Name: הפאן-lyssavirus בזמן אמת RT-PCR לאבחון כלבת (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: למד שיטת RT-PCR בזמן אמת לאבחון כלבת באמצעות גלאי Pan-Lyssavirus. פרוטוקול זה מאפשר זיהוי מהיר ורגיש של נגיפי Lyssavirus בדגימות קליניות לפני ואחרי המוות, כולל בדגימות מורכבות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחברים רוצים להודות מיס אמה וייז וגברת מייגן גולדינג לסיוע בהשלמת הניסויים. הפיתוח של פרוטוקול זה היה נתמך מבחינה כספית על ידי מחלקת בריטניה לאיכות הסביבה, מזון וכפריים (defra), הממשלה הסקוטית והממשלה הוולשית על ידי מענקים [SV3500, ו SE0431] ועל ידי הפרויקט העולמי ארכיון הווירוסים (evag) האירופי ש קיבל מימון של אופק 2020 של האיחוד האירופי תוכנית מחקר וחדשנות תחת הסכם מענק לא 653316.

דגימות מחומר אבחוני שהתקבל בשנת APHA לאחר זיהום טבעי, או מושגת על ידי עכברים באמצעות פרוטוקולים המוערך על ידי אתיקה APHA והוועדה הסטטיסטית תחת התקנות משרד הבית בבריטניה תחת רישיון 70/7394.
1. כימות ה-RNA באמצעות ספקטרוסקופיה מיקרו של אמצעי אחסון
<ol><li>ודא שההגדרות של הספקטרוסקופיה מוגדרות ל-RNA.</li>
	<li>השתמש ב-1-2 μL של מים כיתה מולקולריים כדי לאתחל את המחשב ולהגדיר תוכנית בסיסית.</li>
	<li>השתמש ב-1-2 μL של כל מבחן RNA לדוגמה כדי להעריך את כמות ה-RNA.</li>
	<li>שמור את הקריאות והמסמכים.</li>
	<li>להתאים את RNA ל -1 μg/μL, אם נדרש. הערה: RNA חייב להישמר בקרח (או בבלוק קריר) בכל עת. אם רנ א מושגת באמצעות עמודה, או מבוסס חרוז שיטה RNA הוא בדרך כלל פחות מ 1 μg/μL. במצב זה להשתמש RNA מסודר.</li>
</ol>2. הכנת סדרת דילול RNA לקביעת רגישות לנקודת סיום
<ol><li>
לעשות דילול טורי 10 קיפול של ה-RNA.
	<ol>
<li>מתייג צינורות עם סדרת דילול (למשל, 10-1, 10-2, וכו ') ואת פרטי ה-RNA.</li>
		<li>הוסף 45 μL של מים כיתה מולקולרית לכל צינור.</li>
		<li>להוסיף 5 μL של RNA (בעבר מדולל ל 1 μg/μL) ומערבבים היטב.</li>
		<li>היפטר מעצת פיפטה בחומר חיטוי מתאים והחלף בעצה טרייה.</li>
		<li>קח 5 μL מתוך 10-1 ולהוסיף שפופרת 10-2 ומערבבים היטב.</li>
		<li>חזור על 2.1.3-2.1.5 עם הדילול הנותר. הערה: RNA חייב להישמר בקרח (או בבלוק קריר) בכל עת.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. הכנת התגובות בזמן אמת-PCR
<ol><li>באמצעות גיליון אלקטרוני, לתכנן את פריסת צלחת על פי מספר דגימות בדיקה ודגימות בקרה, עבור שניהם lyssavirus ולאחר מכן-actin assays מאמר. הערה: אם 4 דגימות יש להיבדק בשכפול עם שליטה חיובית ושלילית, זה שווה ל 10 תגובות עבור שניהם מספר.</li>
	<li>בחדר נקי או באזור נפרד מתבנית RNA, נגב את המשטחים באמצעות חיטוי מתאים לפני השימוש או הכנת תחנת עבודה של PCR (אם בשימוש). כדי להכין את תחנת העבודה, לנגב את משטח הקבינט עם חיטוי מתאים ולמקם את הפריטים הדרושים לתוך תחנת העבודה ולסגור את הדלתות. . תדליק את האור אולטרא-סגול במשך 10 דקות</li>
	<li>הסר את ההנהלה ואת התחל מן המקפיא והפשרה (ריאגנטים המפורטים בטבלה 1 והתחל בטבלה 2). הערה: תערובת האנזימים מאוחסנת בגליצרול כך שאינה דורשת החלקה ויש לשמור על הקרח (או בבלוק קריר) בכל עת. כל הריאגנטים האחרים ניתן להפשיר בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>פעם להפשיר, לערבב את הריאגנטים ואת צנטריפוגה לזמן קצר כדי לאסוף נוזל. הערה: , אל תעשה מערבולת של ערבוב האנזימים. רק צנטריפוגה לזמן קצר</li>
	<li>הכן תערובות בסיס נפרדות עבור lyssavirus ולאחר מכן-actin. עבור כל תגובה, להוסיף 7.55 μL של מים כיתה מולקולרית, 10 μL של 2x אוניברסלי SYBR שילוב התגובה הירוק, 0.6 μL של קדימה פריימר, 0.6 μL של הפוך פריימר, 0.25 μL של iTaq האנזים ערבוב.
	<ol>
<li>השתמש בגיליון אלקטרוני כדי לחשב אמצעי אחסון נכונים כדי למנוע שגיאות בחישוב ידני. ודא כי מספיק שילוב מאסטר מוכן לפיצוי על שגיאת הליטוף. לכן, אם יש 10 תגובות נדרשים (ראה הערה ב 3.1), להכין 12 תגובות</li>
		<li>הכינו את המאסטר-שילוב בקרח (או בבלוק קריר) והישארו על הקרח עד שיוצבו במכונת הזמן האמיתי.</li>
	</ol></li>
	<li>מערבבים את המאסטר מוכן תערובות, צנטריפוגה בקצרה ולוותר 19 μL לתוך הבארות הרלוונטיות של צינורות הרצועה או צלחת הבאר 96 תואם עם מכונת בזמן אמת בשימוש. הערה: מזער את הייצור של בועות בבארות בזמן הליטוף.</li>
	<li>בחדר נפרד, או בארון UV הכין כמתואר בשנת 3.2, בזהירות להוסיף 1 μL של ה-RNA שהותאם בעבר ל-1 μg/μL (ראה שלב 1.5) מתחת לפני השטח של היטב מערבב הורים הטוב ולערבב בעדינות. התעלם מעצת הפיפטה לחיטוי ישירות לאחר השימוש (מתחת לפני השטח).
	<ol>
