-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
ייצור נוירוגנין אנושי 2-Inducible Neurons בביוריאקטור תרחיף תלת ממדי
ייצור נוירוגנין אנושי 2-Inducible Neurons בביוריאקטור תרחיף תלת ממדי
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Production of Human Neurogenin 2-Inducible Neurons in a Three-Dimensional Suspension Bioreactor

ייצור נוירוגנין אנושי 2-Inducible Neurons בביוריאקטור תרחיף תלת ממדי

Full Text
2,083 Views
07:21 min
March 17, 2023

DOI: 10.3791/65085-v

Jeanette Wihan1, Isabell Karnatz1, Isabelle Sébastien1, Ralf Kettenhofen1, Benjamin Schmid2, Christian Clausen2, Benjamin Fischer1, Rachel Steeg3, Heiko Zimmermann1,4,5,6, Julia C. Neubauer1,4

1Fraunhofer Project Center for Stem Cell Process Engineering,Fraunhofer Institute for Biomedical Engineering IBMT, 2Bioneer A/S, 3Fraunhofer UK Research Ltd, Technology and Innovation Centre, 4Fraunhofer Institute for Biomedical Engineering IBMT, 5Department of Molecular and Cellular Biotechnology,Saarland University, 6Facultad de Ciencias del Mar,Universidad Católica del Norte

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a protocol for generating human induced pluripotent stem cell-derived neurons using a benchtop 3D suspension bioreactor. The method facilitates high cell yield and rapid neuronal differentiation in a physiological environment, offering potential for large-scale applications.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Stem Cell Biology
  • Cell Culture Techniques

Background

  • Human induced pluripotent stem cells can differentiate into various cell types.
  • 3D culture systems improve cell interactions and viability.
  • Large-scale applications are necessary for efficient cell production.
  • Previous methods primarily utilized 2D culture systems.

Purpose of Study

  • To develop a cost-effective protocol for rapid neuronal differentiation.
  • To enhance cell yield and maintain low batch-to-batch variability.
  • To lay the groundwork for automated large-scale bioreactor systems.

Methods Used

  • The study utilizes a benchtop 3D suspension bioreactor.
  • Human induced pluripotent stem cells are the biological model for differentiation.
  • The protocol includes critical steps for cell detachment, resuspension, and differentiation.
  • Neuronal differentiation is induced after a pre-cultivation phase, followed by media changes.
  • Cells are cryopreserved after two days of differentiation for subsequent maturation.

Main Results

  • The protocol resulted in neuronal cells that maintained viability and functionality.
  • Cell aggregates grew substantially during the initial days of differentiation.
  • Distinct neuronal markers confirmed the identity of cryopreserved cells.
  • The study found that prolonged culture beyond a certain point did not increase cell yield.

Conclusions

  • This study demonstrates a scalable approach for producing neurons from iPSCs.
  • The methods introduced may advance our understanding of neuronal development.
  • Future applications could significantly benefit from automation in bioreactor environments.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a 3D bioreactor for neuronal differentiation?
3D bioreactors improve cell-cell and cell-matrix interactions, resulting in higher yields and more physiologically relevant cellular environments compared to 2D cultures.
How is the induction of neuronal differentiation achieved?
Neuronal differentiation is initiated by replacing the culture medium with a neural induction medium after pre-cultivation of aggregates.
What are the key steps in the protocol?
Key steps include detaching human iPSCs, resuspending aggregates, inducing differentiation, and performing media changes regularly.
What types of data are obtained from this method?
The method yields neuronal cells that can be characterized by molecular markers and viability assessments, providing insights into their maturity.
How can this protocol be scaled for larger studies?
The approach is suited for automation in bioreactors, allowing for increased throughput and efficiency in cell production for research and therapeutic applications.
What are the limitations of this study?
Prolonged cultivation past optimal time frames may not enhance yields, as aggregates can become resistant to enzymatic detachment.

