Coverglass</td><td>Thermo Fisher 155383</td><td></td><td></td>מדעי</tr><tr><td>מיקרוסקופ דיסקציה</td><td>Nikon</td><td>SMZ-10A</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ קונפוקלי</td><td>Carl Zeiss</td><td>LSM 700</td><td></td></tr><tr><td>תוכנת ניתוח</td><td>Carl Zeiss</td><td>Zen</td><td></td></tr><tr><td>9 צלחות ספוט זכוכית דיכאון</td><td>Pyrex</td><td>7220-85</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur pipet</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-6B</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur pipet bulb</td><td>ספקים שונים מבער</td><td></td><td></td></tr><tr><td>בונסן</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>שונים</tr><tr><td>Fisherfinest פרימיום שקופיות מיקרוסקופ חלבי</td><td>תרמו פישר סיינטיפיק</td><td>12-544-2</td><td></td></tr><tr><td>22 x 22 מ"מ כיסויי זכוכית מס' 1</td><td>VWR</td><td>48366-067</td><td></td></tr><tr><td>Dapi Fluoromount-G</td><td>SouthernBiotech</td><td>0100-20</td><td></td></tr><tr><td>סרט דו צדדי</td><td>סקוטש</td><td></td><td></td></tr><tr><td>נוטאטור</td><td>קליי אדמס</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מברשת עדינה #0, #3-#5</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>שונים</tr><tr><td>Gilson Pipetman Starter Kit</td><td>Thomas Scientific</td><td>F167300</td><td>מכיל p20, p200, p1000 פיפטורים</td></tr><tr><td>16% Paraformaldehyde</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15710</td><td>לדלל ל-4% פרפורמלדהיד ב-1x PBS</td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td>Ambion</td><td>AM9624</td><td>לדלל ל-1x</td></tr><tr><td>PBS סרום עיזים רגיל</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>5000121</td><td>לדלל ל-10% סרום עיזים רגיל ב-PBST עם ריכוז</td></tr> <tr><td>טריטון של 0.5%נוגדנים ראשוניים (בפרוטוקול: 7G10 anti-Fasciclin III מדולל 1:250, ארנב אנטי-פוספוהיסטון H3 מדולל 1:1000)</td><td>ספקים שונים (בפרוטוקול: Developmental Studies Hybridoma Bank, Millipore)</td><td></td><td>מדולל ב-PBST עם ריכוז טריטון של 0.5%</td></tr><tr><td>נוגדנים משניים (בפרוטוקול: Alexa-546, סרום נגד ארנב מצומד FITC)</td><td>ספקים שונים (בפרוטוקול: בדיקות מולקולריות, Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)</td><td></td><td>לדלל ב-PBST עם ריכוז טריטון 0.5%</td></tr><tr><td>בקבוקוני זבוב כדורי כותנה</td><td>Denville Scientific</td><td>V9406</td><td></td></tr><tr><td>, לבקבוקונים רחבים</td><td>Genesee Scientific</td><td>51-102W</td><td></td></tr><tr><td>שמרים, אופים מיובשים</td><td>פעילים MP Biomedicals</td><td>101400</td><td></td></tr><tr><td>מזון זבובים</td><td>מיוצר במעבדה</td><td></td><td>תערובת של מים, שמרי בירה, קמח תירס, מולסה, אגר, EtOH, פניצילין, מתיל 4-הידרובנזואט וחומצה פרופיונית</td></tr><tr><td>זכר ונקבה זבובים Drosophila (גנוטיפ המשמש בפרוטוקול: yw; P[Fz3-RFP, w+]/TM2)</td>מרכז <td></td><td></td><td>המניות בלומינגטון דרוזופילה</td></tr></tbody></table>

חיתוך, צביעה של השחלות הגולמי דרוזופילה

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

בניגוד למבוגרים דרוזופילה שחלות, השחלות הגולמי קשים יחסית לגשת ולבדוק עקב שלהם קטן בגודל, טבלתי ו בפסליו בתוך תיק הגולמי. האתגר של לנתח השחלות הגולמי טמון גם המיקום הפיזי שלהם בתוך הגולם: השחלות מוקפים תאי שומן הגוף בבטן הגולמי, ויש להסירו תאי שומן אלה כדי לאפשר נוגדן המתאים מכתים. כדי להתגבר על האתגרים הללו, פרוטוקול זה מנצל pipets פסטר מותאם אישית כדי לחלץ את תאי הגוף שומן מהבטן הגולמי. יתר על כן, coverglass chambered משמש במקום צינור microcentrifuge במהלך תהליך צביעת כדי לשפר את הראות של הגלמים. עם זאת, למרות אלה, יתרונות נוספים של הכלים המשמשים פרוטוקול זה, ביצוע מוצלח של טכניקות אלה עשוי עדיין לכלול מספר ימי תרגול בשל גודלו הקטן של השחלות הגולמי. השיטות המתוארות ב פרוטוקול זה יכול לחול על זמן הקורס ניסויים שבהם מנותחים השחלות בשלבים שונים של פיתוח הגולמי.