<li>הוסף את הפקדים לאחר דגימות הבדיקה, כאשר הפקד החיובי התווסף לאחר מכן ולא בקרת התבנית (המים המולקולריים) הוספו לאחרונה. כמות ה-RNA שבשימוש ניתן לשינוי בהתאם לסוג המדגם, ו-RNA משמש להפקת. הסכום המשמש חייב להיות מאומת כדי להבטיח שהתגובה ממוטבת.</li>
	</ol></li>
	<li>לוחית החותם באמצעות מכסים הרצועה או איטום לטפל כדי להבטיח את כל העפעפיים סגורים היטב מתויג מספיק כדי להתמצא דגימות. סמן את הקצה של שפופרות הלוח/הרצועה.</li>
	<li>לסובב את הדגימות באמצעות צנטריפוגה לאסוף את כל הנוזלים בתחתית הבארות.</li>
	<li>להעביר את הצלחת בזמן אמת מכונת PCR, לפתוח את הדלת ואת המקום במחזיק להבטיח את המיקום הנכון/כיוון הדגימות על פי פריסת הלוח. הערה: אם נעשה שימוש ברצועות שפופרת, ודא שהמחזיק נמצא במקומו.</li>
	<li>פתח את תוכנית המחשב PCR בזמן אמת ובחר את האפשרות להתנסות SYBR בזמן אמת עם עקומת הדיסוציאציה. תכנת את מכונת ה-PCR בזמן אמת באמצעות תנאי הרכיבה התרמיים המצוינים בטבלה 3, כולל נקודות איסוף הנתונים.</li>
	<li>בחר Sybr כצבע הפלורסנט ובחר לא ידוע כסוג המדגם והוסף שם לתיבה הנכונה שם לדוגמה. הערה: להבדיל בין המשכפלת וגם בין ליסביסוירוס לבין בארות-actin.</li>
	<li>בחר מיקום קובץ כדי לשמור את הנתונים הניסיוניים, לוודא המנורה יהיה כבוי בסוף ההפעלה, ואז להתחיל את הריצה. הערה: כצעד הראשון הוא שלב RT, לא נאספים נתונים בזמן זה, לכן, אם המנורה דורשת תקופה חמה זה יכול להתרחש במהלך השלב RT. מכונת בזמן אמת ותוכנה יציג את עקומות הגברה בזמן אמת, בעוד עקומת ההיתוך תיווצר בסוף המחזור.</li>
</ol>4. ניתוח נתונים
<ol><li>
לאחר השלמת ההפעלה לבצע את ניתוח הנתונים כדלקמן.
	<ol>
<li>תחילה לנתח את תוצאות העלילה הגברה של דגימות הבדיקה לצד דגימות הבקרה. דוגמאות חיוביות מציגות רמפות מעריכית, שבדרך כלל מוצגות על-ידי רמה וערך Ct . דגימות שליליות מציגות מגרשי הגברה שטוחים ללא ערכי Ct (איור 1a). ערך Ct מחושב באופן אוטומטי על-ידי התוכנה, למרות שיש לבדוק ולשנות אותה באופן ידני במידת הצורך.</li>
		<li>שנית, לנתח את עקומת הדיסוציאציה תוצאות של דגימות הבדיקה לצד דגימות בקרה. לדוגמה חיובית תהיה טמפרטורת התכה (Tm) 77 – 80 ° c, וחפיפה עם איור הבקרה החיובי 1b).</li>
		<li>השג את תוצאת האבחון הכוללת על-ידי הבטחת הפקדים תקפים. השתמש בטבלה 4 כדי לפרש את התוצאות ביחס לבקרת הפנימיות-actin הפנימית. אם דגימות הבקרה החיוביות הן שליליות ו/או הדגימות השליליות חיוביות, יש להתעלם מהפעלת ההפעלה.</li>
		<li>הקלט את הערכים Ct ו-tm שהתקבלו עבור RNA הבקרה ב-' כרטיס בקרה ' כדי לאפשר ניתוח מגמות ולעזור לזהות השאיפה של הרגישות.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>OIE. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22OIE+Terrestrial+Manual+2018%22">OIE Terrestrial Manual 2018</a>. , 8-14 (2018).</li>
<li>Panning, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+rabies+virus+reverse+transcription-PCR+and+virus+isolation+using+samples+from+a+patient+infected+with+rabies+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of rabies virus reverse transcription-PCR and virus isolation using samples from a patient infected with rabies virus.</a> Journal of Clinical Microbiology. 48 (8), 2960-2962 (2010).</li>
<li>Wakeley, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+real-time%2C+TaqMan+reverse+transcription-PCR+assay+for+detection+and+differentiation+of+lyssavirus+genotypes+1%2C+5%2C+and+6%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Development of a real-time, TaqMan reverse transcription-PCR assay for detection and differentiation of lyssavirus genotypes 1, 5, and 6.</a> Journal of Clinical Microbiology. 43 (6), 2786-2792 (2005).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+SYBR-green+I+quantitative+real-time+reverse+transcription-PCR+assay+for+rabies+viruses+with+different+virulence%5BTitle%5D)+AND+%22Virologica+Sinica%22%5BJournal%5D)">A SYBR-green I quantitative real-time reverse transcription-PCR assay for rabies viruses with different virulence.</a> Virologica Sinica. 29 (2), 131-132 (2014).</li>
<li>Wadhwa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Pan-Lyssavirus+Taqman+Real-Time+RT-PCR+Assay+for+the+Detection+of+Highly+Variable+Rabies+virus+and+Other+Lyssaviruses%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">A Pan-Lyssavirus Taqman Real-Time RT-PCR Assay for the Detection of Highly Variable Rabies virus and Other Lyssaviruses.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 11 (1), e0005258(2017).</li>
