5 ביוני 2021
התכווצות המלט הדנטלי במהלך הריפוי מחליפה את לוחית הבסיס. פרוטוקול זה ממזער את הבעיה על ידי יצירת בסיס ראשוני של המלט הדנטלי שמשאיר מקום למלט את לוח הבסיס. שבועות לאחר מכן, ניתן לקבע את לוח הבסיס במקומו על פיגום זה באמצעות מלט חדש קטן, ובכך להפחית את התכווצותו.
מיניסקופ זה יכול להפחית את בעיית ההתכווצות עם צמנט דנטלי במהלך הליך לוחית הבסיס ולהגדיל את שיעור ההצלחה של הקלטות מיניסקופ של אותות פלואורסצנטיים בשתי תצורות אורך. אם לא ניתן להבחין במעבר הפלואורסצנטי במהלך ציפוי הבסיס, בדוק את ביטוי מחוון הסידן ואת המיקום של עדשת ממסר על פרוסת המוח. התחל עם הרכבת המחט הפנימית של קטטר תוך ורידי 20 מד בקוטר של מילימטר אחד על הזרוע הסטריאוטקסית.
מורידים את הצנתר לתוך אמוני תירס 1 הגחוני לאזור המטרה. לאחר מכן, הורידו את מחט המיקרו-הזרקה במהירות של 100 עד 200 מיקרומטר לדקה לתוך הקרנו הגחוני אמוניס 1, והזרימו 200 ננוליטר של הווקטור הנגיפי לאזור המטרה במהירות של 25 ננוליטר לדקה. לאחר מתן אפשרות לנגיף להתפזר במשך 10 דקות, למשוך את מחט microinjection במהירות של 100 עד 200 מיקרומטר לדקה.
לאחר חיטוי עדשת הממסר, יש להשרות את העדשה במי מלח קרים ללא פירוגן עד להשתלה. באמצעות מהדק מיקרו בולדוג עם צינורות כיווץ חום, החזיקו את עדשת הממסר והניחו אותה על גבי אזור המטרה במהירות של 100 עד 200 מיקרומטר לדקה. לאחר מכן, לייצב את העדשה עם מלט שיניים.
כדי להגדיר מיניסקופ, הדקו את עדשת המטרה בתחתית והרכיבו את לוח הבסיס על המיניסקוף. עטפו 10 סנטימטרים של סרט פרפין סביב החלק החיצוני של לוח הבסיס. בעזרת חימר דבק רב פעמי, החזיקו את המיניסקופ עם בדיקת הזרוע הסטריאוטקסית.
יישרו את עדשת האובייקטיבי על גבי עדשת הממסר עם רווח קטן ככל האפשר בין העדשות. השתמש במלט דנטלי כדי להבטיח את מיקום לוח הבסיס, כך שהמלט נוגע רק בסרט הפרפין. כאשר המלט הדנטלי התייבש, הסירו את סרט הפרפין, את לוחית הבסיס ואת המיניסקופ, תוך שמירה על בסיס הצמנט הדנטלי חלול.
אטמו את עדשת הממסר בגומי סיליקון יצוקה וכסו את גומי הסיליקון בשכבה דקה של מלט דנטלי. נתקו את העכבר מהמכשירים הסטריאוטקסיים והכניסו את העכבר לתא התאוששות. לציפוי בסיס, חתכו בזהירות את השכבה הדקה של גג הבטון הדנטלי עם מגלגל עצם והסירו את גומי הסיליקון.
נקו את פני השטח של עדשת הממסר עם 75% אלכוהול. הדקו את בורג הסט לצד לוח הבסיס כדי לקבע אותו לתחתית המיניסקוף. כוונן את שקופית המיקוד כך שתהיה במרחק של כ- 2.7 עד 3 מילימטרים מהמארז הראשי.
בסיום ההגדרה, חבר את המיניסקופ ללוח איסוף הנתונים וחבר את המיניסקופ ליציאת USB 3.0 במחשב. הפעל את תוכנת רכישת הנתונים שפותחה על ידי צוות UCLA. התאם את החשיפה ל- 255, את הרווח ל- 64x ואת נורית העירור ל- 5% כדי לחבר את המיניסקופ לתוכנת איסוף הנתונים, לחץ על כפתור החיבור וצפה בשידור החי של תוכנת איסוף הנתונים בהתחשב בשולי עדשת הממסר כציון דרך.
