Name: טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) בעכברים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: למד את פרוטוקול tDCS בעכברים לחקר השפעות ביולוגיות על הפרעות פסיכיאטריות. שיטה זו מאפשרת למדענים לחקור מנגנונים נוירונליים ויעילות קלינית של גירוי חשמלי לא פולשני.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים מר רודריגו דה סוזה לסיוע בשמירה על העכבר מושבות. L.A.V.M הוא בחור דוקטורט הכפים. עבודה זו נתמכה על ידי המענק PRONEX (FAPEMIG: APQ-00476-14).

המלון שוכן באופן אינדיבידואלי מבוגר זכר (8-12 שבועות) עכברים C57BL/6 שימשו בניסוי זה. בעלי חיים קיבל טיפול נאות לפני, במהלך ואחרי הטיפול. הניסיוני עם מים ואוכל ad libitum. כל ההליכים אושרו על ידי ועדת האתיקה בעלי חיים מן האוניברסיטה הפדרלית של מינאס ז'ראיס (פרוטוקול מספר 59/2014).
1. אלקטרודה השמה
<ol><li>
לסמם, קיבעון החיה על המנגנון stereotaxic
	<ol>
<li>לעקר את כל מכשירי הניתוח הדרוש. שימו לב. כלים כירורגים חיטוי במשך 3 דקות ב 440 º C. ספוגיות כותנה היו בלוק בבית 20 psi (פאונד לאינץ מרובע) ב 121 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות.</li>
		<li>להתאים את הבקר תרמי פלטפורמה ל- 37 מעלות צלזיוס.</li>
		<li>שוקל החיה ולחשב את המינון המתאים עבור אינדוקציה הרדמה. השתמש תערובת של קטמין חריגות השירותים הווטרינריים במינון של 100 מ ג/ק ג קטמין ו- 8 מ ג/ק ג חריגות השירותים הווטרינריים, ניתנה intraperitoneally (גודל מחט, 31 G). החיה צריך להירדם בתוך 2-3 דקות.</li>
		<li>להשתמש גילוח או גילוח לגלח למטה באתר כירורגית.</li>
		<li>המקום החיה על המנגנון stereotaxic מעל ומחוממת טרום חימום צלחת.</li>
		<li>תחזיק את הראש של החיה והכנס בפסי באוזן עצה לתוך כל אחד האוזניים של החיה לתקן אותה פלטפורמת stereotaxic.</li>
		<li>לאמת יש לא הסטת הראש לרוחב, תנועה אנכית קטנה לאחר על ידי הסטה לאט ראשה מיצוב.</li>
		<li>בעדינות להחליק את מסיכת ההרדמה על האף של העכבר ולתקן את זה במקום על ידי הידוק הבורג.</li>
		<li>הגדר את איזופלוריין 1% עם 1.0 L/דקה של O2.</li>
		<li>להחיל משחה עיניים לעיניים של החיה כדי למנוע ייבוש הקרנית במהלך הניתוח.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
הצמדת השתל לראש של החיה
	<ol>
<li>להשתמש את ספוגיות כותנה להכנת באתר כירורגית שהמדים לסירוגין שלושה povidone יוד (או 2% chlorhexidine) ו-70% אתנול.</li>
		<li>השתמש זוג מספריים כדי לוודא הרדמה עומק על ידי סחיטה בהונות של החיה ואימות האובדן של רפלקס הנסיגה פדלים (הבוהן צביטה) של בעל החיים בקלילות.</li>
		<li>אעשה חתך כ 3 מ מ האחורי לקו האוזן של החיה, עוצרות קו העין. מקום החתך חייבים להיות כ 1 ס מ אורך להיות מספיק גדולה כדי לקבל את השתל.</li>
		<li>לגרד בעדינות את הגולגולת עם המגרד עצם לשפר את הדבק של מלט הדבקות. האור הנערץ מתוך כוונה יצירת שריטות מיקרו.</li>
		<li>מקם בזהירות כירורגית ווים על העור רפוי כדי לשמור על שדה כירורגי פתוח וללא מכשולים כגון עור ופרווה.</li>
		<li>השתמש ספוגית כותנה סטרילי לייבוש הקרקפת של החיה.</li>
		<li>השתמש במיקרוסקופ ויבתר להמחיש העליון של הגולגולת של החיה.</li>
		<li>לצרף מחט המחזיק stereotaxic ואתר את bregma. מקם את המחט ישירות מעל ראשה נוגע מעט את bregma.</li>
		<li>אפס את כל נקודות הציון מעקב דיגיטלית ולאחר מכן הרם את המחט.</li>
		<li>לתקן את השתל tDCS על בעל stereotaxic. מקם את השתל מעל ראשה, להוריד אותו באיטיות על גבי האזור עניין בעזרת הקואורדינטות stereotaxic נכונה.</li>
		<li>שימוש במחט להפיץ טיפה 1 (כ 35 μL) של דבק סופר על הבסיס של השתל.</li>
		<li>לאט הניעו את המחזיק כלפי מטה עד שייגע הגולגולת. ודא כי הבסיס השתל הוא לגמרי במגע עם המשטח.</li>
		<li>הכינו את הבטון כירורגי בהתאם להוראות היצרן.</li>
		<li>לאחר מיקום מדויק, להחיל 3 דק, אפילו שכבת צמנט על פני הגולגולת ועל החלק התחתון של השתל. חלה ירידה לכל טיפה באמצעות מברשת של היישום. שכבות בטח יוצרים מבנה בצורת גבעה לקבלת תמיכה מבנית של השתל.</li>
		<li>השאר חריטה של השתל נקי של מלט כדי לאפשר חיבור חלקה בלא הפרעה.</li>
		<li>אפשר כל שכבה להתייבש במשך כ-4 דקות.</li>
		<li>כאשר יבש, הסר בזהירות את המחזיק עד שזה מנותק לחלוטין מן השתל. תמיד לנקוט בזהירות בעת טיפול השתל, מאז זה עשוי להיות בטעות מופק הגולגולת של החיה.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
גימור ניתוח וטיפול לאחר ניתוח
	<ol>
<li>מימה העור של החיה באזור הניתוח באמצעות מקלון צמר גפן ספוג תמיסת מלח.</li>
		<li>. מעיל העור על הבסיס של השתל tDCS</li>
		<li>השתמש זוג מספריים כדי להפגיש את הרקמה ולסגור את החתך עם טיפה של דבק כירורגי רקמות לכל 0.2 ס מ של רקמות.</li>
		<li>לחדור לידוקאין 1-2% של החתך, שבבסיס הרקמות.</li>
		<li>מימה subcutaneously את העכבר עם 500 µL של תמיסת רינגר לקטט.</li>
		<li>הנח את העכבר לתוך כלוב נקי, שוכנו יחיד ומחוממת מראש (37 מעלות צלזיוס).</li>
		<li>לשים קערת קטן עם כדורי מזון רטוב בכלוב לגישה נוחה לאוכל במשך השעות הבאות.</li>
		<li>הירשם במשקל לאחר ניתוח של החיה.</li>
		<li>לתת את ketoprofen בעלי חיים (5 מ"ג/ק"ג) subcutaneously אחרי הניתוח ועל הימים 2.</li>
		<li>נטר את ההתאוששות של החיה מקרוב במשך לפחות שבוע אחד. להעריך סימני מצוקה, כגון piloerection, חוסר טיפוח, גפיים מופחתת, הפצע מגרד דלקת של האתר כירורגית.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. tDCS גירוי וההתקנה
<ol><li>
tDCS ההתקנה (ראה איור 2) שימו לב. ודא כי ממריץ tDCS טעונה במלואה.<ol>
<li>לצרף את אנודת וכבל קטודית ממריץ tDCS ולהפוך אותם זמינים בקרבת האתר גירוי. לצרף האלקטרודה pin-סוג בעל stereotaxic.</li>
		<li>הגדר את הפלטפורמה תרמי 37 מעלות צלזיוס.</li>
		<li>הפעל את זרימה חמצן במערכת הרדמה אינהלציה כדי 1 ליטר/דקה.</li>
		<li>הנח את העכבר אל החדר אינדוקציה הרדמה.</li>
		<li>הפעל את מכשיר אידוי איזופלוריין ל-3%. לאפשר את החיה לעבור אפקטים איזופלוריין במשך 4 דקות.</li>
		<li>בעוד החיה בבית הבליעה אינדוקציה, השתמש מזרק סטרילי למילוי האלקטרודה הגוף עם תמיסת 0.9%.</li>
		<li>הסר את החיה מן החדר אינדוקציה ומקם את החזה שלה מעל האלקטרודה הגוף.</li>
