Name: בריחי וריד לנקב כאמצעי חלופי של איסוף דגימת דם בחולדות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: למדו שיטת דיקור וריד תת-בריחי לאיסוף דגימות דם בחולדות תחת הרדמה כללית. הטכניקה מספקת חלופה בטוחה ויעילה לשיטות איסוף דם מסורתיות במחקר פיזיולוגי.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אף אחד לא הכריז.

מחקר זה אושרה על ידי ועדת האתיקה המרכזית של אוניברסיטת דרום לחקר בעלי חיים מבית החולים Xiangya השני (צ'אנג-שא, סין). כתב היד הוכן לפי יגיעו (חיה מחקר: דיווח ב- Vivo ניסויים) הנחיות9.
1. החומר של בעלי חיים הכנה
<ol><li>להכין חומרים הדרושים: דבק, הסוכן epilating, 75% אתנול, דם אוסף שפופרת, מזרק 2.5 מ ל מחובר עם מחט (24 G, 0.6 מ"מ x 25 מ"מ), גילוח שיער, מידה אלקטרוניים מד (ראה טבלה של חומרים).</li>
	<li>השתמש 20 חולדות ספראג-Dawley (SD), בגילאי 8-10 שבועות, במשקל 153-200 g (ראה טבלה של חומרים). לשמור על חולדות לפי המדריך בשביל טיפול, שימוש של חיות מעבדה10.</li>
	<li>חולדות House בתנאים סטנדרטיים עם גישה חופשית שתייה ואוכל. לשמור אותם בכלובים2 ס מ 530 עם מצעים עץ גילוח (שני עכברושים לכל הכלוב). לשמור על חיות מבוקרי טמפרטורה טמפרטורת החדר. ב בסביבות 25 º C.</li>
	<li>זירוז הרדמה כללית (סודיום פנטוברביטל 40 מ"ג לק"ג) כל בעלי החיים באמצעות הזרקה בקרום הבטן לפני הניקוב בריחי וריד.</li>
	<li>מקם את החולדה במצב פרקדן. לתקן את הגפיים האחוריות בתנוחה נוחה ולתקן את הגפיים העליונות מקביל לציר הגוף ליד תא המטען. הערה: אין אוורור מכני נדרש עבור הליך זה (איור 1).</li>
	<li>לנקות את שני הצדדים של המרחב infraclavicular להסרת פרווה (עם גילוח שיער, הסוכן epilating, ראה טבלה של חומרים) ולכלוך לעין כל. נגב את הצוואר, בית החזה העור עם 75% אתנול. שמור על האזור עבור ניקוב נקי ויבש עם גזה.</li>
</ol>2. הליך איסוף הדם
הערה: שני צידי הווריד בריחי מתאימים לנקב ולאחר כאן בחרנו את הצד הנכון עבור ניקוב. המיקום והכיוון של הבריח הימנית מזוהים על ידי האגודל השמאלית של המפעיל (איור 2). Fossae suprasternal הם נגע בעדינות עם האצבע. כמו fossae suprasternal הוא בכיוון של המחט (איור 2).
<ol><li>לשטוף מזרק 2.5 מ ל סטרילי עם הפרין פתרון (10 IU/mL).</li>
	<li>אתר החדירה 0.5 מ מ סימטרית לאזור 1/3 החיצוני של הבריח הימנית (איור 3). הזז את המזרק בעדינות לתוך העור של החדירה. ברגע שהמחט מזין את העור infraclavicular, הפעילו לחץ שלילי עם יד ימין של המפעיל (איור 4). הערה: נפח הדם הממוצע ואת מירבית הן 1.0 mL ומל ' 1.4, בהתאמה. כיוון המחט נמצאת בעמדה כלפי fossae suprasternal לבין צריך להיות כמעט מקבילים עצם הבריח אחורי רק אליו. בדרך כלל, תקחי את בריחי ניתן להגיע על ידי החדרת המחט בערך 2 מ מ בכיוון הזה. ברגע שהמחט נכנסת את הווריד, דם יזין את המזרק בלחץ שלילי.<ol>
<li>לשמור על לחץ שלילי עד נמשך מספיק נפח הדם (איור 5).</li>
	</ol>
</li>
	<li>אם האוסף דם בריחי וריד אינה מוצלחת, לשלוף את המחט אל אזור תת עורית ולהתאים את הכיוון של המחט מעט פנים לעצם החזה.<ol>
<li>אם שלושת הניסיונות, למנוע את הווריד בריחי מן הצד אותו ולהשתמש הצד contralateral עבור לקיחת דמים.</li>
	</ol>
</li>
	<li>לאחר איסוף דם, הסר את המחט לנקב, והפעילו לחץ כדי החדירה במשך 1-2 דקות לעצור את הדימום. הערה: הלחץ חייב להיות עדין מאוד כדי למנוע חנק.</li>
</ol>3. דם לטעום עיבוד
<ol><li>להעביר את דגימת הדם שפופרת ריק מצופים קרישה (עם EDTA) לתוך צנטריפוגה 10 דקות ב g x 1600 לאסוף פלזמה.</li>
	<li>וארוקן את תגובת שיקוע צינור נקי ו החנות ב-80 מעלות צלזיוס (איור 6).</li>
</ol>

