Name: שימוש באוליגונוקלאוטידים סינתטיים שעברו שינוי כדי להעריך אנזימים לחילוף חומרים של חומצות גרעין (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-05T14:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 33 s
Description: למדו איך לאפיין אנזימים המטבוליזים חומצות גרעין כמו ליגזות, נוקלאזות ופולימראזות באמצעות אוליגונוקלאוטידים סינתטיים עם תיוג פלואורסצנטי. השיטה מאפשרת לחקור התנהגות אנזימים בדו-גדילים המחקים נזקי DNA ו-RNA.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

AW נתמך על ידי מלגת Rutherford Discovery Fellowship (20-UOW-004). RS היא זוכת מלגת ניו זילנד פוסט אנטארקטיקה. SG ו- UR מודים למכון הכימי באוניברסיטת טרומסו - האוניברסיטה הארקטית הנורבגית לתמיכה טכנית.

1. תכנון ורכישה של אוליגונוקלאוטידים
הערה: תכננו אוליגונוקלאוטידים חד-גדיליים שיורכבו ויחושלו לדופלקסים הרצויים. אחד או יותר מהגדילים בדופלקס חייב לשאת מואטי פלואורסצנטי למעקב אחר עיבוד אוליגונוקלאוטיד על ידי האנזים המעניין. קבוצת בסיס של רצפים חד-גדיליים שניתן להרכיב למגוון פעילויות מוצגת בטבלה 1.
<ol><li>שלבו את השינויים הספציפיים הדרושים לאנזים המעניין כמתואר להלן.<ol><li>עבור מצעי ליגאז דנ"א (איור 1): הרכיבו את המצע הפשוט ביותר משלושה אוליגונוקלאוטידים: גדיל תורם זרחני 5' (NL2), גדיל מקבל 5' FAM (NL1), ומשלים שמגשר בין השניים (NL3).<ol><li>ודא שגדילים המספקים את הקצה של 5 אינץ' של הניק הניתן לליגה עוברים פוספורילציה לפני הרכבת תערובת האב של המצע בשלב 2. הזמינו זאת כשינוי ב-NL2 (כפי שניתן בטבלה 1) או השתמשו בזרחן אנזימטי עם פולינוקלאוטיד קינאז T4 לאחר השעיה מחדש של האוליגונוקלאוטידים.</li>
			<li>כללו זרחן 5'-טרמינלי של NL6 ו-NL8, המהווים את המשלים של שברים דו-גדיליים המתוארים באיור 1A (NL6/NL7 ו-NL8/NL9), שכן זה דומה ביותר למצע הטבעי המופק מאנדונוקלאז הגבלה. השתמש במצע בעל תווית כפולה כדי לקבוע את ההיקפים היחסיים של קשירה עבור הרכבות מרובות חלקים (ראה שלב 6).</li>
			<li>שנה את גדיל המשלים כדי ליצור אי-התאמות (NL10) ורווחים (NL11). הערה: וריאציות על המצע הפשוט מתוארות באיור 1A. ניתן להשתמש ברצפים אחרים כדי ליצור טווח רחב עוד יותר של אי-התאמות או רווחים ארוכים יותר על ידי שינוי המיקום המסומן בקו תחתון.</li>
			<li>תחליף אוליגונוקלאוטידים של DNA באוליגונוקלאוטידים של RNA. הערה: וריאציות על המצע הפשוט מתוארות באיור 1B. טווח רחב יותר של דופלקסים של דנ"א/רנ"א יכול להיווצר על ידי שילובים נוספים של קבוצת הבסיס שניתנה כאן כדי ליצור, למשל, הפסקות דו-גדיליות המכילות גם רנ"א וגם דנ"א. דוגמה לווריאציה זו ניתנת בשלב 6 להלן, שבו נעשה שימוש באסטרטגיית תווית כפולה.</li>
		</ol></li>
		<li>עבור מצעי DNA פולימראז: הרכיבו את האוליגונוקלאוטידים NL1 ו-NL3 המפורטים בטבלה 1 כדי לתת בדיקת הרחבת פריימר פשוטה. חקור היבטים נוספים של פעילות פולימראז על-ידי הכנסת שינויים לגדילים NL1 (פריימר) או NL3 (תבנית).<ol><li>שלב אנלוגים בסיסיים פגומים באוליגונוקלאוטיד NL3 לפני מיקום 20 כדי לקבוע את היכולת לעקוף נגעים פגומים על גדיל התבנית.</li>
			<li>שלב אנלוגים בסיסיים פגומים באוליגונוקלאוטיד NL1 במיקום 20 כדי לקבוע את היכולת להאריך פריימר פגום.</li>
			<li>השתמש ב- RNL1 או ב- RNL3 בדופלקס כדי לחקור את ההרחבה של פריימר RNA או את השימוש בתבנית RNA.</li>
		</ol></li>