ביצוע מוצלח של הליך זה צריך לגרום נוגדן ברור מכתים החושפת את המבנה ואת הארגון הסלולר של השחלה הגולמי דרוזופילה . אימונוהיסטוכימיה המתוארות ב פרוטוקול זה יכול לשמש כדי לזהות סוגי תאים בדרך כלל צבעונית של השחלות זחל ומבוגרים. תאים של הקנה הגולמי המופק נחיל תאים18 (שתואר על ידי Fasciclin השלישי בלבן) מוצגים באיור3. בנוסף סימון הארגון הסלולר של השחלות הגולמי, נוגדן מכתים ספיציפית התפשטות תאים (כגון פוספו-היסטון H3 צביעת <strong cl...

השחלה דרוזופילה הוא מערכת דגם מעולה ללימוד פיתוח גומחת תאי גזע. על פי שיטות ניקוד השחלות זחל ומבוגרים פורסמו, השחלה הגולמי והניתוחים דורשות טכניקות שונות זה לא פורסמו בפירוט. כאן אנחנו חלוקה לרמות פרוטוקול לנתח, מכתים של הרכבה השחלות הגולמי.

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a ...

המטרה הכוללת של הליך זה היא לנתח ולהכתים שחלות גולם של דרוזופילה. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בהתפתחות הביולוגיה, כגון אלה הנוגעות להתמיינות תאי גזע והתפתחות רקמות באורגניזם המודל דרוזופילה. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שמשתמשים בכלים הניתנים להתאמה אישית כדי להתאים לגודל הקטן והאופי השקוף של שחלות הגולם, שאחרת קשה לבודד.היה לנו רעיון להשתמש בשיטה שלו כאשר ערכנו ניסויים במסלול הזמן, כדי לעקוב אחר חלוקת תאי גזע בשחלה במהלך התפתחות דרוזופילה גולמית. כדי להתחיל את הפרוטוקול, שלבו 10 זכרים ו-15 נקבות זבובי דרוזופילה בוגרים, בבקבוקון של מזון זבובים עשיר רגיל בתוספת שמרים. הניחו לביצים להתפתח לזחלים בטמפרטורת החדר למשך שלושה עד ארבעה ימים.לאחר שלושה עד ארבעה ימים, השתמש במברשת דקה לחה עם זיפים רכים כדי לבצע תנועת גלגול עם המברשת לאורך דופן הבקבוקון, כדי להעביר זחלי כוכב שלישי נודדים, מהבקבוקון לבאר זכוכית, מלאים עד אפס מקום במי מלח 1X פוספט או PBS. שטפו את שאריות המזון מהזחלים, על ידי העברתם לבאר אחרת מלאה ב-1X PBS. הפרד את הזחלים הזכרים והנקבות בעזרת מלקחיים.זהה את הזחלים הזכרים על ידי זוג אשכים גדולים עגולים ושקופים המוטבעים בגוף השומן בצד הצדדי שני שליש למטה מהקצה הקדמי שלו. לאחר מכן אספו לפחות 10 נקבות מהבאר והניחו את הזחלים הנקבות לבאר נפרדת, מלאה ב-1X PBS. השתמשו במלק

dissection-and-staining-of-drosophila-pupal-ovaries

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

ביולוגיה התפתחותית

כמה נישות ותאי גזע צורה במהלך הפיתוח היא שאלה חשובה עם השלכות מעשיות.

Dissection ו מכתים של תסיסנית הזחל השחלות

תסיסנית גלמי אימונוהיסטוכימיה בטן

המבנים הבוגרים של דרוזופילה נגזרים ממבנים דמויי שק הנקראים דיסקים דמיוניים. ניתוח דיסקים אלה מספק תובנה לגבי תהליכים התפתחותיים רבים כולל קביעת רקמות, קביעת גבול תאים, התפשטות תאים, מפרט גורל התא וקוטביות תאים מישוריים. פרוטוקול זה משמש להכנת דיסקים דמיוניים למיקרוסקופ אור/פלורסנט.