<li>Nadin-Davis, S. A., Sheen, M., Wandeler, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+real-time+reverse+transcriptase+polymerase+chain+reaction+methods+for+human+rabies+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Virology%22%5BJournal%5D)">Development of real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction methods for human rabies diagnosis.</a> Journal of Medical Virology. 81 (8), 1484-1497 (2009).</li>
<li>Hoffmann, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+safety+for+molecular+diagnosis+of+classical+rabies+viruses+by+use+of+a+TaqMan+real-time+reverse+transcription-PCR+%22double+check%22+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Improved safety for molecular diagnosis of classical rabies viruses by use of a TaqMan real-time reverse transcription-PCR "double check" strategy.</a> Journal of Clinical Microbiology. 48 (11), 3970-3978 (2010).</li>
<li>Faye, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+validation+of+sensitive+real-time+RT-PCR+assay+for+broad+detection+of+rabies+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Development and validation of sensitive real-time RT-PCR assay for broad detection of rabies virus.</a> Journal of Virological Methods. 243, 120-130 (2017).</li>
<li>Dacheux, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+Combined+Real-Time+Reverse+Transcription+Polymerase+Chain+Reaction+Assay+for+the+Diagnosis+of+Lyssavirus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Dual Combined Real-Time Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction Assay for the Diagnosis of Lyssavirus Infection.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 10 (7), e0004812(2016).</li>
<li>Fooks, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Disease+Primers%22%5BJournal%5D)">Rabies.</a> Nature Reviews Disease Primers. 3, 17091(2017).</li>
<li>Marston, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ikoma+lyssavirus%2C+highly+divergent+novel+lyssavirus+in+an+african+civet%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Ikoma lyssavirus, highly divergent novel lyssavirus in an african civet.</a> Emerging Infectious Diseases. 18 (4), 664-667 (2012).</li>
<li>ICTV. Virus Taxonomy: 2018 Release: Email ratification October 2018 (MSL #33). , Available from:
 <a target="_blank" href="https://talk.ictvonline.org/taxonomy/">https://talk.ictvonline.org/taxonomy/</a> (2018).</li>
<li>Hu, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lyssavirus+in+Japanese+Pipistrelle%2C+Taiwan%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Disease%22%5BJournal%5D)">Lyssavirus in Japanese Pipistrelle, Taiwan.</a> Emerging Infectious Disease. 24 (4), 782-785 (2018).</li>
<li>Nokireki, T., Tammiranta, N., Kokkonen, U. M., Kantala, T., Gadd, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tentative+novel+lyssavirus+in+a+bat+in+Finland%5BTitle%5D)+AND+%22Transboundary+and+Emerging+Diseases%22%5BJournal%5D)">Tentative novel lyssavirus in a bat in Finland.</a> Transboundary and Emerging Diseases. 65 (3), 593-596 (2018).</li>
<li>Hayman, D. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+universal+real-time+assay+for+the+detection+of+Lyssaviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">A universal real-time assay for the detection of Lyssaviruses.</a> Journal of Virological Methods. 177 (1), 87-93 (2011).</li>
<li>Calisher, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigenic+relationships+among+rhabdoviruses+from+vertebrates+and+hematophagous+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">Antigenic relationships among rhabdoviruses from vertebrates and hematophagous arthropods.</a> Intervirology. 30 (5), 241-257 (1989).</li>
<li>Aznar-Lopez, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+rhabdovirus+viral+RNA+in+oropharyngeal+swabs+and+ectoparasites+of+Spanish+bats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+General+Virology%22%5BJournal%5D)">Detection of rhabdovirus viral RNA in oropharyngeal swabs and ectoparasites of Spanish bats.</a> Journal of General Virology. 94 (1), 69-75 (2013).</li>
</ol>

