Name: ב Vivo הידרוקסיל חלבון רדיקלי מדפיס הדפסה לחקר אינטראקציות חלבונים באלבוראבאבדיטיס האלאים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-04-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min
Description: חקור מיפוי אינטראקציות חלבונים ב-Caenorhabditis elegans באמצעות IV-FPOP וספקטרומטריית מסה. שיטה זו מאפשרת ניתוח מבני חלבונים בזמן אמת בתוך אורגניזם חי ללא בידוד חלבונים בודדים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכת על ידי סטארט-up כספים מאוניברסיטת מרילנד, בולטימור ו-NIH 1R01 GM 127595 הוענק ל-LMJ. המחברים מודים לד ר דניאל Deredge על עזרתו בעריכת כתב היד.

1. ס. אלאנים תחזוקה ותרבות
<ol><li>הגדל וסנכרן מושבות תולעים לזחלים הרביעי שלהם (L4) בעקבות הליכים מעבדתיים סטנדרטיים8.</li>
	<li>היום של הניסוי IV-FPOP, לשטוף תולעים L4 ממדשאות בקטריאלי (OP50 E. coli) עם M9 מאגר (0.02 M KH2PO4, 0.08 M Na2Hpo4, 0.08 m הנאל, 1 מ"מ mgso 4).4</li>
	<li>השג 500 μL של ~ 10,000 בדיקת תולעים לכל IV-FPOP לדוגמה.</li>
</ol>2. מערכת זרימה מיקרופלואידיג
<ol><li>הפעל את מערכת הזרימה הרכבה על ידי גזירה של 2 ס מ פיסת פרופילן אתילן מחולק (FEP) צינורות (1/16 בתוך. קוטר חיצוני (מנת יתר) x 0.020 ב. קוטר פנימי (זיהוי)).</li>
	<li>באמצעות המחט ניקוי נקי, להרחיב את הזהות של אבובים FEP כדי ליצור מכתש קטן בקצה אחד בלבד, ~ 50 mm אורך. המכתש צריך להיות גדול מספיק כדי להתאים 2 360 יקרומטר פיסות של סיליקה מותך. הערה: אין להרחיב את הקצה הנגדי מכיוון שקצה זה ישמש רק להתאמת נימי השקע.</li>
	<li>עם חותך קרמי, גזור 2 15 ס מ חתיכות של 250 יקרומטר לזהות התמזגו סיליקה. שתי היצירות הללו יהפכו לקווי הפיזור של מערכת הזרימה.</li>
	<li>באמצעות הדבקה עצמית, הקלטת את נימי הזיהוי של 2 250 יקרומטר יחד ומבטיחים שהם מקבילים זה לזה והקצוות שלהם הם 100%. הערה: כדי להבטיח את הקצוות סיליקה התמזגו לא נמחץ לאחר חיתוך, ו הם ישרים ו 100% הסמיק אחד נגד השני, מומלץ לבדוק אותם באמצעות זכוכית מגדלת או תחת מיקרוסקופ סטריאו.</li>
	<li>הכנס את שני נימים מודבק למכתש בעבודת יד של אבובים FEP. דחפו את הנימים עד לקצה של המכתש בעבודת יד. התראה: כדי לשמור על יעילות מערכת הזרימה, אל תדחף את הלוע מעבר למכתש עבודת-יד (איור 1a).</li>
	<li>מניחים נקודה קטנה של שרף אפוקסי על משטח נקי ומערבבים עם מחט מבתר.</li>
	<li>במהירות, באמצעות המחט זהה, מניחים טיפה קטנה של שרף בסוף נימים לפיזור שבו הם מתחברים עם אבובים FEP ולאפשר שרף להתייבש, תלוי לשקע-בצד למעלה, במשך כמה דקות (איור 1a).</li>
	<li>בעוד שרף מתייבש, קשירה צינורות fep ושני נימים יחד, לחתוך חדש 250 יקרומטר זיהוי נימי. הקפילר החדש יהפוך. לנימי הזרם של מערכת הזרימה ניתן לחשב את האורך הרצוי של הנימים באמצעות המשוואה הבאה: <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/60910/60910eq1.jpg"> כאשר אני אורך של נימי להיות חתוך בסנטימטרים, t הוא זמן התגובה הרצוי בדקות, f הוא שיעור הזרימה mL/min, ו-זיהוי הוא הקוטר הפנימי של נימי בסנטימטרים. הערה: לאחר חיתוך נימי השקע, בדוק את הקצוות המבטיחים שהם ישרים ולא מרוסקים.</li>
	<li>לאחר שרף יש מיובש, להכניס את נימי חדש דרך הקצה לשקע FEP צינור. החלק הפנימי של נימי שקע ושני נימי המים צריכים להיות מיושרים זה נגד זה בתוך אבובים FEP, זה יוצר את ערבוב T (איור 1b).</li>
	<li>אגד את נימי שקע ו FEP אבובים עם שרף אפוקסי טרי כפי שמתואר בשלבים 2.6 ו 2.7.</li>
	<li>הניחו לשרף היבש לאגד את מערכת הזרימה יחד. הגדר את מערכת הזרימה המיקרופלואידיג למחרת (איור 1c).</li>
</ol>3. מערכת זרימה מיקרופלואידיג בvivo FPOP
<ol><li>הכנס 4 משטירים מגנטיים בתוך 5 מזרק mL. מזרק זה הופך למזרק לדוגמה. הרימרים המגנטיים מונעים מהתולעים להתיישב בתוך המזרק במהלך IV-FPOP (איור 2A).</li>
	<li>מלא את שני 5 מ"ל מזרקים עם M9. ודא כי אין בועות אוויר בתוך כל מזרק כפי שהם יכולים להשפיע על קצב הזרימה ואת היעילות ערבוב.</li>
	<li>חבר מתאם Luer לכל מזרק 5 mL ומבטיח שהם צמודים ומאובטחים במקומם.</li>
	<li>. חברו כל מזרק לשסתום 3-2 אחד המזרק צריך להיות מוצמד ליציאה האמצעית של השסתום (איור 2B).</li>
	<li>Secure כל מזרק ל 5 מ ל למשאבת מזרק כפול ולהתאים את הצווארון לעצור מכני כדי למנוע את הלחץ על המזרק מבלוק דוחס. זכור את התוספת של השטירים המגנטיים בעת הגדרת הצווארון לעצור.</li>
	<li>לצרף כל הקצה נימי מערכת זרימת מיקרופלואידיג תוצרת בית לנמל העליון של כל שסתום 3-2 באמצעות אגוז ללא מוצא סופר, FEP שרוול, ו ferang, ללאהחלקה (איור 2B).</li>
	<li>ליציאה שנותרה פתוחה של שסתום 3-2 (הנמל התחתון), לצרף 10 ס מ 450 יקרומטר זיהוי נימי באמצעות אגוז ללא כמות סופר, שרוול fep, ו-סופר flangelessהחלקה (איור 2b). נימים אלה הופכים לנימים לדוגמה הנסוגים.</li>
	<li>הפעל את זרימת המשאבה ובדוק את כל החיבורים של מערכת הזרימה המיקרופלואידיג לדליפות חזותיות. זרימה לפחות שלושה אמצעי אחסון באמצעות קצב הזרימה הנסיוני. שיעור הזרימה הסופי תלוי בחלון הקרנה של לייזר, בתדר לייזר ובאמצעי אחסון שבריר של אפס-הכללה. הערה: עבור פרוטוקול זה, קצב הזרימה הסופי של 375.52 μl/min חושב מחלון הקרנה לייזר של 2.55 מ"מ, 250 יקרומטר זיהוי התמזגו סיליקה, אפס שבר הדרה, ו 50 תדירות Hz.<ol>
<li>נתיב הזרימה מסומן על-ידי החיצים בנקודת האחיזה לשסתום 3-2. כל מזרק יכול להיות ממולא ידנית על ידי הזזת ידית השסתום מהמיקום הגירוש לתנוחת הנסיגה. הערה: הדלפות על שסתום 3-2 יכול להיות קבוע על ידי התעסקות מחדש את האגוז חסר הנעל סופר או להחליף את כל החיבורים שסתומים (אגוז בלתי מסודר במיוחד, FEP שרוול, או שלטון סופר האור). הדלפות על ערבוב-T דורשים הרכבה של מערכת הזרימה microflu, מיקרופלואידיג (שלבים 2.1 עד 2.11).</li>
	</ol>
</li>
	<li>להעביר את מערכת הזרימה microflu, מיקרופלואידים לספסל ניסיוני ולאבטח את משקע החשמל לשלב מקרין באמצעות 360 יקרומטר מנת יתר פלדת אל-חלד (איור 2C, d).</li>
	<li>באמצעות מצית לטווח ארוך, לצרוב את הציפוי של סיליקה התמזגו בחלון הקרנה לייזר. נקו את הציפוי הצרוב בעזרת רקמה נטולת סיבים ומתנול. הערה: לסירוגין בין מחזורי שריפת ומחזורי ניקוי מתנול כדי למנוע חימום יתר את הנימי כמו חום עודף יכול להמיס ו/או לשבור את הנימים.</li>
	<li>מקמו את גוש הניצנים המגנטי מעל מזרק 5 מ ל המכיל את הרימרים המגנטיים. כוונן את המהירות והמיקום של בלוק הטירר המגנטי כך שהבלדרים המגנטיים בתוך 5 מזרק mL מסתובבים לאט ובהתמדה.</li>
</ol>4. ב vivo FPOP
<ol><li>הפעל את לייזר KrF excimer ולאפשר לתיראטרון להתחמם. התראה: הלייזר פולט קרינה גלויה ובלתי נראית ב248-גל ננומטר שיכול לפגוע בעיניים. יש לענוד את הגנת העין הנכונה לפני הפעלת הלייזר ופתיחת חלון יציאת הקרן.</li>