לאחר מציאת עדשת הממסר, ישר את עדשת המיניסקופ האובייקטיבית לעדשת הממסר ביד. התאמת הזוויות והמרחקים השונים של המיניסקופ, התחל לחפש את אותות הפלואורסצנטיות. החזקת המיניסקופ במיקום האופטימלי, הזזת הזרוע הסטריאוטקסית לכיוון המיני סקופ והצמדת המיניסקופ לזרוע הסטריאוטקסית באמצעות חימר דבק רב פעמי.
חפש את התצוגה הטובה ביותר על-ידי כוונון קל של זרועות X, Y ו- Z. התאם את הזווית בין פני השטח של עדשת האובייקט לבין עדשת הממסר על ידי סיבוב מוט האוזן, מוט השיניים או חימר דבק לשימוש חוזר על ציר Z. ביטוי נגיפי והשתלת עדשה מוצלחים כאשר לפחות תא אחד החליף פלואורסצנטיות חולפת במהלך ציפוי הבסיס.
קבע את לוח הבסיס בחוזקה עם הכמות הקטנה ביותר האפשרית של מלט דנטלי תוך ניטור אזור העניין כדי להבטיח שהמיקום האופטימלי אינו משתנה. במחקר המייצג, ההליך של ציפוי בסיס דמה הוכיח יתרון מכיוון שהוא הביא לשינוי קטן יותר במיקום לוחית הבסיס מאשר ההליך המקורי. תזוזת לוח הבסיס הושפעה גם מגובה המלט הדנטלי.
לוחית הבסיס שהייתה מעוגנת 0.5 ס"מ מעל הגולגולת זזה משמעותית פחות מלוחית הבסיס שהייתה קבועה סנטימטר אחד מעל הגולגולת. בדוגמה להדמיה מוצלחת במהלך הליך ציפוי הבסיס הבחינו בעוברים פלואורסצנטיים יחד עם כלי דם בחיה המורדמת. חולפים פלואורסצנטיים נצפו חמישה ימים לאחר הבסיס, גם כאשר העכבר התנהג בחופשיות בכלוב הביתי שלו עם שינוי קל בלבד בתנוחה.
לאחר מכן בוצעה הדמיית סידן של עכברים. במקרים אחדים התרחשו בעיות במהלך הליך ציפוי הבסיס, כגון היעדר דבר מלבד רקע אחיד או נראות של שולי תאים לבנים. ללא ארעיות פלואורסצנטית.
חשוב לקבע את לוח הבסיס בחוזקה על אזור המטרה עם כמות קטנה ככל האפשר של מלט דנטלי. בעזרת טכניקת צפחה, חוקרים יכולים לצפות לאורך זמן בפעילות העצבית על פני זה. עם הרישיון המתאים, הליך זה יכול גם לחול על התבוננות ברשת העצבית בשדה הראייה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג פרוטוקול מפורט לצמצום בעיות של חוסר יישור (misalignment) במהלך קיבוע פלטת הבסיס (baseplating) במיניסקופים מדגם UCLA V3 המשמשים להדמיית סידן in vivo בעכברים. השיטה נותנת מענה לבעיית ההתכווצות של מלט דנטלי, שעלולה לשנות את המרחק בין העדשה האובייקטיבית לעדשות ממסר (relay lenses) ולהוביל לאיכות תמונה נמוכה. באמצעות יצירת תשתית של מלט דנטלי מאובחן לפני ההצמדה הסופית של פלטת הבסיס, הפרוטוקול משפר את היציבות ואת שיעור ההצלחה של הקלטות המיניסקופ, במיוחד בתצורות של שתי עדשות להדמיית אזורים עמוקים במוח.
דימות סידן אמין in vivo בעכברים בעלי התנהגות חופשית הוא קריטי עבור מדעי העצבים תרגומיים ומסלולי גילוי של תרופות נוירולוגיות. פרוטוקול זה מטפל בצוואר בקבוק טכני מרכזי – מזעור חוסר ההלימה בין עדשות המיניסקופ עקב התכווצות של צמנט דנטלי – ובכך משפר את איכות הנתונים ואת יכולת השחזור במחקרי פעילות עצבית אורך. יציבות דימות משופרת תומכת באופן ישיר בתיקוף מטרות ובצמצום סיכונים מכניסטיים בפורטפוליו של נוירוביולוגיה פרה-קלינית.
פרוטוקול זה משתלב בממשק שבין ביולוגיה גילויית לתיקוף של מודלים פרה-קליניים, ותומך בתהליכי עבודה החל מבדיקת השערות ראשונית ועד לזיהוי מולקולות מובילות (lead identification) בקווי פיתוח של תרופות נוירולוגיות.