		<li>בעדינות להחליק את מסיכת ההרדמה על האף של העכבר ולתקן את זה במקום. . תוריד את פלט איזופלוריין ל- 1.5%.</li>
		<li>למלא את השתל, האלקטרודה pin-סוג עם תמיסת מלח ולצרף בקפידה.</li>
		<li>התאם גירוי זמן ועוצמה הנוכחי.</li>
		<li>בדוק את איכות הקשר על ממריץ tDCS. קשר אופטימלית נוסע מ 7 עד 10 בסולם 1 עד 10.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
גירוי
	<ol>
<li>התחל את הגירוי.</li>
		<li>לצפות את הנוכחי ramping 30 s הערך הנבחר, שמירה על עצמו יציב בפעם הוקמה, ואז, בסוף הפגישה ramping למטה שוב.</li>
		<li>הפעילו את כפתור דמה עבור בקרת עכברים.</li>
		<li>לצפות את הנוכחי ramping 30 s הערך הנבחר ולאחר מכן עד 1 למשך שארית תקופת גירוי עם רמפה סופית את הערך שנבחר בסופו של דבר עם רמפה רצופים למטה.</li>
		<li>לאחר הפעלת גירוי תושלם, בזהירות העברת החיה לכלוב ומחוממת מראש (37 מעלות צלזיוס) למשך 10 דקות. שימו לב. חיות התחילו להתעורר לאחר 3 דקות.</li>
		<li>. כבה את מערכת הרדמה אינהלציה.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Filmer, H. L., Dux, P. E., Mattingley, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+of+transcranial+direct+current+stimulation+for+understanding+brain+function%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Applications of transcranial direct current stimulation for understanding brain function.</a> Trends in Neurosciences. 37 (12), 742-753 (2014).</li>
<li>Nitsche, M. A., Paulus, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+excitability+elevations+induced+by+transcranial+DC+motor+cortex+stimulation+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Sustained excitability elevations induced by transcranial DC motor cortex stimulation in humans.</a> Neurology. 57 (10), 1899-1901 (2001).</li>
<li>Kronberg, G., Bridi, M., Abel, T., Bikson, M., Parra, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Current+Stimulation+Modulates+LTP+and+LTD%3A+Activity+Dependence+and+Dendritic+Effects%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Stimulation%22%5BJournal%5D)">Direct Current Stimulation Modulates LTP and LTD: Activity Dependence and Dendritic Effects.</a> Brain Stimulation. 10 (1), 51-58 (2017).</li>
<li>Pelletier, S. J., Cicchetti, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+and+Molecular+Mechanisms+of+Action+of+Transcranial+Direct+Current+Stimulation%3A+Evidence+from+In+Vitro+and+In+Vivo+Models%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Neuropsychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Cellular and Molecular Mechanisms of Action of Transcranial Direct Current Stimulation: Evidence from In Vitro and In Vivo Models.</a> International Journal of Neuropsychopharmacology. 18 (2), pyu047(2015).</li>
<li>Chang, M. C., Kim, D. Y., Park, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancement+of+cortical+excitability+and+lower+limb+motor+function+in+patients+with+stroke+by+transcranial+direct+current+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Stimulation%22%5BJournal%5D)">Enhancement of cortical excitability and lower limb motor function in patients with stroke by transcranial direct current stimulation.</a> Brain Stimulation. 8 (3), 561-566 (2015).</li>
<li>Lefaucheur, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence-based+guidelines+on+the+therapeutic+use+of+transcranial+direct+current+stimulation+%28tDCS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS).</a> Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).</li>
<li>Monai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+imaging+reveals+glial+involvement+in+transcranial+direct+current+stimulation-induced+plasticity+in+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain.</a> Nature Communications. 7, 11100(2016).</li>
<li>Marquez-Ruiz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+direct-current+stimulation+modulates+synaptic+mechanisms+involved+in+associative+learning+in+behaving+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Transcranial direct-current stimulation modulates synaptic mechanisms involved in associative learning in behaving rabbits.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 109, 6710-6715 (2012).</li>
<li>Jackson, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+transcranial+direct+current+stimulation%3A+Methods+and+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Animal models of transcranial direct current stimulation: Methods and mechanisms.</a> Clinical Neurophysiology. 127 (11), 3425-3454 (2016).</li>
<li>Cambiaghi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+transcranial+direct+current+stimulation+modulates+motor+excitability+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+European+journal+of+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Brain transcranial direct current stimulation modulates motor excitability in mice.</a> The European journal of neuroscience. 31 (4), 704-709 (2010).</li>
<li>Monte-Silva, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+late+LTP-like+plasticity+in+the+human+motor+cortex+by+repeated+non-invasive+brain+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Stimulation%22%5BJournal%5D)">Induction of late LTP-like plasticity in the human motor cortex by repeated non-invasive brain stimulation.</a> Brain Stimulation. 6 (3), 424-432 (2013).</li>
<li>San-Juan, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+Direct+Current+Stimulation+in+Mesial+Temporal+Lobe+Epilepsy+and+Hippocampal+Sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Stimulation%22%5BJournal%5D)">Transcranial Direct Current Stimulation in Mesial Temporal Lobe Epilepsy and Hippocampal Sclerosis.</a> Brain Stimulation. 10 (1), 28-35 (2017).</li>
