Name: הדמיה ניוון סינפטי ב דרוזופילה למבוגרים בשיתוף עם ניוון עצבי (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-13T14:45:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: חקור הדמיה של ניוון סינפטי בדרוזופילה למבוגרים לחקר מחלות ניווניות עצביות כמו ALS ופרקינסון. השיטה מאפשרת הערכת שלמות מפרקים נוירומוסקולריים בשריר ה-DLM לאורך זמן.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות (R01 NS110727) ל-D.T.B.

1. דור זבובים טרנסגנים
<ol><li>כדי ליצור זבובים טרנסגניים לניסוי זה, לאסוף OK371-Gal425 זבובים נקבה בתולה וזכרים של UAS-TDP-43M337V 26 (איור 1A) על ידי זבוביםמסטימים עם CO 2 על משטח למיין.</li>
	<li>מיין זבובים מרדים לתוך בקבוקונים עם מדיה Drosophila סטנדרטית עבור הצלב. מקום בקבוקונים עם תווית ב 25 °C עבור הדור הבא להגיח. הערה: נקה את המבוגרים מהקלעונים לפני שהצולה תצא כדי להבטיח את הגנוטיפ הנכון.</li>
	<li>ברגע שצאים מגיחים, אספו את הזבובים הטרנסגניים לתוך בקבוקונים ומיין לפי מין כדי להתחיל להזדקן לתנאים ניסיוניים.</li>
	<li>לאחר איסוף הזבובים, מעבירים זבובים למזון טרי כל יומיים עד שהזבובים בני 21 ימים.</li>
</ol>2. הכנה לפירוק
<ol><li>כדי להתכונן לנתחים, להשיג תמיסת מלח פוספט בטמפרטורת החדר (1 x PBS), צלחת 10 ס"מ מצופה אלסטומר סיליקון, קצוות ישרים לנתח מספריים, קבוצה אחת של מפסים קהים, P200 פיפטה וטיפים פיפטה, 2.0 מ"ל צינורות microcentrifuge, מספריים משרדיים סטנדרטיים, 70% אתנול, צלחת פטרי 6 ס"מ, ו 32% פורמלדהיד מדולל 4% עם PBS 1x.</li>
	<li>צינורות תווית עבור כל גנוטיפ או מצב ולהוסיף 900 μL של 1x PBS (חדר זמני) ו 150 μL של 32% פורמלדהיד לכל שפופרת. ללבוש כפפות ומשקפיים בטיחות בעת הכנת 4% פורמלדהיד קיבעון.</li>
	<li>מבריש 6\u201210 זבובים לכל קבוצה ישירות מהמבעון עם CO2 ולשקוע זבובים לתוך צלחת פטרי 6 ס"מ עם 70% אתנול. לחץ עף למטה לתוך האתנול באמצעות מברשת צבע כדי להבטיח כי דגימות שקועות לחלוטין. זה יסיר את שכבת השמן על העורון החיצוני.</li>
</ol>3. בידוד בית החזה וקביבעון
<ol><li>לפני לנתח כל דגימה, להוסיף כ 7\u201210 מ"ל של 1x PBS לצלחת הניתוח מצופה אלסטומר סיליקון. אמצעי אחסון זה אמור להבטיח כי דגימות הרקמה שקועות לחלוטין.</li>
	<li>מעבירים זבוב אחד לצלחת החתכים מ-70% אתנול באמצעות ממחלצות קהות ואוחזים בכנפיים או ברגליים.</li>
	<li>למקד את הדגימה בצלחת הקטע תחת מיקרוסקופ לנתח. לאחר מכן לשקוע הדגימה 1x PBS, בזהירות להסיר את הכנפיים באמצעות דומונט בוטה #5 משקולות עדינות.</li>
	<li>באמצעות Vannas קצה ישר חיתוך האביב מספריים, להסיר את הרגליים על ידי יצירת חתך קטן בצד הגיאנל של צינור. בשלב 3.8, חתך זה יאפשר לפורמלדהיד לחדור את הרקמה.</li>
	<li>קח את המספריים ביד אחת והחזק את המקרנים ביד השנייה כדי למקם את הצד הפתחי של הזבוב למעלה. תוך החזקת הדגימה במקום עם הממחצות הקהות, הסר את הראש והבטן עם המספריים.</li>
	<li>העבר את בית החזה המבודד באמצעות קצה פיפטה ששונה לתוך הצינור המסומן, ממדרגה 3.2. הערה: הגדר את הפיפטה ל- 40 μL כדי להימנע מהוספת PBS 1x נוסף ל- fixative.</li>
	<li>חזור על שלבים 3.2\u20123.6 לעיל עבור כל דגימה.</li>
	<li>תקן דגימות במשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>הסר את התיקון באמצעות פיפטת פסטר וזרוק אותו במיכל הפסולת המתאים מתחת למכסה האדים. לשטוף דגימות שלוש פעמים עם 1.5 מ"ל של 1x PBS כל באמצעות פיפטה פסטר. להשלים שטיפה רביעית באמצעות רק 750 μL ולהשאיר טישו 1x PBS. הערה: בשלב זה, דגימות רקמה יכולות להישאר ב- 4 °C עד 3 ימים לפני שתמשיך לשלבים הבאים.</li>
</ol>4. הקפאת הבזק וריסטורי בית החזה
<ol><li>לפני תחילת הקטעים, מלאו בקבוקון Dewar בחנקן נוזלי עם כפפות מגן הקפאה מתאימות ומשקפיים בטיחותיים. להשיג מפסק להב, להבי נוצות, זוג אחד של מפסים עדינים, קרח, קר כקרח 1x PBS, פינצטה cryogenic.</li>
	<li>הכינו דלי קרח כדי לשמור על 1 pBS קר כקרח.</li>
	<li>השתמש במפסק הלהב כדי לתפוס את להב הנוצה בזווית, ולכופף את הלהב כדי לשבור חתיכה קטנה. מפסק הלהב יכול לנעול את הלהב בעמדה לשימוש כאזמל קטן. הערה: להב אחד אמור להימשך עבור כל הקבוצות. החלף אם להב נשבר או הופך למשעמם.</li>
	<li>הוסף קצה פיפטה נקי P200 ולהסיר 1/5th של הקצה כדי להעביר דגימות.</li>
	<li>להכין צינור microcentrifuge חדש עבור כל קבוצה ולהוסיף 200 μL של 1x PBS לכל שפופרת. הצינור השני הזה ישמש לאיסוף ההכנות הסופיות של DLM.</li>
	<li>הסר את כל 1x PBS מצינורות באמצעות פיפטה פסטר.</li>
	<li>לובש ציוד מגן נכון, לשקוע הצינור לתוך בקבוקון חנקן נוזלי עבור 10 s עם פינצטה cryogenic. הערה: הצינורות צריכים להיות סגורים בחוזקה כדי למנוע את הצינור מתפוצץ.</li>
	<li>הסר את הצינור מהחנקן הנוזלי ולהוסיף כ 300 μL של כקרח קר 1x PBS לדגימות עם פיפטה פסטר. שמור את הדגימות על קרח.</li>
