Name: אינטובציה אנדוטרציאלית עיוורת בארנבים יילודים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 4 s
Description: למד טכניקת אינטובציה אנדוטרכאלית עיוורת בארנבים יילודים לניהול נתיבי אוויר מורכבים. שיטה זו משפרת הצלחת הנחת צינורות ללא ויזואליזציה ישירה ומאפשרת מחקרים ביולוגיים מתקדמים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי מענקים ממכון דה סאלוד קרלוס השלישי [PFIS2017-0224], "בקה רוזה" מהמכון לרפואה של סוסיאדד אספניולה דה קוידאדוס אנטנסיבוס פדיאטריקוס ותוכנית המלומדים הרפואיים של ונדרבילט.
נותני החסות לא היו מעורבים באיסוף, ניתוח או פרשנות של הנתונים.
ברצוננו להודות לאיזבל סאלאס על העזרה הניתנת במעבדת החיות ולמר קארלס פברגה ולגברת ג'מה פרננדז-אסנסיו מצוות הטכנולוגיה האודיו-ויזואלית מבית החולים סנט ג'ואן דה דאו על תמיכתם הטכנית בהקלטת הווידאו ובהפקה.

הליך הצנרור המפורט להלן אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת ברצלונה (CEEA 180/19)
1. הכנה ניסיונית
<ol><li>השג את החומרים הבאים: צינור אנדוטראצ'אל פוליוויניל כלוריד (PVC) בקוטר 2 מ"מ, צינור האכלה פוליאוריתן צרפתי 6 (Fr), מלקחיים שטוחים ורחבים לניתוק קצה וחומר סיכה סטרילי (איור 1).</li>
	<li>במהלך תהליכי הצנרור והניתוח, יש לשמור על מצבים סטריליים.</li>
</ol>2. הרדמה
<ol><li>הרדמה את החיה עם 5 מ"ג / קילוגרם xylazine ו 25 מ"ג / קילוגרם קטמין להחיל יחד תוך שרירית ב vastus לרוחב של הארבע ראשי הירך. אגוניסטים אלפא-2 כגון dexmedetomidine יכול לשמש גם במקום xylazine.</li>
	<li>אפשר 3-5 דקות עבור התרופה להגיע לתוקף.</li>
	<li>יש לקרוא את אותה מנה עד להשגת הרדמה עמוקה (דוושה שלילית, רפלקסים פלפבריים וקרנית). באופן אידיאלי, הארנב ישמור על נשימה ספונטנית עד הצנרור.</li>
</ol>3. אינטובציה אנדוטרצ'יאלית
<ol><li>מניחים את הארנב על שמיכה תרמית ב 37 מעלות צלזיוס. מניחים את החיה בהשבתה הגבית עם הראש ביתר לחץ דם. יישר את הראש ישר וקו אמצע ככל האפשר. גליל של ארבעה סנטימטרים העשוי מגזה סטרילית הממוקמת באזור הגב של הצוואר עשוי לעזור להשיג לפחות 45° הרחבה (איור 2).</li>
	<li>השתמש במלקחיים שטוחים ורחבים כדי לפתוח את חלל הפה ברוחב של סנטימטר אחד בקירוב. השתמש מלקחיים עם קצה קהה ורחב כדי למנוע טראומה בפה.</li>
	<li>למדוד את המרחק בין הפה לאזור הבטן (הצלע הראשונה). הצג צינור קיבה פוליאוריתן משומן 6 צרפתית (Fr) לסימן הנמדד מראש ( איור3-4).</li>
	<li>להזיז את צינור ההזנה שמאלה ולתקן עם סרט דבק לשדה הכירורגי.</li>
	<li>הציגו את הצינור אנדוטראצ'אל PVC בקוטר 2 מ"מ, מכוסה בחומר סיכה סטרילי לסימן 3 ס"מ.<ol>
<li>אם יש קשיים בקידום הצינור, להזיז אותו לחלוטין לחבר מחדש עד דאייה חלקה מושגת. הסיכון לטראומה לגרון ולאפיגלוטיס הוא משמעותי עם ניסיונות אינטובציה מרובים. תקן את הצינור באמצעות סרט הדבקה לשדה הכירורגי ( איור5-6).</li>
	</ol>
</li>
	<li>חבר את הצינור endotracheal למכונות ההנשמה עם ההגדרות הבאות: נפח גאות ושפל - 10 מ"ל / קילוגרם; קצב נשימה: 40 נשימות / דקה; FiO2 100%, פיפ"א 6.</li>
	<li>אשר את המיקום הנכון של הצינור על ידי זיהוי של CO2 באוויר נושף (ETCO2), הדמיה ישירה של התפשטות בית החזה וערפל של הצינור. ניטור בעל החיים באמצעות אוקסימטריית דופק וניטור ריאות יכול גם להועיל (איור 7).</li>
	<li>בסיום הניסוי, השתמש בפרוטוקול המתת חסד סטנדרטי המורכב וריונית של פנטוברביטל 120-240 מ"ג/ק"ג. מינונים חוזרים עד להפסקת נשימה, היעדר רפלקס ואסטיסול מושגים. הערה: בניסויים הכירורגיים, החיה חיה במהלך תהליך האוורור ולבסוף מורדמת.</li>
</ol>