<li>Brunoni, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+direct+current+stimulation+%28tDCS%29+in+unipolar+vs.+bipolar+depressive+disorder%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Neuro-Psychopharmacology+and+Biological+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Transcranial direct current stimulation (tDCS) in unipolar vs. bipolar depressive disorder.</a> Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 35 (1), 96-101 (2011).</li>
<li>Brunoni, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trial+of+Electrical+Direct-Current+Therapy+versus+Escitalopram+for+Depression%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Trial of Electrical Direct-Current Therapy versus Escitalopram for Depression.</a> New England Journal of Medicine. 376 (26), 2523-2533 (2017).</li>
<li>Boggio, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+visual+memory+enhancement+after+direct+current+stimulation+in+Alzheimer%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Stimulation%22%5BJournal%5D)">Prolonged visual memory enhancement after direct current stimulation in Alzheimer's disease.</a> Brain Stimulation. 5 (3), 223-230 (2012).</li>
<li>Cosentino, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anodal+tDCS+of+the+swallowing+motor+cortex+for+treatment+of+dysphagia+in+multiple+sclerosis%3A+a+pilot+open-label+study%5BTitle%5D)+AND+%22Neurological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Anodal tDCS of the swallowing motor cortex for treatment of dysphagia in multiple sclerosis: a pilot open-label study.</a> Neurological Sciences. , 7-9 (2018).</li>
<li>Kaski, D., Dominguez, R. O., Allum, J. H., Islam, A. F., Bronstein, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combining+physical+training+with+transcranial+direct+current+stimulation+to+improve+gait+in+Parkinson%27s+disease%3A+A+pilot+randomized+controlled+study%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Combining physical training with transcranial direct current stimulation to improve gait in Parkinson's disease: A pilot randomized controlled study.</a> Clinical Rehabilitation. 28 (11), 1115-1124 (2014).</li>
<li>Monai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+imaging+reveals+glial+involvement+in+transcranial+direct+current+stimulation-induced+plasticity+in+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain.</a> Nature Communications. 7, 11100(2016).</li>
<li>Fritsch, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+current+stimulation+promotes+BDNF-dependent+synaptic+plasticity%3A+potential+implications+for+motor+learning%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Direct current stimulation promotes BDNF-dependent synaptic plasticity: potential implications for motor learning.</a> Neuron. 66 (2), 198-204 (2010).</li>
<li>Winkler, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensory+and+Motor+Systems+Anodal+Transcranial+Direct+Current+Stimulation+Enhances+Survival+and+Integration+of+Dopaminergic+Cell+Transplants+in+a+Rat+Parkinson+Model%5BTitle%5D)+AND+%22New+Research%22%5BJournal%5D)">Sensory and Motor Systems Anodal Transcranial Direct Current Stimulation Enhances Survival and Integration of Dopaminergic Cell Transplants in a Rat Parkinson Model.</a> New Research. 4 (5), 17-63 (2017).</li>
<li>Nasehi, M., Khani-Abyaneh, M., Ebrahimi-Ghiri, M., Zarrindast, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+left+frontal+transcranial+direct-current+stimulation+on+propranolol-induced+fear+memory+acquisition+and+consolidation+deficits%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">The effect of left frontal transcranial direct-current stimulation on propranolol-induced fear memory acquisition and consolidation deficits.</a> Behavioural Brain Research. 331 (May), 76-83 (2017).</li>
<li>Souza, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurobiological+mechanisms+of+antiallodynic+effect+of+transcranial+direct+current+stimulation+%28tDCS%29+in+a+mice+model+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Neurobiological mechanisms of antiallodynic effect of transcranial direct current stimulation (tDCS) in a mice model of neuropathic pain.</a> Brain Research. 1682 (14-23), (2018).</li>
<li>Woods, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technical+guide+to+tDCS%2C+and+related+non-invasive+brain+stimulation+tools%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">A technical guide to tDCS, and related non-invasive brain stimulation tools.</a> Clinical Neurophysiology. 127 (2), 1031-1048 (2016).</li>
<li>Cogan, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+damage+thresholds+during+therapeutic+electrical+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neural+Engineering%22%5BJournal%5D)">Tissue damage thresholds during therapeutic electrical stimulation.</a> Journal of Neural Engineering. 13, 2(2017).</li>
<li>Podda, M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anodal+transcranial+direct+current+stimulation+boosts+synaptic+plasticity+and+memory+in+mice+via+epigenetic+regulation+of+Bdnf+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Anodal transcranial direct current stimulation boosts synaptic plasticity and memory in mice via epigenetic regulation of Bdnf expression.</a> Scientific reports. 6 (October 2015), 22180(2015).</li>
</ol>