	<li>מדוד את אנרגיית הלייזר בתדר של 50 הרץ לפחות 100 פולסים על ידי הצבת החיישן האופטי בחלון יציאת הקרן. הערה: עבור פרוטוקול זה, חלון 2.55 מ"מ הקרנה בשימוש עם אנרגיית לייזר של 150 ± 2.32 mJ.</li>
	<li>השג approximatively 10,000 תולעים (500 μL) ולמשוך באופן ידני את המדגם לתוך המזרק לדוגמה.</li>
	<li>למלא את המזרק לדוגמה עם 2.5 mL של מאגר M9 עבור נפח המדגם הסופי של 3 מ ל. ודא כי לא מוצגים בועות אוויר לתוך המזרק לדוגמה.</li>
	<li>למלא את המזרק השני עם 3 מ מ של 200 mM H2O2, שוב להבטיח לא בועות אוויר מוצגים לתוך המזרק.</li>
	<li>בסופו של משקע outlet, מניחים צינור 15 מ ל חרוט עטוף ברדיד אלומיניום המכיל 6 מ מ של 40 מ"מ N'-Diמתילתיואוראה (DMTU), 40 מ"מ N-tert-בוטיל-α-פנילטין (PBN), ו 1% diמתיל סולפוקסיד כדי להרוות עודף H2O2, רדיקלים הידרוקסיל, ולעכב את מתיונין סולפוקסיד רדוקטאז פעילות, בהתאמה.</li>
	<li>הפעל את לייזר excimer מחלון התוכנה, לחכות הדופק הראשון, ולהתחיל את זרימת לדוגמה ממזרק כפול. הערה: יש להפעיל דגימות בכפילויות ביולוגיות בטריפליטים טכניים תחת 3 דוגמאות: הקרנה לייזר עם H2o2 (דוגמה),אין הקרנה לייזר עם h2o 2 וללא הקרנה לייזר לא H2o2 (שולטת), בהיקף של 9 דגימות לכל ערכה ביולוגית.</li>
	<li>לאסוף את המדגם כולו 15 מ"ל שפופרת, בעוד באופן פעיל ניטור זרימת לדוגמה עבור כל הדלפות חזותיים כמו בלחץ האחורי כמה מזרק לדוגמה יכול לפעמים לבנות.</li>
	<li>בעקבות IV-FPOP, גלולה תולעים על ידי צנטריפוגה ב 805 x g עבור 2 דקות. להסיר פתרון כיבוי, להוסיף 250 μl של מאגר הליזה (8 M אוריאה, 0.5% sds, 50 MM hepes, 50 מ"מ הנאל, 1 מ"מ edta, 1 מ"מ פנילמתיל פלופקסיל [PMSF]). העבר את הדגימה לשפופרת מיקרוצנטריפוגה נקיה, הקפא הבזק ואחסן בשעה-80 ° צ' עד לדגימת העיכול.</li>
</ol>5. הפקת חלבון, טיהור והפרוטפוליזיס
<ol><li>הפשרת דגימות קפואות על קרח והומוגון על ידי sonication עבור 10 s, ואחריו הדגירה של 60 s קרח. סיבובים מרובים של sonication עשויים להידרש, הומואכל ניתן לצפות תחת stereomicroscope על ידי הצבת 2 μl לדוגמה סדרת מחלקים בשקופית מיקרוסקופ. לדוגמה הומוגון מלאה כאשר לא נראים חתיכות קטנות של תולעים.</li>
	<li>צנטריפוגה הומוגניים תולעים ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° צ' ולאסוף את supernatant לתוך צינור מיקרוצנטריפוגה נקי.</li>
	<li>קביעת ריכוזי חלבון לדוגמה באמצעות שיטת החומצה הבינותית (שיטת BCA) באמצעות הוראות היצרן. הערה: ניתן לקבוע ריכוז לדוגמה בעזרת כל החלטה של ריכוז חלבון ביוכימיים. זכור תאימות מגיב עם מאגר הליזה (8 שתנן M, 0.5% SDS, 50 מ"מ HEPES, 50 mM הנאקל, 1 מ"מ EDTA, 1 מ"מ PMSF). בנוסף, ייתכן שיהיה צורך בדילול מאגר.</li>
	<li>השג 100 μg של חלבון מכל מדגם ומקום בצינורות מיקרוצנטריפוגה נקיים.</li>
	<li>הוסף dithiothreitol (DTT) לריכוז הסופי של 10 מ"מ כדי להפחית את איגרות החוב הדיסולניות בכל הדגימות. מערבולת, ספין למטה, ו הדגירה דגימות ב 50 ° c עבור 45 דקות.</li>
	<li>דגימות מגניבות לטמפרטורת החדר במשך 10 דקות.</li>
	<li>הוספת יודרחאמיד (רשות העתיקות) לריכוז סופי של 50 מ"מ כדי לקבל שאריות מופחתת באיחור. מערבולת, ספין למטה, ו הדגירה דגימות עבור 20 דקות בטמפרטורת החדר מוגן מפני אור.</li>
	<li>מיד לאחר האלקיללציה, מזרז את דגימת החלבון על-ידי הוספת 4 כרכים של 100% אצטון מקורר ו-דגירה ב-20 ° c בלילה.</li>
	<li>למחרת, החלבון גלולה מזרז על ידי צנטריפוגה ב 16,000 x g עבור 10 דקות לשטוף את הגלולה לדוגמה עם 90% אצטון, להסיר supernatant, ולאפשר גלולה יבש עבור 2 – 3 דקות.</li>
	<li>מחדש להשעות את כדור החלבון ב 25 מילימטר טריס-HCl (1 μg/μL). הוסיפו טריפסין בפרוטאז האחרון ליחס החלבונים של 1:50 (w/w) ולעכל דגימות ב 37 ° c למשך הלילה.</li>
	<li>ביום שלמחרת, כיבוי הטריפסין תגובת העיכול על ידי הוספת 5% חומצה פורמית. הערה: מינימום של 0.5 μg של פפטידים לכל מדגם נדרש עבור ניתוח LC-MS/MS (שלבים 6.1-6.5). קביעת ריכוזי פפטיד לדוגמה באמצעות שיטת הצביעה הכמותית (עיין בטבלת החומרים) כפי שמתואר בפרוטוקול היצרן.</li>
</ol>6. ביצועים גבוהים כרומטוגרפיה נוזלית-טנדם המסה (LC-MS/MS)
<ol><li>השתמש בשלבים הבאים של LC mobile: מים ב 0.1% הפא (A) ו-ACN ב-0.1% FA (ב).</li>
	<li>טעינת 0.5 μg של פפטידים על עמודת השמנה (180 יקרומטר × 20 מ"מ) המכיל סי18 (5 יקרומטר, 100 Å) ולשטוף את המדגם עם 99% ממס a ו-1% B עבור 15 דקות בשיעור 15 μl/דקות.</li>
	<li>פפטידים נפרדים באמצעות עמודה ארוזה בתוך הבית (0.075 מ"מ זיהוי × 20 מ"מ) עם סי18 השלב הפוכה חומר (5 μm, 125 Å).</li>
	<li>השתמש בשיטת ההפרדה האנליטית הבאה: מעבר הצבע נשאב ב-300 nL/min עבור 120 דקות: 0 כ 1 דקות, 3% B; 2-90 דקות, 10-45% B; 100-105 דקות, 100% B; 106-120 דק ', 3% ב</li>
	<li>לבצע רכישת נתונים של פפטידים במצב יון חיובי ננו-electrospray יינון (nesi) באמצעות ספקטרומטר מסה ברזולוציה גבוהה. הערה: עבור פרוטוקול זה, נעשה שימוש בכלי מכשיר LC ביצועים אולטרה-משתמשים לספקטרומטר מסה ברזולוציה גבוהה. נעשה שימוש ברכישה תלוית נתונים. טווח הסריקה m/z עבור MS1 היה 3750 – 1500 ב 60,000 רזולוציה ו-60 s הדרה דינמי. יוני בעלי מצבי חיוב של +1 ו-&gt; 6 לא נכללו. בקרת רווח אוטומטי (AGC) היעד של 5.5 e5 שימש עם זמן הזרקה מקסימלית של 50 ms ו סף עוצמה של 5.5 e4. יוני שנבחרו לMS2 היו חשופים לפיצול של דיסוציאציה באנרגיה גבוהה יותר (HCD) באמצעות 32% אנרגיית התנגשות מנורמלת. יוני קטעים זוהו בספקטרומטר ה15,000 וברזולוציה של 5.0 e4 AGC.</li>
</ol>7. ניתוח נתונים
<ol><li>חיפוש קבצי MS טנדם עם תוכנת ניתוח מלמטה למעלה פרוטאומניקס נגד מסד הנתונים C. אלגיה .</li>
	<li>הגדר את פרמטרי החיפוש של ניתוח החלבון כהמשך: טריפסין אחד החמיץ מחשוף, 375 – 1500 m/z פפטיד טווח המסה, השבר סובלנות המסה של 0.02, ו עמידות המונית הקודמן של 10 דפים לדקה. Carbamidomלציה מוגדר כשינוי סטטי וכולם יודעים שינוי קיצוני הידרוקסיל שרשרת צד9,10 כדינאמי. זיהוי פפטיד נוצר ב 95% ביטחון (בינוני) ושאריות ב 99% ביטחון (גבוה). קצב גילוי השקר (רוזוולט) מוגדר 1%.</li>
	<li>ייצוא נתונים למסד נתונים אלקטרוני ולסכם את היקף החמצון לכל פפטיד או שאריות באמצעות המשוואה מתחת11: <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/60910/60910eq2.jpg"> הערה: כאשר אזור EIC שונה הוא אזור כרומטוגרפי שחולצו (EIC) של פפטיד או שאריות עם שינוי חמצוני, ואזור EIC הוא האזור הכולל של פפטיד זהה או שאריות עם וללא שינוי חמצוני.</li>
</ol>