<ol><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Graham, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+procedures+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Common procedures in rabbits.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).</li>
<li>Fick, T. E., Schalm, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A simple technique for endotracheal intubation in rabbits.</a> Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).</li>
<li>Conlon, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atraumatic+endotracheal+intubation+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits.</a> Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Falcão, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cirurgica+Brasileira%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Miura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Japanese+Journal+of+Veterinary+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in rabbits.</a> The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Thompson, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+Intubation+of+Rabbits+Using+a+Polypropylene+Guide+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter.</a> Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).</li>
<li>Comolli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+endoscopic+endotracheal+intubation+and+the+v-gel+supraglottic+airway+device+for+spontaneously+ventilating+New+Zealand+white+rabbits+undergoing+ovariohysterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Record%22%5BJournal%5D)">Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy.</a> Veterinary Record. , 1-8 (2020).</li>
<li>Hua, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+ventilation+strategies+on+lung+injury+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Pulmonology%22%5BJournal%5D)">Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits.</a> Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).</li>
<li>Kitchen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+lung+inflation+and+sodium+transport+in+airway+liquid+clearance+during+lung+aeration+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits.</a> Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).</li>
<li>Boon, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tubeless+tracheotomy+for+survival+airway+surgery+in+the+leporine+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model.</a> The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).</li>
<li>Dion, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morbidity+and+mortality+associated+with+preclinical+tracheostomy+models%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models.</a> The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).</li>
<li>Phaneuf, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

ארנבים נמצאים בשימוש נרחב בניסויים בבעלי חיים בשל זמינותם, שיעור רבייה גבוה עם זמנים בין דוריים קצרים, וטיפול קל2. במרכז שלנו, אנו משתמשים בארנבים ניו זילנדים בני 5-7 ימים (Oryctolagus cuniculus) כמודל יילודים כדי לחקור את ההשלכות הנוירולוגיות של ניתוח חוץ-גשמי על המוח המתפתח. כתוצאה מכך, אנו משתמשים בהליכים הדורשים הרדמה עמוקה ועלינו להשתמש בצנרור אנדוטראצ'י לפרקי זמן של עד שעה.
בארנב הבוגר תוארו מספר טכניקות לניהול דרכי הנשימה, בדרך כלל בהקשר כירורגי. כשניסינ...