בשנים האחרונות, טכניקות בגירוי יש כבר נכנס הקלינית כמו שגרה מבטיח לטפל מנוטלי הפרעות23. כדי להפחית את האילוץ המוטלים על-ידי חוסר הידע על מנגנוני בגירוי, הצגנו כאן מודל העכבר tDCS נושאת אלקטרודה שיכולות היעד אזורים במוח. מאחר האלקטרודה מושתלת באופן כרוני, מודל זה בעל חיים מאפשר החקירה של השפעות ביולוגיות לטווח ארוך עורר באמצעות tDCS (עבור חודש אחד לפחות) בדפוסי גירוי מורכב. המודל שתואר tDCS בעלי חיים מציג סיכוי קטן לזיהום סובלנות שתל גבוה אם הוא מבוצע כהלכה. בסך הכל, השלבים ניתוח כדי למקם את השתל ה...

טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) היא שיטה לא פולשנית, בעלות נמוכה, טיפולית, אשר מתמקדת אפנון עצביים באמצעות זרמי רציף בעוצמה נמוכה1. כיום יש שני הייעודיות (anodal ו- cathodal) tDCS. בזמן הגירוי anodal מפעילה שדה חשמלי הנוכחי חלש מדי כדי לעורר פוטנציאל פעולה, אלקטרופיזיולוגיה מחקרים הראו כי שיטה זו מייצרת שינויים הפלסטיות הסינפטית2. לדוגמה, ראיות מראה ש-tdcs הזה גורם השפעות ארוכות טווח potentiation (LTP) משרעת השיא מוגברת של3,פוטנציאל postsynaptic סינאפסות4 ו אפנון דעתנית קורטיקלית5.
לעומת זאת, גירוי cathodal גורם עיכוב, וכתוצאה מכך ממברנה hyperpolarization6. השערה על מנגנון זה מבוסס על ממצאים פיזיולוגיים שבה מתואר tDCS כדי לווסת את פוטנציאל הפעולה התדירות והמשך של הגוף עצביים3. ראוי לציין, אפקט זה לא ישירות לעורר פוטנציאל פעולה, למרות שניתן משמרת את הסף דפולריזציה, להקל או ה"בלתי ירי עצביים7. אלה מנוגדים אפקטים בעבר הוכחו. לדוגמה, גירוי anodal, cathodal מיוצר תופעות מנוגדות תגובות מותנה רשום דרך פעילות אלקטרומיוגרפיה ארנבים8. עם זאת, מחקרים הראו גם כי גירוי ממושך anodal הפעלות עשויה להקטין דעתנית בעוד הגדלת זרמים cathodal עלול להוביל דעתנית, הצגת אפקטים מנוגדים עצמית3.
הן anodal והן cathodal גירויים צבירה השימוש של זוגות אלקטרודות. לדוגמה, גירוי anodal, "פעיל" או "אנודת" האלקטרודה ממוקמת מעל האזור במוח כדי להיות מאופנן ואילו האלקטרודה "הפניה" או "קטודית" ממוקם מעל האזור שבו השפעת זרם ההנחה תהיה חשיבות9. בגירוי cathodal, אלקטרודה פריסה הוא הפוך. עוצמת גירוי עבור tDCS יעיל תלוי עוצמת הנוכחי, אלקטרודה ממדים, אשר משפיעים על החשמל שדה אחרת10. במחקרים שפורסמו ביותר, עוצמת הנוכחי הממוצע הוא בין 0.10 ל 2.0 mA ו- 0.1 מ- 0.8 אמא לבן אדם ועכברים, בהתאמה6,11. למרות גודל האלקטרודה 35 ס מ2 משמש בדרך כלל אצל בני אדם, יש אין הבנה נכונה לגבי אלקטרודה הממדים עבור מכרסמים, חקירה יסודית יותר הוא נדרש6.
tDCS הוצע במחקרים קליניים עם הניסיון של המציע טיפול אלטרנטיבית או משלימה עבור והפרעות נוירולוגיות מנוטלי מספר11 כגון אפילפסיה12, הפרעה דו קוטבית13, קו5 , רס ן דיכאון14, מחלת אלצהיימר15, טרשת נפוצה16 ו מחלת פרקינסון17. למרות גוברת ההתעניינות tDCS והשימוש בו ניסויים קליניים, הסלולר מפורט מולקולרית עורר שינויים ברקמת המוח, קצר, תופעות לטווח ארוך, וכן תוצאות התנהגותיות, הן עדיין להיות עמוק יותר נחקר18, 19. מאז בגישה אנושית ישירה ללמוד ביסודיות tDCS אינה ברת קיימא, השימוש במודל חיה tDCS עשויים להציע תובנות לתוך האירועים תאית ומולקולרית בבסיס המנגנון הטיפולי של tDCS עקב הנגישות רקמת המוח של בעל החיים.
הראיות הזמינות מוגבל לגבי דגמים tDCS בעכברים. רוב הדגמים שדווחה להשתמש בפריסות שונות implanting, אלקטרודה מידות וחומרים. לדוגמה, וינקלר. et al. (2017) מושתל האלקטרודה ראש (Ag/AgCl, 4 מ מ קוטר) מלא עם תמיסת מלח ותיקנו אותה בגולוגולת עם מלט וברגים אקריליק20. שונה מן הגישה שלנו, אלקטרודה החזה שלהם היה מושתל (פלטינה, 20 x 1.5 מ מ). . Nasehi et al. (2017) היה תהליך מאוד דומה לשלנו, למרות האלקטרודה בית החזה עשוי ספוג ספוג תמיסת מלח (פחמן מלא, 9.5 ס מ2)21. מחקר אחר מושתלים שתי אלקטרודות לראש של החיה, אשר הושגה על ידי שימוש קבוע צלחות וכיסוי הראש של החיה עם מנצח הידרוג22. כאן נתאר מודל העכבר tDCS המשתמשת אלקטרודה מושתל באופן כרוני דרך הגדרת פשוטה עם כירורגית הליכים ו tDCS (איור 1).

