Name: איסוף דם באמצעות ניקוב ורידים תת-מותני בעכברים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: למד שיטה בטוחה ויעילה לאיסוף דם מעכברים באמצעות ניקוב הווריד התת-מותני. הטכניקה מאפשרת איסוף כ-200 מיקרוליטר דם תוך שמירה על רווחת בעלי החיים ומתאימה למחקרים עם מספר נקודות זמן.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכת על ידי המענק של הקרן הלאומית למדע הטבע של סין No. 81670269, מס ' 81500355 ו-No 81500226.

מחקר זה אושר על ידי ועדת האתיקה של האוניברסיטה המרכזית הדרומית לחקר בעלי חיים מבית החולים השני Xiangya (צ'אנג-שא, סין). כתב היד הוכן בהתאם להגעת (מחקר בעלי חיים: דיווח על ניסויים בVivo) הנחיות12.
1. חומר ובעלי חיים
<ol><li>הכנת החומרים הדרושים: 75% אתנול, סרט דביק, סוכן אפילטינג, 2 מ"ל שפופרת, 1.0 mL מזרק מחובר עם מחט (26G), סולם אלקטרוני, הפארין ותמיסת מלח (ראה טבלת חומרים).</li>
	<li>בעלי חיים: להכין 10 עכברים קונמינג, 6-8 בן שבועות ושקילה 34.7-28.3 g (ראה טבלת חומרים). שמור על עכברים בהתאם למדריך לטיפול ולשימוש בחיות מעבדה13.</li>
</ol>2. מיצוב בעלי חיים והרדמה
<ol><li>שוקלים את העכבר כדי לחשב את המינון הנדרש של סוכן הרדמה.</li>
	<li>הכנס נתרן פנטוברביטל (60 mg/ק"ג) באמצעות הזרקה תוך הצפק כדי לגרום הרדמה כללית14 (איור 1). להחיל משחה העין סטרילי בתחילת ההליך כדי למנוע נזק לעיניים חשופות. הערה: עכברים נחשבים להיות מורדם מספיק כאשר מראים שום תגובה מוטורית לבדיקה של רפלקס נסיגה הדוושה, צביטה בזנב, או לצבוט בעור הבטן.</li>
	<li>מניחים את העכבר בטבלת הפעולות במיקום פרקדן ו 2-4 ס מ רחוק מקצה השולחן כדי להקל על ניקוב וריד (איור 2). תקן את הגפיים במצב נוח כפי שמוצג באיור 2. אין צורך בצנרור או באוורור מכני בתהליך כולו.</li>
	<li>החלת הסוכן אפילטינג סביב החלל הגדול עם ספוגית כותנה.</li>
	<li>שלוש דקות מאוחר יותר, לשטוף את הסוכן האפיגטיבי עם מנקה כותנה רטובה כדי להסיר את הפרווה וכל לכלוך גלוי.</li>
	<li>לחטא את החלל הגדול עם 75% אתנול ואז יבש עם גזה נקייה.</li>
</ol>3. ניקוב והפקלבי ואיסוף דם
<ol><li>זהה את המיקום של עצם הבריח ופוסות מעולה עם אצבע.</li>
	<li>אתר את אתר הניקוב קרוב לאמצע עצם הבריח ולקדאל. הניחו את האצבע השמאלית לרוחב למקום הניקוב כדי לתקן את העור ואת הרקמה התת עורית (איור 3).</li>
	<li>הזיזו את המחט כלפי מעלה וכלפי הגולגולת לפוסות הסטראלי העליונות. ברגע שהמחט נכנסת לרקמה התת עורית, הזז את האצבע הטבעת של יד ימין לאחור כדי ליצור לחץ שלילי (איור 3). הערה: במהלך שלב זה, המיקום של האופרטור ́s יד ימין צריך להיות מעט נמוך יותר מאשר טבלת הפעולה כדי להפוך את המחט לנוע כלפי מעלה מעולה למישור האופקי. זו הסיבה שהחיה ממוקמת. ליד קצה השולחן</li>
	<li>להעביר את המזרק קדימה 3-4 מ"מ אבל לעצור אם אין ניקוז דם לתוך המזרק. ואז לאט למשוך לאחור את המזרק ולשמור על לחץ שלילי בו. ברוב המקרים, הדם היה נכנס. למזרק כאשר הוא מושך לאחור</li>
	<li>ברגע שהדם נכנס למזרק, תקן את המזרק ושמור על לחץ שלילי עד שעוצמת הקול הדרושה (200 μL) של הדם נאספה במזרק.</li>
	<li>לאחר איסוף הדם, למשוך את המחט ניקוב, ולחץ על האתר ניקוב עם משטח כותנה מעט 1-2 דקות כדי להפסיק את הדימום. ואז, עכברים להחזיר לכלוב. הערה: לעיתים לא ניתן היה להשיג את הדם בניסיון הראשון. התאם את כיוון המחט לכיוון ההפוך וחזור על שלבים 3.3-3.5. אם 3 ניסיונות להיכשל להשיג דגימת דם, לעבור לצד השני.</li>
	<li>העבירו את דגימת הדם. לתוך צינור הסוכר</li>
</ol>4. עכברים שחזור
<ol><li>בעוד ההרדמה פנטוברביטל הוא בתוקף, מהירות התאוששות על ידי מתן תמיכה בחום עד העכבר נע שוב.</li>
</ol>