<ol><li>Hambly, D. M., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+flash+photolysis+of+hydrogen+peroxide+to+oxidize+protein+solvent-accessible+residues+on+the+microsecond+timescale%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Mass+Spectrom%22%5BJournal%5D)">Laser flash photolysis of hydrogen peroxide to oxidize protein solvent-accessible residues on the microsecond timescale.</a> J Am Soc Mass Spectrom. 16 (12), 2057-2063 (2005).</li>
<li>Jones, L. M., Sperry, J. A., Carroll, J., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+Photochemical+Oxidation+of+Proteins+for+Epitope+Mapping%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Fast Photochemical Oxidation of Proteins for Epitope Mapping.</a> Analytical Chemistry. 83 (20), 7657-7661 (2011).</li>
<li>Espino, J. A., Mali, V. S., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Cell+Footprinting+Coupled+with+Mass+Spectrometry+for+the+Structural+Analysis+of+Proteins+in+Live+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">In Cell Footprinting Coupled with Mass Spectrometry for the Structural Analysis of Proteins in Live Cells.</a> Analytical Chemistry. 87 (15), 7971-7978 (2015).</li>
<li>Espino, J. A., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Illuminating+Biological+Interactions+with+in+Vivo+Protein+Footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Illuminating Biological Interactions with in Vivo Protein Footprinting.</a> Analytical Chemistry. 91 (10), 6577-6584 (2019).</li>
<li>Huang, W., Ravikumar, K. M., Chance, M. R., Yang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+mapping+of+protein+structure+by+hydroxyl+radical+footprinting-mediated+structural+mass+spectrometry%3A+a+protection+factor+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Quantitative mapping of protein structure by hydroxyl radical footprinting-mediated structural mass spectrometry: a protection factor analysis.</a> Biophysical Journal. 108 (1), 107-115 (2015).</li>
<li>Keller, C. I., Calkins, J., Hartman, P. S., Rupert, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((UV+photobiology+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%3A+action+spectra%2C+absence+of+photoreactivation+and+effects+of+caffeine%5BTitle%5D)+AND+%22Photochemistry+and+Photobiology%22%5BJournal%5D)">UV photobiology of the nematode Caenorhabditis elegans: action spectra, absence of photoreactivation and effects of caffeine.</a> Photochemistry and Photobiology. 46 (4), 483-488 (1987).</li>
<li>Konermann, L., Collings, B. A., Douglas, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytochrome+c+Folding+Kinetics+Studied+by+Time-Resolved+Electrospray+Ionization+Mass+Spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Cytochrome c Folding Kinetics Studied by Time-Resolved Electrospray Ionization Mass Spectrometry.</a> Biochemistry. 36 (18), 5554-5559 (1997).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
<li>Xu, G., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical-mediated+modification+of+proteins+as+probes+for+structural+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Reviews%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical-mediated modification of proteins as probes for structural proteomics.</a> Chemical Reviews. 107 (8), 3514-3543 (2007).</li>
<li>Gau, B. C., Chen, H., Zhang, Y., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sulfate+radical+anion+as+a+new+reagent+for+fast+photochemical+oxidation+of+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Sulfate radical anion as a new reagent for fast photochemical oxidation of proteins.</a> Analytical Chemistry. 82 (18), 7821-7827 (2010).</li>
<li>Rinas, A., Espino, J. A., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+quantitation+strategy+for+hydroxyl+radical-mediated+protein+footprinting+using+Proteome+Discoverer%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+and+Bioanalytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">An efficient quantitation strategy for hydroxyl radical-mediated protein footprinting using Proteome Discoverer.</a> Analytical and Bioanalytical Chemistry. 408 (11), 3021-3031 (2016).</li>
<li>Wagner, B. A., Witmer, J. R., van't Erve, T. J., Buettner, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Assay+for+the+Rate+of+Removal+of+Extracellular+Hydrogen+Peroxide+by+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Redox+Biology%22%5BJournal%5D)">An Assay for the Rate of Removal of Extracellular Hydrogen Peroxide by Cells.</a> Redox Biology. 1 (1), 210-217 (2013).</li>
<li>Gazda, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myosin+chaperone+UNC-45+is+organized+in+tandem+modules+to+support+myofilament+formation+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The myosin chaperone UNC-45 is organized in tandem modules to support myofilament formation in C. elegans.</a> Cell. 152 (1-2), 183-195 (2013).</li>
<li>Willard, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VADAR%3A+a+web+server+for+quantitative+evaluation+of+protein+structure+quality%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">VADAR: a web server for quantitative evaluation of protein structure quality.</a> Nucleic Acids Research. 31 (13), 3316-3319 (2003).</li>
<li>Broussard, J. A., Green, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+Techniques+Made+Simple%3A+Methodology+and+of+F%C3%B6rster+Resonance+Energy+Transfer+%28FRET%29+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Dermatology%22%5BJournal%5D)">Research Techniques Made Simple: Methodology and of Förster Resonance Energy Transfer (FRET) Microscopy.</a> Journal of Investigative Dermatology. 137 (11), 185-191 (2017).</li>
<li>Kaur, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+Structural+Biology+through+the+Lens+of+Mass+Spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Evolution of Structural Biology through the Lens of Mass Spectrometry.</a> Analytical Chemistry. 91 (1), 142-155 (2019).</li>
<li>Pulak, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPulak%2C+R+%22C.+elegans%3A+Methods+and+Applications%22">C. elegans: Methods and Applications</a>. Strange, K. , Humana Press. 275-286 (2006).</li>
<li>Rinas, A., Jones, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+Photochemical+Oxidation+of+Proteins+Coupled+to+Multidimensional+Protein+Identification+Technology+%28MudPIT%29%3A+Expanding+Footprinting+Strategies+to+Complex+Systems%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+for+Mass+Spectrometry%22%5BJournal%5D)">Fast Photochemical Oxidation of Proteins Coupled to Multidimensional Protein Identification Technology (MudPIT): Expanding Footprinting Strategies to Complex Systems.</a> Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (4), 540-546 (2015).</li>
<li>Cheng, M., Zhang, B., Cui, W., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-Initiated+Radical+Trifluoromethylation+of+Peptides+and+Proteins%3A+Application+to+Mass-Spectrometry-Based+Protein+Footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition%22%5BJournal%5D)">Laser-Initiated Radical Trifluoromethylation of Peptides and Proteins: Application to Mass-Spectrometry-Based Protein Footprinting.</a> Angewandte Chemie International Edition. 56 (45), 14007-14010 (2017).</li>
</ol>