<table><tbody><tr><td>מזרק BD Ultra-Fine 50U</td><td>BD</td><td>10033430026</td><td>להזרקה תוך צפקית.</td></tr><tr><td>מכונת גילוח (Philips Multigroom)</td><td>פיליפס (ברזיל)</td><td>QG3340/16</td><td>לחיתוך אתר כירורגי.</td></tr><tr><td><ציוד >כירורגי חזק</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>דגם 940 מכשיר סטריאוטקסי לבעלי חיים קטנים עם קונסולת תצוגה דיגיטלית</td><td>KOPF</td><td>940</td><td>להגבלה ומיקום כירורגי של בעלי חיים.</td></tr><tr><td>דגם 922 ללא קרע 60 מעלות מוטות אוזניים</td><td>קצה KOPF</td><td>922</td><td>להגבלה ומיקום כירורגי של בעלי חיים.</td></tr><tr><td>מחזיק צינורית</td><td>KOPF</td><td>1766-AP</td><td>למיקום השתל.</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ משקפת זום סטריאו מדויק (III) על מעמד בום</td><td>WPI</td><td>PZMIII-BS</td><td>למיקום ברגמה ומיקום השתל.</td></tr><tr><td>דגם מערכת בקרת טמפרטורה&nbsp;</td><td>KOPF</td><td>TCAT-2LV</td><td>לבקרה תרמית של בעלי חיים.</td></tr><tr><td>מקור אור קר&nbsp;</td><td>WPI</td><td>WA-12633</td><td>לבהירות מוקד</td></tr><tr><td>מערכת הרדמה לבעלי חיים במעבדה שולחנית עם נבלות</td><td>VetEquip</td><td>901820</td><td>לאספקת איזופלורן ובטיחות.</td></tr><tr><td>מסנן ספיחת פחם פעיל VaporGuard</td><td>VetEquip</td><td>אמצעי</td><td>בטיחות למערכת אספקת 931401.&nbsp;</td></tr><tr><td>דגם 923-B מחזיק ראש הרדמה בגז עכבר</td><td>KOPF</td><td>923-B</td><td>להגבלת בעלי חיים ואספקת O2 ואיזופלורן.</td></tr><tr><td>ווסת חמצן, צילינדר E&nbsp;</td><td>VetEquip 901305</td><td></td><td>עבור O2 רגולציה ומסירה.</td></tr><tr><td>צינור חמצן &ndash; ירוק&nbsp;</td><td>VetEquip</td><td>931503</td><td>למשלוח O2 ואיזופלורן.</td></tr><tr><td>סטריליזטור אינפרא אדום 800 &ordm; C</td><td>Marconi</td><td>MA1201</td><td>לעיקור מכשירים.</td></tr><tr><td><מכשירים כירורגיים חזקים></מספריים חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>עדינים - ToughCut</td><td>Fine Science Tools</td><td>14058-11</td><td>לחתך.</td></tr><tr><td>ווים כירורגיים</td><td>INJEX</td><td>1636</td><td>בייצור ביתי - משמשים לניקוי אתר הניתוח מעור ופרווה.</td></tr><tr><td>פינצטה או מלקחיים סטנדרטיים</td> <td>-</td><td></td> <td>לאחיזת העור.</td></tr><tr><td><מתכלים כירורגיים חזקים></חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vetbond</td><td>3M</td><td>SC-361931</td><td>לסגירת חתך.</td></tr><tr><td>ערכת מלט וזרז (Duralay)</td><td>Reliance</td><td>2OZ</td><td>לקיבוע שתלים.</td></tr><tr><td>ספוגיות כותנה סטריליות (חיטוי)</td><td>JnJ</td><td>75U</td><td>לנוגדי חיטוי באתר כירורגי.&nbsp;</td></tr><tr><td>צלחת 24 באר (צלחת תרבית רקמות)</td><td>SARSTEDT</td><td>831,836</td><td>להכנת מלט.</td></tr><tr><td>מברשת יישום</td><td>Parkell</td><td>S286</td><td>לערבוב ויישום מלט.</td></tr><tr><td>Pharmaceutics</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Xylazin (ANASEDAN 2%)</td><td>Ceva Pharmaceutical (ברזיל)</td><td>P10160</td><td>לזירוז הרדמה.</td></tr><tr><td>קטמין (DOPALEN 10%)</td><td>Ceva Pharmaceutical (ברזיל)</td> <td>P30101</td><td>לזירוז הרדמה.</td></tr><tr><td>איזופלורן (100%)</td><td>כריסט ואקוטי; ליה (ברזיל)</td><td>100 מ"ל</td><td>לתחזוקת הרדמה.</td></tr><tr><td>לידוקאין (XYLESTESIN 5%)</td><td>קריסטל</td> <td>פארמה-לטיפול</td> <td>לאחר ניתוח.</td></tr><tr><td>קטופרופן (PROFENID 100 מ"ג)</td><td>סאנופי אוונטיס</td><td>20 מ"ל</td><td>לטיפול לאחר ניתוח.</td></tr><tr><td>תמיסת הלקטט של רינגר</td><td>SANOBIOL LAB</td><td>7898153652145</td><td>לטיפול לאחר ניתוח.</td></tr><tr><td>TobraDex (דקסמתזון 1 מ"ג/גרם)</td><td>אלקון</td><td>631</td><td>לסיכה והגנה על העיניים.&nbsp;</td></tr><tr><td><גירוי חזק></חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ממריץ טרנס-גולגולתי של בעלי חיים</td><td>Soterix Medical</td><td>2100</td><td>לדור הנוכחי.</td></tr><tr><td>מחזיק אלקטרודה מסוג סיכה (בסיס מחזיק גלילי)</td><td>Soterix Medical</td><td>2100</td><td>תמיכת אלקטרודות (שתל).</td></tr><tr><td>אלקטרודה מסוג סיכה (Ag/AgCl)</td><td>Soterix Medical</td><td>2100</td><td>לאספקת זרם (אלקטרודה).&nbsp;</td></tr><tr><td>מכסה אלקטרודה מסוג סיכה</td><td>Soterix Medical</td><td>2100</td><td>להגנה על שתלים.</td></tr><tr><td>אלקטרודה לגוף (מצופה Ag/AgCl)</td><td>Soterix Medical</td><td>2100</td><td>לאספקה נוכחית (אלקטרודה).&nbsp;</td></tr><tr><td>תמיסת מלח (0.9%)</td><td>FarmaX</td><td>7896902206441</td><td>מדיום מוליך לאספקה שוטפת.</td></tr><tr><td>פינצטה או מלקחיים סטנדרטיים</td> <td>-</td><td></td> <td>להגדרת tDCS.</td></tr><tr><td><חזק>תגובת שרשרת פולימראז בזמן אמת</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BioRad CFX96 מערכת בזמן אמת</td><td>BioRad</td><td>C1000</td><td>עבור qPCR</td></tr><tr><td>SsoAdvancedTM אוניברסלי SYBR ירוק סופרמיקס (5 X 1 מ"ל)</td> <td>BioRad</td><td>1725271</td><td>עבור qPCR</td></tr><tr><td>קשיח מעטפת PCR צלחות PCT COM 50 p/ CFX96</td><td>BioRad</td><td>HSP9601</td><td>עבור qPCR</td></tr><tr><td>Microseal "B" חותם pct c/ 100</td><td>MSB1001 BioRad</td><td></td><td>עבור qPCR</td></tr></tbody></table>

טראנס זרם ישיר גירוי (tdcs) בעכברים

Transcranial Direct Current Stimulation (tDCS) in Mice

טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) היא טכניקה neuromodulation פולשני המוצע כטיפול אלטרנטיבית או משלימה למחלות מנוטלי מספר. השפעות ביולוגיות של tDCS הם לא מובן במלואו, כפי שמוסבר בחלקו בשל הקושי בהשגת רקמת המוח האנושי. פרוטוקול זה מתאר מודל העכבר tDCS המשתמשת אלקטרודה מושתל באופן כרוני המאפשר הלימוד לטווח ארוך השפעות ביולוגיות tDCS. במודל זה ניסיוני, tDCS שינויים בביטוי הגן קורטיקלית ומציע תרומה בולטת ההבנה של הרציונל לשימוש טיפולית שלה.