	<li>הוסף PBS 1x קר כקרח לצלחת 10 ס"מ פירוק מצופה אלסטומר סיליקון ולחלק את בית החזה הראשון עם 200 μL pipette שונה.</li>
	<li>מקם את צד החזה למעלה. ביד אחת להשתמש זוג משעמם של מלקות כדי למקם את בית החזה וביד השנייה להשתמש זוג מלקות בסדר כדי להסיר חלק גנגוליון בית החזה כדי לחשוף את קו האמצע של בית החזה.</li>
	<li>השתמש בקו האמצע של בית החזה כמדריך כדי לבצע חתך רדוד דרך 1/3rd של בית החזה עם הלהב.</li>
	<li>הסר את הלהב מבית החזה ומקם את בית החזה בזווית של 45 מעלות עם המנוריים הקהים. הכנס מחדש את הלהב וחתוך ישר את קו האמצע של בית החזה. זה יגרום לשני המיטוראס.</li>
	<li>קח המיטוהורקס אחד בכל פעם ולהסיר את הרקמה העודפת תחת סיבי שריר DLM F(איור 1B),הסיבים האווריריים ביותר. השתמש בלהב כדי לבצע בזהירות חתכ אחד או שניים כדי להסיר את הרקמה העודפת מבלי לפגוע ב- DLMs.</li>
	<li>לאחר בידוד, להעביר את המיטוהרקס לצינור הנכון עם PBS 1x.</li>
	<li>חזור על שלבים 4.6\u20124.14 עד 10 hemithoraces לנתח לכל קבוצה נעשות.</li>
</ol>5. כתמים מבניים
<ol><li>לאחר תוחם את דגימות בית החזה, מקם את הרקמה במאגר חסימה (PBS אחד עם סרום עזים רגיל של 0.1% ו-0.2% Triton X-100 ב-pH 7.4) כדי לחלחל לרקמה ולמנוע כתמים לא ספציפיים. השתמש בפיפטה פסטר כדי להסיר עודף 1x PBS ולהוסיף 1.5 מ"ל של מאגר חסימה לכל שפופרת. לחסום טישו לפחות 1 שעה ב 4 ° C.</li>
	<li>להכין את הדגימות עבור כתמים מבניים באמצעות נוגדן פלואורסצנטית, חזרת peroxidase 488 (אנטי HRP-488) תוך דילול של 1:200 ו Phalloidin-647 תוך דילול של 1:1000 בחסימת מאגר כדי להכתים נוירונים מוטוריים ורקמות שריר, בהתאמה. לעשות מספיק כתם יש 150 μL לכל שפופרת. לאחסן את הכתם ב 4 מעלות צלזיוס מכוסה בנייר כסף או בקופסה כהה עד מוכן לכתמים.</li>
	<li>לאחר החסימה, הסר את מאגר החסימה העודף עם פיפטת פסטר זכוכית.</li>
	<li>לפני חלוקת הכתם המבני, מערבולת הכתם. להוסיף 150 μL של הכתם לכל שפופרת. מניחים את הדגימות בקופסה כהה על המסובב בטמפרטורת החדר למשך 2 שעות.</li>
	<li>הסר את הכתם ולשטוף את הרקמות ארבע פעמים ב 1.5 מ"ל של חדר temp 1x PBS עם 0.3% Triton X-100 במשך 5 דקות על המסובב בקופסה כהה. הדגימות מוכנות כעת להטענה לשקופית.</li>
</ol>6. רקמת הרכבה
<ol><li>לאחר שטיפת דגימות PBST, להכין שקופית מיקרוסקופ כדי הר רקמה לכתמים. הכן אספקה נוספת כולל תלושי כיסוי זכוכית, פיפטה P200, 200 μL פיפטה טיפים, מספריים, תגבורת ברורה, מלקות קצה ישר, אנטי עמעום פלורסנט הרכבה מדיה, לק, ותיבה כהה כדי לכסות את השקופיות.</li>
	<li>תייג את השקופית כדי לזהות את הדגימות ולנקות את השקופית באמצעות קימוויפ כדי לוודא שאין כתמים.</li>
	<li>כדי להבטיח שדגימות ההמיטהורקס לא יינזקו על-ידי תעודת הכיסוי, בנה "גשר" באמצעות תוויות חיזוק. לוקחים תווית חיזוק אחת, חותכים אותה לשניים, ומלמקם כל חצי כ-15 מ"מ זה מזה. מרחק זה חייב להיות קטן יותר מרוחב תעודת הכיסוי. חזור על שלב זה ארבע פעמים כדי להשלים "גשר" בגובה 5 תוויות.</li>
	<li>קח את הפיפטה P200 ולשנות עצה על ידי חיתוך1/5 th של הקצה כדי להעביר את הדגימות לשקופית. יש להעביר דגימות אל המגלשה במרכז הגשר.</li>
	<li>קח את הקצה של מחיקת מעבדה ולהסיר כל PBST עודף. באמצעות מקציות, לסדר את DLMs כך שכל הדגימות פונים לצד השריר כלפי מטה וצד הציוף כלפי מטה.</li>
	<li>באמצעות קצה פיפטה P200 רגיל, להחיל 70 μL של מדיה הרכבה על השקופית, הימנעות בועות אוויר. לחלק את התקשורת בתבנית מעגלית בתוך התגבורת החל מבחוץ למרכז.</li>
	<li>מניחים תלוש כיסוי מעל התגבורת.</li>
	<li>השתמש לק לציפוי הקצוות החיצוניים סביב ההיקף של כיסוי. למרוח בנדיבות כדי ליצור חותם מלא של הרקמה.</li>
	<li>מניחים את המגלשה על משטח שטוח בחושך, ומאפשרים לפחות 10 דקות לייבש ולמנוע הלבנת תמונות או אובדן פלואורסץ. כעת ניתן להשתמש בשקופית להדמיה מיידית, או לאחסן בדרך אחרת בתיקיית שקופיות ב- -20 °C לתצוגה מאוחרת יותר.</li>
</ol>7. חלופה: הכתמה עם נוגדנים ראשוניים
הערה: סעיף זה הוא אופציונלי ויש להשתמש בו ישירות בין סעיפים 4 ו- 5 אם תרצה.
<ol><li>כדי להכתים רקמה עם נוגדנים ראשוניים, לשקוע רקמת חיץ חסימה לפחות 1 שעות.</li>
	<li>הכן נוגדן ראשי עם דילול נכון בחסימת מאגר. לכל הפחות, להכין מספיק תערובת נוגדנים יש 150 μL לכל קבוצה. שים לב שהדגימות לא נשמרות. יש לאחסן ב-4°C עד להכנה לשימוש.</li>
	<li>הסר מאגר חסימה עודף באמצעות פיפטה פסטר. מערבולת קצרה הנוגדן הראשי ולהוסיף 150 μL של תערובת נוגדנים לכל קבוצה ולמקם דגימות ב 4 מעלות C לילה.</li>
	<li>ביום שלמחרת, להסיר נוגדן ראשי ולשטוף רקמת 4 פעמים עם PBST במשך 5 דקות כל אחד על סיבוב.</li>
	<li>הכן כתמים משניים במאגר חסימה. הוסף את הכתם המשני לדגימה ולאחר מכן לשמור אותו טמפרטורת חדר במשך 2 שעות בתיבה כהה על המסובב. הערה: הכתמים המשניים יכולים לכלול גם HRP ופאלואידין.</li>
	<li>לאחר הדגירה 2 שעות, כדי להסיר את רקמת לשטוף כתמים משני 4 פעמים במשך 5 דקות עם PBST ולהמשיך הרכבה.</li>
</ol>