פרסום זה נכתב במימוש חלקי של התזה בדוקטורט של ג'אי. המחברים לא מצהירים. על ניגוד אינטרסים

בחינת ביצועים הנוכחי למחקר של vivo חלבון-חלבון אינטראקציות (PPI) הוא העברת אנרגיה בתהודה הקרינה הפלואורסצנטית (לדאוג). בצורתו הפשוטה ביותר, טכניקה זו מחקרים PPI על ידי העברת אנרגיה בין שתי מולקולות כאשר הם בסמיכות אחד לשני15. בניגוד לטכניקות MS, אין לפרט את הרזולוציה לאפיין את השינויים והאינטראקציה של התאמות ברמת חומצת האמינו. טכניקות מבוססות MS כבר שימוש יותר ויותר למחקר של PPI16. IV-FPOP היא שיטת HRPF המאפשרת בניתוח vivo חלבון מבניים בג . כדי לתייג בהצלחה את C. אלגיה על ידי IV-fpop, חשוב להרכיב כראוי את מערכת הזרימה microflu, כדי להפחית את ההפסד לדוגמה. הקפילר 250 יקרומטר הראו למקסם את ההתאוששות לדוגמה בהשוואה נימים זיהוי קטן יותר4. נימי זיהוי גדולים יותר לא נבדקו, עם זאת מערכת הזרימה microfluidic מיועדת באמצעות נימי עם זהות זהה כמערכת cy, מסחרית הזרימה הזמינה מערכת למיון של C. אלגיה. 17 התולעת גודל לדוגמה חשוב גם, גודל מדגם של פחות מ-~ 10,000 לכל מדגם לפני fpop אינו תשואה ריכוזי חלבון גבוה מספיק עבור ניתוח LC-MS/ms. ניתן להשתמש במידות דוגמאות גבוהות יותר (תולעים > 10000) גם על-ידי התאמת אמצעי האחסון ההתחלתי (שלב 4.5).
הרכבה נכונה של מערכת הזרימה המיקרופלואידיסי חשובה. דליפות במסלול המדגם תוצאה של זרימה לא עקבית של תולעים או H2O2. הכללים, שרוולים, ו 3-2 שסתומים ניתן להשתמש מידי ניסויים מרובים IV-FPOP אם ניקה כראוי לאחר כל ניסוי. עם זאת, אנו ממליצים להרכיב מערכת זרימה מיקרופלואידיג חדשה עבור כל שכפול ביולוגי. אם המיקרופלואידיקה מורכב כראוי, התולעים ו-H2O2 יהיה לערבב ב ערבוב-T עם לחץ הגב מינימלי. כמו בקרת איכות (QC) של מערכת הזרימה microflu, מומלץ לבדוק את היעילות ערבוב באמצעות צבעים צבעוניים. חשוב לנטר את התנועה של השטירים המגנטיים בתוך מזרק התולעת במהלך IV-FPOP, מדגם לא תקין ערבוב על מזרק תולעת או ערבוב-T יכול לגרום ללחץ בחזרה גרימת דליפות. בנוסף, תנאי ערבוב עניים להוביל הפסדים לדוגמה גדולה, חשיפה לייזר עניים של תולעים בחלון הלייזר, וסתימת.
ג. אלגיה היא חשובה כדי להקטין את חמצון הרקע. אנו ממליצים לגדל את התולעים בטמפרטורות נמוכות תחת תנאי לחץ נמוך כמו טמפרטורות גבוהות יכול להשפיע על חמצון הרקע הכולל. מערכת לדוגמה שליטה של תולעים בלבד, לא H2O2 ו לא הקרנה לייזר, מומלץ עבור כל הניסויים IV-fpop לחשבון על חמצון הרקע בשל תחזוקת מעבדה. אחת המגבלות הנוכחיות של טכניקה זו היא המספר הכולל של פפטידים מoxidatively ששונו והמספר הכולל של שאריות תחמוצת לכל פפטיד על מנת להשיג מידע מבני חלבון גבוה יותר. למרות שלא מומלץ, עלייה בשינויים חמצוני יכול להיות להשיג באמצעות ריכוזים גבוהים יותר של מי חמצן מימן. עלייה של חמצן מימן יכול לשנות באופן משמעותי מסלולים ביולוגיים חשובים, כמו גם להוביל חמצון המושרה התגלגלות. אם הריכוז מימן מי חמצן עבור IV-FPOP הוא גדל, מומלץ לבדוק את הכדאיות התולעת ואת חמצון הרקע כמו ריכוזים גבוה יותר מ 200 מ"מ לא נבדקו.
פרוטוקול LC-MS/MS המתואר יכול להיות אופטימיזציה ושונה כדי לפגוש את ה-QC MS של מעבדות אחרות. השימוש בטכניקות 2D-כרומטוגרפיה הוצגה בעבר כדי להגביר את הזיהוי של פפטידים oxidatively שונה וחלבונים18. ובכל זאת, טכניקות העשרה חלבונים המכוונות חלבון מסוים של עניין אינם ממליצים, כולל אך לא רק משקעים של נוגדנים או משיכה למטה. טכניקות אלה יכול להטיה לעבר חלבון אחד לשעבר אם האתר אפירופה/איגוד של החלבון כבר oxidatively שונה על ידי IV-FPOP. ההתפתחויות החדשות ב-footprinting דפסה ריאגנטים רדיקלי, כגון אנעל הרדיקלי סולפט10 או trifluoromethylation19 יכול להגדיל את רב-תכליתיות של IV-fpop. למרות רק תיוג מגיב רק בvivo עד כה הוא חמצן מימן, רדיקלים אחרים המופעל לייזר יכול להיות אופטימיזציה. השימוש ברדיקלים אחרים צריך להוכיח שהוא תואם לכדאיות של תולעת, חדירות תאים, ואת אורך הגל לייזר 248 ננומטר. בשל השימוש C. אלגיה כמערכת מודל עבור מחלות אנושיות רבות, IV-fpop יש את הפוטנציאל יש השפעה חזקה בלימוד התפקיד של מבנה החלבון בפתוגנזה המחלה.

הדפסת מעטפת חלבונים מצמידים לספקטרומטר מסה (MS) שימש בשנים האחרונות כדי ללמוד אינטראקציות חלבונים ושינויים בשינויים. הידרוקסיל חלבון רדיקלי מכונות הדפסה (HRPF) שיטות לבדוק את החלבון הממס הנגישות על ידי שינוי חלבון שרשראות חומצות אמינו צד. השיטה HRPF, מהיר חמצון פוטוכימיקלים של חלבונים (FPOP)1, כבר שימש לחקור מבנה חלבון בתוך מבחנה2, בתא (IC-fpop)3, ולאחרונה vivo (IV-fpop)4. Fpop מנצל 248 ננומטר לייזר הexcimer הלייזר על מנת ליצור במהירות רדיקלים הידרוקסיל על ידי פוטוליזה של תחמוצת המימן ליצור רדיקלים הידרוקסיל1. בתורו, רדיקלים אלה יכולים לתייג 19 מתוך 20 חומצות אמינו בסולם הזמן מיקרושניות, מהר יותר מאשר חלבונים יכולים להתפתח. למרות, הפעילות החוזרת של כל חומצת אמינו עם רדיקלים הידרוקסיל מרחיב 1000-קיפול, ניתן לנרמל חמצון שרשרת בצד על ידי חישוב גורם הגנה (PF)5.
מאז FPOP יכול לoxidatively לשנות חלבונים ללא קשר לגודל או הרצף העיקרי שלהם, זה מוכיח להיות יתרון עבור התא במחקרים vivo חלבון. IV-FPOP בוחן את מבנה החלבון בג, בדומה למחקרים בעלי מבחנה ובתא4. ג. אלאנים הם חלק ממשפחת הנמטודה ומשמשים רבות כמודל לחקר מחלות אנושיות. היכולת של התולעת לספיגה של תחמוצת המימן על ידי דיפוזיה פסיבי ופעיל מאפשר ללמוד מבנה החלבון במערכות גוף שונות. בנוסף, ג. אלגיה מתאימים IV-fpop בשל שקיפות שלהם ב 248 לייזר ננומטר באורך הגל הדרוש עבור fpop6. זיווג של שיטה זו לספקטרומטר מסה מאפשר זיהוי של חלבונים שהשתנו מרובים באמצעות גישות מסורתיות מלמטה למעלה.
בפרוטוקול זה נתאר כיצד לבצע את IV-FPOP לניתוח מבנה החלבון בג. הפרוטוקול הנסיוני דורש את ההרכבה וההגדרה של מערכת זרימה מיקרופלואידיג עבור IV-FPOP המותאם מקונרמן ואח '7. לאחר IV-FPOP, דגימות הם הומוגניים עבור חילוץ החלבון. דגימות חלבון הן פרוטפוליד ו פפטידים מנתחים על ידי כרומטוגרף נוזלי (LC) טנדם MS, ואחריו כימות.