פרוטוקול כירורגי הציגו יציבות שתל לטווח ארוך עבור חודש אחד לפחות, אין אותות דלקתיים באתר מגורה ולא כל השפעה רצויה אחרת. כל החיות שרדו ההפעלות הליך ו tDCS כירורגי (n = 8). בניסוי זה, שתלים tDCS היו מוצבים מעל cortices M1 ו- M2 (+1.0 מ מ קדמי-את ישבנה ואת 0.0 מ מ לרוחב כדי bregma). שבוע לאחר מכן, tDCS (n = 3-4) ואת דמה (n = 3) עכברים היו מגורה במשך חמישה ימים רצופים במהלך 10 דקות ב- 0.35 mA. ערכי איכות הקשר (סי) נרשמו להערכת הכדאיות השתל, אין הבדלים משמעותיים נמצאו בין הקבוצות במהלך הליך גי...

טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) היא טכניקה טיפולית הציע לטפל במחלות פסיכיאטריות. במודל חיה חיונית להבנת שינויים ביולוגיים ספציפיים עורר באמצעות tDCS. פרוטוקול זה מתאר מודל העכבר tDCS המשתמשת אלקטרודה מושתל באופן כרוני.

טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) בעכברים

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for ...

הליך אלבר גאוד הוא ליישם גירוי זרם ישיר transcranial בעכברים. זה הושג על ידי יצירת זרמים אינטנסיביים נמוכים מגנרטור זרם ישיר, ושליחתו ישירות אל החיה באמצעות אלקטרודות. tDCS נחקר כחלופה טיפולית לא תרופתית להפרעות פסיכיאטריות עיקריות בבני אדם, כגון דיכאון, סכיזופרניה, מחלת אלצהיימר, AHDH ואוטיזם.יתר על כן, tDCS היא טכניקה ייחודית בשל העלות הנמוכה שלה, קלות השימוש, ופרופיל לא פולשני. עם זאת, ההשפעות הביולוגיות של tDCS אינן מובנות לחלוטין, ואין קונצנזוס לגבי פרמטרים של גירוי, כגון עוצמת זרם, משך ואריח של אזורי המוח. לכן, השימוש בהזמנות מינימום חיוני למחקר יסודי של מנגנונים כאלה, אשר יוביל להבנה טובה יותר של היעילות הקלינית של tDCS באמצעות רכישה וניתוח של נתונים תאיים ומולקולריים התנהגותיים.יש כיום שתי הגדרות אלקטרודה עבור tDCS, המכונה גירוי אנודיאלי וקתודאלי. בגירוי אנודיאלי, הזרמים מועברים ישירות לראש החיה, דרך גוף החיה, ולתוך הקתודה המוצבת על בית החזה של החיה. בעוד בגירוי קתודאלי הזרם נכנס דרך בית החזה של החיה, נע עד ראשו לתוך הקתודה.בשני המצבים גנרטור הנוכחי שולט בעוצמה הנוכחית ומשך הגירוי. בעת הפקת איכות איש קשר והסיק משוב. קיימות הגדרות רבות ושונות עבור מיקום פעיל.לכן, יש לקחת בחשבון את כל הציר התלת מימדי. בפרוטוקול זה הושתלה אלקטרודה של ראש מילימטר אחד לתוך ברגמה מושרשת, בצד לקו האמצעי של הגולגולת, ואלקטרודה הגוף היה ממוקם על החזה של החיה. בשל סימולציה תקופתית קצרה, הומלץ להשתמש בפעולה מהירה ובהרדמה לטווח קצר, כגון isoflurane מאדה.הליך זה מורכב משני שלבים קריטיים. מיקום אלקטרודה וגירוי זרם ישיר טרנס-קרינה. מכשירים כירורגיים היו מעוכלים עם תחזוקה מראש ב 440 מעלות צלזיוס.ספוגיות כותנה היו autoclaved ב 20 פאונד לאינץ 'מרובע ב 121 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות. סובבו את בקר הפלטפורמה התרמית ל-37 מעלות צלזיוס. לשקול את החיה, ולחשב את המינון המתאים אינדוקציה הרדמה.השתמש בתערובת של קטמין ו xylazine במינון של 100 מיליגרם לקילוגרם של קטמין, ו 8 מיליגרם לקילוגרם של קסילאזין. גודל מחט 31G. החיה צריכה להירדם בתוך 2 עד 3 דקות.השתמש מכונת גילוח חשמלית או סכין גילוח כדי לגלח את האתר הכירורגי. מניחים את החיה על המנגנון הסטריאוטקסי מעל צלחת החימום החימום מראש. החזיקו את ראש החיה והכניסו את פסי האוזן לקצה לתוך כל אחת מהאוזניים של החיה, כדי לתקן אותה לפלטפורמה הסטרוטקסית.ודא שאין הסטת ראש לצד השני, ותנועה אנכית מועטה על ידי הסטה איטית של ראשו של בעל החיים. מחליקים בעדינות את מסכת ההרדמה מעל אפו של העכבר ומתקן במקום על ידי הידוק הבורג. החל משחת עיניים על העיניים של החיה כדי למנוע ייבוש הקרנית במהלך הניתוח.השתמש ספוגית כותנה כדי להכין את האתר הכירורגי עם שלושה קרצוף לסירוגין של יוד povidone, או 2% כלורוהקסידין ו 70% ethinol. השתמש זוג פינצטה כדי לאמת הרדמה לאמץ על ידי סחיטה קלה של בהונות של החיה, ואימות החוקים של רפלקס צביטה כללי פדו-נסיגה בעלי חיים. בצע חתך כשלושה מילימטרים אחוריים לקו האוזן של החיה, ולעצור בקו העין.אתר החתך חייב להיות באורך של כ סנטימטר אחד כדי להיות גדול מספיק כדי לקבל את השתל. בעדינות לגרד את הגולגולת עם מגרד עצם כדי לשפר דבק ודבקות מלט. זה חייב להיעשות אור ביד מתוך כוונה ליצור שריטות מיקרו.בזהירות למקם ווים כירורגיים לעור רופף כדי לשמור על שדה כירורגי פתוח ולשחרר אותו של חסימות, כגון עור פרווה. השתמש ספוגית כותנה סטרילית לייבש בעדינות את הקרקפת של החיה. השתמש במיקרוסקופ ניתוח כדי לדמיין את החלק העליון של הגולגולת של החיה.