האנטומיה המוזרה של מערכת הנשימה של הארנב הופכת את הצנרור האנדוטרצ'יאלי למורכב. חלל הפה הוא עמוק וצר עם מגוון מוגבל של פתח הפה לשון גדולה יחסית, מה שהופך הדמיה ישירה של הגרון קשה אפילו עם השימוש laryngoscope1,2. יתר על כן, אינטובציה של הארנב שזה עתה נולד, שהוא קטן פי 10-20 מהמבוגר, היא אפילו יותר הליך מאתגר. בנוסף למאפיינים אנטומיים אלה, ארנבים נוטים laryngospasm משני למניפולציה של דרכי הנשימה.
מספר טכניקות אינטובציה תוארו בספרות, כגון צנרור קנה הנשימה של הגרון, אינטובציה עיוורת, אינטובציה אוטוסקופ, אינטובציה מדרדרת, אינטובציה אנדוסקופ, קנה הנשימה ואוורור מכשיר סופרגלוטי3,4,5,6,7,8,9. כל הטכניקות הללו בוצעו בהצלחה בארנבים בוגרים; עם זאת, ישנם פרסומים מעטים לגבי ניהול דרכי הנשימה המתקדמות בארנב שזה עתה נולד10. מחקר אחד מתאר ביצוע tracheostomies בבעלי חיים בגיל זה כדי להעריך מכניקת נשימה ונפחי ריאות, אם כי זוהי טכניקה אגרסיבית ובלתי הפיכה11. שיטה זו לצנרור אנדוטראצ'י הוכיחה את עצמה כשיטה יעילה וזולה לניהול דרכי הנשימה בארנבים שזה עתה נולדו.

<table><tbody><tr><td>צינור אנדוטרכיאלי פוליוויניל כלוריד (PVC) בקוטר 2 מ"מ</td><td>Vygon</td><td>520.20</td><td></td></tr><tr><td>6 צינור הזנה פוליאוריטן צרפתי</td><td>Vygon</td><td>310.06</td><td></td></tr><tr><td>הרדמה (קטמין וקסילזין)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>מוניטור רב פרמטרי Intellivue MP5</td><td>Phillips</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מלקחיים לחיתוך קצה רגיל ורחב</td><td>LensforVision</td><td>AK005</td><td></td></tr><tr><td>חומר סיכה סטרילי (Silkospray)</td><td></td>מאוורר Rush <td></td><td></td></tr><tr><td>Servo 900c</td><td>Maquet</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

אינטובציה אנדוטרצ'יאלית עיוורת בארנבים יילודים

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

הארנב שזה עתה נולד הוא מודל שימושי לבעלי חיים עבור פתולוגיות ונהלים שונים. ניהול דרכי הנשימה של הארנב מורכב בשל המאפיינים האנטומיים שלו, וזה מסובך עוד יותר במקרה של התינוק. מבין השיטות השונות לניהול מתקדם של דרכי הנשימה, אינטובציה אנדוטראציאלית היא פחות אגרסיבית מאשר קנה הנשימה, והיא אפשרית יותר מניהול סופרגלוטי בהתחשב בהיעדר מכשירים סופרגלוטיים בגודל כה קטן. כמו הדמיה glottis ישירה קשה מאוד בבעלי חיים בגודל זה, מודל זה אינטובציה עיוורת מוצג כחלופה יעילה, במיוחד עבור ניסויים הדורשים הרדמה ממושכת. בשיטה זו, ביצענו צנרורים עיוורים עם שיעור הצלחה של 90%.

במעבדה, טכניקה זו מתבצעת על ידי צוות רפואי עם ניסיון בניסויים עם ארנבים ניו זילנד ומומחיות בניהול דרכי הנשימה בילדים. ההליך בוצע על ידי חוקר אחד מכל 10 בעלי חיים עם שיעור הצלחה עולמי של 90%. בעבר, חוקר אחר תרגל אופטימיזציה הן את המיקום של החיה ואת אורך קיבוע הצינור הנכון. אף אחד מבעלי החיים לא צנרר בוושט. ניסיון אחד בלבד (10%) נכשל בגלל הגודל הקטן ביותר של החיה(טבלה 1). לאחר אינטובציה עיוורת כבר התאמן, הצלחה מושגת בניסיון הראשון ברוב המקרים, גם אם ההליך מבוצע על ידי כוח א...

אנו מתארים טכניקה של אינטובציה אנדוטראצ'י בארנבים שזה עתה נולדו לאחר צנתור ושט עם צינור קיבה.