<table><tbody><tr><td>צינורות צנטריפוגה חרוטיים 15 מ"ל</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>14-959-53A</td><td>כל מותג מספיק</td></tr><tr><td>5 מ"ל מזרק אטום לגז, נשלף Luer Lock</td><td>SGE מדע אנליטי</td><td>008760</td><td>מינימום</td></tr><tr><td>60 Sonic Dismembrator</td><td>Fisher Scientific</td><td>FM3279</td><td>פריט זה אינו זמין עוד. כל סוניקטור בנפח נמוך יספיק</td></tr><tr><td>אצטון, HPLC Grade</td><td>Fisher Scientific</td><td>A929-4</td><td>4 L כמות אינה הכרחית</td></tr><tr><td>אצטוניטריל עם 0.1% חומצה פורמית (v/v), LC/MS</td><td>Grade Fisher Scientific</td><td>LS120-500</td><td></td></tr><tr><td>ACQUITY UPLC M-CLASS Symmetry C18 Trap Column, 100&Aring;, 5 &micro; מ', 180 ומיקרו; m x 20 מ"מ, 2G, V/M, 1/PKG</td><td>מים</td><td>186007496</td><td></td></tr><tr><td>ACQUITY UPLC M-CLASS SYSTEM</td><td>Waters</td><td></td><td></td></tr><tr><td>רדיד אלומיניום</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-213-100</td><td>כל מותג מספיק</td></tr><tr><td>Aqua 5 &micro; m C18 125 וארינג; חומר אריזה</td><td>פנומנקס</td><td></td><td></td></tr><tr><td>צנטריפוגה</td><td>אפנדורף</td><td>022625501</td><td></td></tr><tr><td>מגבי משימות עדינים</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>06-666A</td><td></td></tr><tr><td>מחט ניתוח</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>50-822-525</td><td>יש צורך רק בזוג</td></tr><tr><td>Dithiothreiotol (DTT)</td> <td>AmericanBio</td><td>AB00490-00005</td><td></td></tr><tr><td>DMSO, נטול מים</td><td>Invitrogen</td><td>D12345</td><td></td></tr><tr><td>אפוקסי אינסטנט מיקס 5 דקות</td><td>לוקטיט</td><td>1365868</td><td></td></tr><tr><td>חומצה אתילנדיאמינטטראצטית (EDTA)</td> <td>Fisher Scientific</td><td>S311-100</td><td></td></tr><tr><td>EX350 לייזר אקסימר (אורך גל 248 ננומטר)</td> <td>GAM לייזר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FEP צינורות 1/16 אינץ' OD x 0.020 אינץ' מזהה</td><td>IDEX בריאות & Sciene</td><td>1548L</td><td></td></tr><tr><td>חומצה פורמית, LC/MS כיתה</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>A117-50</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>פישר מדעי</td><td>BP310-500</td><td></td></tr><tr><td>HV3-2 שסתום</td><td>המילטון</td><td>86728</td><td>2 מינימום</td></tr><tr><td>חומצה הידרוכלורית</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>A144S-500</td><td></td></tr><tr><td>מי חמצן</td><td>פישר מדעי</td><td>H325-100</td><td>כל 30% מי חמצן מספיק</td></tr><tr><td>יודואצטמיד (IAA)</td> <td>ACROS Organics</td><td>122270050</td><td></td></tr><tr><td>Legato 101 משאבת מזרק</td><td>KD Scientific</td><td>788101</td><td></td></tr><tr><td>Luer Adapter נקבה Luer ל 1/4-28 זכר פוליפרופילן</td><td>IDEX בריאות & Sciene</td><td>P-618L</td><td>2 מינימום</td></tr><tr><td>מגנזיום גופרתי</td><td>פישר מדעי</td><td>M65-500</td><td></td></tr><tr><td>מתנול, LC/MS כיתה</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>A454SK-4</td><td>4 ליטר כמות אינה נחוצה</td></tr><tr><td>מיקרוצנטריפוגה</td><td>תרמו סיינטיפיק</td><td>75002436</td><td></td></tr><tr><td>N,N &prime;-Dimethylthiourea (DMTU)</td><td>ACROS Organics</td><td>116891000</td><td></td></tr><tr><td>NanoTight שרוול ירוק 1/16 אינץ' מזהה x .0155 אינץ' מזהה x1.6 אינץ' IDEX</td> <td>בריאות & Sciene</td><td>F-242X</td><td></td></tr><tr><td>NanoTight שרוול צהוב 1/16 אינץ' OD x 0.027 אינץ' מזהה x 1.6 אינץ'</td> <td>IDEX בריאות & Sciene</td><td>F-246</td><td></td></tr><tr><td>N-tert-Butyl-&alpha;-phenylnitrone (PBN)</td> <td>ACROS Organics</td><td>177350250</td><td></td></tr><tr><td>OmniPur Phenylmethyl Sulfonyl Fluoride (PMSF)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>7110-OP</td><td>כל מעכב פרוטאז מספיק</td></tr><tr><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid Mass Spectrometer</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>מכשירים אחרים ברזולוציה גבוהה (למשל Q exactive Orbitrap או Orbitrap Fusion) ניתן להשתמש</td></tr><tr><td>במד אנרגיה פירואלקטרי PE50-C</td><td>אופיר אופטרוניקס</td><td>7Z02936</td><td></td></tr><tr><td>Pierce כמותי בדיקת פפטיד קולורימטרי</td><td>Thermo Scientific</td><td>23275</td><td></td></tr><tr><td>ערכת בדיקת חלבון BCA Pierce Rapid Gold BCA Thermo</td><td>Scientific</td><td>A53225</td><td></td></tr><tr><td>פירס טריפסין פרוטאז, MS</td><td>Grade Thermo Scientific</td><td>90058</td><td></td></tr><tr><td>אבן חיתוך פולימיקרו, 1 אינץ' x 1 אינץ' x 1/32 אינץ'</td><td>Molex</td><td>1068680064</td><td>כל חותך צינורות נימי מספיק</td></tr><tr><td>Polymicro גמיש צינורות נימי סיליקה התמזגים, קוטר פנימי 250 ומיקרו; m, קוטר חיצוני 350&micro; m, TSP250350</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150026</td><td></td></tr><tr><td>צינורות נימי סיליקה גמישים התמזגו Polymicro, קוטר פנימי 450&micro; m, קוטר חיצוני 670&micro; m, TSP450670</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150625</td><td></td></tr><tr><td>צינורות נימי סיליקה גמישים התמזגו Polymicro, קוטר פנימי 75&micro; m, קוטר חיצוני 375&micro; m, TSP075375</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150019</td><td></td></tr><tr><td>אשלגן פוספט מונובייסי</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>P382-500</td><td></td></tr><tr><td>Proteome Discover (תוכנת פרוטאומיקה מלמטה למעלה)</td> <td>Thermo Scientific</td><td>OPTON-30799</td><td></td></tr><tr><td>בוחש מגנטי סיבובי</td><td>V& פי סיינטיפיק בע"מ</td><td>VP 710D3</td><td></td></tr><tr><td>מערבל מגנטי סיבובי, ערכת אביזרים לשימוש עם משאבות מזרקים</td><td>V& פי סיינטיפיק בע"מ</td><td>VP 710D3-4</td><td></td></tr><tr><td>מספריים</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>50-111-1315</td><td>כל מספריים מספיקים</td></tr><tr><td>סרט תווית דביק</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>15937</td><td>גליל אחד מספיק</td></tr> צינורות <tr><td>צינור גמיש מיקרוצנטריפוגה פישר</td><td>סיינטיפיק</td><td>05-402</td><td>כל מותג מספיק</td></tr><tr><td>נתרן כלוריד</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>S271-500</td><td></td></tr><tr><td>נתרן דודציל סולפט (SDS)</td> <td>פישר סיינטיפיק</td><td>15-525-017</td><td></td></tr><tr><td>נתרן פוספט דו-בסיסי Heptahydrate</td><td>Fisher Scientific</td><td>S373-500</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ זום סטריאו</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>03-000-014</td><td>זכוכית מגדלת מספיקה</td></tr><tr><td>טבעת סופר אוגן ללא אוגן עם טבעת SST, טפזל (ETFE), 1/4-28 תחתית שטוחה, עבור 1/16 אינץ' OD</td><td>IDEX Health & Sciene</td><td>P-259X</td><td></td></tr><tr><td>אגוז סופר ללא אוגן PEEK 1/4-28 תחתית שטוחה, עבור 1/16 אינץ' ו-1/32 אינץ' OD</td><td>IDEX בריאות & Sciene</td><td>P-255X</td><td></td></tr><tr><td>דיסקי ערבוב סופר טמבל, קוטר 3.35 מ"מ, עובי V& 0.61 מ"מ</td><td> פי סיינטיפיק בע"מ</td><td>VP 722F</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP152-500</td><td></td></tr><tr><td>לוחית בסיס אוניברסלית, 2.5 אינץ' x 2.5 אינץ' x 3/8 אינץ'</td> <td>Thorlabs Inc.</td><td>UBP2</td><td></td></tr><tr><td>אוריאה</td><td>פישר מדעי</td><td>U5378</td><td></td></tr><tr><td>VHP MicroTight Union עבור 360 ומיקרו; m OD</td><td>IDEX בריאות & Sciene</td><td>UH-436</td><td>2 מינימום</td></tr><tr><td>מים עם 0.1% חומצה פורמית (v/v), LC/MS Grade</td><td>Fisher Scientific</td><td>LS118-500</td><td></td></tr><tr><td>מים, LC/MS</td><td>Grade Fisher Scientific</td><td>W6-4</td><td></td></tr></tbody></table>