<ol><li>McCosh, R. B., Kreisman, M. J., Breen, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequent+Tail-tip+Blood+Sampling+in+Mice+for+the+Assessment+of+Pulsatile+Luteinizing+Hormone+Secretion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Frequent Tail-tip Blood Sampling in Mice for the Assessment of Pulsatile Luteinizing Hormone Secretion.</a> Journal of Visualized Experiments. (137), (2018).</li>
<li>Regan, R. D., Fenyk-Melody, J. E., Tran, S. M., Chen, G., Stocking, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+Submental+Blood+Collection+with+the+Retroorbital+and+Submandibular+Methods+in+Mice+%28Mus+musculus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Comparison of Submental Blood Collection with the Retroorbital and Submandibular Methods in Mice (Mus musculus).</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 55 (5), 570-576 (2016).</li>
<li>Park, A. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+collection+in+unstressed%2C+conscious%2C+and+freely+moving+mice+through+implantation+of+catheters+in+the+jugular+vein%3A+a+new+simplified+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reports%22%5BJournal%5D)">Blood collection in unstressed, conscious, and freely moving mice through implantation of catheters in the jugular vein: a new simplified protocol.</a> Physiological Reports. 6 (21), e13904(2018).</li>
<li>Heimann, M., Kasermann, H. P., Pfister, R., Roth, D. R., Burki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+collection+from+the+sublingual+vein+in+mice+and+hamsters%3A+a+suitable+alternative+to+retrobulbar+technique+that+provides+large+volumes+and+minimizes+tissue+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Blood collection from the sublingual vein in mice and hamsters: a suitable alternative to retrobulbar technique that provides large volumes and minimizes tissue damage.</a> Laboratory Animals. 43 (3), 255-260 (2009).</li>
<li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology+%26+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology & Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Diehl, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Toxicology%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> Journal of Applied Toxicology. 21 (1), 15-23 (2001).</li>
<li>van Herck, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orbital+sinus+blood+sampling+in+rats+as+performed+by+different+animal+technicians%3A+the+influence+of+technique+and+expertise%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Orbital sinus blood sampling in rats as performed by different animal technicians: the influence of technique and expertise.</a> Laboratory Animals. 32 (4), 377-386 (1998).</li>
<li>Tsai, P. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+blood+collection+methods+on+indicators+of+welfare+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Effects of different blood collection methods on indicators of welfare in mice.</a> Lab Anim (NY). 44 (8), 301-310 (2015).</li>
<li>Holmberg, H., Kiersgaard, M. K., Mikkelsen, L. F., Tranholm, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+blood+sampling+technique+on+blood+quality+and+animal+welfare+in+haemophilic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Impact of blood sampling technique on blood quality and animal welfare in haemophilic mice.</a> Laboratory Animals. 45 (2), 114-120 (2011).</li>
<li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+efficacy+of+a+modified+axillary+vein+technique+for+pacemaker+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiology+Plus%22%5BJournal%5D)">Safety and efficacy of a modified axillary vein technique for pacemaker implantation.</a> Cardiology Plus. 3, 104-107 (2018).</li>
<li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subclavian+Vein+Puncture+As+an+Alternative+Method+of+Blood+Sample+Collection+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats.</a> Journal of Visualized Experiments. (141), (2018).</li>
<li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+ARRIVE-ing+at+a+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Laboratory Animals. 44 (4), 377-378 (2010).</li>
<li>Research, I. fL. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aResearch%2C+IfLA+%22Guide+for+the+care+and+use+of+laboratory+animals%22">Guide for the care and use of laboratory animals</a>. , National Academies Press. Washington (DC). (1996).</li>
<li>Redel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+ischemia+and+reperfusion+times+on+myocardial+infarct+size+in+mice+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Biology+and+Medicine+%28Maywood%2C+N.J.%29%22%5BJournal%5D)">Impact of ischemia and reperfusion times on myocardial infarct size in mice in vivo.</a> Experimental Biology and Medicine (Maywood, N.J.). 233 (1), 84-93 (2008).</li>
<li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li>
<li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+Blood+Collection+from+Tail+Vein+of+Non-Anesthetized+Rats+with+a+Vacuum+Blood+Collection+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).</li>
</ol>