<ol><li>Casas, C., Manzano, R., Vaz, R., Osta, R., Brites, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+failure%3A+focus+in+an+integrative+view+of+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Plasticity%22%5BJournal%5D)">Synaptic failure: focus in an integrative view of ALS.</a> Brain Plasticity. 1, 159-175 (2016).</li>
<li>Lodato, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+and+neurodegeneration+are+associated+with+increased+mutations+in+single+human+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Aging and neurodegeneration are associated with increased mutations in single human neurons.</a> Science. 359, 555-559 (2018).</li>
<li>López-Erauskin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ALS%2FFTD-linked+mutation+in+FUS+suppresses+intra-axonal+protein+synthesis+and+drives+disease+without+nuclear+loss-of-function+of+FUS%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">ALS/FTD-linked mutation in FUS suppresses intra-axonal protein synthesis and drives disease without nuclear loss-of-function of FUS.</a> Neuron. 100, 816-830 (2018).</li>
<li>Munsie, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retromer-dependent+neurotransmitter+receptor+trafficking+to+synapses+is+altered+by+the+Parkinson%27s+disease+VPS35+mutation+p.+D620N%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Molecular+Genetics%22%5BJournal%5D)">Retromer-dependent neurotransmitter receptor trafficking to synapses is altered by the Parkinson's disease VPS35 mutation p. D620N.</a> Human Molecular Genetics. 24, 1691-1703 (2015).</li>
<li>Oddo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Triple-transgenic+model+of+Alzheimer%27s+disease+with+plaques+and+tangles%3A+intracellular+A%CE%B2+and+synaptic+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Triple-transgenic model of Alzheimer's disease with plaques and tangles: intracellular Aβ and synaptic dysfunction.</a> Neuron. 39, 409-421 (2003).</li>
<li>Selkoe, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alzheimer%27s+disease+is+a+synaptic+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Alzheimer's disease is a synaptic failure.</a> Science. 298, 789-791 (2002).</li>
<li>Collins, C. A., DiAntonio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+development%3A+insights+from+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Synaptic development: insights from Drosophila.</a> Current Opinion in Neurobiology. 17, 35-42 (2007).</li>
<li>Jan, L., Jan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+the+larval+neuromuscular+junction+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila melanogaster.</a> The Journal of Physiology. 262, 189-214 (1976).</li>
<li>Zito, K., Parnas, D., Fetter, R. D., Isacoff, E. Y., Goodman, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Watching+a+synapse+grow%3A+noninvasive+confocal+imaging+of+synaptic+growth+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Watching a synapse grow: noninvasive confocal imaging of synaptic growth in Drosophila.</a> Neuron. 22, 719-729 (1999).</li>
<li>Babcock, D. T., Ganetzky, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+accurate+and+rapid+measurement+of+flight+performance+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">An improved method for accurate and rapid measurement of flight performance in Drosophila.</a> Journal of Visualized Experiments. , e51223(2014).</li>
<li>Fernandes, J., Bate, M., Vijayraghavan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+indirect+flight+muscles+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Development of the indirect flight muscles of Drosophila.</a> Development. 113, 67-77 (1991).</li>
<li>Fernandes, J., VijayRaghavan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+indirect+flight+muscle+innervation+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The development of indirect flight muscle innervation in Drosophila melanogaster.</a> Development. 118, 215-227 (1993).</li>
<li>Fernandes, J. J., Keshishian, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+the+dorsal+longitudinal+flight+muscles+%28DLM%29+of+Drosophila%3A+insights+from+the+ablation+of+larval+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Patterning the dorsal longitudinal flight muscles (DLM) of Drosophila: insights from the ablation of larval scaffolds.</a> Development. 122, 3755-3763 (1996).</li>
<li>Fernandes, J. J., Keshishian, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve-muscle+interactions+during+flight+muscle+development+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Nerve-muscle interactions during flight muscle development in Drosophila.</a> Development. 125, 1769-1779 (1998).</li>
<li>Hebbar, S., Fernandes, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pruning+of+motor+neuron+branches+establishes+the+DLM+innervation+pattern+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Pruning of motor neuron branches establishes the DLM innervation pattern in Drosophila.</a> Journal of Neurobiology. 60, 499-516 (2004).</li>
<li>Hebbar, S., Fernandes, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+Fas+II+in+the+stabilization+of+motor+neuron+branches+during+pruning+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biolology%22%5BJournal%5D)">A role for Fas II in the stabilization of motor neuron branches during pruning in Drosophila.</a> Developmental Biolology. 285, 185-199 (2005).</li>
<li>Danjo, R., Kawasaki, F., Ordway, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+tripartite+synapse+model+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">A tripartite synapse model in Drosophila.</a> PloS One. 6, (2011).</li>
<li>Hunt, L. C., Demontis, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-mount+immunostaining+of+Drosophila+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Whole-mount immunostaining of Drosophila skeletal muscle.</a> Nature Protocols. 8, 2496-2501 (2013).</li>
<li>Kucherenko, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paraffin-embedded+and+frozen+sections+of+Drosophila+adult+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Paraffin-embedded and frozen sections of Drosophila adult muscles.</a> Journal of Visualized Experiments. , e2438(2010).</li>
<li>Llamusi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BSF+and+TBPH+are+mislocalized+in+the+muscle+sarcomere+of+a+Drosophila+myotonic+dystrophy+model%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">BSF and TBPH are mislocalized in the muscle sarcomere of a Drosophila myotonic dystrophy model.</a> Disease Models & Mechanisms. 6, 184-196 (2013).</li>
<li>Pantoja, M., Fischer, K. A., Ieronimakis, N., Reyes, M., Ruohola-Baker, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+elevation+of+sphingosine+1-phosphate+suppresses+dystrophic+muscle+phenotypes+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Genetic elevation of sphingosine 1-phosphate suppresses dystrophic muscle phenotypes in Drosophila.</a> Development. 140, 136-146 (2013).</li>
<li>Schnorrer, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+genetic+analysis+of+muscle+morphogenesis+and+function+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Systematic genetic analysis of muscle morphogenesis and function in Drosophila.</a> Nature. 464, 287-291 (2010).</li>
<li>Viswanathan, M. C., Blice-Baum, A. C., Schmidt, W., Foster, D. B., Cammarato, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudo-acetylation+of+K326+and+K328+of+actin+disrupts+Drosophila+melanogaster+indirect+flight+muscle+structure+and+performance%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Pseudo-acetylation of K326 and K328 of actin disrupts Drosophila melanogaster indirect flight muscle structure and performance.</a> Frontiers in Physiology. 6, 116(2015).</li>
<li>Hebbar, S., Fernandes, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glial+remodeling+during+metamorphosis+influences+the+stabilization+of+motor+neuron+branches+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Glial remodeling during metamorphosis influences the stabilization of motor neuron branches in Drosophila.</a> Developmental Biology. 340, 344-354 (2010).</li>
<li>Mahr, A., Aberle, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+expression+pattern+of+the+Drosophila+vesicular+glutamate+transporter%3A+a+marker+protein+for+motoneurons+and+glutamatergic+centers+in+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Expression+Patterns%22%5BJournal%5D)">The expression pattern of the Drosophila vesicular glutamate transporter: a marker protein for motoneurons and glutamatergic centers in the brain.</a> Gene Expression Patterns. 6, 299-309 (2006).</li>
<li>Ritson, G. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TDP-43+mediates+degeneration+in+a+novel+Drosophila+model+of+disease+caused+by+mutations+in+VCP%2Fp97%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">TDP-43 mediates degeneration in a novel Drosophila model of disease caused by mutations in VCP/p97.</a> Journal of Neuroscience. 30, 7729-7739 (2010).</li>
<li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118, 401-415 (1993).</li>
<li>Klagges, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invertebrate+synapsins%3A+a+single+gene+codes+for+several+isoforms+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Invertebrate synapsins: a single gene codes for several isoforms in Drosophila.</a> Journal of Neuroscience. 16, 3154-3165 (1996).</li>
<li>Fujita, S. C., Zipursky, S. L., Benzer, S., Ferrus, A., Shotwell, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monoclonal+antibodies+against+the+Drosophila+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Monoclonal antibodies against the Drosophila nervous system.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 79, 7929-7933 (1982).</li>
<li>Wagh, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((a+protein+with+homology+to+ELKS%2FCAST%2C+is+required+for+structural+integrity+and+function+of+synaptic+active+zones+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">a protein with homology to ELKS/CAST, is required for structural integrity and function of synaptic active zones in Drosophila.</a> Neuron. 49, 833-844 (2006).</li>
<li>Marrus, S. B., DiAntonio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+localization+of+glutamate+receptors+opposite+sites+of+high+presynaptic+release%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Preferential localization of glutamate receptors opposite sites of high presynaptic release.</a> Current Biology. 14, 924-931 (2004).</li>
<li>Augustin, H., Allen, M. J., Partridge, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+recordings+from+the+giant+fiber+pathway+of+D.+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological recordings from the giant fiber pathway of D. melanogaster.</a> Journal of Visualized Experiments. , e2412(2011).</li>
<li>Maccioni, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+phytotherapic+extracts+rescue+anomalous+locomotion+and+electrophysiological+responses+of+TDP-43+Drosophila+melanogaster+model+of+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Standardized phytotherapic extracts rescue anomalous locomotion and electrophysiological responses of TDP-43 Drosophila melanogaster model of ALS.</a> Scientific Reports. 8, 16002(2018).</li>
<li>Siddiqi, O., Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurophysiological+defects+in+temperature-sensitive+paralytic+mutants+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Neurophysiological defects in temperature-sensitive paralytic mutants of Drosophila melanogaster.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 73, 3253-3257 (1976).</li>
<li>Wang, Z. H., Clark, C., Geisbrecht, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+clueless+is+involved+in+Parkin-dependent+mitophagy+by+promoting+VCP-mediated+Marf+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Molecular+Genetics%22%5BJournal%5D)">Drosophila clueless is involved in Parkin-dependent mitophagy by promoting VCP-mediated Marf degradation.</a> Human Molecular Genetics. 25, 1946-1964 (2016).</li>
<li>O'Sullivan, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multifunctional+Wing+Motor+Control+of+Song+and+Flight%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Multifunctional Wing Motor Control of Song and Flight.</a> Current Biology. 28, 2705-2717 (2018).</li>
</ol>