חבר מחט למחזיק סטרוטקסי ואתר את bregma. מקם את המחט ישירות מעל ראשו של החיה נוגע קלות bregma. השתמש bregma כהפניה כדי להתאים את הקואורדינטות של אזור העניין.תקן את השתל במחזיק הסטריאוטוקסי. מקם את השתל מעל ראשו של בעל החיים והורד אותו לאט לאזור העניין. השתמש במחט כדי להפיץ טיפה אחת, כ 35 microliters, של דבק על שטח השתל.להזיז לאט את המחזיק כלפי מטה עד שהוא נוגע בגולגולת. ודא שטח השתל הוא לגמרי במגע עם פני השטח. הכינו את המלט הכירורגי בהתאם להוראות היצרן.לאחר מיקום מדויק, יש למרוח שלוש שכבות מלט דקות ואף על פני הגולגולת, ועל החלק התחתון של השתל. יש למרוח שחרור בכל טיפה באמצעות מברשת יישום. שכבות חייבות ליצור מבנה בצורת U לתמיכה מבנית נוספת של השתל.השאירו את חוט הבורג של השתל נקי ממלט כדי לאפשר חיבור חלק ובלתי מרסן. אפשר לכל שכבה להתייבש במשך כארבע דקות. לאחר הייבוש, מוציאים בזהירות את המחזיק עד שהוא מנותק לחלוטין מהשתל.תמיד לנקוט בזהירות רבה בעת הטיפול בשתל, שכן הוא עלול להיות מושפל בטעות מגולגולתו של החיה. יש להעניק לחות לעור ולחתך של החיה בעזרת צמר גפן ספוג מלוח. חותכים את העור מעל בסיס השתל.השתמש זוג פינצטה כדי להביא את הרקמה יחד, ולסגור את החתך עם טיפה אחת של דבק כירורגי רקמה לכל נקודה 2 ס"מ של רקמה. הסתננו 1 עד 2%lidocaine באתר החתך וברקמות הבסיסיות. לחות את החיה עם 500 microliters של צלצול לקטט בו זמנית.מניחים את העכבר לתוך כלוב בית יחיד מחומם מראש 37 מעלות צלזיוס נקי. בנה מנה קטנה של כדורי מזון רטובים בכלוב, לגישה נוחה למזון בשעות הבאות. רשום את המשקל הכירורגי שלאחר החיה.החיה חייבת להינתן עם קטופרופן. 5 מיליגרם לקילוגרם בו זמנית לאחר הניתוח וביומיים הקרובים. ודא שמריצי tDCS טעונים במלואם.חבר את כבלי האנודה והקתודה לגירוי tDCS והפוך אותם לזמינים ליד אתר הסימולציה. חבר את האלקטרודה מסוג סיכה למחזיק סטרוטקסי. הגדר את הפלטפורמה התרמית ל-37 מעלות צלזיוס.הפעל את מד זרימת החמצן במערכת ההרדמה של שאיפה ל-1 ליטר לדקה. מניחים את העכבר לתוך תא אינדוקציה הרדמה. הפעל את אידוי isoflurane ל 3% לאפשר את החיה לעבור אפקטים isoflurane במשך ארבע דקות.בעוד החיה נמצאת בתא אינדוקציה, להשתמש מזרק סטרילי כדי למלא את האלקטרודה הגוף עם 0.9% תמיסת מלח. מוציאים את החיה מתא הגיוס וממקם את החזה שלה מעל האלקטרודה של הגוף. החלק בעדינות את מסכת ההרדמה מעל אפו של העכבר ותקן במקומו.מנמיך את תפוקת isoflurane ל 1.5% למלא את השתל ואת האלקטרודה סוג סיכה עם מלוחים. בזהירות לצרף אותם יחד. התאם את זמן הגירוי ואת עוצמתו הנוכחית בהתאם לפרוטוקול שלך.אמת את איכות איש הקשר במערכת tDCS מאוחר יותר. התחל את הגירוי. שים לב לרמפה הנוכחית למשך 20 שניות לערך שנבחר.ושמירה על עצמה יציבה לזמן שנקבע. ואז, בסוף הקטע משתולל שוב. הפעל את לחצן ה-shin לשליטה.שים לב לרמפה הנוכחית למשך 20 שניות לערך שנבחר. ואז למטה אחד לשארית תקופת הגירוי, עם רמפה סופית לערך שנבחר, בסוף, עם רמפה רצופה למטה. אחד סעיף הגירוי הושלם, בזהירות להעביר את החיה לכלוב מחומם מראש 37 מעלות צלזיוס במשך 10 דקות.פרוטוקול זה משתמש ב- tDCS כדי לעורר את קליפת המוח של העכבר מילימטר אחד הקדמי לברגמה. גרף זה מציג את הביטוי הסטטיסטי והגנטי לאחר פרוטוקול גירוי tDCS. שימוש בעוצמה נוכחית של 0.35 מיליאמפר למשך 10 דקות ביום.שתל tCDS הציג את עצמו קיימא מהיום הראשון עד חמש ללא הבדל משמעותי בין הימים באיכות המגע. ישנם מגוון של פרוטוקולי גירוי tCDS במוח מודל. יש לבחור פרוטוקולים בהתאם ליוחות הניסוי שלך.אזור של גירוי, עוצמת זרם, משך הפגישה, ומיצוב אלקטרודה. בפרוטוקול מסוים זה, אנו שואפים לווסת את קליפת המוח המוטורית באמצעות tDCS הידוע שלנו עם הזרם של 350 מיקרואמפר במשך 10 דקות. לאחר צפייה בסרטון זה תוכל לבצע tDCS בעכברים.כאשר מישהו מתרגל ניתוח עשוי להימשך עד ארבע דקות לכל בעל חיים. חשוב לקחת בחשבון את הנחיות הטיפול בבעלי חיים בעת ניצול העכברים במהלך הניתוח ולאחר הטיפול שלאחר הניתוח לבעלי החיים, כך שבעלי החיים יישארו בריאים במהלך המחקר. אנו ממליצים גם להמתין חמישה עד שבעה ימים לאחר מיקום השתל כדי לבצע את הניסויים, שכן התגובה הפיזיולוגית של החיה לטראומה עלולה להפריע לתוצאות הביולוגיות.

transcranial-direct-current-stimulation-tdcs-in-mice

Research

JoVE Journal

Neuroscience

מדעי המוח

Transcranial גירוי זרם ישר (tDCS) היא טכניקה הוקמה כדי לווסת את רגישות קליפת...