. למחברים אין מה לגלות

התבנית הפאן-lyssavirus בזמן אמת מתוארת שיטת הפעולה המתוארת היא שפופרת סגור, שיטת צעד אחת המזהה את הווירוסים ברחבי שלושת הפיללוהקות. הבחינה מאומתת עבור אבחון בעלי חיים וכלבת אנושית, כולל רקמת מוח שלאחר המוות (גזע מוחי אופטימלי), ודגימות לאחר המוות כגון ביופסיה לעור, שנאספו בצורה סדרתית, או נוזל שדרתי מוחי (שדרתי). התחל השימוש במערכת זו תוכנן לראשונה ונוצל לצורך בדיקה על בסיס המכשיר להבדיל בין RABV, EBLV-1 ו-EBLV-23, אשר נעשה בו שימוש במעבדות מעבדות רבות של כלבת ומבצעת בעקביות ב-eurl מיומנות המזימות. לאחר מכן, הטבע של ' פאן-lyssavirus ' של התחל האלה אושר באמצעות שיטת בזמן אמת של 2 שלבים15. הבקשה המתוארת כאן הייתה בשימוש בצבעי היסוד כדי למטב עוד יותר את ה-RT-PCR בשיטת SYBR בעלת שלב אחד, המאפשרת מערכת שפופרת סגורה ומהירה. יתר על כן, הכשרה במדינות כלבת אנדמיים באמצעות השיטה הזאת אישרה התאמה ליישם בכל מעבדה עם PPE בסיסי מערכות איכות כדי להפחית זיהום הצלב דגימות מעקב, מתקנים לאחסן את הריאגנטים ואת בזמן אמת מחשב עם זיהוי SYBR. ה100 הינו עמיד ביותר, ויש לו מתאם% עם השומן, עם רגישות משופרת לדגימות מפורקת3. אחד היתרונות העיקריים עבור שיטת ה-DNA לצבוע מבוסס צבען בהשוואה לחישוב מבוסס הבדיקה הוא העלות היחסית. יתרון נוסף הוא שהסטייה משתמשת רק בשתי התחל, ולכן יש פחות סיכון לגילוי כישלון בשל התפצלות רצף, אשר כבר חולשה במחקר שפורסם בעבר על ידי החוקרת. אכן, נציגי כל מיני וירוס lyssavirus (מלבד TWBLV ו KBLV) מזוהים באמצעות הטיפול הזה, וניתוח רצף של TWBLV ו KBLV על פני האתרים פריימר לא חושף סטייה משמעותית רומז כי הם יזוהו גם באמצעות שיטה זו. טווח הגבלת הזיהוי הנצפה על פני וירוסים שנותחו, יכול להיחשב כתוצאה משני גורמים עיקריים. הראשון הוא ש-RNA היה מבודד מחומר המוח הקליני, ולכן כמות עותקי הגנום בכל מדגם שלא מדולל אינו בדיוק המקבילה. RNA היה ' מנורמל ' על-ידי התאמת ה-RNA הכולל ל-1 μg/μL; עם זאת, שיעור של הגנום הנגיפי RNA בתוך המדגם הזה יהיה שונה. השני הוא המגוון של רצפי lyssavirus, למרות האתרים הפריימר להיות ממוקם באזורים שמרו, שם יישארו עמדות של וריאציה. לכן, זה לא מפתיע כי הרוב של lyssaviruses עם רגישות נמוכה יותר עבור השיטת הם phylogroup II ווירוסים III. ניתוח עקומת הדיסוציאציה מייצג פרמטר חיוני, מזעור תוצאה חיובית שקרית אשר יכול להתרחש באופן אחר בשל היווצרות של מבקיעות, או הגברה של אזור לא ספציפי הגנום המארח. במציאות, זהו מקרה נדיר וניתוח עקומת הדיסוציאציה הוא שווה ערך להפעלת ג'ל agarose כדי להמחיש בגודל הנכון של הגברה המקובלת RT-PCR. מגוון ערכי Tm מקובלים סופק (77-80 ° c), בהתבסס על הנתונים שנאספו במעבדה שלנו. מומלץ מאוד כי מעבדות בודדות לאסוף נתונים בתוך הבית כדי להבטיח את הטווח מועבר ולתקן בהתאם. פענוח התוצאות הן מחלקות הגברה והן מתווה הדיסוציאציה, לצד הפקדים החיוביים והשליליים ותוצאות ה-actin, מאפשר תוצאות אבחון איתנות ועמידות.
מחוץ לטווח של פרוטוקול זה היא שיטת החילוץ RNA המשמש להשגת באיכות גבוהה RNA. כל RNA שנותח בפרוטוקול זה הוכן באמצעות TRIzol; עם זאת, יש הרבה מתאימים guanidium מבוססי מבוסס בסיס RNA פרוטוקולים החילוץ זמין, כולל עמודה ומבוסס חרוז ערכות החילוץ. טיפול של lyssavirus חיובי (או חשד חיובי) דגימות חייב להיות בתוך מתקני biocontainment מורשה אישר בתוך המדינה. עם זאת, RNA הכולל שחולצו הוא לא זיהומיות, ולכן טיפל במעבדות לבלימה נמוכה. בהתאם לשיטת החילוץ בשימוש, הדרישה לכמת ולדלל את ה-RNA צריך להיות מוערך. עבור העקירות מבוססי פנול, כולל TRIzol, שלב זה נדרש ומונע עיכוב של הדרישה מזיהום gDNA; עם זאת, טור ו מבוסס חרוז (במיוחד אלה עם המחסור DNA הבמה) אינם דורשים דילול לפני בדיקות.
במהלך הפרוטוקול, חיוני כי טיפול וחריצות משמשים כדי למנוע זיהום צולב ותוספת מדויקת של דגימה לבארות הנכון. גיליון אלקטרוני עם חישובים מגיב ופריסת צלחות זמינים להורדה כקובץ משלים. אימון טוב במעבדה, כולל משטחי עבודה נקיים, שינויים קבועים של כפפות, שימוש בתיאורי מכשול וחדרים שונים/ארונות UV כדי להפריד כל שלב יהיה למזער את הסיכוי לזיהום. כדי לוודא שהבדיקה מופיעה עם פרמטרים צפויים, יש לכלול פקדים חיוביים ושליליים, וכל דגימות הבדיקה פועלות בכפולות (או בטרילקאט).
הכללת הפקדים היא תכונה חיונית של כל ה-PCR, במיוחד לאבחון. שליטה חיובית RNA הוכנו מ-קורות חיים (האתגר תקן וירוס) נגוע מוחות העכבר בקבוצות מאומת מכויל כדי להבטיח עקביות בין קבוצות. RNA הבקרה היה ככמת ו מדולל 1 μg/μL. RNA שעבורו תוצאה חיובית הושגה בדילול סדרתי לפחות 10-4 (שווה ל 100 Pg/μl) נחשב כמתאים למטרה. ה-RNA החיובי היה מאוחסן ב-80 ° c ב -10-1 . כאשר נדרש, סדרת מחלקים היה מדולל 1:100 כדי לספק מניות עבודה ב 1 ng/μl ומאוחסן ב-80 ° צ' ב 5 μl שימוש יחיד סדרת מחלקים. בקרת מדולל חיובי RNA שימש לייצוג דגימות חיוביות ברמה נמוכה, כדי להבטיח כי כל הפחתה ברגישות של המנה זוהתה. הוחזק ' כרטיס בקרה ' עבור כל פקד כדי לנטר את ערכי ה-t ולזהות מגמות (טבלה 5). טבלה 5 הפגינו טוב בין הפעלה בין השוואת היכולת של בקרת קורות החיים CT ו-tm באמצעות מספר ימים ואופרטורים, מתן ביטחון כי הכדאיות היא איתנה ומוכחת. יש לחקור תוצאות הסטות ממידות אלה ולבדוק דגימות חוזרות במידת הצורך. מים כיתה מולקולרית נכלל בכל ריצה כמו NTC כדי לאשר את הריאגנטים היו ללא זיהום עם RNA lyssavirus ולאשר דגימה שלילית. יתר על כן, כדי להבטיח את היעילות של החילוץ RNA, בדקו במקביל את דגימות הבדיקה בצינור נפרד. בקרת lyssavirus שליטה חיובית היה גם בשימוש עבור שליטה חיובית-actin. גנים אנדוגניים אחרים או מערכות בקרה פנימית הטרוולוגי יכולים להיות מנוצלים. השימוש בפקדים אלה מבטיח שכל הצעדים נותחו תחת אותם תנאים כמו דגימות הבדיקה. מדי פעם, אם המדגם היה מושפל מאוד או לא להכיל מספיק RNA מארח (כגון רוק או שדרתי), ה-PCR גן אנדוסוגני יכול להיכשל. במקרה זה, כאשר lyssavirus בזמן אמת התוצאה RT-PCR היה חיובי, אישור על שאיבת RNA עצמאית-כדי לשלול זיהום במהלך חילוץ RNA על המבחן המקורי או על ידי בדיקה משנית (או מולקולרית, כגון המקובלת RT-PCR) , או FAT. השימוש בטבלה 4 במהלך ניתוח מדגם אבחוני הבטיח את הפרשנות הנכונה.
ללא קשר לשיטה המולקולרית המשמשת לאישור זיהום כלבת, מעקב אחר חקירות באמצעות רצף שומנים כדי לקבוע את מיני הווירוסים וטכניקות קלאסיות בוירולוגיה כגון בידוד FAT או וירוס, יש לבצע גם כדי לאפשר עוד מאפיין וירוס ותמיכה הודעה של מקרים חיוביים ל-OIE ומי.