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

באמצעות השיטות המתוארות בפרוטוקול זה, אנו מספקים גישה פשוטה עבור פירוק של רקמת DLM ולהדגים כיצד ניתן להחיל זאת כדי להעריך את שלמות סינפטי באמצעות כתמים מבניים סמנים סינפטיים ב Drosophila למבוגרים. צעד קריטי אחד בפרוטוקול שעושה את רקמת DLM קל יותר לנתח הוא הקפאת הבזק עם חנקן נוזלי. ללא שלב זה, הרקמה היא פחות מוצקה וקשה יותר לחתוך בדיוק כפי שנצפה איור 3. פרוטוקול זה מתבסס על שיטות פעולה קודמות כדי לאפשר שימור של נוירונים מוטוריים ורקמות שריר18,19,20,21,22,23. מגבלה אחת של פרוטוקול זה היא כי בעת ביצוע החתך את קו האמצע עבור bisection, זה יכול להיות קשה לקבל שתי הכנות נקיות לכל בית החזה. דרך אחת להבטיח לפחות המיטוהורקס אחד לכל זבוב, אתה יכול בכוונה לחתוך לצד אחד של בית החזה כדי לקבל הכנה אחת נקייה. עם שינוי זה, ייתכן שיהיה עליך גם להסיר רקמה עודפת נוספת מהחתך כדי לנקות את הדגימה עם מפסק הלהב. עבור אלה החדשים בטכניקה זו, עם תרגול מתמשך, דיוק bisection יגדל.
השיטה המתוארת כאן מאפשרת לחוקרים להעריך בקלות את השלמות המבנית של NMJs DLM למבוגרים בכל עת לאורך תוחלת החיים שלהם. יתרון מרכזי של פרוטוקול זה היא היכולת לגשת שלמות סינפטית במודלים של מחלות ניווניות באמצעות סמנים סינפטיים. אנו מדגימים כי יישום זה יכול לעזור לדמיין שינויים מורפולוגיה ברוטו עם כתמים מבניים (איור 1C\u2012H). בנוסף, ניתן להעריך שלמות סינפטית עם כתם של סמנים presynaptic כולל אך לא רק Synapsin28 (איור 2A\u2012F), Syntaxin29 (איור 2G\u2012L) ו BRP30 (איור 2M\u2012R). רקמת השריר postsynaptic ניתן גם להעריך באמצעות נוגדן המשנה קולטן גלוטמט III31 (איור 2S\u2012X), המדגים את השירות של פרוטוקול זה.
החוקרים יכולים גם להשתמש בשיטת ניתוח זו כדי להשלים נתונים פונקציונליים כדי לבחון באופן מקיף את השלמות המבנית של סינופסות הקשורות למגוון רחב של מחלות. סינאפסות אלה מאפשרות גם ניתוח פונקציונלי באמצעות הקלטות אלקטרופיזיולוגיות32,33,34 וטיסה10. פרוטוקול זה יכול גם לספק נוחות גישה לרקמות עבור יישומים רבים ואסה. מחקרים עתידיים, לדוגמה, יכולים להשתמש בפרוטוקול זה כדי לכמת שינויים סינפטיים באמצעות כימות הצפיפות ומספר הסינאפסות15,16. בעוד הפרוטוקול המתואר כאן בוחן באופן ספציפי שלמות סינפטית של נוירונים מוטוריים, פרוטוקולים משלימים להערכת אובדן תאי שריר יכול להתבצע גם עם ניתוח זה באמצעות הכתמת TUNEL35. כדי לבחון אובדן עצבי, ניתוח של גנגליון בית החזה36 יכול לשמש גם עם כתמי TUNEL. אנו מצפים כי הניתוח המתואר כאן יהיו יישומים נוספים מחקרים עתידיים הערכת פתולוגיות הקשורות לגיל, כמו גם מחלות ניווניות.