. אף אחד לא הוכרז

דו ח זה מייצג הרחבה של מחקר קודם על דגימת דם דרך ניקוב הווריד התת-קלאובי בחולדות11. כמו העכבר הוא חיה המחקר הנפוץ ביותר, זה יהיה יקר לראות אם טכניקה זו ניתן גם להחיל על עכברים. האתגר נובע מהקוטר הקטן יחסית של הווריד התת-קלאובי.
במחקר הנוכחי, מצאנו כי ניקוב ריחי בעכברים היא דרך אפשרית ואמינה לאסוף דם. לעומת השיטות הקונבנציונליות כגון חיתוך וריד הזנב או איסוף דם מסלולית, אין בעיות אתיות של השיטה הנוכחית. כל החיות שרדו לאחר הליך זה ללא תוספי נוזלים לאחר כ 200 μL של חילוץ הדם, ובעלי חיים יכולים לשמש למחקרים ניסיוניים נוספים. תיאורטית, מיצוי הנפח הכולל לדוגמה לא הצליח להגיע ליותר מ -10% מנפח הדם במחזור הכולל בכל פעם והנפח הכולל של בעל חיים מבוגר הוא 55 ל70 mL/ק"ג משקל גוף5. עבור העכברים המשמשים במחקר זה (34.7-28.3 g), החילוץ המקסימלי העוצמה צריך להיות סביב 200 μL. כך אנו להגדיר את כמות דגימת הדם סביב 200 μL עבור כל עכבר. חוסר היכולת למדוד לחץ דם, קצב הלב, ופרמטרי מתח אחרים הם המגבלות העיקריות של דו ח זה.
הרדמה כללית מספיקה היא עוד בעיה חשובה כדי להבטיח את הצלחת הניקוב. העכברים צריכים להישאר שקטים במהלך הליך הניקוב כדי למנוע את הסיכון של פגיעה בכלי על ידי המחט. מצאנו כי פנטוברביטל נתרן ב 60 מ"ג/ק"ג להרדמה כללית יכול לספק עומק אידיאלי של הרדמה. חיסרון של סוכן זה הוא זמן ההחלמה הארוך יחסית (בממוצע כ -30 דקות). במוסדות מסוימים משתמשים באינהלציה לזמן קצר, ויש לקחת בחשבון את האפשרות לקבל הרדמה חלופית15.
המיקום של וריד ריחי מוצג באיור 4. בגלל הקיר הדק והלחץ הנמוך בווריד, הקיר הקדמי והאחורי של הווריד ריחי היה לצרף אחד את השני תחת לחץ של מחט בזמן המחט הוא נע קדימה (איור 5a). בזמן הסגת הבוכנה באיטיות, הקירות המחוברים יפרידו באופן ספונטני, וקצה המחט יכול לחדור לתוך המזרק האמיתי של כלי הדם והדם, והוא יכול לנקז את מזרק תחת לחץ שלילי מתמשך (איור 5B). שימוש של מערכת איסוף דם ואקום16 אולי גם לטובת איסוף הדם. בשל הקוטר הקטן יחסית של העכברים התת-כהאליים, עלולים להיות כישלונות אפילו עבור מפעיל מנוסה. לטירון, אנחנו ממליצים על ניקוב. ורידים בחולדות שדווחו על11 לאחר מספר ניסיונות ניקוב מוצלח בחולדות, שיעור ההצלחה של ניקוב הווריד ריחי בעכברים יכול להיות משופר באופן משמעותי. ודא כי המיקום ניקוב מדויק הוא רק caudal באמצע עצם הבריח. המחט נעה כלפי מעלה והגולגולת לפוסה מעולה הם נקודות מפתח אחרות כדי להבטיח ניקוב מוצלח.
לסיכום, ניקוב וריד ריחי הוא שיטה בטוחה ויעילה עבור איסוף דם בעכברים. פרט לחיתוך וריד הזנב, רטרו-מסלולית אוסף דם, שיטה זו היא אפשרית, בטוח, מתאים מחקרים תצפית בכמה נקודות זמן בעכברים.

