7,149 Views
•
05:57 min
•
November 23, 2019
DOI:
פרוטוקול זה מאפשר התבוננות ישירה בשינויים פנוטיפיים שונים ברמה של תא יחיד ומאפשר ניטור מתמשך של לוקליזציה של חלבונים ותזמון ביטוי גנים. היתרון העיקרי של מיקרוסקופיה פלואורסצנטית הוא שזו שיטה פשוטה לניטור תהליכים ביולוגיים שונים, כגון חלוקת תאים ושינויים במורפולוגיה של תאים בתאים חיים. הקפד להקדיש תשומת לב מיוחדת לפרוטוקול ההכנה לדוגמה ולחקור את תוכנת המיקרוסקופ כדי שתוכל לאתר את ההגדרות והאפשרויות המפורטות בפרוטוקול זה.
ייצוג חזותי של פרוטוקול זה הוא קריטי מכיוון שהוא מאפשר למשתמשים לצפות וללמוד את השלבים המשמעותיים של הטכניקה בזמן שהם מגדירים ניסויים משלהם. התחל על ידי תיוג aliquot 5-50 מיקרוליטר של תרבות התא של עניין עם צבע ויטראז קרום מתאים והוספת חמישה microliters של תאי חיידקים ויטראז’ים על להחליק כיסוי על החלק התחתון של צלחת תרבות תחתונה זכוכית 35 מיליליטר. מניחים לוח אגרוז בקוטר 11 מ”מ מעל המדגם ומקש בעדינות כדי לוודא שהלוח שטוח כנגד החלקת המכסה.
לאחר מכן מוסיפים כחמישה מיקרוליטרים של מים סביב החלקת הכיסוי כדי למנוע את ייבוש כרית אגרוז ולאפשר צלחת התרבות כדי לצייד את הטמפרטורה בתוך תא הדגירה של מיקרוסקופ deconvolution ברזולוציה גבוהה במשך 15 עד 20 דקות. כדי לדמיין את הדגימה, השתמשו בכופת המיקוד של ההתאמה גסה כדי לוודא שהמטרה יורדת במלואה לפני אתחול המיקרוסקופ בתוכנת המיקרוסקופ. מניחים ירידה של 1.517 שמן מדד שבירה לתוך המטרה טבילת שמן 100x, ולהעביר את המנה התחתונה זכוכית המכילה את המדגם לתוך ארון המתכת דיור.
מחליקים בעדינות את המנה לתוך מהדק הבמה, ולהשתמש ידית התאמה גסה כדי להעלות את המטרה עד השמן יוצר קשר עם תחתית הזכוכית של המנה. השתמשו בעין ובמושת ההתאמה העדינה כדי להתמקד בדגימה, ולעבור למצב מצלמה. בתוכנת הדימות בחלון ‘פתור תלת-ממדי’, בחר בסמל ‘ניסוי עיצוב/הפעלה’.
תיבת דו-שיח חדשה תופיע בשם ניסוי עיצוב/הפעלה. פתח את הכרטיסיות עיצוב ומקטעים בתיבת הדו-שיח כדי להגדיר את מספר ערימות Z ואת עובי הדגימה. כדי למדוד את עובי התאים בדגימה, התאם בהדרגה את מישור ה- Z באמצעות החצים למעלה ולמטה בתיבת הדו-שיח פתרון תלת-מימד, והפוך את המקום שבו התאים יוצאים מחוץ לפוקוס כמגבלות העליונות והתחתונות עבור רכישת תמונה.
לאחר התאמת תיבת הדו-שיח ‘אחוזי שידור’ בעוצמת האור ומשך החשיפה לערוצים הבודדים שנבחרו בתיבת הדו-שיח ‘פתור תלת-שיח תלת-מימד’, לחצו על ‘רשימת נקודות’ לפתיחת רשימת הנקודות. בכרטיסיות עיצוב ושגות זמן, בחר בתיבת הסימון זמן לשגות והזן את הפרמטרים לשגות זמן. בחרו באפשרות הרשימה ‘נקודת ביקור’ והזינו את הנקודות להדמיה בתיבת המלל, המפרידות בין הנקודות באמצעות פסיקים או מקפים לרצפים שלמים.