תפקוד סינפטי הוא בין סימני ההיכר המוקדמים ביותר הידועים של רוב המחלות ניווניותהעיקריות 1,,2,,3,,4,,5,,6. עם זאת, מעט מאוד ידוע לגבי איך ליקויים מבניים ופונקציונליים אלה מתייחסים לשלבים מאוחרים יותר של התקדמות המחלה. Drosophila הוכיחה להיות מערכת מודל שימושי להבנת צמיחה ופיתוח סינפסה באמצעות זחל NMJs7,,8,,9. עם זאת, שלב instar הזחל השלישי נמשך רק כמה ימים, הגבלת התועלת שלהם בלימוד מתקדם, תלוי גיל ניוון עצבי. חלופה להערכת NMJs זחל היא לבחון מבנים סינפטיים ב Drosophila למבוגרים, כגון סינפסות שנוצרו על שרירי האורך גב (DLMs)הנדרשים לטיסה 10,11, 12,13,1314,,15,16. סינאפסות טריפתיות אלה מאורגנות מבחינה מבנית באופן דומהל-17סינאפסות יונקים , מה שמספק יתרון ייחודי להערכת מודלים של מחלות ניווניות.
כאן אנו מתארים שיטה פשוטה לניתוח השלמות המבנית של NMJs למבוגרים במודל Drosophila של ניוון עצבי. שיטות קודמות של DLM, מחקרים, הדגישו את החשיבות של שימור רקמת שרירלמגוון יישומים 18,19,,20,,21,,22,,23., הפרוטוקול שלנו מספק שיטה מקיפה כדי לשמר הן רקמת עצבית והן רקמת שריר לחקור מחלות ניווניות. מרכיב מרכזי נוסף בחקר מחלות אלה הוא היכולת להבין אובדן עצבי באופן תלוי גיל. עבודה קודמת מספקת הבנה ביקורתית ועמיקה של האופן שבו ה-DLM NMJs נוצרים במהלך מטמורפוזהלבגרות מוקדמת 11,12,14,15,16,24. הפרוטוקול שלנו קובע שיטה לבנות על עבודה זו כדי לחקור DLM NMJs באופן תלוי גיל בהזדקנות ומחלות ניווניות.

<table><tbody><tr><td>32% פורמלדהיד</td><td>אלקטרונים מיקרוסקופיה מדעית</td><td>15714</td><td>שימור רקמות</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 עז אנטי עכבר</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>A11031</td><td>תוויות נוגדנים ראשוניים. בשימוש בריכוז של 1:200.</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 עז אנטי ארנב</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>A11036</td><td>מסמן נוגדנים ראשוניים. בשימוש בריכוז של 1:200.</td></tr><tr><td>נוגדנים נגד Bruchpilot (BRP)</td><td>מחקרים התפתחותיים בנק היברידומה</td><td>NC82</td><td>מכתים את האזורים הפעילים בנוירונים פרה-סינפטיים. בשימוש בריכוז של 1:25.</td></tr><tr><td>נוגדנים נגד GluRIII</td><td>מתנה מאהרון דיאנטוניו</td><td>N/A</td><td>מסמן תת-יחידות של קולטן גלוטמט. בשימוש בריכוז של 1:1000.</td></tr><tr><td>נוגדן אנטי-סינפסין</td><td>מחקרים התפתחותיים בנק היברידומה</td><td>3C11</td><td>מסמן את החלבון הסינפטי סינפסין. בשימוש בריכוז של 1:50.</td></tr><tr><td>נוגדנים נגד סינטקסין</td><td>מחקרים התפתחותיים בנק היברידומה</td><td>8C3</td><td>מסמן את החלבון הסינפטי סינטקסין. בשימוש בריכוז של 1:10.</td></tr><tr><td>BenchRocker</td><td>Genesee Scientific</td><td>31-302</td><td>דגימות מסתובבות במהלך צביעה</td></tr><tr><td>Blade Breaker</td><td>Fine Science Tools</td><td>10053-09</td><td>משמש להחזקת החלקות כיסוי להב נוצה</td></tr><tr><td></td><td>Fisher Scientific</td><td>12548A</td><td>להרכבת</td></tr><tr><td>כפפות קריוגניות</td><td>לרקמות VWR</td><td>97008-198</td><td>להגן על הידיים מפני</td></tr><tr><td>פינצטה קריוגנית</td> חנקן נוזלי <td>VWR</td><td>82027-432</td><td>החזק צינור 2.0 מ"ל בבקבוק חנקן</td></tr><tr><td>נוזלי-1900 מ"ל</td><td>תומאס סיינטיפיק</td><td>5028M54</td> החזק להבי נוצה <td>של חנקן נוזלי</td></tr><tr><td></td><td>מדעי מיקרוסקופיה אלקטרונית</td><td>72002-01</td><td>להבי אזמל</td></tr><tr><td>Fine Forecps x 2</td><td>כלי מדע עדינים</td><td>11252-20</td><td>זוג עדין אחד לניקוי קו האמצע של בית החזה. ניתן להקהות את הזוג השני באמצעות אבן השחזה.</td></tr><tr><td>מעבדות ג'קסון</td> <td>מצומד נגד HRP FITC</td><td>123-545-021</td><td>כתמים נוירונים מוטוריים. בשימוש בקופסת מקפיא בריכוז 1:100</td></tr><tr><td>(שחור)</td> <td>Fisher Scientific</td><td>14100F</td><td>מגן על דגימות</td></tr><tr><td>מפיפטות פסטר זכוכית</td> בהירות <td>VWR</td><td>14637-010</td><td>משמש להעברת</td></tr><tr><td>דגימות שקופיות זכוכית</td><td>Fisher Scientific</td><td>12550143</td><td>להרכבת</td></tr><tr><td>מדיה להרכבה של רקמות (vectashield) נגד דהייה</td><td>VWR</td><td>101098-042</td><td>אמצעי הרכבה שומרים לק איתות פלואורסצנטי</td></tr><tr><td>מדעי</td><td>מיקרוסקופיה אלקטרונית</td><td>72180</td><td>אטמים שקופיות מיקרוסקופ</td></tr><tr><td>סרום עיזים רגיל</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>PCN5000</td><td>מונע קשירה לא ספציפית של מברשת צבע נוגדנים</td></tr><tr><td></td><td>Genesee Scientific</td><td>59-204</td><td>העברת זבובים</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-010-023</td><td>תמיסת מלח לניתוח ו צביעת</td></tr><tr><td>Phalloidin 647</td><td>Abcam</td><td>AB176759</td><td>מכתים F-Actin ברקמת השריר. בשימוש בצלחת פטרי מפלסטיק בריכוז 1:1000</td></tr><tr><td>(100 מ"מ)</td> <td>VWR</td><td>25373-100</td><td></td></tr><tr><td>תוויות חיזוק צלחת חיתוך</td><td>W.B. Mason</td><td>AVE05722</td><td>מספק תמיכה לכיסוי זכוכית מעל</td></tr><tr><td>בלוק השחזת</td> הרקמות המותקן <td>Grainger</td><td>1RDF5</td><td>שמירה על מלקחיים עדינים חדים וגם משעממים</td></tr><tr><td>תיקיית שקופיות</td> זוג נפרדת <td>VWR</td><td>10126-326</td><td>לדוגמא מספריים</td></tr><tr><td>משרדיים סטנדרטיים</td> לאחסון <td>W.B. Mason</td><td>ACM40618</td><td>חיתוך תוויות חיזוק</td></tr><tr><td>Sylgard 184</td><td>מדעי מיקרוסקופיה אלקטרונית</td><td>24236-10</td><td>ציפוי לצלחת דיסקציה</td></tr><tr><td>Triton-X-100</td><td>מדעי מיקרוסקופיה אלקטרונית</td><td>22140</td><td>עוזר לחלחל רקמות</td></tr><tr><td>Vannas Disssection Sissors</td><td>Fine Science</td><td>Tools 1500-00</td><td>משמש להסרת רגלי זבוב וביצוע חתך בבית החזה</td></tr></tbody></table>