אוסף דגימת דם מעכברים חיוני ברוב מעבדות המחקר. הגישות קונבנציונאלי עבור איסוף הדם בעכברים הוא חיתוך זנב כאשר פחות מ 100 μL של המדגם נדרש1. עם זאת, אם יותר מ-100 μL של דם נדרשים בנקודת זמן לא מסוף, retroorbital, דימום תת הלסת או איסוף דם תת-מנטלי הם הנפוצים ביותר טכניקות2. במקרים מסוימים, צנתור וריד הצוואר דרך חתך כירורגי אומץ כשיטה חלופית3.
למרות זאת, השיטות שלעיל מזיקות לעכברים. למיטב ידיעתנו, שיטת הרטרוביטל אינה מתקבלת באופן נרחב בשל הסיכון הפוטנציאלי לסיבוכים4,5. טראומה קשורה למבצע לא מתרחשת רק באזור הנראה6,7, אלא גם עמוק בתוך המסלול6. חוץ מזה, אוסף דם תת הלסת הוא מלחיץ8 ויכול להיות משויך דימום מופרז2,9. בהתבסס על המחקר הקודם שלנו10,11, כאן אנו מציגים אסטרטגיה חדשה עבור איסוף דם מווריד ריחי בעכברים. הבטיחות, הכדאיות והשגת נפח הדם עם טכניקה זו מוצגים ודנים.

<table><tbody><tr><td>מזרק 1.0 מ"ל</td><td>שאנדונג Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd (Weihai, מחוז שאנדונג, סין)</td><td>20163151593</td><td></td></tr><tr><td>75% אתנול</td><td>המחלקה לרוקחות, בית החולים השני של אוניברסיטת מרכז דרום</td><td>תוצרת המחלקה לרוקחות, בית החולים השני Xiangya של מרכז האוניברסיטה הדרומית</td><td></td></tr><tr><td>סרט דבק</td><td>3M Deutschland GmbH (Kamen, גרמניה)</td><td>1534-1</td><td></td></tr><tr><td>כפפות בד</td><td>להרדמה</td><td></td><td></td></tr><tr><td>בקנה מידה אלקטרוני</td><td>דונגגוואן Shengheng אלקטרוניקה ושות' בע"מ (דונגגוואן, מחוז גואנגדונג, סין)</td> <td>KP-3000</td><td></td></tr><tr><td>סוכן אפילציה</td><td>צרפת Yi Sha קוסמטיקה ושות' בע"מ (גואנגג'ואו, מחוז גואנגדונג, סין)</td><td>8281744</td><td></td></tr><tr><td>הפרין (ריכוז משומש 10 U / מ"ל, 2 מ"ל, 12500 IU)</td> <td>נאנג'ינג Xinbai פרמצבטיקה ושות 'בע"מ (נאנג'ינג, מחוז ג'יאנגסו, סין)H32025851</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>עכברים</td><td>הונאן SJA מעבדה בעלי חיים בע"מ (צ'אנגשה, מחוז הונאן, סין)&nbsp;</td>מחט spcies <td></td><td>של קונמינג</td></tr><tr><td>, 26 גרם, 0.45 מ"מ x 16 מ"מ</td><td>שאנדונג Weigao Group Medical Polymer Co. Ltd (Weihai, מחוז שאנדונג, סין)</td><td>20163151593</td><td></td></tr><tr><td>נתרן פנטוברביטל (תמיסה משומשת 1%)</td><td>Merck</td><td>P-010-1ML</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת מלח פיזיולוגית, 100 מ"ל</td><td>Hunan Kelun Pharmaceutical Co. Ltd (Yueyang, מחוז הונאן, סין)H43020454</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>תוכנה</td> <td>סטסטיתמכונות עסקיות בינלאומיות</td><td>SPSS סטטיסטיקה 25</td><td></td></tr><tr><td>צינור, 2 מ"ל</td><td>Hubei Jinxing טכנולוגיה & פיתוח ושות 'בע"מ (מחוז ווהאן חוביי, סין)</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr></tbody></table>

