10 ביולי 2020
כאן, אנו מתארים פרוטוקול מפורט לשיטת ריצוף מבוססת LC-MS שיכולה לשמש כשיטה ישירה לרצף RNA קצר (<35 nt לריצה) ללא ביניים cDNA, וכשיטה כללית לרצף שינויים שונים בנוקלאוטידים במחקר יחיד בדיוק של בסיס יחיד.
פרוטוקול זה מכסה את כל השלבים החיוניים הדרושים בעת שימוש בשיטה החדשה שפותחה לריצוף ישיר של RNA, ללא קשר אם דגימת ה-RNA היא חד-גדילית, מעורבת או שונה. השיטה אינה מושפעת משגיאה אנזימטית או משלימות בסיסית. הוא מספק זרימת עבודה ישירה ופתרון כללי המאפשר לרצף שינויים שונים ב-RNA בו זמנית במקום שינוי ספציפי אחד בכל פעם.
ניתן לפתח טכנולוגיה זו לכלי אבחון לקביעת מקטעי RNA חתימה כדי לקשר אותו למחלות אנושיות וכלי מדויק לחקר שינויים ב-RNA ברמה האפיטרנסקריפטומית. השיטה אינה מסתמכת על שיטת ריצוף קודמת. במקום זאת, זוהי גישה חדשה לחלוטין, ואנו שואפים להגיע לשיטה המקובלת לריצוף כל RNA שונה.
חלקים מסוימים של פרוטוקול זה מכילים היבטים קריטיים שניתן להעביר בצורה מדויקת יותר על ידי הדגמה חזותית, כגון תיוג 3'end של רכישת נתוני RNA LC-MS וניתוח הנתונים על ידי תוכנת MassHunter. אני אדגים את ההליך הזה ואגדיר את ה-LC-MS ואמדוד את דגימות ה-RNA שלנו. כדי לבצע תגובת תיוג בשלב אחד, שלב 2 מיקרוליטר של 150 מיקרו-מולרי AppCp-biotin, 3 מיקרוליטר של מאגר תגובת ליגאז פי 10, 1.5 מיקרוליטר של 100 דגימת RNA מיקרו-מולרי, 3 מיקרוליטר של DMSO נטול מים, 10 יחידות של T4 RNA ligase ו-19.5 מיקרוליטר של מים שטופלו ב-DEPC לנפח כולל של 30 מיקרוליטר.
דגרו את התגובה למשך הלילה ב-16 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן בצעו טיהור עמודות בהתאם להוראות כתב היד. לאחר חלוקת ה-RNA לשלוש אליקוטות והוספת נפח שווה של חומצה פורמית, דגרו את התגובות ב-40 מעלות צלזיוס. לאחר סיום כל תגובה, הקפיאו מיד את הדגימה על קרח יבש כדי להרוות את פירוק החומצה.
השתמש ברכז ואקום צנטריפוגלי כדי לייבש את הדגימה למשך כ-30 דקות. השעו מחדש את הדגימות המיובשות ב -20 מיקרוליטר מים שטופלו ב- DEPC ושלבו אותן. אחסן את הדגימות ב-20 מעלות צלזיוס עד למדידת LC-MS.
העבר את דגימת ה-RNA לבקבוקון הדגימה LC-MS לאחר הכנת שלבים ניידים. כל זריקה צריכה להכיל 100 עד 400 פיקומולים של RNA ו-20 מיקרוליטר. לאחר רכישת הנתונים, השתמש בזרימת העבודה של חילוץ תכונות מולקולאריות כדי לחלץ מידע מורכב, כולל מסה, זמן שמירה, נפח וציון איכות.
השתמש בפורמט הנתונים המרכזי בהגדרות מולקולות קטנות. הגדר את גובה השיא ל- 100 לפחות, אך פחות מ- 1,000, ואת ציון האיכות ל- 50 לפחות. לבסוף, ייצא את הנתונים כקובץ Excel.
ההפרדה של סולם 3 מסולם 5 ושברים לא רצויים אחרים מוצגת כאן בתרשים זמן שימור מסה דו-ממדי. אפשר גם לרצף דגימות מעורבות המכילות שני גדילי RNA באורכים שונים עם תווית ביוטין של 5 'בכל RNA. כדי להבדיל בין אורידין לפסאודורידין, ה-RNA טופל ב-CMC, הממיר פסאודורידין ל-CMC-pseudouridine adduct.
לתוספת יש מסה שונה באורידין וניתן להבדיל אותה ב-2D-HELS MS Seq. פרופיל ה-HPLC של התוצר הגולמי של התגובה הממירה פסאודורידין ל-CMC-adduct שלו שימש לחישוב אחוז ההמרה, שהיה 42%תערובת של חמישה גדילי RNA שונים רוצפה על ידי גישת 2D-HELS MS Seq עם תיוג 3'end ונורמלה להדמיה טובה יותר של רצפי RNA מרובים. ללא הנורמליזציה, קודי האותיות לרצפים של חמשת הרנ"א היו מצטופפים יחד.
תוך כדי ניסיון הליך זה, הגדר את תגובת התיוג בזהירות כדי להשיג תפוקה גבוהה של דגימות RNA מסומנות. כמו כן, עקוב בקפידה אחר זמן ההשפלה כדי ליצור סולמות מסה אמינים ולאסוף את הכמות המרבית של דגימות מיובשות עם 20 מיקרוליטר מים. שאלה שניתן לשאול לאחר ביצוע פרוטוקול זה היא כיצד להגדיל את הרוחב, האורך והתפוקה של שיטת הרצף.
אלגוריתם טוב יותר ומכשיר מתקדם יותר עם רזולוציה ורגישות גבוהות יותר יכולים לעזור. לאחר פיתוח פרוטוקול זה, ניתן היה לרצף ישירות מגוון רחב יותר של דגימות RNA המכילות נוקלאוטידים קנוניים ומשתנים ללא כל שגיאה הקשורה לריצוף RNA מבוסס CDA.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג שיטה חדשנית לריצוף RNA קצר המבוססת על LC-MS, המבטלת את הצורך במתווך של cDNA. הפרוטוקול מאפשר ריצוף סימולטני של מודיפיקציות שונות של RNA בדיוק של בסיס בודד.
שיטה זו לריצוף RNA המבוססת על LC-MS מאפשרת ריצוף ישיר, de novo, של תערובות RNA שעברו מודיפיקציה ללא סינתזת cDNA, ובכך נותנת מענה לבקבוק מרכזי באישור של מטרות אפי-טרנסקריפטומיות. על ידי אספקת נתוני ריצוף כמותיים המבחינים בין מודיפיקציות, היא תומכת בגילוי מוקדם של ביומרקרים מבוססי RNA ובהפחתת סיכונים מכניסטיים של אוליגנוקלאוטידים טיפוליים. הגישה מגבירה את הביטחון החזוי בזיהוי מובילים (leads) על ידי אספקת תוצרי ריצוף מאושרים וספציפיים למודיפיקציה, הישימים ישירות לתהליכי סריקה ופיתוח בדיקות.
השיטה משתלבת בתהליכי גילוי מוקדמים ככלי רצף מקדימה עבור ניתוח RNA מונחה-היפותזה, ותורמת לזיהוי מובילים על ידי אישור הרצף ומצב המודיפיקציה של מטרות RNA סינתטיות או אנדוגניות לפני סריקה תפקודית.