7 במאי 2018
. הנה, מתוארת שיטה עבור בידוד של עכברוש המוח microvessels, הכנת דוגמאות ממברנה. פרוטוקול זה יש יתרון ברור של הפקת microvessel מועשר דגימות עם חלבון מקובל תשואה של חיות בודדות. דוגמאות יכול לשמש לאחר מכן עבור ניתוחים חלבון חזקה על אנדותל microvascular המוח.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לבודד מיקרו-כלי דם מוחיים ממוח החולדה למחקרים ביוכימיים שמטרתם להבין את המאפיינים המולקולריים של מחסום הדם-מוח של היונקים. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בפיזיולוגיה של מחסום דם-מוח ונוירו-פרמקולוגיה, כגון ויסות ולוקליזציה וביטוי של חלבוני צומת הדוק וטרנספורטרים אנדוגניים בבריאות ובחולי. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שאנו יכולים לבודד מספר מספיק של מיקרו-כלים איכותיים מבעל חיים בודד תוך התחשבות בשונות הטבעית בביטוי החלבון בין בעלי חיים בודדים.
מי שתדגים את הטכניקה הזו תהיה ביאנקה ריילי, סטודנטית מצטיינת לתואר ראשון מהמעבדה שלי. לאחר המתת חסד ועריפת ראש של חולדת ספראג-דולי על פי פרוטוקול הטקסט, השתמש במספריים כירורגיים כדי לכרות את העור מגולגולת החולדה על ידי ביצוע חתך רוחבי יחיד. בעזרת רונג'ורים, הסר בזהירות את לוחית הגולגולת וחשוף את המוח.
לאחר מכן, בעזרת מרית, הסר את האיבר. נתק את המוח הגדול, והנח את רקמת המוח המבודדת לתוך צינור חרוטי של 50 מיליליטר עם חמישה מיליליטר BMB ו-5.0 מיקרוליטר קוקטייל מעכב פרוטאז. כדי לעבד את הרקמה, העבירו אותה לצלחת פטרי נקייה.
לאחר מכן, בעזרת מלקחיים, גלגל בעדינות את המוח על נייר סינון בקוטר 12.5 סנטימטר כדי להסיר את קרומי המוח החיצוניים, המודבקים באופן רופף לקליפת המוח. במהלך שלב זה, יש להקפיד על כך שכל רקמת קרום המוח הוסרה מדגימת רקמת המוח. ניתן לדמיין את קרומי המוח כרקמה קרומית שקופה שניתן למשוך בקלות מרקמת המוח.
לחצו בעדינות את רקמת המוח על נייר הסינון, וגלגלו את הממחטה שוב, סובבו את נייר הסינון לעתים קרובות במהלך שלב זה. לאחר מכן, בעזרת מלקחיים, הפרד את מקלעת הכורואיד מההמיספרות המוחיות. לאחר מכן, שטחו שוב בעדינות את רקמת המוח, והשתמשו במלקחיים כדי להסיר את פקעות הריח הסמוכות לחומר הלבן.
הנח את רקמת המוח בקליפת המוח במכתש זכוכית צונן. לאחר מכן, הוסף חמישה מיליליטר BMB עם קוקטייל מעכב פרוטאז. בעזרת הומוגנייזר כוח עילי, הכנס עלי לתוך המרגמה, והומוגניזציה של רקמת המוח באמצעות 15 משיכות למעלה ולמטה ב-3,700 סל"ד.
לאחר מכן, שפכו את ההומוגנאט לצינורות צנטריפוגה מסומנים. בין הדגימות, השתמש ב-70% אתנול לניקוי העלי. כדי לבצע צנטריפוגה, הוסף 8.0 מיליליטר של תמיסת דקסטרן 26% לכל צינור צנטריפוגה מסומן המכיל הומוגנט מוח.
הפוך את הצינור פעמיים, ולאחר מכן מערבל היטב את הדגימה. בצע את המערבולת של כל דגימה באמצעות מספר זוויות כדי להבטיח ערבוב יסודי של תמיסת מוח הומוגנית עם תמיסת דקסטרן 26%. צנטריפוגה את הדגימות בחום של 5, 000 גרם וארבע מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
שאפו את הסופרנטנט, והשעו את הגלולה ב-5.0 מיליליטר BMB עם קוקטייל מעכב פרוטאז. לאחר מכן, מערבל את הגלולה כדי להבטיח ערבוב יסודי. לאחר מכן, הוסף 8.0 מיליליטר של 26% דקסטרן לכל צינור צנטריפוגה, ומערבולת כפי שהודגם זה עתה.
לאחר מכן, צנטריפוגה שוב את הדגימות. בעזרת בקבוק ואקום ופיפטת זכוכית, שאפו את הסופרנטנט וודאו שהכדור המכיל את כלי המיקרו במוח לא יופרע. השעו מחדש את הגלולה ב-BMB עם מעכב פרוטאז ולאחר מכן 26% דקסטרן פעמיים נוספות.