<ol><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology%2C+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Korfmacher, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utility+of+capillary+microsampling+for+rat+pharmacokinetic+studies%3A+Comparison+of+tail-vein+bleed+to+jugular+vein+cannula+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).</li>
<li>Feng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+carotid+artery+and+jugular+vein+to+perform+hemodynamic+measures%2C+infusions+and+blood+sampling+in+a+conscious+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), (2015).</li>
<li>Wickremsinhe, E. R., Renninger, M., Paulman, A., Pritt, M., Schultze, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Repeated+Tail+Clip+and+Saphenous+Vein+Phlebotomy+on+Rats+Used+in+Toxicology+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Impact of Repeated Tail Clip and Saphenous Vein Phlebotomy on Rats Used in Toxicology Studies.</a> Toxicologic Pathology. 44 (7), 1013-1020 (2016).</li>
<li>Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+rat+serum+suitable+for+mammalian+whole+embryo+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture.</a> Journal of Visualized Experiments. (90), e51969(2014).</li>
<li>Cochran, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+Glucose+Metabolism+Kinetics+Using+18F-FDG+Micro-PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT.</a> Journal of Visualized Experiments. (123), (2017).</li>
<li>Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drawing+blood+from+rats+through+the+saphenous+vein+and+by+cardiac+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Drawing blood from rats through the saphenous vein and by cardiac puncture.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), 266(2007).</li>
<li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+Blood+Collection+from+Tail+Vein+of+Non-Anesthetized+Rats+with+a+Vacuum+Blood+Collection+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).</li>
<li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+ARRIVE-ing+at+a+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).</li>
<li>National Institute of Health. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th, National Academies Press (US). US (Washington DC). (2011).</li>
<li>Antonelli, D., Feldman, A., Freedberg, N. A., Turgeman, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axillary+vein+puncture+without+contrast+venography+for+pacemaker+and+defibrillator+leads+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+and+Clinical+Electrophysiology%22%5BJournal%5D)">Axillary vein puncture without contrast venography for pacemaker and defibrillator leads implantation.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology. 36 (9), 1107-1110 (2013).</li>
<li>Luis, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+magnetic+resonance+imaging+of+the+thoracic+venous+system+in+rats+with+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Microscopic magnetic resonance imaging of the thoracic venous system in rats with congenital diaphragmatic hernia.</a> Pediatric Surgery International. 27 (2), 175-180 (2011).</li>
<li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li>
</ol>

עבודה זו נתמכה על ידי המענק מן הלאומי מדעי הטבע קרן של סין מס 81670269, מס 81500355 מס 81500226.