איסוף דם באמצעות ניקוב ורידים תת-מותני בעכברים

Blood Collection Through Subclavian Vein Puncture in Mice

העכבר הוא מודל היונקים המוביל ביותר לחקר מחלות אנוש ובריאות האדם. עם זאת, אוסף דגימת דם מעכברים הוא מאתגר בעבודת מחקר. איסוף דם זנב הוא שיטה פופולרית כאשר כמות קטנה של דגימת דם נדרש. עורק מסלולית יכול להיחשב אם כמות גדולה של דם נדרשת אבל זה שיטת איסוף הדם יש בעיות אתיות. לשעבר, הדגמנו את הכדאיות ואת הבטיחות של איסוף דגימת דם באמצעות ניקוב ורידים ריחי בחולדות, וכאן אנו חוקרים אם ניתן להשתמש בשיטה זו בעכברים. אנו מדווחים כי שיטה זו היא בטוחה ומעשית עבור איסוף דם בעכברים. איסוף דם דרך ניקוב הווריד ריחי בעכברים יכול להיות שיטה נוחה בעבודות המחקר היומי.

חזרנו על הליך זה 10 העכברים בקונמינג (זכר n = 5, נקבה n = 5, משקל 25.4 ± 2.0 g). תשע הליכים הצליחו בצד ימין. מקרה אחד נכשל בתוך 3 ניסיונות בצד ימין ואיסוף הדם הצליחו בצד שמאל. קורס הזמן (מתוך ניקוב להשגת נפח הדם הנדרש) נע בין 35-126 שניות (ממוצע 68.4 ± 26.4 s). נפח איסוף הדם הוגדר כ סביב 200 μL (ממוצע 203 ± 11.6 μL). איסוף הדם הצליח בתוך 1 עד 4 ניסיונות. דגימת הדם הצליחה בניסיון הראשון בשני עכברים ולאחר 4 נסיונות בעכבר אחד; הדגימה לקחה 2-3 ניסיונות בעכברים האחרים. כל הנתונים היו מומחש בטבלה 1. כל החיות שרדו והתאוששו תוך 30 דקות לאחר דגימת הדם. לא היה הבדל משמעותי בין המינים לכל הפרמטרים הנצפים (שולחן 1).
<img alt="הליך הזרקת עכבר מעבדה, מחט מזרק, ידית כפפה, התקנה ניסיונית." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59556/59556fig1.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> איור 1 : הרדמה כללית באמצעות זריקת הצפק <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59556/59556fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="הגדרת לימוד עכבר; בדיקת פרוצדורות כירורגיות על עכבר, מודבק לבדיקה על משטח כחול" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59556/59556fig2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> איור 2 : את המיקום פרקדן של העכבר. שימו לב שהמרחק בין השוליים לבין העכבר הוא 2-4 ס מ. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59556/59556fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="מערך הרדמה בעכבר, שיטת הזרקה, ניסוי ביו-רפואי, הכנה טרום ניתוחית, מחקר מעבדה." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59556/59556fig3.