האבחנה של כלבת בשיטות מולקולארית התקבלה על-ידי ה-OIE ב-20181, מזהה את היתרונות של טכניקות אלה באימות מקרי כלבת, במיוחד במצבים שבהם הדגימות הן תת-אופטימליות, או לאבחון הנתיחה, כאשר אין דרישה עבור וירוס חי או דגימות טריות. Pcr בחני עבור lyssaviruses דורשים תמלול הפוכה (RT) לפני PCR יכול להתחיל כמו הגנום הוא RNA. RT-PCR בחני אומר כי לזהות את 3 ' האזור האבובי של הגנום נחשבים רגישים ביותר, כמו מעברי הצבע הטרנססקריפט מתרחשים במהלך שכפול lyssavirus. השימוש הנפוץ ב-RT-PCR בחני יכול להיות מחולק בהרחבה לשתי קטגוריות, נקודת קצה (או ג'ל מבוסס) ובזמן אמת. שתי הגישות הן רגישות וספציפיות; עם זאת, בזמן אמת יש כמה יתרונות נוספים כגון קבלת תוצאות ב-' זמן אמת ' והוא מבוצע במערכת שפופרת סגורה לחלוטין, ובכך מפחית את הפוטנציאל לזיהום מפעיל. קיימות שתי גישות עיקריות כדי לזהות הגברה ספציפיים של lyssavirus המתקבלים באמצעות assays בזמן אמת. הראשון מנצל בדיקה הידרוליזה (כגון בדיקה TaqMan) המכילים fluorophore ו מקאורה. כאשר החללית נקשר לאזור היעד במהלך הגברה, את הפעילות האקסאוכירות של הפולימראז התוצאות של הדיסוציאציה של fluorophore ו הקונשר, המאפשר הזריחה והתוצאה להיות נמדד. השני מנצל את הצבע intercalating DNA (fluorochrome כגון SYBR גרין) הנקשר DNA כפול נטוש במהלך הגברה. Fluorochromes מאוגד פולט קרינה פלואורסצנטית כי הוא זיהה בכל מחזור, המאפשר זיהוי בזמן אמת וכימות המוצר. בשל האופי הלא ספציפי של איגוד לכל dsDNA, ניתוח עקומת הדיסוציאציה מבוצעת כדי לאשר את הספציפיות של התגובה. בזמן אמת RT-בדיקות הם מהירים בשל אמפליקון קטן גדלים, בדרך כלל פחות מ 200 bp באורך; עם זאת, זיהוי אזורים מתאימים לעיצוב התחל והבדיקות באזורים שמרו, יכול להוכיח מאתגרת, ולכן הסרת הדרישה לגשוש הוא יתרון ברור.
מספר בזמן אמת RT-בדיקות תוכננו עבור זיהוי באופן ספציפי זנים בודדים או ושלות של rabv2 וגם לזהות lyssaviruses על פני סוג3,4,5,6, 7,8,9. כל מאמר יהיה לקבל מגבלה של זיהוי תלוי כיצד שימור התחל (ובמידת הצורך, הבדיקה) רצפים הם על פני הסוג. אכן, זני וירוס המתעוררים או הרומן עשוי להפוך את הבדיקה הספציפית ביותר המבוססת על מבוסס-בדיקה יעיל. הבחירה של זיהוי בזמן אמת (צבען לעומת הבדיקה) יהיה תלוי ביישום מיועד. עבור מעבדה מנהל מעקב על חומר מקומי ממקור המוח ומצפה מספר גבוה של דגימות שליליות, השימוש בצבע intercalating זול הוא בחירה נבונה. הגישה הירוקה SYBR יהיה גם אופטימלי כאשר לנהל מעקב סריקה שבו הנוכחות של הרומן או מפוצלים lyssaviruses יישאר מבלי שיבחינו על ידי בדיקה מוגבלת יותר מבוססי המחקר.
כל חברי הסוג Lyssavirus לגרום כלבת המחלה, אשר קטלנית הסימפטומים פעם מופיעים. הרוב המכריע של המקרים של כלבת האדם והחיה נובע מנגיף הכלבת (RABV), המאגר הדומיננטי שהוא הכלב המקומי10. עטלפים הם מאגרי מארח חשוב עבור lyssaviruses וכל אלא שני מינים lyssaviruses המאופיינת זוהו ישירות בעטלפים – Ikoma lyssaviruses ירוס (IKOV) וירוס מוקדי (מוקדי) — ושל אלה שני, IKOV העריכו יש מאגר מארח בת 11. בנוסף ל -16 מינים lyssavirus ירוס12, ישנם שני lyssavirus שתוארו לאחרונה: העטלף ליסביסוירוס (twblv)13 ו kotalahti בת LYSSAVIRUS (kblv)14. Lyssaviruses יכול להיות מחולק גנטית לשלושה phylogroups, עם הרוב של lyssaviruses, כולל RABV, השייכים לקבוצת phylogroups I. עם זאת, lyssaviruses מפוצלים ביותר שייכים phylogroup III ו צפויים להתגלות על ידי RT-בדיקות שנועד למקד RABV או phylogroup אני וירוס רצפים.
הבקשה המתוארת כאן מנצלת את הזוג JW12-N165 בזמן אמת, שתוארה לראשונה ב-20053. התחל תוכנן להיות פאן-lyssavirus למרות היישום המקורי היה שיטת TaqMan עם הבדיקות כדי להבדיל מינים lyssavirus. בעקבות האישור כי הזוג הפריימר היה פאן-lyssavirus ביותר הושגה ניצול שיטת 2-step SYBR בזמן אמת על כל מיני lyssavirus זמין כולל WCBV15. הזוג הפריימר מתואר כאן בתוך צעד אחד RT-PCR בזמן אמת הניצול fluorochrome הintercalating, מאומת באמצעות נציגים מכל 16 מזוהה lyssavirus מינים. זה צעד אחד בזמן אמת שיטת הפעולה היא מהירה, רגיש, שיטת lyssavirus ירוס ספציפי וממחיש כי החוסן של התחל להגדיר לזהות מינים lyssavirus מפוצלים אפילו.