הדמיה ניוון סינפטי ב דרוזופילה למבוגרים בשיתוף עם ניוון עצבי

Visualizing Synaptic Degeneration in Adult Drosophila in Association with Neurodegeneration

Drosophila משמש מודל שימושי להערכת מבנה סינפטי ותפקוד הקשורים למחלות ניווניות. בעוד עבודה רבה התמקדה צמתים עצביים שריריים (NMJs) בזחלי Drosophila, הערכת שלמות סינפטית בדרוזופילה למבוגרים קיבל הרבה פחות תשומת לב. כאן אנו מספקים שיטה פשוטה עבור ניתוח של שרירי האורך גב (DLMs), אשר נדרשים עבור יכולת טיסה. בנוסף לטיסה כקריאה התנהגותית, ניתוח זה מאפשר הן סינפסות DLM ורקמות שריר להיות מותן לניתוח מבני באמצעות נוגדנים תיוג פלורסנטית עבור סמנים סינפטיים או חלבונים של עניין. פרוטוקול זה מאפשר הערכה של השלמות המבנית של סינאפסות בדרוזופילה למבוגרים במהלך הזדקנות כדי מודל מתקדם, תלוי גיל הטבע של רוב מחלות ניווניות.

הדור של זבובים טרנסגניים המביעים חלבון זפת מחייב אנושי של מוטציה 43 kDa (TDP-43M337V)מיוצג על ידי השרטוט(איור 1A). פעולה זו מדגימה את היישום של מערכת Gal4/UAS הבינארית ב Drosophila27. האיור מתאר המיטוהורקס עם שישה סיבי שריר, A\u2012F הולך מסיב הגב ביותר A ל F האוורירי ביותר(איור 1B)11,,12. כדי להעריך את שלמות סינפטית, NMJs היו מוכתמים HRP ופאלודין (איור 1C\u2012E). נוירונים מוטוריים במוטציות TDP-43M337V (איור 1F)יש מעט עד ללא כתמי HRP עד יום 21, בעוד WT (אורגון-R) נשארשלם (איור 1C). אין הבדלים גלויים בהכתמת שרירים (איור 1D,G). השינויים מורפולוגיה ברוטו שנצפו ב מוטציות TDP-43M337V מדגים כיצד שלמות סינפטית יכולה להיות מעורבת במודל מחלה ניוונית של טרשת רוחבית amyotrophic (ALS) באמצעות מודל DLM למבוגרים. בנוסף כתמים מבניים, הכתמת NMJs DLM יכול גם לספק הערכה של שלמות סינפטית עם presynaptic (איור 2A\u2012R) ופוסט synaptic (איור 2S\u2012X) סמנים. יחד, תוצאות אלה להמחיש כיצד פרוטוקול פעולה זה יכול להיות מיושם על לימוד רקמת DLM במחלות ניווניות.
היבט מרכזי אחד של דיסטוריה זו היא היישום של חנקן נוזלי פלאש להקפיא את הרקמה כדי להפוך את bisection קל יותר. השירות של חנקן נוזלי מדגים זבובי WT עם חנקן נוזלי שבו רקמת שריר אין נזק או סיביםחתוך (איור 3A\u2012C). ללא חנקן נוזלי, הרקמה יכולה להיות קשה יותר לנתח. לדוגמה, בעקבות פרוטוקול זה ודילוג על שלב ההקפאה של הבזק חנקן נוזלי מאפשר לרקמות להיות רגישות יותר לנזק מכלי הניתוח כגוןנוירונים פגומים (איור 3D)או סיבי שרירפגומים (איור 3E). היישום של חנקן נוזלי מסייע למנוע נזק לרקמות שעלול להתרחש בעת עבודה עם רקמת DLM ללא קשר לגנוטיפ של הדגימה(איור 3C ו 3F).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61363/61363fig1.jpg"> איור 1: התרפסות הדרגתית של סינמפסות DLM במודל Drosophila של ALS. (א)הדור של זבובים טרנסגניים ALS המביעים צורה מוטנטית אנושית של חלבון זפת מחייב של 43 kDa (TDP-43) מוצגים בסכמטי. (ב)האיור מתאר את הצורה והכיוון של המיטוהרקס בדרוסופילה בוגרת. באמצעות הפרוטוקול, אנו יכולים לצפות באובדן הדרגתי של שלמות סינפטית של סינפסות DLM NMJ באמצעות כתם מבני של נוירונים מוטוריים עם HRP (ירוק) ורקמות שריר עם פאלואידין (מגנטה). המודל שלנו מתאר את אובדן שלמות סינפטית במודל בוגר של ALS באמצעות הדור של זבובים בוגרים המביעים מוטציה של TDP-43אנושי M337V בנוירונים מוטוריים (איור 1F\u2012H) בהשוואה WT ( איור 1C\u2012E)זבוביםבסיבי שריר C. החצים מדגישים דוגמאות של סינפסה WT (איור 1C) ודוגמה לאובדן שלמות סינפטית. סרגל קנה מידה =20 μm בהגדלה 63x. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61363/61363fig1large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61363/61363fig2.jpg"> איור 2: הערכת שלמות סינפטית באמצעות סמנים פרה-סינפטיים ב-NMJs למבוגרים. ניתן גם להעריך את שלמות סינפטית באמצעות סמנים פרסינפטיים ו postsynaptic בזבובי WT כי הם 14 ימים ישנים בסיבי שריר C. סמנים presynaptic Synapsin (B), Syntaxin (H), ו Bruchpilot (BRP) (N) מוכתמים יחד עם HRP (A, G, M). הכתמים מתארים את ההתמקמות של סמנים אלה למסופים הקדם-סינפטיים (C, I, O). בהגדלה גבוהה יותר, התמונות ממחישות את ההתקליזציה של Synapsin (E), Syntaxin (K) ו BRP (Q) עם HRP (D, J ו- P) בפירוט רב יותר (איור F, L ו- R). אנו גם מראים קולטן גלוטמט סמן postsynaptic III (GluRIII) (T)שיתוף מוכתם עם HRP (S). ההכתמה ההתקוטה התועלת מדגימה את התועלת של סמנים אלה (U). בהגדלה גבוהה יותר, התמונות המייצגות מדגימות את הלוקליזציה (X) של GluRIII (W) ו-HRP (V) לרקמות השריר הפוסט-סינפטיות ולמסופים הטרום-סינפטיים, בהתאמה. סרגל קנה מידה עבור לוחות A\u2012C, G-I, M\u2012O, S\u2012U מייצגים 20 μm בהגדלה של פי 63. סרגל קנה מידה עבור לוחות D\u2012F, 2J-2L, 2P-2R ו- 2V-2X מייצג 10 μm בהגדלה של פי 63. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61363/61363fig2large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61363/61363fig3.jpg"> איור 3: כלי חנקן נוזלי עבור דיסטורי DLM. כדי להדגים את השירות של חנקן נוזלי עבור ניתוחי DLM, אנו מראים השוואה של היום 21 WT זבובים עם ובלי חנקן נוזלי מסיב שריר C. עם חנקן נוזלי, פאלואידין(B)נשאר שלם ואינו מסכן את כתמי HRP (A, C). ללא חנקן נוזלי, רקמת השריר הופכת לחוטית וקשה לגז (E) וכתמים HRP (D, F) הופך בסכנה עקב שגיאה טכנית. חצים לבנים מראים אזור ללא נזק לשרירים עם חנקן נוזלי(B)ורקמות שריר פגומות(E). סרגל קנה מידה = 20 μm בהגדלה 63x. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61363/61363fig3large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.</a>