לאחר מכן ערכו שמות קבצים ומיקומי קבצים בכרטיסיה ‘הפעלה’ ובחרו ‘הפעל’ בתיבת הדו-שיח ‘התחל ניסוי’ כדי להתחיל בניסוי. בסוף הניתוח, פתח את קבצי התמונה RAW המעניינים בתוכנית פירוק מתאימה ובחר בכרטיסיה תהליך וב- Deconvolve. בצעו כל חיסור ידני של רעשי רקע והתאמת ניגודיות בהירות בכל אחד מהערוצים באורך הגל או באורך הגל לפי הצורך לפני שמירת התמונה כקובץ TIFF.
לכימות אורך תא, פתח את קבצי התמונה המפותלים בתוכנה שסופקה על-ידי היצרן או בתוכנת דימות חופשית, כגון ImageJ, ופתח את הכרטיסיה כלי. לאחר מכן בחרו ‘מדידת מרחקים’ ולחצו שמאלה על נקודות ההתחלה והסיום בקובץ התמונה הרצוי למדידת אורך התא. לכמות אותות פלואורסצנטיים, בחר מפקח נתונים.
צייר תיבה כאשר האפשרות עמודה/שורה מוגדרת לממד העניין הספציפי ובחר את האזור עם האות לכמת. התוספת של קסילוז כדי לגרום GGS 8 זן תוצאות פנוטיפ שישה תאים. בעוד שפקדים וקטוריים ריקים נראים דומים לתאי בקרה הגדלים בהיעדר מעורר.
ייצור יתר של staph aureus GPSB משבש את חלוקת התאים ב- B.subtilis כפי שנמדד על ידי מיקרוסקופיה לשגות זמן וכמות אורך התא. בנוסף, דפוסי לוקליזציה של FtsZ או אחד החלבונים הקשורים חלבון זה ניתן להשתמש כתב ללמוד ו / או לזהות תרכובות מיקרוביאלית הרומן דרך זמן לשגות הדמיה וכימות אורך התא. הקפד להשתמש בשמן עם אינדקס השחזור המתאים גם כאשר מדד השחזור עשוי להשתנות בהתאם לטמפרטורה המשמשת להדמיה.
Deconvolution יכול להתבצע אם המשתמש רוצה להסיר רעש מחוץ לפוקוס, וניתוח נתונים מעורבים כימות אותות פלואורסצנטי ומדידות אורך ורוחב התא יכול להתבצע גם.
מאמר זה מספק מדריך צעד אחר צעד כדי לחקור את הדינמיקה לוקליזציה של חלבון subcellular ולנטר שינויים מורפולוגיים באמצעות מיקרוסקופ קרינה פלואורסצנטית ברזולוציה גבוהה ב subtilis מקרתגו ו סטיילוולוקוקוס.
07:40
Monitoring Spatial Segregation in Surface Colonizing Microbial Populations
Related Videos
11083 Views
07:31
Live Cell Imaging of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae using Automated Time-lapse Microscopy
Related Videos
42518 Views
13:28
Single-cell Analysis of Bacillus subtilis Biofilms Using Fluorescence Microscopy and Flow Cytometry
Related Videos
20515 Views
11:45
Fluorescence Live-cell Imaging of the Complete Vegetative Cell Cycle of the Slow-growing Social Bacterium Myxococcus xanthus
Related Videos
9582 Views
07:42
Using Fluorescent Proteins to Visualize and Quantitate Chlamydia Vacuole Growth Dynamics in Living Cells
Related Videos
7614 Views
11:26
Visualizing Single Molecular Complexes In Vivo Using Advanced Fluorescence Microscopy
Related Videos
9350 Views
06:52
Quantitative Live Cell Fluorescence-microscopy Analysis of Fission Yeast
Related Videos
20342 Views
08:33
Kinetic Visualization of Single-Cell Interspecies Bacterial Interactions
Related Videos
6959 Views
15:27
Internalization and Observation of Fluorescent Biomolecules in Living Microorganisms via Electroporation
Related Videos
16992 Views
07:28
Live Cell Fluorescence Microscopy to Observe Essential Processes During Microbial Cell Growth
Related Videos
15879 Views
Read Article
Cite this Article
Brzozowski, R. S., White, M. L., Eswara, P. J. Live-Cell Fluorescence Microscopy to Investigate Subcellular Protein Localization and Cell Morphology Changes in Bacteria. J. Vis. Exp. (153), e59905, doi:10.3791/59905 (2019).
Copy