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> איור 3 : אתר הניקוב ותנוחת הידיים של המפעיל. שים לב שאצבע הטבעת של יד ימין נעה אחורה כדי ליצור לחץ שלילי. היד השמאלית ממוקמת לרוחב לאתר הניקוב כדי לתקן את העור ורקמות תת עורית. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59556/59556fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="דיאגרמת אנטומיה של עכבר המציגה פוסה על-סטרנלית, עצם עצם הבריח, מסלול ורידים תת-בריחיים." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59556/59556fig4.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 4"> איור 4 : מיקומו של הווריד התת-קלאובי. עצם הבריח ופוסות מעולה ומנקז לתוך הווריד העליון. מתחת לפוסות מעולה <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59556/59556fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="דיאגרמת דגימת דם עורקית המציגה החדרת קטטר לתהליך שאיבת דם." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59556/59556fig5.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 5"> איור 5 : הקשר בין קיר כלי הקיבול למחט במהלך הניתוח. (א) קירות וריד המשנה מתחברים זה לזה כשהמחט נעה קדימה, כך שלא ניתן יהיה לשאוב דם. (ב) תוך הסגת המחט לאחור, הקירות נפרדים זה מזה והדם יכול להיות מצויר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59556/59556fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>שתנה</td>
			<td>סה כ (n = 10)</td>
			<td>זכר (n = 5)</td>
			<td>נקבה (n = 5)</td>
			<td>ערך P</td>
		</tr>
<tr>
<td>משקל גוף (גר')</td>
			<td>25.3 ± 2.2</td>
			<td>25.3 ± 3.0</td>
			<td>25.4 ± 1.3</td>
			<td>0.926</td>
		</tr>
<tr>
<td>נפח דם (μL)</td>
			<td>203.0 ± 11.6</td>
			<td>208 ± 13.0</td>
			<td>198 ± 8.4</td>
			<td>0.187</td>
		</tr>
<tr>
<td>קורס (ים)</td>
			<td>68.4 ± 26.4</td>
			<td>70.6 ± 35.1</td>
			<td>66.2 ± 18.0</td>
			<td>0.809</td>
		</tr>
<tr>
<td>שיכות</td>
			<td>2.3 ± 0.9</td>
			<td>2.4 ± 1.1</td>
			<td>2.2 ± 0.8</td>
			<td>0.760</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">לא היו הבדלים משמעותיים המין עבור כל הפרמטרים נצפתה, כל ערך P &gt; 0.05.</td>
			<td></td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 1: הפרמטרים הנצפים בין המינים

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לקחת דגימות דם. מווריד התת-קלאובי של העכברים

The mouse is the foremost mammalian model for studying human disease and human health. However, blood sample collection from mice is challenging in ...