המטרה של הליך זה היא לנתח את רקמת שריר האורך גב (DLM) כדי להעריך את השלמות המבנית של צמתים עצביים שריריים DLM (NMJs) במודלים של מחלות ניווניות באמצעות מלנוגסטר Drosophila.

Drosophila serves as a useful model for assessing synaptic structure and function associated with neurodegenerative diseases. While much work has focused ...

פרוטוקול מספק מודל פשוט להערכת תקינות סינפטית באופן תלוי גיל. אז אנחנו יכולים לחקור מחלות ניווניות ברקמות כי הם נוחים לניתוח מבני ותפקודי כאחד. טכניקה זו מקלה על שימור של רקמת עצבים ושרירים מן הצמתים neuromuscular שריר האורך הגבי.כדי לחקור באופן מקיף את התפקוד הסינפטי לאורך זמן ורקמות שקשה לעבוד איתן. שיטה זו יכולה להיות מיושמת על המחקר של מחלות ניווניות כולל ALS, פרקינסון, הנטינגטון ומחלת אלצהיימר. לפני תחילת הניתוח לחתוך כ 10 מילימטרים מהקצה של פיפטה 200 מיקרוליטר.לאחר מתן ההרדמה, לשחק שישה עד 10 זבובים בצלחת פטרי שישה סנטימטר המכיל 70% אתנול ולהשתמש במברשת צבע ללגום בעדינות למזג כל זבוב. לאחר שעה עד שתי דקות, השתמש במטסים כדי להעביר זבוב אחד ברגליים או בכנפיים לצלחת ניתוח מצופה אלסטומר סיליקון המכילה שבעה עד 10 מיליליטר של PBS תחת מיקרוסקופ ניתוח. עם הזבוב שקוע PBS, להשתמש קהה Dumont מספר חמש למצוא מלקחיים כדי להסיר בזהירות את הכנפיים ולהשתמש משתרע על פני מספריים ניתוח קפיץ קצה ישר לעשות חתך קטן בצד הגחוני של קוטיקל כדי להסיר את הרגליים.מחזיק את מספריים ניתוח ביד אחת מדפים קהה ביד השנייה, למקם את הצד הגחוני לטוס למעלה מחזיק את הדגימה במקום עם מאלץ, להסיר את הראש והבטן עם המספריים. השתמשו בצנרת של 200 מיקרוליטרים המוגדרת ל-40 מיקרוליטרים ובטיפ פיפיט שונה כדי לאסוף את התוראצ'ים ולהנחית את דגימות הרקמה המבודדות בצינור המסומן כראוי המכיל 900 מיקרוליטרים של PBS ו-150 מיקרוליטרים של 32% פורמלדהיד. לאחר 30 דקות בטמפרטורת החדר, השתמש פיפטה פסטר כדי להסיר את התיקון ולשטוף את plies שלוש פעמים עם 1.5 מיליליטר של PBS לכל לשטוף.לפני תחילת הביסקטס דון קריו כפפות מגן ומשקפי בטיחות ולמלא בקבוק סיור עם חנקן נוזלי. השתמש מפסק להב לתפוס להב נוצה בזווית לכופף את הלהב כדי לשבור חתיכה קטנה. השתמש מפסק הלהב כדי לנעול את הלהב בעמדה ולהשתמש פיפטה פסטר זכוכית כדי להסיר את כל PBS מצינורות מדגם.השתמש פינצטה קריוגנית כדי להטביע את הצינורות בבקבוק של חנקן נוזלי. לאחר 10 שניות, השתמשו בפיפיאט פסטר כדי להוסיף כ-300 מיקרוליטרים של PBS קר כקרח לכל צינור על קרח, והמקמו צד גחוני אחד גרוע של Axe בצלחת ניתוח מצופה אלסטומר סיליקון באורך 10 ס"מ המכילה PBS קר כקרח. השתמש זוג משעמם של מדפים כדי למקם את בית החזה ולמצוא זוג מדפים, כדי להסיר חלק מהגנגליה בית החזה לחשוף את קו האמצע של בית החזה.באמצעות קו האמצע של בית החזה כמדריך, להשתמש במשחק כדי להפוך חתך רדוד דרך שליש בית החזה ולהשתמש מדפים קהה למקם את בית החזה בזווית של 45 מעלות. השתמש בלהב כדי לחתוך ישר את קו האמצע של בית החזה כדי להשיג שני hemithoraces ולעשות בזהירות אחד או שניים חתכים כדי להסיר את הרקמה העודפת מבלי לפגוע בשרירי האורך הגביים. ואז למקם את דגימות רקמת השריר לתוך צינור שכותרתו כראוי של PBS.כאשר כל דגימות בית החזה כבר חציית permeabilize הרקמות במאגר חסימה לפחות שעה אחת בארבע מעלות צלזיוס. בסוף הדגירה, מערבולת מוכנה טרי פתרון כתם מבני ולהוסיף 150 microliters של הכתם לכל מדגם עבור דגירה של שעתיים על מסובב בטמפרטורת החדר בחושך. לאחר ויטראז'ים לשטוף את הדגימות PBST, ולמקום חמש תוויות חיזוק מוערמים לחתוך חצי 15 מילימטרים זה מזה על שקופית מיקרוסקופ זכוכית אחת.השתמש טיפ פיפטה מיקרו שונה כדי להעביר את Thoraces על כל שקופית ולהשתמש לנגב מעבדה כדי להסיר כל PBST עודף. השתמש במדפים כדי לארגן את הדגימות כך Thoraces פונים לצד השריר כלפי מעלה. כאשר הדגימות מכוונות כראוי, השתמש בקצה פיפטה של 200 מיקרוליטר כדי להחיל 70 מיקרוליטרים של מדיום הרכבה על כל שקופית ולכסות כל שקופית עם פתק כיסוי.לאחר מכן השתמש לק ציפורניים בנדיבות לצפות את הקצוות החיצוניים של החלקות הכיסוי כדי לקבל חותם שלם סביב כל רקמה. כדי להעריך את השלמות הסינפטית. צמתים neuromuscular יכול להיות מוכתם עם peroxidase חזרת ו Floe פח נוירונים מוטוריים בחלבון זפת מחייב של 43 כבשים Kilodalton יש מעט מאוד חזרת peroxidase מכתים על ידי יום 21, בעוד חלבון סוג הבר נשאר שלם.אין הבדלים גלויים מכתמי שרירים נצפו. בנוסף לתיוג צומת neuromuscular שריר אורך הגב מבנית יכול גם לספק הערכה של שלמות סינפטית עם סמנים סינפטיים מראש ופוסט סינפטית. שים לב כי הקפאת הבזק חנקן נוזלי מקלה על bisection מוצלח כמו רקמה קפואה שאינה פלאש רגישה יותר לנזק במהלך הניתוח.בעקבות הליך זה ניתן לנתח את דגימות השימור על ידי מיקרוסקופיה קונפוקל כדי למדוד היבטים ספציפיים של מבנה סינפטי.