נתיחה וImmunostaining של דמותי דיסקים מ Melanogaster דרוזופילה

מטרת טכניקה זו היא לאפשר לחוקרים לבצע דיסקציה, צביעה חיסונית והרכבה של דיסקים של עין גולם מדרוזופילה מלנוגסטר בכל גיל.

נתיחה והתקנה<em&gt; דרוזופילה</em&gt; גלמי דיסקי העין

שיטת ההדמיה הזקופה המתוארת בפרוטוקול זה מאפשרת הדמיה מפורטת של הקטבים של ביצית דרוזופילה מלנוגסטר מתפתחת.  מבט מקצה לקצה זה מספק פרספקטיבה חדשה על הסידורים והמורפולוגיה של סוגי תאים מרובים באפיתל הזקיקים.

הדמיה זקופה של<em&gt; דרוזופילה</em&gt; לשכות ביצה

מוצג פרוטוקול של צביעה חיסונית שלמה על עוברי כנימות, בו מטופלים תנאים קריטיים להפחתת צביעת רקע והגברת חדירות הרקמות. תנאים אלה פותחו במיוחד לזיהוי יעיל של ביטוי חלבונים ברקמות העובריות של כנימות.

זיהוי של תנאים קריטיים לImmunostaining באפונה בכנימות עוברים: הגדלת רקמות חדירות והפחתת מכתים רקע

אנו מתארים פרוטוקול לנתיחה, קיבעון, ו immunostaining של איברי steroidogenic אצל נשי זחלים בוגרים דרוזופילה ללמוד ביוסינתזה הורמון סטרואידים ואת מנגנון הרגולציה שלה. בנוסף לאיברים steroidogenic, אנו לדמיין את העצבוב של איברים steroidogenic כמו גם תאי היעד steroidogenic כגון תאי גזע germline.

הפרוטוקולים המאפשר הדמיה איברים Steroidogenic ואורגנים אינטראקטיבית שלהם עם Immunostaining ב זבוב הפירות<em&gt; תסיסנית</em

כאן, אנו מספקים פרוטוקול דיסקציה הנדרש כדי לצלם בשידור חי את הגונד הזכר העוברי המנוח של דרוזופילה . פרוטוקול זה יאפשר תצפית על תהליכים תאיים דינמיים בתנאים רגילים או לאחר מניפולציה מהונדסת או פרמקולוגית.

דיסקציה והדמיה חיה של דרוזופילה גונד העוברית המאוחרת

מטרת פרוטוקול זה היא להשתמש בהדמיה חיה כדי לדמיין את ההשפעות של נזק חמצוני על לוקליזציה ודינמיקה של מבנים תת תאיים בשחלות Drosophila.

הדמיה של ההשפעות של נזק חמצוני על תאי ביצה Drosophila באמצעות הדמיה חיה

קרום המרתף חיוני למורפוגנזה של רקמות ואיברים במהלך ההתפתחות. כדי להבין טוב יותר את המנגנונים המובילים למיקום נכון של מבנה זה, הפרוטוקול שהוצג מתאר שיטות להמחשה ואפיון של הסחר התוך-תאי וההפרשה של חלבוני קרום המרתף בתאי אפיתל באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית וסופר-רזולוציה.

הדמיה קונפוקלית וסופר-רזולוציה של סחר תוך-תאי מקוטב והפרשת חלבוני ממברנת מרתף במהלך Drosophila Oogenesis

דרוזופילה היא מודל רב עוצמה להבנת מנגנונים בסיסיים של מיוגנזה. פרוטוקול זה לדיסקציה והכנה של חצאי בית החזה מאפשר ניתוח מיקרוסקופיה של שרירי תעופה עקיפים הן משלב הגולם והן משלב הבוגר. פרוטוקול זה מאפשר הדמיה קונפוקלית של מורפולוגיה תאית, לוקליזציה של חלבונים, מבנה שרירים והיבטים רבים אחרים של מיוגנזה.

דיסקציה של שרירי טיסה עקיפים של Drosophila melanogaster לגישות מיקרוסקופיות

למדו שיטה לחיתוך וצביעה של שחלות גולמיות בדרוזופילה לחקר ביולוגיה התפתחותית ותאי גזע. הפרוטוקול משתמש בכלים מותאמים אישית להתמודדות עם גודלן הקטן ושקיפותן של השחלות.

חיתוך, צביעה של השחלות הגולמי דרוזופילה

גלה סרטונים נוספים