מאמר זה מתאר פרוטוקול ליצירת תאי עצב פלוריפוטנטיים המושרים על ידי תאי גזע אנושיים בביוריאקטור תרחיף תלת-ממדי של ספסל.

שימוש בביוריאקטורים לתרגום תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים או פרוטוקולי תרבית IPSC מדו-ממד לתלת-ממד מאפשר יצירת תאים במספרים גבוהים עבור יישומים בקנה מידה גדול כגון הקרנות בתפוקה גבוהה. פרוטוקול התמיינות עצבי מהיר זה בסביבה פיזיולוגית תלת-ממדית משפר את האינטראקציות בין תאי ההתחלה ומעניק תפוקת תאים גבוהה למשך זמן קצר יותר עם וריאציה נמוכה של אצווה ל=אצווה ובכך מפחית עלויות וזמן. הבנק האירופי של תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים מיישם גישות דומות ליצירה מהירה וחסכונית של תאים ממוינים על פני שושלות מרובות, כולל תאי מוח אחרים וקרדיומיוציטים.

התחילו לפני הטיפוח כאשר תא הגזע הפלוריפוטנטי המושרה על ידי האדם, או תרבית iPSC אנושית, הוא 60% עד 80% במקביל. שאפו את המדיום לחלוטין מתאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים אנושיים ושטפו בעדינות את התאים עם 1X DPBS פעמיים. הוסיפו שני מיליליטר של תמיסת טריפסין EDTA שחוממה מראש לצלחת פטרי בקוטר שישה סנטימטרים ודגרו על התאים במשך שלוש דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באינקובטור.

לאחר מכן, טפחו בעדינות על הכלים כדי להקל על ניתוק התאים או דגרו למשך דקה עד שתיים נוספות אם התאים אינם מתנתקים. לאחר מכן, השהה מחדש את התאים בכל צלחת על ידי הוספת חמישה מיליליטר של אמצעי תחזוקה IPSC ללא מזין עם מעכב ROCK. העבירו את תרחיף התא לצינור של 15 מיליליטר או 50 מיליליטר וערבבו בעדינות על ידי פיפטינג כדי להבטיח סינגולריזציה של התא.

קבע את מספרי התאים ב- 100 מיקרוליטר של תרחיף תאים באמצעות מונה תאים אוטומטי והעבר את נפח תרחיף התאים הרצוי לצינור של 50 מיליליטר. צנטריפוגה את התאים ב 300 גרם במשך שלוש דקות. לאחר מכן, שאפו את הסופרנאטנט והשעו מחדש את התאים בשני מיליליטר של אמצעי תחזוקה IPSC ללא מזין עם מעכב ROCK.

ממלאים כל צינור 50 מיליליטר עם 18 מיליליטר של המדיום. לאחר מכן, יש לפזר 20 מיליליטר של תרחיף תאים לכל צינור ביוריאקטור. הכניסו את הצינורות למערכת הביוריאקטור והגדירו את פרמטרי הגידול למשך זמן בלתי מוגבל.

התחל את תוכנית קדם-הטיפוח באמצעות תצוגת הביוריאקטורים. כדי לשנות את המדיה למחרת, הניחו לצבר להתיישב בצינורות הביוריאקטור למשך כחמש דקות לפני שתשאפו בזהירות את הסופרנטנט. הוסף 15 מיליליטר של אמצעי תחזוקה IPSC טרי ללא מזין ללא מעכב ROCK לכל צינור והמשך את הגידול בביוריאקטור העליון במשך 24 שעות.

כדי להתחיל התמיינות עצבית, תנו לצבר להתיישב בצינורות הביוריאקטור ושאפו בזהירות את הסופרנאטנט מהתאים, תוך השארת כחמישה מיליליטר של סופרנאטנט בצינור. לאחר מכן, להוסיף 35 מיליליטר של מדיום אינדוקציה עצבית המורכב מדיום neurobasal ושני מיקרוגרם למיליליטר של דוקסיציקלין. החזירו את הצינורות לביוריאקטור שעל הספסל והמשיכו בטיפוח.