כאן, אנו מציגים את שיטה חלופית לחילוץ דם מן הווריד של הבריח, אנו מראים כי בשיטה זו הוא ריאלי, בטוח ו ישימים עבור דגימה דם בחולדות. שיטה זו נגזרת הניקוב בריחי וריד ב קוצב הלב הראשי השרשה עבור חולים11. הווריד בריחי ממוקם רק האחורי, סימטרית. יווארה לעצם הבריח, המשך הווריד בבית השחי. הפעלת מהגבול החיצוני של הצלע הראשונה לגבול המדיאלי של השריר הקדמי scalene12. מכאן, זה מצטרף עם הפנימי, ווריד הצוואר כדי ליצור את הווריד brachiocephalic ו מנקז לתוך הנבוב סופר, מתחת suprasternal fos...

איסוף דם חיוני בתחום המחקר בבעלי חיים. הורידים היעד עבור איסוף דם כוללים את מקלעת רטרו-מסלולית, ומוחלף על, וריד saphenous, כלי הדם הזנב את העורק הראשי1,2,3,4. לפעמים, דם יכולה להיות מושגת העורק הראשי, הנבוב או אפילו את הלב5,6,7. במקרים כאלה, בעלי החיים חייבים להיות מוקרבים ואין אפשרות להשתמש להשגחה הבאים; לכן, שיטות אלה משמשים פחות בעבודה היומיומית ניסיוני. איסוף דם מן הווריד של הזנב של חולדות הוא פופולרי ומלחיץ פחות לעומת שיטות8שהוזכרו לעיל.
עם זאת, איסוף דם מן הווריד של הזנב לפעמים מוגבל על ידי שיעור ההצלחה משביעת רצון. לפעמים, זה גם קשה להשיג מספיק נפח הדם בשיטה זו. כפי הווריד בריחי גדול מספיק והוא ממוקם בדיוק מתחת לעצם הבריח, ניקוב בריחי הווריד יכולה להיות שיטה חלופית עבור דגימה דם אם דם שגרתית אוסף שיטות נכשלות. כאן, אנחנו מציגים את שיטת איסוף דם דרך הווריד בריחי לנקב בחולדות.

<table><tbody><tr><td>חולדות</td><td>הונאן SJA מעבדה בעלי חיים ושות', בע"מ (צ'אנגשה, מחוז הונאן, סין)&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>תוכנה סטטיסטית</td><td>SPSS סטטיסטיקה 17</td><td></td><td></td></tr><tr><td>סוכן אפילציה</td><td>צרפת Yi Sha קוסמטיקה ושות', בע"מ (גואנגג'ואו, מחוז גואנגדונג, סין)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>2.5 מ"ל מזרק</td><td>שאנדונג Weigao קבוצה פולימר רפואי ושות', בע"מ (Weihai, מחוז שאנדונג, סין)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>מכונת גילוח שיער</td><td>שנחאי FLYCO Electric Co., Ltd (שנחאי, סין)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>סרט דבק</td><td>3M Deutschland GmbH (EdisonstraBe 6,59157 Kamen, גרמניה)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>נתרן פנטוברביטל</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>75% אתנול</td><td>המחלקה לרוקחות, בית החולים השני Xiangya של אוניברסיטת</td><td></td><td></td>מרכז דרום</tr><tr><td>צינור איסוף הדם</td><td>Hubei Jinxing Technology& פיתוח ושות', בע"מ (ווהאן הוביי פרובינציה, סין) (2 מ"ל)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>בקנה מידה אלקטרוני</td><td>דונגגוואן Shengheng אלקטרוניקה ושות', בע"מ (דונגגוואן, גואנגדנג פרובינציה, סין)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>כפפות בד</td><td>להרדמה</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>נאנג'ינג Xinbai פרמצבטיקה&nbsp; ושות', בע"מ (נאנג'ינג, מחוז ג'יאנגסו, סין) (2 מ"ל, 12500 IU)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>מלח</td> <td>פיזיהונאן קלון פרמצבטיקה ושות', בע"מ (יואיאנג, מחוז הונאן, סין) (100 מ"ל)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