איסוף דם דרך ניקור ורידים תת-סלאבי בעכברים. איסוף דגימת דם מעכברים חיוני ברוב מעבדות המחקר. הגישות המקובלות לאיסוף דם בעכברים הוא חיתוך זנב, כאשר יש צורך בפחות מ-100 דגימת מיקרוליטר.עם זאת, אם יותר מ 100 microliter של דם נדרשים בנקודת זמן שאינה סופנית, רטרו מסלולית, דימום תת-ניהולי, או איסוף דם תת-מנטלי, הן הטכניקות הנחשבות ביותר. במקומות מסוימים חתך וריד הצוואר או צנתור אומצו כשיטות חלופיות. עם זאת, השיטות לעיל פוגעות בעכברים.על בסיס המחקרים הרשמיים שלנו, כאן אנו מציגים אסטרטגיה חסכונית ועדינה חדשה לאיסוף דם מוריד תת-חלבי בעכברים. הבטיחות וההיתכנות, והשגת נפח הדם בטכניקה זו, מוצגים ונדונים. לאחר הרדמה כללית, שכב העכבר במצב סופי.נקה את החלל התת-רקלביקי עם 75% אתנול. אשר את עצם הבריח ואת פוסה על-חושית לפני הנקב. זהה את אתר הדקירה באמצע עצם הבריח.להזיז את המחטים מעולה ומעלה לכיוון פוסה על-חושית, רק האחורי אל עצם הבריח. לאחר הזזת שלושה עד ארבעה מילימטרים קדימה, לשמור על לחץ שלילי במזרק, ולאט לאט למשוך בחזרה את המחט. דם יתנקז למזרק במהלך הנסיגה.לאחר איסוף הדם, לחץ על אתר הדקירה ברכות במשך שעה עד שתי דקות כדי להפסיק לדמם. הכינו את החומרים הנדרשים, כולל 75% אתנול, סרט הדבקה, חומר אפילינג, צינורות, מזרק 1.0 מיליליטר המחובר עם מחט, קנה מידה אלקטרוני, הפרין ותמיסת מלח. לאחר הרדמה כללית משביעת רצון, מניחים את העכבר על שולחן הניתוחים במצב סופי, ושניים עד ארבעה סנטימטרים מקצה השולחן כדי להקל על ניקור ורידים.תקן את הגפיים בתנוחה נוחה, כפי שמוצג באיור 2. לא היה צורך בהצנרור או באוורור מכני בכל ההליך. החל סוכן epilating סביב החלל infraclavicular עם צמר גפן.שלוש דקות לאחר מכן, לשטוף את החומר epilating עם ספוגית כותנה רטובה, כדי להסיר את הפרווה וכל לכלוך גלוי. מעקרים את החלל התת-רקלבי עם 75% אתנול, ואז יבשים עם גזה נקייה. זהה את המיקום של עצם הבריח ופוסה על-חושית באצבע אחת.אתר את אתר הניקוב, קרוב לאמצע עצם הבריח, ותפס אותו. שים את האצבע המורה השמאלית בצד לאתר הנקב כדי לתקן את העור ואת הרקמה התת עורית. להזיז את המחט כלפי מעלה בגולגולת שכב לכיוון הפוסה העל-חושית.ברגע המחט להיכנס לתוך הרקמה התת עורית, האצבע הטבעתית של יד ימין חייב לנוע אחורה כדי ליצור לחץ שלילי. להתקדם המזרק במשך שלושה עד ארבעה מילימטרים, אבל לעצור אם אין ניקוז דם לתוך המזרק. ואז לאט למשוך בחזרה את המזרק, ולשמור על לחץ שלילי בו.ברוב המקרים הדם ייכנס למזרק במהלך ההמשך לאחור. לאחר שהדם נכנס למזרק, לתקן את המזרק, ולשמור על לחץ שלילי, עד נפח הדם הנדרש שנאסף במזרק. לאחר איסוף הדם, למשוך את מחט הדקירה, ולחץ על אתר לנקב עם צמר גפן ספוגית מעט במשך 1 עד 2 דקות כדי לעצור את הדימום, ואז לשלוח עכברים בחזרה לכלובים.העבר את דגימת הדם לצינור הפרין שלנו. חזרנו על הליך זה ב 10 עכברי Quimi. תשעה הליכים הצליחו בצד ימין.מקרה אחד נכשל בתוך שלושה ניסיונות בצד ימין, ואיסוף הדם הצליח בצד שמאל. מסלול הזמן נע בין 35 ל-126 שניות. נפח איסוף הדם נקבע סביב 200 microliters.איסוף הדם הצליח עם אחד עד ארבעה ניסיונות. דגימת הדם הצליחה בניסיון הראשון בשני עכברים, וב-4 ניסיונות בעכבר אחד, בשניים עד שלושה ניסיונות בעכברים אחרים. כל הנתונים הומחשה בטבלה 1.כל החיות שרדו, והחלימו תוך 30 דקות לאחר דגימת הדם. לא היה הבדל משמעותי בין מין לכל הפרמטרים שנצפו. לסיכום, ניקור ורידים תת-סלאבי הוא שיטה בטוחה ויעילה לאיסוף דם בעכברים.מלבד חיתוך וריד הזנב ואיסוף דם מקלעת רטרו-מסלולית, שיטה זו אפשרית ומתאימה למחקרים תצפיתיים במספר נקודות זמן בעכברים.

blood-collection-through-subclavian-vein-puncture-in-mice

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לאסוף דגימות דם מן הווריד בריחי של חולדה.