בצע שינויי מדיה מדי יום במשך יומיים, כפי שהודגם בעבר. לאחר שאיפת הסופרנאטנט כפי שהוצג קודם לכן, מעבירים את האגרגטים לצינור סטרילי של 15 מיליליטר או 50 מיליליטר ושוטפים בעדינות את האגרגטים פעמיים עם DPBS. שאפו בזהירות את הסופרנאטנט ככל האפשר מבלי להפריע לאגרגטים.

לאחר מכן להוסיף שניים עד חמישה מיליליטר של אנזים דיסוציאציה תאים שחומם מראש לכדור, בהתאם לגודל הכדור, ולדגור על התאים במשך כ -10 דקות ב 37 מעלות צלזיוס באמבט מים. השהה מחדש בעדינות את הצברים המשוקעים כל שתי דקות עד שהאגרגטים יתנתקו. הוסף תווך נוירובזאלי שחומם מראש, פי שלושה מנפח אנזים הדיסוציאציה התאית שנוסף קודם לכן, והשהה מחדש את התאים בזהירות כדי להבטיח סינגולריזציה של התא.

קבע את מספרי התאים והעבר את נפח תרחיף התאים המתאים לשימור בהקפאה לצינור של 15 מיליליטר או 50 מיליליטר. צנטריפוגה לתאים ב 300 גרם במשך שלוש דקות. שאפו את הסופרנאטנט והשהו בעדינות את גלולת התא בנפח המתאים של מדיום ההקפאה המכיל 10% דימתיל סולפוקסיד.

Aliquot את תרחיף התא בבקבוקונים מתאימים לשימור בהקפאה. מעבירים את הבקבוקונים מיד למיכל הקפאה מצונן מראש ובקצב איטי מלא ב-2 פרופנול ומניחים את המיכל על מינוס 80 מעלות למשך הלילה. הניחו את הבקבוקונים על מינוס 150 מעלות צלזיוס למחרת לאחסון לטווח ארוך.

לאחר שהתרביות הדבקות של תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים אנושיים נותקו, יוחדו והועברו להשעיה, נוצרו אגרגטים תוך 24 שעות והמשיכו לגדול. לאחר יומיים של השראת טרנסגנים, תאי עצב מוקדמים יכולים להישמר בהקפאה להבשלה לאחר מכן. נצפתה התפשטות מתמשכת של תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים אנושיים במהלך הימים הראשונים בהשעיה, ומספר תרביות התאים הגיע לשיא לאחר יומיים של זירוז.

עם זאת, גידול ממושך במשך יותר מארבעה ימים בהשעיה לא שיפר את תפוקת התאים, שכן האגרגטים נעשו עמידים יותר ויותר לסינגולריזציה אנזימטית. יתר על כן, בהשוואה ליום האפס, הקוטר המצרפי גדל ב -50% ביום השני וכמעט הוכפל ביום החמישי. למרות שהגדלת הקוטר מגבילה את אספקת החומרים המזינים לאגרגטים, יכולת הקיום של התאים לא הושפעה ביום השני או החמישי להתמיינות.

פרופיל ביטוי הגנים הטמפורלי, כמו גם הצביעה האימונוכימית של הסמנים העצביים בטא שלוש טובולין וחלבון הקשור למיקרוטובול, או MAP2, אישרו את זהות התאים העצביים של תאי ההקפאה של היום השני. בנוסף, תרביות עצביות הועשרו בתעתיקי טאו חלבוניים הקשורים למיקרוטובול, או MAPT, והראו ירידה במקביל בביטוי גורם השעתוק המווסת פלוריפוטנציה POU5F1 רשת עצבית צפופה נוצרה בשבוע הראשון לאחר ההפשרה, מה שהצביע גם על הבשלה גוברת של התרביות העצביות. פרוטוקול זה מניח את היסודות לתרגום לביוריאקטורים בקנה מידה גדול ואוטומטיים לחלוטין, המראים גידול משמעותי נוסף בקיבולת פלט התא עבור יישומים עתידיים בקנה מידה גדול.