אלקטרודה מיצוב ו מונטאז גירוי ישיר Transcranial נוכחי

מקור: Shaw, M. T. et al. גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי בפיקוח מרחוק: עדכון על בטיחות וסבילות. J. Vis. Exp. (2017)סרטון זה מדגים את התהליך של גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי (tDCS) בניהול עצמי לשיפור קוגניטיבי. הוא מתאר את השלבים למיקום אלקטרודות, הגדרת גירוי, הערכת סבילות וההשפעות הנוירופלסטיות הנגרמות על ידי tDCS.

ניהול עצמי של גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי לשיפור תפקודים קוגניטיביים

מקור: Chen, W., et al. קביעת מיקום הגירוי באמצעות דיגיטייזר תלת-ממדי עם גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי בחדות גבוהה. J. Vis. Exp. (2019)סרטון זה מדגים את ההליך למתן גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי בחדות גבוהה (HD-tDCS) על ידי מיקום מדויק של אלקטרודות באמצעות מערכת 10-10, מיפוי מיקומן באמצעות דיגיטייזר תלת מימדי והפעלת גירוי כדי לווסת את הפעילות העצבית באזור מוח ממוקד.

גירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי בחדות גבוהה להפעלת אזור מוח המטרה

גירוי High-Definition Transcranial ישיר נוכחי (HD-tDCS), עם 4x1-הטבעת שלו מונטאז', הוא טכניקת גירוי מוחית לא פולשנית שמשלבת גם את ההשפעות של neuromodulatory tDCS קונבנציונלי עם focality המוגבר. מאמר זה מספק הדגמה שיטתית של השימוש ב4x1 HD-tDCS, והשיקולים הדרושים לגירוי בטוח ויעיל.

טכניקה ושיקולים בשימוש ב4x1 טבעת גירוי מקומי ישיר Transcranial בהבחנה גבוהה (HD-tDCS)

גירוי נוכחי ישיר Transcranial (tDCS) הוא טכניקת גירוי מוחית לא פולשנית שהראתה השפעות טיפוליות ראשוניות במספר תנאי נוירולוגיות. המנגנון העיקרי שביסוד השפעות טיפוליות אלה הוא האפנון של רגישות קליפת המוח. לכן, ניטור מקוון של רגישות קליפת המוח יעזור פרמטרים גירוי מדריך ולייעל את ההשפעות הטיפוליות שלה. במאמר הנוכחי אנו בודקים את השימוש במכשיר חדשני המשלב tDCS בו זמנית וניטור EEG בזמן אמת.

ניטור EEG סימולטני במהלך גירוי מקומי ישיר Transcranial

גירוי הנוכחי ישיר Transcranial (tDCS) הוא טכניקת גירוי מוחי לא פולשנית. זה בהצלחה כבר בשימוש במחקר בסיסי והגדרות קליניות לווסת את תפקוד מוח בבני אדם. מאמר זה מתאר את היישום של tDCS ודימות תהודה מגנטית תפקודיות בו זמנית (fMRI), כדי לחקור את הבסיס העצבי של השפעות tDCS.

Transcranial זרם ישר גירוי והדמיית תהודה מגנטית פונקציונלית בו זמנית

מחקרים הראו שגירוי זרם ישר טרנס-גולגולתי קתודלי יכול לייצר השפעות מדכאות על התקפים עמידים לתרופות. במחקר זה, תוכנן מערך ניסוי במבחנה שבו הוערכו גירוי הזרם הישר ורישום מערך מרובה אלקטרודות של פעילות דמוית התקף בהכנת פרוסות מוח של עכברים. פרמטרי הגירוי בזרם ישר הוערכו.

גירוי ישיר שוטף הקלטת מערך רבה-אלקטרודה של פעילות כמו-תפיסת עכברי הכנת פרוסת המוח

כתב יד זה מספק פרוטוקול מעודכן השגחה מרחוק המאפשרת השתתפות בניסויים קליניים של גירוי (tDCS) זרם ישיר של טראנס תוך קבלת טיפולים מהבית. הפרוטוקול היה הטיס בהצלחה הן בחולים עם טרשת נפוצה, פרקינסון.

מרחוק תחת פיקוח ישיר טראנס גירוי נוכחי: עדכון על הבטיחות והסבילות

פרוטוקול זה מתאר מלכודת כירורגי שקע אלקטרודה epicranial קבוע, אלקטרודה חזה מושתל בחולדות. על ידי הצבת של האלקטרודה השנייה לתוך השקע, סוגים שונים של גירוי חשמלי מוחי טראנס יכולים להינתן על מערכת התנועה בבעלי התראה דרך הגולגולת ללא פגע.

טראנס גירוי חשמלי מוחי בחולדות התראה

אנו מתארים פרוטוקול להערכת עקומות מנה-תגובה לגירוי חוץ-גולגולתי במונחים של מדידות שדה חשמלי במוח וזרימת דם רלוונטית של סמן ביולוגי-מוחי. מכיוון שפרוטוקול זה כולל החדרת אלקטרודות פולשניות למוח, יש צורך בהרדמה כללית, כאשר נשימה ספונטנית עדיפה על פני נשימה מבוקרת.

מיקום אלקטרודות מעוררות חוץ-גולגולתיות ומדידת זרימת דם מוחית ושדות חשמליים תוך גולגולתיים בעכברים מורדמים

פרוטוקול זה מתאר את השיטה של מיקום אלקטרודות נוירו-ניווטיות עבור גירוי זרם ישיר טרנס-גולגולתי (tDCS) הניתן במהלך דימות תהודה מגנטית תפקודי (fMRI).

גירוי זרם ישיר טרנס-גולגולתי ממוקד ממוקד הניתן במהלך הדמיית תהודה מגנטית תפקודית

למד את פרוטוקול tDCS בעכברים לחקר השפעות ביולוגיות על הפרעות פסיכיאטריות. שיטה זו מאפשרת למדענים לחקור מנגנונים נוירונליים ויעילות קלינית של גירוי חשמלי לא פולשני.

טראנס זרם ישיר גירוי (tDCS) בעכברים

גלה סרטונים נוספים