לאחר הצנטריפוגה הסופית, הוסף 5.0 מיליליטר BMB לכל גלולה ומערבולת כדי להשעות מחדש את הדגימה. באמצעות הפרוטוקול שהודגם בסרטון זה, בוצע בידוד מוצלח של כלי דם שלמים ממוח העכברוש. בתמונה זו, המיקרו-כלי נצבע באמצעות נוגדן נגד Oatp1a4, טרנספורטר המתבטא היטב בקרום הפלזמה של תאי אנדותל מיקרו-וסקולריים במוח.
כפי שהודגם על ידי Western Blot, תכשירי ממברנה ממיקרו-כלים שנקטפו מחולדות Sprague-Dawley נקבות הועשרו ב-PECAM-1, הידוע גם בשם CD31, חלבון סמן למיקרו-כלי דם במוח. במהלך האופטימיזציה של פרוטוקול זה, נצפתה העשרת PECAM בדגימות ממברנה שהוכנו באמצעות שניים וארבעה שלבי צנטריפוגה דקסטרן. כפי שנקבע על ידי בדיקת החלבון של ברדפורד ומפורט בטבלה זו, תכשירי ממברנה מניבים בדרך כלל ריכוזי חלבון הנעים בין 5.0 מיליגרם למיליליטר ל-10.0 מיליגרם למיליליטר.
ערכי החלבון נקבעו על סמך עקומה סטנדרטית שנוצרה באמצעות BSA כסטנדרט. מוצג כאן, כתם מערבי לחלבון ההובלה BBB Glut1. רצועות בודדות ברורות ב-54 קילודלטון זוהו עבור חלבון BBB זה המתבטא מאוד בכל דגימת ממברנה.
גרף זה ממחיש ביטוי גבוה יותר של Glut1 ב-BBB בחולדות זכרים לעומת נקבות. לא נצפה הבדל בביטוי של נתרן/אשלגן ATPase בין בעלי חיים זכרים ונקבות. לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך שעתיים עד שעתיים וחצי אם היא מבוצעת כראוי.
בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לשמור את כל הדגימות על קרח לאורך כל הפרוטוקול ולנקוט משנה זהירות בעת שאיבת הסופרנטנט מכדור המיקרו-כלי לאחר שלבי הצנטריפוגה. בעקבות ההליך הזה, שיטות אחרות, כמו ניתוח קו-אימונו-משקעים, יכולות להתבצע על דגימות מיקרו-כלי דם כדי לענות על שאלות נוספות, כמו שיוך של חלבונים שונים בתוך אותו קומפלקס חלבונים במחסום הדם-מוח. לאחר פיתוחה, טכניקה זו סללה את הדרך לחוקרים בתחום הפיזיולוגיה של מחסום הדם-מוח והנוירופרמקולוגיה לחקור מאפיינים מולקולריים של מחסום הדם-מוח בבריאות ובמודלים של מכרסמים של מחלות נוירולוגיות.
אחרי הצפייה בסרטון הזה, אתם אמורים להבין היטב כיצד לבודד כלי דם זעירים באיכות גבוהה ממוח החולדה לצורך מחקר משלכם על ביולוגיה של מחסום דם-מוח בבריאות ובמחלות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מציג פרוטוקול לבידוד מיקרו-כלי דם ממוח של חולדה לצורך חקירת מחסום הדם-מוח (BBB). השיטה מאפשרת ניתוחים איכותיים של חלבונים מבעלי חיים בודדים, ובכך מקלה על חקירת חלבונים של צמתים הדוקים ונשאי חומרים הקשורים לנוירו-פרמקולוגיה ופיזיולוגיה.
בידוד מיקרו-כלי דם מהמוח מאפשר הפחתת סיכונים מכנית של מטרות תרופתיות במערכת העצבים המרכזית (CNS) על ידי אספקת דגימות עשירות באנדותל המשקפות שונות פיזיולוגית. שיטה זו תומכת בתיקוף מטרות ובפיתוח בדיקות למחקרי חדירה דרך מחסום הדם-מוח, ובכך משפרת את רמת הביטחון החיזויית בזיהוי מולקולות מובילות. הכנת ממברנה הניתנת לשחזור מבעלי חיים בודדים משפרת את ההלימה של סמני ביולוגים תרגומיים ואת סינון הפורטפוליו במחקר ופיתוח של נוירו-פרמקולוגיה.
שיטה זו משתלבת ברצף הגילוי, החל מתיקוף המטרה ועד להערכה פרה-קלינית, על ידי אספקת דגימות מועשרות בתאי אנדותל למחקרי מנגנון.