לאחר שהוכח עם נוירוגנין 2, השימוש בגורמי שעתוק קובעים ליניאריים כדי להאיץ את ההתמיינות יושם על סוגי תאים רבים ושונים ומחלות כדי להקל על מודלים iPSC.

Explore More Videos

החודש ב-JoVE גיליון 193

Related Videos

גזירת יעיל של אבות עצב נוירונים האדם מן האדם תאים pluripotent גזע עובריים עם אינדוקציה מולקולה קטנה

10:47

גזירת יעיל של אבות עצב נוירונים האדם מן האדם תאים pluripotent גזע עובריים עם אינדוקציה מולקולה קטנה

Related Videos

15.9K Views

טיפוח האדם ובתאים עצבית ב Hydrogel עצמית להרכבת 3 מימדי פפטיד

11:01

טיפוח האדם ובתאים עצבית ב Hydrogel עצמית להרכבת 3 מימדי פפטיד

Related Videos

17K Views

דור מהיר ויעיל של נוירונים מתאי גזע pluripotent אדם בפורמט פלייט Multititre

07:27

דור מהיר ויעיל של נוירונים מתאי גזע pluripotent אדם בפורמט פלייט Multititre

Related Videos

44.1K Views

יצירת אורגנואידים עצביים דופמינרגיים מתאי גזע עובריים אנושיים

04:55

יצירת אורגנואידים עצביים דופמינרגיים מתאי גזע עובריים אנושיים

Related Videos

668 Views

כימות תלת ממדיות של קוצים הדנדריטים מפירמידת נוירונים שמקורם בתאי גזע האנושי המושרה pluripotent

10:18

כימות תלת ממדיות של קוצים הדנדריטים מפירמידת נוירונים שמקורם בתאי גזע האנושי המושרה pluripotent

Related Videos

13.3K Views

דור פשוטה של תרבות תשואה גבוהה של נוירונים המושרה מ Fibroblasts עור מבוגר

09:07

דור פשוטה של תרבות תשואה גבוהה של נוירונים המושרה מ Fibroblasts עור מבוגר

Related Videos

10.9K Views

Microcircuit סינפטית דוגמנות עם Cocultures 3D האסטרוציטים ו נוירונים מתאי גזע Pluripotent אנושי

08:48

Microcircuit סינפטית דוגמנות עם Cocultures 3D האסטרוציטים ו נוירונים מתאי גזע Pluripotent אנושי

Related Videos

12.8K Views

ארגונית עצבית אנושית לחקר סרטן המוח ומחלות ניווניות

09:36

ארגונית עצבית אנושית לחקר סרטן המוח ומחלות ניווניות

Related Videos

10.6K Views

ייצור אוטומטי של נוירונים קורטיים קורטיים ודופאמין נגזר תאי גזע המושרה על ידי תאי גזע אנושיים עם ניטור משולב של תאים חיים

09:34

ייצור אוטומטי של נוירונים קורטיים קורטיים ודופאמין נגזר תאי גזע המושרה על ידי תאי גזע אנושיים עם ניטור משולב של תאים חיים

Related Videos

7.8K Views

יצירת נוירונים אנושיים ואוליגודנדרוציטים מתאי גזע פלוריפוטנטיים למידול אינטראקציות נוירון-אוליגודנדרוציטים

10:53

יצירת נוירונים אנושיים ואוליגודנדרוציטים מתאי גזע פלוריפוטנטיים למידול אינטראקציות נוירון-אוליגודנדרוציטים

Related Videos

5.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code