ב vivo הידרוקסיל חלבון רדיקלי מדפיס הדפסה לחקר אינטראקציות חלבונים באלבוראבאבדיטיס האלאים

In Vivo Hydroxyl Radical Protein Footprinting for the Study of Protein Interactions in Caenorhabditis elegans

חמצון מהיר של חלבונים (FPOP) הוא מכבש הידרוקסיל חלבון רדיקלי (HRPF) שיטה המשמשת לחקר מבנה החלבון, ליגניות חלבונים, אינטראקציות חלבונים חלבון. Fpop מנצל לייזר krf excimer ב 248 ננומטר עבור פוטוליזה של מי חמצן כדי ליצור רדיקלים הידרוקסיל אשר בתורו oxidatively לשנות הממס נגיש שרשראות חומצות אמינו בצד. לאחרונה, הרחבנו את השימוש ב-FPOP של vivo חמצוני בתוך האלבורדיטיס (ג. אלגיה), זכאי IV-fpop. הנמטודות השקופים שימשו כמערכות מודל עבור מחלות אנושיות רבות. מחקרים מבניים ב- C. אלגיה על ידי IV-fpop הוא אפשרי בשל יכולתו של בעל החיים לספיגה מימן חמצן, שקיפות שלהם להקרנה לייזר ב 248 ננומטר, ואת הטבע הבלתי הפיך של השינוי. הרכבה של מערכת זרימה מיקרופלואידיג עבור הוספת תיוג IV-FPOP, הרביעי-FPOP פרמטרים, חילוץ חלבונים, ו-LC-MS/MS פרמטרים ממוטבים מתוארים להלן.

במערכת הזרימה המיקרופלואידיג המשמשת עבור IV-FPOP, H2O2 והתולעים נשמרות מופרדות עד לפני הקרנה לייזר. הפרדה זו מבטלת את התמוטטות של H2O2 על ידי מנגנונים אנדוגני ומנגנוני סלולר אחרים12. השימוש בקפילר 250 יקרומטר מראה שחזור מדגם כולל בין 63 ל-89% על-פני שני משכפל ביולוגי, בעוד שהקפילר מספר 150 יקרומטר מראה רק 21 – 31%התאוששות (איור 3a). השימוש של נימי זיהוי גדול יותר (250 μm) מוביל לזרימת תולעת טובה יותר במהלך IV-FPOP וזרימת התולעת היחידה (איור 3B) בהשוואה לקפילר קטן יותר (150 μm) (איור 3b). הקפילר 150 יקרומטר לא מאפשר זרימת תולעת אחת (איור 3c) ותולעים מרובות נראים לזרום יחד בחלון הלייזר לייזר אשר מפחית את כמות החשיפה לייזר לכל תולעת בודדת.
IV-FPOP היא טכניקת תיוג קוולנטי המגששים נגישות הממס בג. איור 4A מראה נציג מחולץ יון כרומאטוגרמות (eic) של fpop שונה ו פפטיד שאינו משתנה. התווית הרדיקלי הידרוקסיל משנה את הכימיה של פפטידים ששונו oxidatively, ובכך עושה FPOP שונה פפטידים יותר קוטבי. בשלב הפוך כרומטוגרפיה, IV-FPOP שונה פפטידים יש זמני שמירה מוקדם יותר מאשר פפטידים שעברו שינוי. הפיצול MS/MS של פפטידים מבודדים מאפשר זיהוי של שאריות oxidatively שונה (איור 4B).
IV-FPOP הראה oxidatively שונה סך של 545 חלבונים על פני שני משכפל ביולוגי בתוך C. אלגיה (איור 5א, ב). יתרון של IV-FPOP כמו חלבון שיטת הדפסה מסתמך על היכולת של הטכניקה לשנות חלבונים במגוון מערכות הגוף בתוך התולעים (איור 5C). שיטה זו תאפשר לחקור מבנה חלבונים ואינטראקציות חלבונים ללא קשר לרקמת גוף או איבר בתוך התולעת. יתר על כן, ניתוח MS טנדם מאשרת IV-FPOP בדיקות נגישות הממס ב vivo. תבנית החמצון של חלבון הלם חום 90 (Hsp90) מורכב עם המלווה רירן על חלבון UNC-45 נותח (איור 6). ניתוח MS/MS עבור Hsp90 מראה ארבעה משקעים oxidatively שונה (איור 6C, D), את היקף מנורמל של שינוי fpop (in (PF))5 מציין Hsp90's שאריות M698 להיות ממיס פחות נגיש מאשר שאריות R697, E699, ו E700 כאשר מאוגד ל-UNC-45 (איור 6c). הבדלים אלה בחמצון מאומתים לפי חישובי שטח השטח הנגיש לספרות (PDB 4I2Z13). לשאריות M698 יש ערך סאסא של 0.03 הנחשב לשאריות קבורות בהשוואה לשקעים R697, E699 וE700 עם ערכי סאסא גבוהים יותר (איור 6C). מיכל בן 14
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig1.jpg"> איור 1. ב-vivo FPOP מיקרופלואידיג מערכת זרימה סכימטי. (א) שני קווי הפיוזינג (כתום) של הרביעי-fpop מערכת זרימה מוצגים בתוך אבובים fep (צהוב), המיקום המחייב הנכון של שרף האפוקסי מיוצג על ידי המעגל הכחול האור. (ב) להשלים התאספו ערבוב-T נוצר על ידי נימי זיהוי יקרומטר 3 250. המיקום הנכון של הכריכה שרף של שקע הפורקן לצינורות FEP מיוצגת על ידי המעגל הכחול האור. (ג) מערכת הזרימה המלאה התאספו לתיוג vivo קוולנטי של הג. לפני FPOP, תולעים נשמרים מופרדים H2O2 עד רק לפני תיוג; חלון הקרנה של הלייזר מוצג בכחול בהיר וקרן הלייזר מיוצגת על ידי הברק הסגול. . המספרים לא מקשקשים איור זה השתנה מ-Espino et al.4. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig2.jpg"> איור 2. מערכת מיקרופלואידיג במהלך IV-FPOP. (א) תמונה מייצגת של ס. אלאנים בתוך מזרק 5 מ ל. ללא ערבוב, התולעים להתיישב בתחתית המזרק (משמאל). הנימרים המגנטיים ובלוק העור מחזיקים את התולעים ההשעיה במהלך ניסויי IV-FPOP (מימין). (ב) תמונה מייצגת של מזרק של 5 מ ל, החדרת נימי, ונסיגה קפילר המחוברים לשסתום 3-2. נקודת האחיזה לשסתום 3-2 מוצגת בתנוחת הנסיגה. (ג) מערכת זרימה מיקרופלואידיג במהלך IV-fpop, בלוק העור המגנטי הוא עמדה מעל מזרק ה-mL של התולעים. (ד) Outlet קפילר מאובטח לשלב המקרין. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig3.jpg"> . איור 3 השוואת שחזור של C. אלגיה באמצעות שני נימי זיהוי. (א) אחוז שחזור של תולעים לאחר IV-fpop עבור שני משכפל ביולוגי (BR) עם 250 (אפור) ו 150 (שחור) יקרומטר מזהה נימים. קווי שגיאה מחושבים מסטיית התקן בין הטריליטים הטכניים. ג. אלגים זורמים באמצעות חלון לייזר מקרין דרך מ250 יקרומטר (ב) ו 150 יקרומטר (C) זיהוי נימים. התולעים הדוקים יותר. בנימים הקטנים יותר הקפילר 150 יקרומטר מראה. הופעות של תולעים איור זה השתנה מ-Espino et al.4. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig4.jpg"> איור 4. התוצאות של הנציג LC-MS/MS בעקבות IV-FPOP. (א) eic של פפטיד fpop שונה (אדום) ולא שונתה (כחול). הפפטיד שנבחר שייך חלבון actin-1. (ב) MS/ms הספקטרום של טעונה כפליים לא שונו actin-1 פפטיד 317-327. (ג) ms/ms ספקטרום של fpop שונה כפליים actin-1 פפטיד 317-327, בדוגמה זו P323 היה oxidatively שונה (y5+ יון, אדום). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig5.jpg"> איור 5. IV-FPOP oxidatively משנה חלבונים בתוך ג ' אלגיה. (א) דיאגרמת חיתוך קבוצות של חלבונים oxidatively ששונו בנוכחות של חמצן 200 mM מימן ב 50 הרץ על פני שני משכפל ביולוגי (BR), BR1 הוא כחול BR2 הוא צהוב. (ב) דיאגרמת חיתוך קבוצות של חלבונים מoxidatively ששונו, המזוהים בדגימות שעברו הקרינה, בקרת מי חמצן, ושליטה בתולעת בלבד ב-BR2 על-פני טרילקטים טכניים. (ג) תרשים עוגה של חלבונים מoxidatively ששונו בתוך מערכות גוף C. אלגיה שונות. איור זה השתנה מ-Espino et al.4. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60910/60910fig6.jpg"> איור 6. לגבי שינויי הסדר של IV-FPOP לנגישות הממס. (א) רירן מלווה על חלבון UNC-45 (אפור) (מזההPDB 4I2Z13) הדגשת שני פפטידים ששונו המזוהים באמצעות ניתוח LC/ms/ms, 669-680 ו-698-706 (ירוק, שמאל שמאלי). UNC-45 מאוגד למקטע Hsp90 פפטיד (כחול). Oxidatively שינוי משקעים בתוך קטע זה מוצגים מקלות (אדום), ו-UNC-45 הוא מעובד כמשטח (שיבוץ הימני). (ב) טנדם MS ספקטרום של UNC-45 פפטיד 669-680 (למעלה) ו 698-706 (למטה) מראה B-ו-y-יונים עבור אובדן CO2, שינוי fpop. (ג) המחושב LN (PF) עבור שאריות Hsp90 oxidatively שהשתנו, R697, M698, E699 ו-E700. ערכי סאסא מחושבים עבור Hsp90 מסומנים מעל לכל שאריות. (ד) טנדם R697, M698, E699, ו E700 מציג + 16 fpop שינוי. איור זה השתנה מ-Espino et al.4. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60910/60910fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>