בריחי וריד לנקב כאמצעי חלופי של איסוף דגימת דם בחולדות

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

איסוף דם עם מספיק נפח הדם חיונית בניסויים על בעלי חיים. איסוף דם מן הווריד של הזנב של חולדות הוא פופולרי פחות מלחיץ לעומת שיטות אחרות אגרסיבי יותר כמו רטרו-מסלולית מקלעת לטעום אוסף. עם זאת, שיטה זו של אוסף דם לפעמים מוגבל על ידי שיעור ההצלחה משביעת רצון. כאן, אנחנו מציגים את שיטת איסוף דם דרך הווריד בריחי הניקוב. תקחי את בריחי ממוקם בדיוק מתחת לעצם הבריח, הוריד הזה הוא מספיק גדול כדי למלא את דרישות האחסון של איסוף דם. התוצאות שלנו מראים כי בשיטה זו הוא בטוח וישימים לדיגום אוסף דם עם נפח הדם הנדרשת. איסוף דם דרך הווריד בריחי הניקוב יכול לשמש כמו שיטת איסוף דם חלופי במקרה של לקיחת דמים וריד הזנב שנכשלו בחולדות.

סכום כולל של 20 של חולדות SD (זכר n = 10, נקבה n = 10) שימשו כאן. Collectionwas דם המבוצעת על ידי מפעילי מיומן, אשר יש לבצע יותר מ-20 samplings דם הווריד בריחי בחולדות, ועל ידי האופרטורים מתחיל, שיש להם אין לנקב בריחי וריד ניסיון של חולדות או חיות אחרות. לפני פעולות, למתחילים צפו לפחות 3 הטיפולים על ידי מפעילים מיומנים.
לקיחת דמים הצליח ללבנים דרך הגישה וריד בריחי הנכון. הליך זה נכשל בחולדות 3 (1 בקבוצה מיומן) ו- 2 הקבוצה למתחיל...

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לאסוף דגימות דם מן הווריד בריחי של חולדה.