<table><tbody><tr><td>קצות פיפטה מחסום אמנות (גדלים שונים)</td><td>Thermofisher</td><td>צנטריפוגות שונות</td><td></td></tr><tr><td></td><td>בקמן</td><td>אלגרה 21R</td><td>רוטור המסוגל להחזיק 96 לוחות באר נדרשים. שלב 3.8.</td></tr><tr><td>צנטריפוגה (מיקו)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Finnpipettes (לחלוקה של 0.5-1,000 ומיקרו; L)</td> ניתן <td></td> להשתמש בערכות שוות ערך <td>ל-Thermofisher</td> שונות <td></td></tr><tr><td>iTaq אוניברסלי SYBR ירוק חד-שלבי RT-PCR</td><td>Bio-Rad</td><td>172-5150</td><td>ערכות שוות ערך אם מאומתות</td></tr><tr><td>MX3000P או MX3005P מערכת PCR אמיתית</td> ניתן להשתמש במכונות <td>Stratagene</td><td>N / A</td><td>Eqivalent אם</td></tr><tr><td>מאומת בסיס צלחת תגובה MicroAmp</td><td>כל מתאים</td><td></td><td>משמש להחזקת רצועת צינור וצלחות בצורה מאובטחת.</td></tr><tr><td>רצועות שקופות שטוחות שקופות אופטית (8)</td><td>ABgene</td><td>AB-0866</td><td></td></tr><tr><td>מסגרת בהתאמה מושלמת (אם משתמשים ברצועות צינור)</td><td>סטרטגן</td><td>N/A</td><td>ספציפי למכונה</td></tr><tr><td>פריימרים: לפרטי פריימר ראה טבלה 2.</td><td></td><td></td><td>הוזמן ב 0.05 ומיקרו; אבנית שומה HPLC מטוהרת.</td></tr><tr><td>תרמו-מהיר 96 לוחות באר, רצועות</td><td>ABgene</td><td>AB-600</td><td></td></tr><tr><td>תרמו-מהירות ללא חצאית (8) צינורות תרמיים</td><td>ABgene</td><td>AB-0452</td><td></td></tr><tr><td>מכונת מערבולת / Whirlimixer</td><td>Fisons ציוד מדעי</td><td>SGP-202-010J</td><td></td></tr><tr><td>אלא אם צוין אחרת, ניתן להשתמש בציוד</td><td></td><td></td><td></td> חלופי</tr></tbody></table>

הפאן-lyssavirus בזמן אמת rt-pcr לאבחון כלבת

Pan-lyssavirus Real Time RT-PCR for Rabies Diagnosis

הנושא המולקולרי הוא מהיר, רגיש ומדויק, והפכו למרכז לאבחון כלבת. המערכת המבוססת על PCR מבוססת במשך עשורים כדי לאשר אבחון כלבת, אבל רק לאחרונה התקבלה על ידי OIE (הארגון העולמי לבריאות בעלי חיים) כשיטה העיקרית כדי לזהות זיהום בכלבת. בזמן אמת RT-PCR מספק נתונים בזמן אמת, והם מערכות סגורות tube, למזער את הסיכון לזיהום במהלך ההתקנה. DNA intercalating fluorochrome בזמן אמת RT-PCR בחני לא דורשים בדיקות יקרות, למזער את עלות לכל מדגם, וכאשר התחל מתוכננים באזורים שנשמרים, בחני כי הם ספציפיים ברחבי וירוס במקום ספציפי לווירוס אחד בלבד מינים אפשריים. כאן אנו מתארים את הפאן-lyssavirus ירוס SYBR בזמן אמת מזהה RT-PCR המזהה lyssavirus על פני סוג Lyssavirus , כולל וירוסים המפוצלים ביותר ikov, WCBV ו לואלין. בשילוב עם ניתוח עקומת הדיסוציאציה, הטיפול הזה הוא רגיש וספציפי, עם היתרון של זיהוי כל המינים lyssavirus. הבדיקה אומצה במעבדות אבחון רבות ובאיכות סביבה מובטחת, המאפשרת אבחנה איתנה, מהירה ורגישה של בעלי חיים ומקרי כלבת אנושיים.

זה בזמן אמת RT-PCR באמצעות הצבע הintercalating מתאים לאבחן זיהומים lyssavirus ירוס. השיטה מתחילה עם רנ א שחולצו מפני חשד כלבת לאחר המוות או דגימות שלאחר המוות, המפרט הכנה לערבב הורים, הוספת RNA, ההתקנה של מכונת בזמן אמת ופרשנות נכונה של תוצאות.

הפאן-lyssavirus בזמן אמת RT-PCR לאבחון כלבת

Molecular assays are rapid, sensitive and specific, and have become central to diagnosing rabies. PCR based assays have been utilized for decades to ...