בשנת vivo מהיר חמצון פוטוכימי של חלבונים (IV-FPOP) הוא חלבון הידרוקסיל הקיצונית הטכניקה הדפסה המאפשרת מיפוי של מבנה החלבון בסביבתם הטבעית. פרוטוקול זה מתאר את ההרכבה וההגדרה של מערכת הזרימה של מיקרופלואידיג IV-FPOP.

ב Vivo הידרוקסיל חלבון רדיקלי מדפיס הדפסה לחקר אינטראקציות חלבונים באלבוראבאבדיטיס האלאים

Fast oxidation of proteins (FPOP) is a hydroxyl radical protein footprinting (HRPF) method used to study protein structure, protein-ligand interactions, ...

In vivo FPOP אינטראקציות חלבון-חלבון ושינויים במבנה החלבון ב- C-elegans. בעלי חיים אלה נמצאים בשימוש נרחב כמערכת מודל לחקר מחלות אנושיות. על ידי צימוד vivo FPOP לספקטרומטריית מסה, אנו יכולים לחקור אינטראקציות חלבון-חלבון בתוך תאים וגוף שונים בבעלי חיים חיים ללא צורך לבודד חלבון מסוים אחד.התחל את הרכבת מערכת הזרימה, על ידי חיתוך חתיכה של שני סנטימטרים של פרופילן אתילן פלואורי או צינורות FPP. השתמש מחט חיטוי נקי כדי להרחיב את הקוטר הפנימי בקצה אחד של הצינור, יצירת מכתש קטן על 15 מילימטרים אורך. כדי ליצור את הקווים החדורים של מערכת הזרימה, לחתוך לחתיכות 15 ס"מ של 250 מיקרומטר קוטר פנימי התמזגו סיליקה עם חותך קרמיקה.וקלטת שני נימים יחד עם סרט דבק עצמי, לוודא כי הקצוות הם 100% סמוקים. הכנס את שני נימים לתוך המכתש של צינורות FPP, דוחף אותם עד הקצה מאוד. מניחים נקודה קטנה של שרף אפוקסי על משטח נקי, ומערבבים אותו עם מחט ניתוח.השתמש באותה מחט כדי למקם במהירות טיפה קטנה של השף, בסוף נימים מחדירים, שם הם מתחברים עם צינורות FPP, לאפשר את השף לייבש בצד שקע עד כמה דקות. בינתיים, לחתוך נימי חדש 250 מיקרומטר בקוטר פנימי אשר יהפוך נימי שקע של מערכת הזרימה. לאחר שהסולן התייבש, הכנס את נימי החדש לקצה שקע צינור FPP.הקצוות הפנימיים של נימי האאוטלט ושני נימים מחדירים צריכים להיות סומקים אחד נגד השני, יצירת תה ערבוב. לאגד את צינורות נימי FPP עם שרף אפוקסי טרי כפי שתואר קודם לכן, ולאפשר למערכת הזרימה להתייבש בן לילה. הכנס ארבעה ערבוב מגנטי, בתוך מזרק אחד חמישה מיליליטר אשר ימנע תולעים להתיישב במזרק זה במהלך חמצון פוטוכימי מהיר vivo של חלבונים או ב vivo FPOP.מלאו את זה ומזרק נוסף של חמישה מיליליטר עם M9, ודאגו להימנע מיצירת בועות. חבר מתאם תחתון לכל מזרק, ודא שהוא צמוד לאצבע ומאובטח במקומו. לאחר מכן, חבר כל מזרק ליציאה האמצעית של שסתום יחיד של שלוש ושתיים.אבטחו כל מזרק למשאבת המזרק הכפולה, והתאיימו את הצבע המכאני כדי למנוע לחץ יתר מבלוק הדחיפה. השתמש ברשימת אוגן סופר לא שרוול FEP ומשתנה רשימת אוגן סופר לצרף כל קצה נימי מחדיר של המערכת microfluidic שנעשו בעבר ליציאה העליונה של כל שסתום שלוש ושתיים. לבסוף, לחבר נימי 10 ס"מ 450 מיקרומטר בקוטר פנימי ליציאה התחתונה של השסתום, אשר ישמש נימי מדגם נסוג.הפעל את זרימת המשאבה ובדוק באופן חזותי את כל החיבורים לדליפות. הזרם לפחות שלושה נפחי מזרק באמצעות קצב הזרימה הניסיוני. נתיב הזרימה מסומן על ידי החצים על ידית שסתום שלוש ושתיים, וכל מזרק ניתן למלא מחדש באופן ידני על ידי הזזת ידית השסתום מגירוש למצב נסיגה.לאחר בדיקת מערכת הזרימה המיקרופלואידית, העבר אותה לספסל הניסויים, ואבטח את נימי השקע לשלב המקרין עם איחוד נירוסטה. השתמש מצית ארוך להגיע לשרוף את הציפוי של סיליקה התמזגו בחלון הקרנה בלייזר ולנקות את הציפוי השרוף עם רקמת מוך מתנול. מקם את הבלוק המגנטי מעל המזרק עם המזרק המגנטי והתאם את המהירות, כך שהערבבים מסתובבים לאט ובהתמדה.הפעל את לייזר excimer פלואוריד קריפטון ולאפשר טרון בלוטת התריס להתחמם. למדוד את אנרגיית הלייזר בתדר של 50 הרץ לפחות 100 פולסים על ידי הצבת החיישן האופטי בחלון יציאת הקרן. משיכה ידנית של כ- 10,000 תולעים בנפח של 500 מיקרוליטר למזרק הדגימה.לאחר מכן מלאו אותו ב-2.5 מיליליטר של חיץ M9, ודאגו להימנע מבועות אוויר. חשוב שיהיה גודל מדגם של לפחות 10,000 תולעים. גודל מדגם קטן יותר יגרום לתפוקת חלבון נמוכה לניתוח פרוטאומי במורד הזרם.מלא את המזרק השני בשלושה מיליליטר של מי חמצן 200 מילימולרית. בסוף נימי האאוטלט, מניחים צינור חרוט 15 מיליליטר עם שישה מיליליטר של DMTU 40 מילימולרית, 40 מילימולאר PBN, ו 1% זמן תחמוצת ריק תפוחים. הפעל את לייזר excimer מחלון התוכנה, לחכות לפעימה הראשונה ולהתחיל את זרימת המדגם מן המזרק הכפול.לאסוף את המדגם כולו בצינור 15 מיליליטר, תוך ניטור פעיל של זרימת המדגם עבור כל דליפות חזותיות. לאחר in vivo FPOP, גלולה התולעים על ידי צנטריפוגה ב 805 פעמים g במשך שתי דקות. שאפו את פתרון ההתרוות והוסיפו 250 מיקרוליטרים של מאגר מורשה.מעבירים את הדגימה לצינור מיקרו צנטריפוגה נקי, מקפיאים אותו ומאחסנים ב-80 מעלות צלזיוס שליליות עד לעיכול הדגימה. התאוששות תולעת הושוותה לאחר FPOP vivo באמצעות נימים עם שני קטרים פנימיים שונים. כאשר נעשה שימוש בנימים בקוטר פנימי של 250 מיקרומטר, הושגה התאוששות מדגם כוללת בין 63% ל-89% על פני שני שכפולים ביולוגיים.שימוש נימי בקוטר פנימי 150 מיקרומטר הביא רק 21 עד 31% התאוששות. השימוש נימי בקוטר פנימי גדול יותר, מוביל לזרימת תולעת טובה יותר במהלך in vivo FPOP, נימי קטן אינו מאפשר זרימת תולעת אחת, ותולעים מרובות נראים זורמים יחד בחלון הקרנת הלייזר, אשר מקטין את כמות החשיפה לייזר לכל תולעת. נציג שחולץ כרומטוגרמות יונים של פפטיד FPOP שונה ללא שינוי הראה כי רדיקלי הידרוקסיל משנה את הכימיה של פפטידים ששונו באופן חמצוני מה שהופך אותם קוטביים יותר.ב כרומטוגרפיה של פאזה הפוכה, לפפטידים ששונו ב- vivo FPOP יש זמני שמירה מוקדמים יותר מאשר פפטידים שלא שונו. פיצול טרשת נפוצה של פפטידים מבודדים, מאפשר זיהוי של שאריות ששונו באופן חמצוני. In vivo FPOP שינתה באופן חמצוני סך של 545 חלבונים על פני שני שכפולים ביולוגיים בתוך C-elegans.אחד היתרונות של שיטת טביעת הרגל של החלבון, הוא היכולת לשנות חלבונים, במגוון מערכות גוף בתוך התולעים. ניתוח טנדם MS מאשר ב vivo FPOP בדיקה ממס נגישות ב vivo. דפוס החמצון של חלבון הלם החום 90 במתחם עם חלבון המלווה מיוסין UNC 45, נותחו וארבע שאריות ששונו באופן חמצוני, נמצאו.השימוש C-elegans עבור in vivo FPOP, מציע את הפוטנציאל ללמוד את התפקיד של אינטראקציות חלבון חלבון ומבנה חלבון בפתוגנזה המחלה.