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

ניקור ורידים תת-סלאבי כשיטה חלופית לאיסוף דגימות דם בחולדות. לאחר הרדמה כללית, מניחים חולדות בתמונת סופין ומעקרים את המרחב התת-רקלבי עם 75% אתנול. זהה אופוסה חמורה מעולה לפני הנקב.אתר את אתר הניקוב, caudal לאזור החיצוני שליש של עצם הבריח באותו צד. כיוון המחט היה ממוקם לכיוון פוסה החזה מעולה צריך כמעט במקביל עצם הבריח, רק האחורי אליו. לאחר איסוף הדם, לחץ על אתר הדקירה למשך שעה עד שתי דקות, כדי להפסיק את הדימום.איסוף דם עם נפח מספיק נדרש תמיד בניסויים בבעלי חיים. איסוף דם מוריד הזנב של חולדות הוא פופולרי ופחות מלחיץ מכמה שיטות אגרסיביות כגון אוסף מדגם מקלעת מסלולית רטרו. עם זאת, שיטה זו מוגבלת על ידי שיעור ההצלחה.כאן, אנו מציגים את השיטה שלנו לאיסוף דם עם נפח הדם הרצוי מן הווריד התת-חלבי. התוצאות שלנו מראות כי שיטה זו היא בטוחה ומעשית, והוא עשוי להיחשב במקרה דגימת דם מוריד הזנב נכשל. כדי להתחיל, להכין סרט דבק, סוכן epilating, 75%אתנול, צינור איסוף דם, שתי נקודות חמש מזרק מיליליטר, מכונת גילוח שיער, קנה מידה אלקטרוני, הפרין, ותמיסת מלח פיזיולוגית.חולדות בית בתנאים סטנדרטיים, עם גישה חופשית למזון ומי שתייה, נשמרו בכלובים של 530 ס"מ רבועים עם מצעי גילוח עץ. לגרום הרדמה כללית בכל בעלי החיים באמצעות הזרקה תוך-חיים לפני הנקב. מניחים את החולדה בתנוחה על-חושית, מתקנים את הגפיים האחוריות בתנוחה נוחה, ומתקן את הגפיים העליונות במקביל לגוף, ממש ליד תא המטען.נקה את שני צידי החלל infraclavicular כדי להסיר את הפרווה וכל לכלוך גלוי. מנגבים את הצוואר ואת עור בית החזה עם 75% אתנול, ולשמור על האזור נקי ויבש עם גזה. שני הצדדים של וריד subclavian מתאימים לנקב, וכאן, אנו בוחרים את הצד הנכון לנקב.זהה את המיקום ואת הכיוון של עצם הבריח הימנית עם האגודל השמאלי של המפעיל, ואתר את פוסה עצם החזה מעולה בעדינות עם האצבע המורה. יש לשטוף את המזרק שלנו בתת פתרון הפרין של 10 יחידות למיליליטר. אתר את אתר הדקירה, הצבע חמישה מילימטרים caudal לאזור החיצוני שליש של עצם הבריח הימנית.מעבירים את המזרק בעדינות לתוך העור של אתר הדקירה. לאחר המחט נכנס לעור infraclavicular, להחיל לחץ פעיל דרך יד ימין של המפעיל. כיוון המחט ממוקם לכיוון פוסה החזה מעולה, וצריך כמעט במקביל עצם הבריח, רק האחורי אליו.בדרך כלל, וריד subclavian ניתן להגיע על ידי החדרת המחט במשך כשני מילימטרים בכיוון זה. ברגע המחט נכנסת לווריד, הדם ייכנס למזרק תחת לחץ פעיל. אז לחץ פעיל חייב להישמר עד נפח נכון של דם נמשך.לאחר איסוף הדם, להסיר את מחט לנקב, ולחץ על אתר לנקב במשך 1 עד 2 דקות כדי לעצור את הדימום. שימו לב: הלחץ חייב להיות עדין מאוד כדי למנוע חנק. להעביר את דגימת הדם לתוך שפופרת ואקום נגד קרישה עם EDTA וצנטריפוגה ב 1600G במשך 10 דקות כדי לאסוף פלזמה.שאף את העל-טבעי לנקות מחדש את הצינור ולאחסן במינוס 18 מעלות צלזיוס. כדי להשוות את שיעור ההצלחה בין המפעילים המיומנים למתחילים, 20 חולדות SD חולקו לשתי קבוצות באופן אקראי. התוצאות מראות כי באמצעות וריד subclavian הנכון, תשע חולדות בקבוצה מיומנת שמונה חולדות בקבוצה למתחילים הצליחו, בהתאמה.ואז איסוף הדם משלושת החולדות הנותרות הצליח דרך הצד השמאלי. שיעור ההצלחה לא היה הבדל משמעותי בין שתי הקבוצות הללו. מסלול הזמן היה שונה במקצת בשתי הקבוצות הללו.לא התרחשו סיבוכים חמורים, כגון pneumothorax, hemopneumothorax ודימום במהלך הניתוח או אחריו. כל החיות שרדו אחרי דגימת הדם. כדי להדגים את הקשיים של לימוד הליך הניקוב, השווינו עוד יותר את מספר המשיכות בין הקבוצות המיומנים למתחילים.כפי שמוצג בטבלה 2, מספר המשיכות הממוצע בקבוצה מיומנת נמוך במקצת מהמתחילים, אך אין מובהקות סטטיסטית. לסיכום, התוצאות שלנו מראות כי אסטרטגיית ניקור ורידים subclavian לאיסוף דם הוא בטוח וישים בחולדות. שיטה זו היא בעלת ערך, במיוחד במקרים שבהם יש צורך בכמות גדולה של דם.שיטה זו עשויה להיות חלופה אופטימלית אם דגימת הדם הקונבנציונלית נכשלת.

subclavian-vein-puncture-as-an-alternative-method-blood-sample

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

שואב דם יש צורך במספר רב של מחקרים, למשל ללמוד את פרופיל פרמקוקינטיקה של תרכובת. כאן, אנו מדגימים כיצד להקיז דם מן החולדות באמצעות שתי טכניקות: להקיז דם מהעורק saphenous או לנקב לב.