RT-PCR זה בזמן אמת מתאים לאבחן במהירות כלבת בדגימות אנטה-נתיחה שלאחר המוות. פריימרים פאן-Lyssavirus כבר אופטימיזציה כדי לזהות את כל החברים בסוג Lyssavirus. זוהי בדיקה מהירה, רגישה וסגורה שמזהה וירוסים מכל רחבי סוג Lyssavirus כולל מינים שונים מאוד מדגימות קליניות.OIE קיבל לאחרונה בדיקות מולקולריות לדווח על זיהום בכלבת. זה חשוב במיוחד עבור דגימות מפורקות אשר לא תמיד יכול להיות מאובחנים על ידי תרבות וירוסים או שיטות גילוי אנטיגן. בשל הרגישות של ההסתערות הזו, תרגול מעבדה טוב כולל הפרדת השלבים השונים חיוני כדי למזער את הסיכון לזיהום.הדגימה של ההליך תהיה דייזי ג'נינגס, מאבחנית מהמעבדה שלי. התחל על ידי כימות RNA עם ספקטרופוטומטר מיקרו נפח. ודא שהמכונה מוגדרת ל- RNA ולהשתמש במיקרוליטר אחד עד שניים של מים מולקולריים כדי לנרמל את המכונה ולהקים בסיס.למדוד את ריכוז ה-RNA ולהתאים אותו למיקרוגרם אחד לכל מיקרוליטר. תכנן את הפריסה של לוח PCR באמצעות גיליון אלקטרוני שלוקח בחשבון הן דוגמאות בדיקה והן דוגמאות בקרה. הכן תחנת עבודה PCR על ידי חיטוי משטחים ואם באמצעות ארון UV, להפעיל את אור UV 10 דקות לפני תחילת.מוציאים את הריג'ים ואת פריימרים מהמקפיא כדי להפשיר אבל לשמור על תערובת האנזים על הקרח בכל עת. מערבבים את הרייבגנטים והצנטריפוגות לזמן קצר כדי לאסוף את הנוזל. הכינו את תערובות המאסטר של PCR עבור Lyssavirus ובטא-אקטין בהתאם לכיווני כתב היד.השאירו את האב מתערבב על קרח עד שהוא מוכן לשימוש. מערבבים וצנטריפוגים את ערבובי המאסטר המוכנים ומחלקים 19 מיקרוליטרים לתוך בארות הרלוונטיות של צלחת או רצועת צינור תואמת מכונת PCR. בחדר נפרד או ארון UV, הוסיפו בזהירות מיקרוליטר אחד של ה-RNA המוכן.אם אתם משתמשים ארון UV, להפעיל את אור UV 10 דקות לפני ההתחלה. לאחר דגימות הבדיקה, הוסף את הפקד החיובי ואת פקד ללא תבנית. בעת הוספת ה- RNA לערבובים הראשיים, ודא שהוא נוסף לגם הנכון.השתמש בתוכנית צלחת כדי לסייע לשלב זה. לאטום את הצלחת בודק כי המכסים שטוחים על פני הצלחת ולסובב אותו למטה כדי לאסוף את כל הנוזל בתחתית בארות. ודא שלכל באר יש את אותו נפח של נוזל ואף בועות אינן נראות לעין.לאחר מכן העבר את הדגימות למחשב PCR. פתח את התוכנית בחירת SYBR ירוק עם דיסוציאציה. בחר את בארות להיות מנותח בחירה לא ידועה כמו סוג המדגם SYBR כצבע פלואורסצנטי.סמן את הבארות בפריסת הלוח עם המידע לדוגמה, כולל אם ההבטחה היא עבור Lyssavirus L או Beta-Actin. לחץ על הגדרת פרופיל תרמו ולשנות את תנאי האופניים התרמיים כמפורט בכתב היד. לחץ על התחל ולאחר מכן בחר מיקום לשמירת הקובץ וסמן את התיבה כדי לכבות את המנורה בסוף ההפעלה.כאשר האפשרות להתחיל לפני חימום מנורה מופיע, לחץ על הפעל עכשיו אבל לוודא כי המנורה יש פחות מ 15 דקות כדי להתחמם. לאחר השלמת הפעלת ה- PCR, המשך בניתוח נתונים. ראשית, לנתח את עלילות הגברה Lyssavirus.דגימות חיוביות מציגות רמפות מעריכיות בעוד שלדגימות שליליות יש חלקות הגברה שטוחות ללא ערכי CT. לאחר מכן, לנתח את תוצאות עקומת דיסוציאציה Lyssavirus של דגימות הבדיקה לצד דגימות הבקרה. מדגם חיובי Lyssavirus יהיה טמפרטורת התכה בין 77 ל 80 מעלות צלזיוס וחופפים עם השליטה החיובית.לאחר מכן, נתח את עלילות ההגברה של Beta-Actin ואת עקומות הדיסוציאציה בהשוואה לפקדים כדי לפרש את התוצאה הכוללת. הצג את דוח הטקסט ולהשתמש בפרטים כדי לתעד את ערכי CT ו- TM שהושגו עבור RNA הפקד בכרטיס בקרה כדי לאשר כי הריצה הצליחה כי תוצאות מדגם הבדיקה ניתן לדווח. פרוטוקול זה משמש כדי להדגים את הרגישות של RT-PCR פאן-Lyssavirus על סדרת דילול RNA של וירוס תקן בקרה.עקומת ההגברה מצביעה על כך שניתן לזהות עד 10 פיקוגרמות של ליסווירוס ועקומות הדיסוציאציה מאמתות את טמפרטורת ההיתוך של המוצר. טמפרטורת ההיתוך משמשת כדי לאשר כי האמפליקון הוא ספציפי Lyssavirus. התוצאות כאן מדגימות טווח טמפרטורות נמס על פני סוג Lyssavirus של 77.34 עד 79.67 מעלות צלזיוס.ערכי טמפרטורה נמסים מתחת ל- 76.8 ומעלה 80.2 נחשבים לא ספציפיים. הרגישות של המדגמה RT-PCR זה נקבע גם על ידי גילוי RNA משלוש דגימות מוח חיוביות Lyssavirus. ניתן לזהות מעט כמו 0.1 פיקוגרמות למיקרוליטר של RNA היעד עבור שתיים מתוך שלוש דגימות.יש לציין, נציגים מכל מיני Lyssavirus מוכרים מזוהים באמצעות הבטחה זו. אם מנתחים תמציות RNA מדגימות קליניות כגון רוק או CSF, תוצאות בטא-אקטין עשויות להיות שליליות עקב מחסור בחומצות גרעין מארח. התוספת של פקד אקסוגני עשויה לפתור בעיה זו.רצף של דגימות חיוביות Lyssavirus מומלץ לספק מידע נוסף לגבי המקורות הגיאוגרפיים והמארח של זיהום כלבת. הטיפול בדגימות חיוביות או חשודות בדגימות חיוביות חייב להיות בהתאם להנחיות הבריאות והבטיחות המקומיות. ה- RNA שחולץ אינו מדבק, ולכן ניתן לטפל בו במעבדות בלימה נמוכות.