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

מבוא.ארנב שזה עתה נולד שימושי כמודל חיה של פתולוגיות ונהלים שונים. חלק מההליכים הללו דורשים ניהול מתקדם של דרכי הנשימה, וזה יכול להיות מאתגר בגלל המאפיינים המורכבים של דרכי הנשימה ואת הגודל הקטן של החיה. אנו מציגים טכניקה חדשנית עבור אינטובציה אנדוטרצ'יאלית המבוצעת על ידי חסימת הוושט והכנסת הצינור לדרכי הנשימה ללא הדמיה ישירה. חומרים.נצטרך צינור אנדוטראצ'י בקוטר 2 מ"מ, צינור האכלה של פוליאוריתן צרפתי, ומלקחיים לניתוחים רגילים ורחבי קצה. כמו כן, אנחנו יכולים להשתמש בחומר סיכה סטרילי. הרדמה. להרים את החיה עם xylazine חמישה מיליגרם לקילו וקטמין 25 מיליגרם לקילו.יש למרוח יחד תוך שרירית ברוחב העצום של שרירי הארבע ראשי של הירך. אפשר שלוש עד חמש דקות לתרופה להגיע לתוקף. חזור על אלה עד רפלקס דוושה שלילי מושגת.להעריך את הארנב ישמור על נשימה ספונטנית עד צנרור. אינטובציה אנדוטרצ'יאלית. מניחים את החיה בהשבתה הגבית עם הראש ביתר לחץ דם.גליל עשוי גזה סטרילית וממוקם באזור הגב של הצוואר עשוי להיות מועיל. השתמש במלקחיים פשוטים ורחבי קצה כדי לפתוח את חלל הפה ברוחב של סנטימטר אחד בקירוב. הציגו צינור קיבה פוליאוריתן צרפתי עד להפסקת התקדמותו.צינור ההזנה מועבר ולתקן אותו. הציגו את צינור האנדוטרצ'יאלי בקוטר 2 מ"מ PVC ספוג בחומר סיכה סטרילי עד שהוא מגיע לסימן של שלושה סנטימטרים. אם יש קשיים בקידום הצינור, יש להסירו לחלוטין ולנסות מחדש עד שיושג דאייה חלקה.הצינור גם קבוע. תוצאות. ההליך בוצע בעשרה בעלי חיים. טווח המשקל שלהם היה בין 110 ל 210 גרם בהתאם ליום החיים ומצבם התזונתי.שיעור ההצלחה העולמי היה 90% הכישלון היחיד התרחש הארנב הקטן ביותר בגלל דרכי הנשימה הצרות שלה. מסקנה. המודל של אינטובציה של ארנבים שזה עתה נולדו שאנו מתארים כאן אינו דורש שימוש בציוד מיוחד, קל לשלוט והוא יכול להתבצע על ידי אדם אחד ללא צורך בעוזר. כל טכניקות הגישה לדרכי הנשימה העיוורות מציגות רמה מסוימת של סיכון, אך אנו מאמינים שטכניקה זו היא אופציה כאשר הדמיה מודרכת קשה, כמו בבעלי חיים מעטים מאוד.

blind-endotracheal-intubation-in-neonatal-rabbits

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

סרטון זה מדגים יצירה כירורגית של פתח בקנה הנשימה של הארנב להחדרת צינורית קנה הנשימה לאוורור מלאכותי של הריאות.

קנולציה בקנה הנשימה במודל ארנב: הליך להחדרת קנולה בקנה הנשימה לקנה הנשימה של הארנב

בסרטון זה אנו מדגימים את האינטובציה בקנה הנשימה – הליך פולשני להחדרת צינור אנדוטרכאלי דרך הפה במודל ארנב. הליך זה מאפשר אוורור מכני של הריאות.

אינטובציה בקנה הנשימה לאוורור מכני: הליך להחדרת צינור אנדוטרכאלי בקנה הנשימה של דגם ארנב

צנרור אנדוטרכאליות בארנבים הוא מאתגר עקב שלהם באנטומיה יוצא דופן. כאן אנו מציגים טכניקה לצנרור ישירה של קנה הנשימה באמצעות צנתר פוליפרופילן כמדריך. בשיטה זו מנצל אספקה זולה יחסית, דורש הכשרה מינימלית, וזה יכול להתבצע בקלות בכל סביבה קליניים.