visualizing-synaptic-degeneration-adult-drosophila-association-with

Research

JoVE Journal

Neuroscience

מדעי המוח

פרוטוקול זה דן חי דיסקציה...

בשנת vivo ויזואליזציה של שלפוחית ​​Synaptic בתוך האקסונים תסיסנית המגזרי הזחל

מבחני התנהגות למדידת פונקציות של תנועה, למידה, ויכולות...

Assaying של תנועה, למידה, וזיכרון גירעונות תסיסנית מודלים של ניוון מוחיים

סרטון זה מדגים פרוטוקול חיסוני מפורט כדי להמחיש פגמים פנוטיפיים בגופי הפטריות של מוחות דרוזופילה מוטנטיים. הפרוטוקול כולל שימוש בנוגדנים נגד Fas2, חלבון המעורב בהנחיה אקסונלית המאפשרת התפתחות מורפולוגית ותפקודית תקינה של גוף הפטרייה.

הדמיה של תאי עצב בגוף פטריות במוחות דרוזופילה באמצעות צביעת מערכת החיסון

סרטון זה מדגים פרוטוקול להערכת השלמות המבנית של צמתים עצביים-שריריים בשרירי האורך הגביים של דרוזופילה. ההליך כולל צביעת נוירונים ושרירים בשני נוגדנים נפרדים והשוואת דפוסי פלואורסצנטיות בין זבובים מוטנטיים לזבובי בר. הפחתה בכתמים עצביים בזבובים מוטנטיים מצביעה על ניוון עצבי, בעוד מבנה השריר נשאר שלם.

הערכת השלמות המבנית של הצמתים העצביים-שריריים האורכיים הגביים בדרוזופילה

כאן אנו מתארים שני מבחני שנקבעו ללמוד ניוון מוחיים תלוי גיל של דופאמין (DA)...

הערכת פנוטיפים ניווניות ב<em&gt; דרוזופילה</em&gt; נוירונים דופאמין על ידי מבחני לאז וimmunostaining מוח כל

תסיסנית נעשה שימוש נרחב כמערכת מודל ללמוד ניווניות של מערכת העצבים. פרוטוקול זה מתאר שיטה שבאמצעותה ניוון, כפי שנקבע על ידי היווצרות vacuole במוח, ניתן לכמת. הוא גם מפחית תופעות עקב ההליך הניסיון על ידי עיבוד ובקרת חתך וזבובים הניסיונות כמו דגימה אחת.

Mass היסטולוגיה לכמת מוחיים ב<em&gt; תסיסנית</em

כאן אנו מתארים שיטה פשוטה ונגישה באופן נרחב לפגוע עצבים סגמנטליים בזחלים תסיסנית לדמיין לכמת neurodegeneration של נוירונים המנוע בצומת neuromuscular (NMJ) של הזחלים instar השלישי.

פשוט Neuronal מכני מתודולוגיה פגיעה ללמוד<em&gt; תסיסנית</em&gt; נוירון מוטון ניוון

פרוטוקול זה מתאר את הקרע של immunostaining של המבוגרים דרוזופילה melanogaster רקמות המוח. באופן ספציפי, פרוטוקול זה מדגיש את השימוש נוירונים הגוף, קולט אור פטריות דרוזופילה בתור דוגמה עצביים קבוצות משנה יכול לשמש באופן מדויק לחשוף את עקרונות כלליים שבבסיס היבטים רבים של ההתפתחות העצבית.

ניתוח Immunofluorescent מכתים של פטריות הגוף והנפש ומה קולט אור נוירונים במוח למבוגרים דרוזופילה melanogaster

פיתחנו זרימת עבודה פשוטה וישימה לחלץ נתונים כמותיים במחקרים ביולוגיים תא המבוססות על ידי קרינה פלואורסצנטית-הדמיה של צבירת חלבון, שטף autophagic במערכת העצבים המרכזית דגמי דרוזופילה הקשורים ניוון מוחיים.

ביולוגיה של התא כמותית של הקשורים ניוון מוחיים ב דרוזופילה דרך ניתוח לא משוחדת של חלבונים מתויגות Fluorescently באמצעות ImageJ

כאן נתאר פרוטוקול להמחיש את מיקוד עצב עם חלבון נמכרות ברגליים למבוגרים של זבוב החומץ על ידי קיבוע, הרכבה, הדמיה, ההדמיה שלאחר צעדים.

דמיינו דרוזופילה הרגל מוטור נוירון אקסונים דרך הקוטיקולה למבוגרים

כאן, אנו מספקים פרוטוקולים כדי לבצע שלושה המושרה הנגרמת לפציעה מניוון (אקסון מוות) בחני ילה melanogaster כדי להעריך את השימור מורפולוגית ופונקציונלית של אקסונים קטוע הסינפסות שלהם.

הערכה מורפולוגית ופונקציונלית של Axons וסינפסות שלהם במהלך מוות Axons בדרוסופילה מלאנוסטר

חקור הדמיה של ניוון סינפטי בדרוזופילה למבוגרים לחקר מחלות ניווניות עצביות כמו ALS ופרקינסון. השיטה מאפשרת הערכת שלמות מפרקים נוירומוסקולריים בשריר ה-DLM לאורך זמן.

הדמיה ניוון סינפטי ב דרוזופילה למבוגרים בשיתוף עם ניוון עצבי

גלה סרטונים נוספים