ציור דם מן החולדות דרך וריד Saphenous ועל ידי נקר לב

דגימות דם שימושיות להערכת סמנים ביולוגיים של מצבים פיזיולוגיים או מחלה in vivo. כאן אנו מתארים את המתודולוגיה לדגימת דם מווריד הזנב הצדדי בחולדה. שיטה זו מספקת דגימות מהירות עם מינימום כאב ופולשניות.

דגימת דם מוריד הזנב לרוחב של העכברוש

כאן, אנו מתארים שיטה פשוטה הזנב וריד דם הדגימה בחולדות שאינם מרדימים באמצעות מערכת צינור שאיבת ואקום. שיטה זו מפחיתה את הסיכון בחשיפה ישירה דם ומפשטת לקיחת דגימות מרובים venipuncture יחיד.

חזר על איסוף דם של וריד הזנב של חולדות שאינם מרדימים עם מערכת איסוף דם ואקום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לקחת דגימות דם. מווריד התת-קלאובי של...

איסוף דם באמצעות ניקוב ורידים תת-מותני בעכברים

הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה פשוטה ויעילה לאיסוף דם מהווריד הסובקלאבי בחולדות. הוא מאפשר דגימה מהירה, מהירה וקלה לזיהוי ללא הרדמה ומשיג דם איכותי באמצעות איסוף דגימות חוזר.

דגימת דם חוזרת מהווריד הסובקלבי של חולדה מודעת

כאן, אנו מציגים פרוטוקול המציע חלופות איסוף דם מהירות, קלות ואמינות עבור מודל החולדות. אנו מתארים שלוש שיטות שונות לדגימת דם בהתאם להקשר: ניקוב וריד הזנב בהרדמה או בעל חיים בהכרה, וניקור ורידים בפין הגבי בהרדמה.

וריד זנב שונה וניקוב ורידים פין לדגימת דם במודל החולדה

כאן אנו מציגים שילוב של הגבלת חולדות יעילה ושיטות ניקור ורידים תת-קרקעיות המאפשרות איסוף דם מהיר, בטוח וחוזר בחולדות ללא הרדמה.

דגימת דם של ורידים תת-קלאביים בחולדות מודעות

במודל עכבר של קשירת לנקב cecal ו ככלי רב ערך לחקר אלח דם האדם.

קשירת Cecal נקר נוהל

סמנים ביולוגיים הם אינדיקטורים ביולוגיים ישירות נמדדים של מחלה או בריאות. באוכלוסייה ובמדעי חברה, סמנים ביולוגיים צריכים להיות קל להשגה, תחבורה, ולנתח. אוסף ספוט דם יבש (DBS) עונה על צורך זה, יכול להיות שנאסף בתחום עם שיעורי תגובה גבוהים וניתח עבור מגוון רחב של סמנים ביולוגיים.

יבש של אוסף דם ספוט בריאות סמנים למקסם את ההשתתפות בלימודי אוכלוסייה

העבודה הנוכחית ממחישה את הנוחות של שימוש באימונותרפיה תת-לשונית כדי להגביר את התגובה החיסונית המולדת בריאות ולהעניק הגנה מפני דלקת ריאות פנאומוקוקית חריפה בעכבר.

אימונותרפיה תת לשונית כחלופה ללהשרות הגנה מפני זיהומים בדרכי הנשימה חריפים

למדו שיטת דיקור וריד תת-בריחי לאיסוף דגימות דם בחולדות תחת הרדמה כללית. הטכניקה מספקת חלופה בטוחה ויעילה לשיטות איסוף דם מסורתיות במחקר פיזיולוגי.

בריחי וריד לנקב כאמצעי חלופי של איסוף דגימת דם בחולדות

גלה סרטונים נוספים