צנרור אנדוטרכאליות ארנבים באמצעות צנתר מדריך פוליפרופילן

שיטה זו מתארת את המיקום של שתלי העורק interposition בארנבים, את התמרה חושית של השתלים, ההישג של הביטוי transgene עמיד. דבר זה מאפשר החקירה של תפקידים פיזיולוגיים ופתולוגיים של transgenes ומוצרים שלהם חלבון בורידים המושתל, ובדיקות של ג'ין טיפולים למחלות שתל הווריד.

דגם ארנב של ביטוי Transgene עמיד ומוחלף כדי שתלי Interposition נפוצים של העורק הראשי

פיתוח ובדיקה של מכשירים אנדווסקולריים לטיפול במפרצת תוך גולגולתית הם עדיין בעלי חשיבות רבה. רוב דגמי המפרצת המשמשים כיום מפספסים את המאפיינים החשובים של דופן מנוונת עורקית או את ההמודינמיקה של ביפורקציה אמיתית. לכן, שמנו לנו למטרה לעצב מודל חדש של ביפורקציה של נרתיק עורקי בארנבים.

נרתיק עורקי מיקרו-כירורגי מודל מפרצת ביבכור בארנב

הכנת ריאות ארנב מבודד הוא כלי סטנדרטי זהב במחקר ריאתי. פרסום זה נועד לתאר את הטכניקה כפי שפותחה לחקר מנגנונים פיזיולוגיים ופתולוגיים המעורבים בתגובה בדרכי הנשימה, שימור ריאות ומחקר פרה-אקליני בהשתלת ריאות ובבצקת ריאות.

מערכת זלוף ריאות מבודדת במודל הארנב

המחקר הנוכחי מדגים מודל בעל חיים בעל יכולת שחזור גבוהה של איסכמיה אזורית חריפה של שריר הלב ופגיעה ברפרפוזיה בארנבים באמצעות מיני בית חזה שמאלי למקרי הישרדות או עצם סטרנטומיה בקו האמצע למקרים שאינם הישרדותיים.

מודל של איסכמיה ופגיעה רפרפוזיה בארנבים

כאן אנו מציגים הליך סטנדרטי לאינטובציה אנדוטרכאלית באמצעות טרכאוטומיה ואחריה בית החזה בחולדות, שמטרתו לשפר את הדיוק והשחזור של יישומים שאינם הישרדותיים הדורשים הנשמה פולשנית וחשיפה של איברי בית החזה במודלים של חולדות in vivo .

אינטובציה אנדוטרכאלית באמצעות טרכאוטומיה ולאחר מכן ניתוחי בית החזה בחולדות ליישומים שאינם הישרדותיים

מנגנונים של מוות פתאומי בלתי צפוי באפילפסיה (SUDEP) אינם מובנים היטב ומאתגרים לתרגום מהמודלים הנוכחיים. ארנבים טרנסגניים עשויים להציע תובנות לגבי מנגנונים אלה. אנו מתארים שיטה להקלטות אלקטרואנצפלוגרפיה ואלקטרוקרדיוגרפיה ארוכות טווח בערכות ארנבים טרנסגניות כדי להעריך אירועים חמורים שעלולים להוביל למוות.

השתלת מכשירי טלמטריה אלקטרואנצפלוגרמה ואלקטרוקרדיוגרמה בערכות ארנב יילודים

אנחנו פיתחנו שיטה פשוטה, אמינה, וזולה יחסית לאינטובציה endotracheal בעכברים באמצעות laryngoscopy הישיר באמצעות אוטוסקופ עם ספקולום 2.0 מ"מ. טכניקה זו היא atraumatic ויכולה לשמש למדידות חוזרות בניסויים כרוניים. אנחנו מוצאים את זה מעולה להנשמה או בעבר דיווח טכניקות נזקקה לניתוח.

Endotracheal אינטובציה בעכברים<em&gt; דרך</em&gt; ישיר laryngoscopy באמצעות אוטוסקופ

למד טכניקת אינטובציה אנדוטרכאלית עיוורת בארנבים יילודים לניהול נתיבי אוויר מורכבים. שיטה זו משפרת הצלחת הנחת צינורות ללא ויזואליזציה ישירה ומאפשרת מחקרים ביולוגיים מתקדמים.

אינטובציה אנדוטרצ'יאלית עיוורת בארנבים יילודים

גלה סרטונים נוספים