pan-lyssavirus-real-time-rt-pcr-for-rabies-diagnosis

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

אימונולוגיה וזיהומים

סרטון זה מדגים שיטה כמותית לזיהוי זיהום ויראלי באמצעות PCR שעתוק לאחור בזמן אמת. שלב השעתוק ההפוך ממיר את הרנ"א ל-cDNA, אשר לאחר מכן מוגבר באמצעות מחזורי PCR. נוכחותו של RNA ויראלי במדגם מאושרת על ידי ניתוח עקומות ההגברה והדיסוציאציה של ה- DNA המתקבל מה- PCR.

PCR כמותי בזמן אמת לאבחון זיהומים ויראליים

פרוטוקול זה מציג נוהל הפעלה מעבדה סטנדרטית עבור בדיקות אבחון של אנטיגנים lyssavirus ירוס בעטלפים בטייוואן.

נוהל הפעלה רגיל של מעקב וירוס של אוכלוסיית העטלף בטייוואן

פאן-lyssavirus וירוס שעתוק הפוכה התגובה שרשרת פותחה כדי לזהות במיוחד את כל lyssavirus ידוע. אימות באמצעות דגימות מוח של כלבת ממינים שונים של בעלי חיים הראו כי שיטה זו יש רגישות וספציפיות שוות ערך לבדיקת נוגדן הפלורסנט הסטנדרטית וניתן להשתמש בה לאבחון כלבת שגרתית.

הערכה של מקונן אוניברסלי הפוכה תגובת שרשרת פולימראז לאיתור של Lyssaviruses

אנו מציגים פרוטוקול מלאה לאבחון שלאחר המוות של כלבת בעלי חיים תחת תנאי שדה באמצעות מבחן חיסוני מהיר האבחון (RIDT), מן הבדיקה ביופסיה המוח לפרשנות הסופי. אנו גם לתאר יישומים נוספים באמצעות המכשיר לניתוח מולקולרי הגנוזות ויראלי.

שדה הנתיחה לאחר המוות חיסוני מהיר מבחן אבחון עבור הגדרות מוגבלות משאב עם יישומים מולקולריים נוספים

פרוטוקול זה מציג גישה מבוססת qRT-PCR לקביעת מספר עותק הגן נוקלאופרוטאין (N) של וירוס הכלבת בתוך מבנים אנטומיים שונים במוח שור באמצעות שעתוק במבחנה.

כמויות של וירוס כלבת במבני מוח שור שונים

כאן, אנו מציגים זרימת עבודה מהירה וחסכונית לאפיון גנומים של נגיף הכלבת (RABV) באמצעות טכנולוגיית ננו-נקבוביות. זרימת העבודה נועדה לתמוך במעקב מבוסס גנומיקה ברמה המקומית, לספק מידע על שושלות RABV מסתובבות ומיקומם בתוך פילוגניות אזוריות כדי להנחות אמצעים להדברת כלבת.

ריצוף גנום שלם לאפיון מהיר של נגיף הכלבת בטכנולוגיית ננופור

פרוטוקול זה מדגים את בדיקת תגובת שרשרת פולימראז (RT-PCR) בזמן אמת של pan-lyssavirus LN34 מאיסוף רקמות ועד לפירוש התוצאה, כולל עדכונים לרצפי פריימר ותכשירים לשיפור ביצועי הבדיקה עבור כמה נגיפי ליסה ולגומורפים שאינם כלבת. אנו גם מדגימים את מערך הבדיקה עבור פורמט LN34 מרובב (LN34M) בעל באר אחת.

אבחון לאחר המוות של כלבת בבעלי חיים על ידי מבחן תגובת שרשרת פולימראז LN34 המעודכן והמרובה בזמן אמת

Microglia תושב מקרופאגים הם המספקים את השורה הראשונה של מעקב ההגנה החיסונית של מערכת העצבים המרכזית. מיקרו RNA הם מולקולות רגולטוריות כי לשחק תפקיד חשוב בתהליכים פיזיולוגיים רבים, כולל הפעלת והבחנה של מקרופאגים. במאמר זה נתאר את שיטת המדידה של מיקרו RNA ב microglia.

זיהוי של מיקרו RNA ב microglia על ידי Real-time PCR ב CNS רגיל ובמהלך Neuroinflammation

אנו מתארים שיטת הדמיה לחיות תאים המספקת תובנה דינמיקת חלבון במהלך תהליך תא T ההפעלה. אנו מדגימים את השימוש בשילוב של הפצת assay תא T, מיקרוסקופיה confocal וניתוח הדמיה להניב תוצאות כמותיות לעקוב איתות היווצרות מורכבת לאורך כל הפעלת תא T.

הדמית חיה בזמן אמת של T-תא איתות גיבוש קומפלקס

פרוטוקול זה מתאר בדיקת qRT-PCR בעלת תפוקה גבוהה לניתוח חתימות ביטוי IFN מסוג I ו-III. הבדיקה מפלה הבדלים בזוגות בסיסים בודדים בין התעתיקים הדומים מאוד של גנים אלה. באמצעות הרכבת אצווה ופיפטינג רובוטי, הבדיקות עקביות וניתנות לשחזור.

תפוקה גבוהה בזמן אמת כמותי RT-PCR Assay לקביעת פרופילי ביטוי של סוגי I ו- III תת סוגי אינטרפרון

למד שיטת RT-PCR בזמן אמת לאבחון כלבת באמצעות גלאי Pan-Lyssavirus. פרוטוקול זה מאפשר זיהוי מהיר ורגיש של נגיפי Lyssavirus בדגימות קליניות לפני ואחרי המוות, כולל בדגימות מורכבות.

הפאן-lyssavirus בזמן אמת RT-PCR לאבחון כלבת

גלה סרטונים נוספים