בריחי וריד לנקב כאמצעי חלופי של איסוף דגימת דם בחולדות

מחקר זה דוחות דיגום הדם של וריד הזנב בעכברים באמצעות מערכת צינור שאיבת ואקום עם זכוכית מגדלת מוכספת. השיטה שלנו קל לתרגל, ניתן להשתמש עבור לקיחת דמים חוזרים בעכברים.

איסוף ששונה דם מן הוורידים הזנב של עכברים שאינם מרדימים עם מערכת איסוף הדם ואקום, זכוכית מגדלת מוכספת

הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה פשוטה ויעילה לאיסוף דם מהווריד הסובקלאבי בחולדות. הוא מאפשר דגימה מהירה, מהירה וקלה לזיהוי ללא הרדמה ומשיג דם איכותי באמצעות איסוף דגימות חוזר.

דגימת דם חוזרת מהווריד הסובקלבי של חולדה מודעת

כאן אנו מציגים שילוב של הגבלת חולדות יעילה ושיטות ניקור ורידים תת-קרקעיות המאפשרות איסוף דם מהיר, בטוח וחוזר בחולדות ללא הרדמה.

דגימת דם של ורידים תת-קלאביים בחולדות מודעות

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לטכניקת איסוף דם אופטימלית בנבדקים עכברים באמצעות ניקור ורידים בפנים באמצעות lancet. אנו משתמשים בטכניקה זו לצד הערכה ציטומטרית של זרימה ציטומטרית כדי לאפיין פנוטיפים תאיים של זנים טרנסגניים, קונגניים ומדווחים. הוא מתאים גם לניתוח ציטוקינים בסרום ולמחקרי סוכרת.

ניקור ורידים בפנים לאיסוף דם עכברים

ניקור לב תת-בריחי הוא שיטה פשוטה ואמינה לאיסוף דם סופי בעכברים. הוא קל לתפעול ומבטיח דגימות בעלות טוהר גבוה.

איסוף דם לבבי באמצעות ניקוב תת-בריחי בעכברים

במודל עכבר של קשירת לנקב cecal ו ככלי רב ערך לחקר אלח דם האדם.

קשירת Cecal נקר נוהל

מאמר זה מדגים שתי שיטות שונות של הזרקת מאוד: 1) לתוך המוח (intracerebroventricular) ו 2) מערכתית (תוך ורידי) כדי להציג את סוכני טיפולית לתוך מערכת העצבים המרכזית של עכברים הילוד.

מסירה של סוכני טיפולית באמצעות Intracerebroventricular (ICV) ו תוך ורידי (IV) הזרקה של עכברים

סמנים ביולוגיים הם אינדיקטורים ביולוגיים ישירות נמדדים של מחלה או בריאות. באוכלוסייה ובמדעי חברה, סמנים ביולוגיים צריכים להיות קל להשגה, תחבורה, ולנתח. אוסף ספוט דם יבש (DBS) עונה על צורך זה, יכול להיות שנאסף בתחום עם שיעורי תגובה גבוהים וניתח עבור מגוון רחב של סמנים ביולוגיים.

יבש של אוסף דם ספוט בריאות סמנים למקסם את ההשתתפות בלימודי אוכלוסייה

ניתן להשתמש במיקרוסקופיה תוך-חיונית בבעלי חיים כדי להמחיש ולמדוד את קוטר כלי הדם ברשתית, מהירויות זרם הדם וזרימת הדם הכוללת ברשתית.

מדידות מיקרוסקופ וידאו תוך-חיוני של זרימת הדם ברשתית בעכברים

למד שיטה בטוחה ויעילה לאיסוף דם מעכברים באמצעות ניקוב הווריד התת-מותני. הטכניקה מאפשרת איסוף כ-200 מיקרוליטר דם תוך שמירה על רווחת בעלי החיים ומתאימה למחקרים עם מספר נקודות זמן.

איסוף דם באמצעות ניקוב ורידים תת-מותני בעכברים

גלה סרטונים נוספים