in-vivo-hydroxyl-radical-protein-footprinting-for-study-protein

Research

JoVE Journal

Biochemistry

ביוכימיה

פרוטוקול זה מתאר כיצד חלבונים תמונה אינטראקציות באמצעות assay סריג מבוססי הקרבה.

הדמיה חלבונים אינטראקציות In vivo</em

פרופיל איזוטופים יציבים ידי ניתוח כרומטוגרפיה מסת הגז spectrometric של השטף מטבולית מתווך מתואר...

פרופיל איזוטופים יציבים של שטף מטבולית מתווך בשלב פיתוח למבוגרים Caenorhabditis elegans</em

כדי לחקור את הקשר בין הומאוסטזיס חלבון, מתח והזדקנות, עקבנו אחר שינויים בקיפול החלבון על ידי מעקב אחר תפקוד לקוי של חלבון, לוקליזציה של חלבון בתא ויציבות החלבון ברמת האורגניזם, התא והחלבון, תוך שימוש במטזואן Caenorhabditis elegans הניתן לטיפול גנטי כמערכת מודל.

שימוש ב-Caenorhabditis elegans כמערכת מודל לחקר הומאוסטזיס חלבון באורגניזם רב-תאי

כאן, אנו מציגים עבור בידודו של RNA DNA, חלבונים מדגם זהה, פרוטוקול, במאמץ להפחית את הווריאציה לשפר הפארמצבטית, להקל על פרשנויות.

משולב נוקלאוטיד שיחולץ חלבון ב Caenorhabditis elegans

כאן, אנו מאפיינים מבנה חלבונים ואינטראקציה אתרים בתאים חיים באמצעות חלבון הדפסה הטכניקה הנקראת-cell חמצון מהיר אטמוספרי של חלבונים (IC-fpop).

אפיון חלבונים סלולריים עם החמצון בתוך תא מהיר לפוטוכימיקלים של חלבונים

שיטה זו מתארת פרוטוקול להכנת תמצית חלבון בתפוקה גבוהה מדגימות אלגנים של Caenorhabditis ו- co-immunoprecipitation לאחר מכן.

הכנת תמצית חלבון ושיתוף חיסוני מאלגנים של קנורהאביטיס

חמצון פוטוכימי מהיר של חלבונים היא טכניקה מתפתחת לאפיון מבני של חלבונים. תוספי ממס שונים ליגנדים יש תכונות שונות הידרוקסיל רדיקלי ים. כדי להשוות את מבנה החלבון בתנאים שונים, פיצוי בזמן אמת של רדיקלים הידרוקסיל שנוצר בתגובה נדרש כדי לנרמל את תנאי התגובה.

מתן אפשרות לפיצוי בזמן אמת בחומציות פוטוכימיות מהירות של חלבונים לקביעת שינויים בטופוגרפיה של חלבונים

פרוטוקול זה מציג שיטה לשימוש בדוסימטריה רדיקלית מוטבעת ומקור אור פלזמה לביצוע טביעת רגל של חלבון חמצון פלאש. שיטה זו מחליפה את לייזר UV מסוכן כדי לפשט ולשפר את הרבייה של חמצון פוטוכימי מהיר של מחקרי חלבון.

טביעת רגל של חלבון הידרוקסיל רדיקלי ללא לייזר לביצוע ניתוח מבני מסדר גבוה יותר של חלבונים

כאן, שיטה מוצגת לניתוח של קינטיקה הצטברות חלבון נמטודה Caenorhabditis elegans. בעלי חיים מאוכלוסייה מסונכרנת גיל הם בתמונה בנקודות זמן שונות, ואחריו ספירת הכללה חצי אוטומטית CellProfiler והתאמה למודל מתמטי באמילופיט.

ניטור הצטברות חלבונים קינטיקה ב Vivo באמצעות ספירת הכללה אוטומטית ב Elegans Caenorhabditis

הפרוטוקול מציג שיטה להצמדה קוולנטית in vivo של ביוטין לחלבונים על סמך קרבתם לביוטין ליגאז המותך לחלבון מעניין. שינוי זה מאפשר העשרה סלקטיבית של החלבונים באמצעות חרוזי סטרפטווידין לפי הצורך במחקרי אינטראקציה עם חלבונים.

ב Vivo ביוטינילציה של קרבה למחקרי אינטראקציה בין חלבונים ב-Paramecium tetraurelia

כאן אנו מספקים הוראות לשימוש יעיל ב-SegElegans, מערכת למידה עמוקה שפיתחנו לפילוח אוטומטי של תולעים בודדות בתמונות מיקרוסקופיה רחבות, לשימוש מאוחר יותר בתוכנות ניתוח תמונות כגון ImageJ. אנו מספקים דרכים להשתמש במערכת הן באופן מקוון והן באופן לא מקוון.

ניתוח אוטומטי של תמונות פלואורסצנטיות של C. elegans באמצעות SegElegans

חקור מיפוי אינטראקציות חלבונים ב-Caenorhabditis elegans באמצעות IV-FPOP וספקטרומטריית מסה. שיטה זו מאפשרת ניתוח מבני חלבונים בזמן אמת בתוך אורגניזם חי ללא בידוד חלבונים בודדים.

ב Vivo הידרוקסיל חלבון רדיקלי מדפיס הדפסה לחקר אינטראקציות חלבונים באלבוראבאבדיטיס האלאים

גלה סרטונים נוספים