		<li>עבור מצעי נוקלאז (איור 2): הרכיבו אוליגונוקלאוטידים כדי לתת טווח לא ממצה של מצעים כפולים וחד-גדיליים (איור 2Ai), כמו גם טווח של צמתים מנופפים ומשובצים (איור 2Aii) ומצעים פגומים (איור 2B).<ol><li>כדי לחקור פעילויות ריבונוקלאז, החלף באופן איטרטיבי את NL1, NL2 ו- NL3 ב- RNL1, RNL2 ו- RNL3. השתמש בגרסאות RNA נוספות של HJ5 ו- HJ6 כדי להרחיב קבוצה זו עוד יותר.</li>
			<li>השתמשו באוליגונוקלאוטידים MD5, MD6 ו-MD9 שיש להם שינוי במיקום מרכזי שמחקה נזק חמצוני, חומר ביניים לתיקון בסיסי או תוצר דה-אמינציה (איור 2B). המצעים יזהו שסע של הגדיל במיקום זה. תייג את גדיל NL3 המשלים עם פלואורופור אורתוגונלי כגון TAMRA כדי לזהות מחשוף דו-גדילי (ראה שלב 6).</li>
			<li>השתמש בתיוג אורתוגונלי של המשלים כדי לזהות חיתוך דו-גדילי באתרים שאינם תואמים הן על גדילי הבדיקה (NL5 ו- ND9) והן על גדילי המשלים (MD10 ו- NL10).</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>להזמין אוליגונוקלאוטידים סינתטיים המשלבים פלואורופורים רלוונטיים ושינויים אחרים מספק מסחרי. הערה: סולם סינתזה של 100 ננומטר וטיהור HPLC לאחר סינתזה מתאימים לבדיקות המתוארות.</li>
</ol>2. הרכבה וחישול של דופלקסים של חומצות גרעין
<ol><li>השעיה ודילול של אוליגונוקלאוטידים<ol><li>לפני הפתיחה, צנטריפוגו את האוליגונוקלאוטידים הליופיליים בצינורות 2 מ"ל שלהם במהירות מלאה בצנטריפוגה על ספסל למשך 2-5 דקות כדי להבטיח שחומצת הגרעין נמצאת בתחתית הצינור.</li>
		<li>הכינו מלאי אב של 100 מיקרומטר על ידי השעיה מחדש של האוליגונוקלאוטידים במאגר TE (10 mM tris(hydroxymethyl)aminomethane (Tris), 1 mM ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)). ודא שהאוליגונוקלאוטידים מושהים מחדש ביסודיות על ידי מערבולות עדינות חוזרות ונשנות וצנטריפוגות קצרות במלוא המהירות.</li>
		<li>הכינו מלאי של 10 מיקרומטר על ידי דילול אליציטוט של מלאי מאסטר עם מאגר TE. יש לדלל את מלאי ה-10 מיקרומטר במים אולטרה-טהורים (MQ water) כדי להכין מלאי עבודה בריכוזים של 0.5 מיקרומטר, 0.7 מיקרומטר או 2.5 מיקרומטר לפי טבלה 2.</li>
	</ol></li>
	<li>הרכבה וחישול של תערובות מאסטר התגובה<ol><li>השתמש במניות עבודה כדי להרכיב את תערובות האב לתגובה באמצעות הצירופים המופיעים בטבלה 2 והנפחים המופיעים בטבלה 3. עבור בדיקת ליגאז DNA סטנדרטית ורוב הבדיקות האחרות המתוארות כאן, הרכב החיץ הסופי הוא 50 mM Tris pH 8.0, 50 mM NaCl, 10 mM Dithiothreitol (DTT) עם 10 mM Mg כקטיון דו-ערכי.</li>
		<li>אנאל את האוליגונוקלאוטידים בצינור PCR או מיקרוצנטריפוגה על ידי חימום ב 95 ° C במשך 5 דקות באמצעות בלוק חימום או thermocycler. מצננים לטמפרטורת החדר למשך 30 דקות (נפחים &lt;1 מ"ל) עד שעה אחת (נפחים &gt;1 מ"ל). עבור אוליגונוקלאוטידים ארוכים יותר (&gt;40 nt), בצע קירור איטי יותר באמצעות thermocycler עם רמפה למטה של 95 ° C עד 25 ° C במשך 45 דקות, או לצוף את הצינור המכיל תערובת חישול בכוס 1 L של מים רותחים ולאפשר להתקרר לטמפרטורת החדר במשך הלילה.</li>
		<li>הוסף גורמים משלימים של נוקלאוטידים ורכיבי חיץ רגישים אחרים לחום לתערובת האב לאחר קירור לטמפרטורת החדר. השתמש בתערובת התגובה הסופית ישירות לבדיקה על ידי תוספת של אנזים (ראה שלב 3 להלן) או לאחסן ב -20 ° C לשימוש עתידי.</li>
	</ol></li>
</ol>3. הגדרת בדיקה סטנדרטית
<ol><li>הרכבה וייזום של תגובת הבדיקה<ol><li>שלב 22.5 μL של תערובת האב המצע של עניין עם 2.5 μL של ליגאז DNA או אנזים אחר של עניין בצינור PCR. הפעל תגובות כפולות או משולשות, במיוחד אם התוצאות יכומתו.</li>
		<li>כלול בקרה ללא חלבון (מאגר בלבד) בדגימות הבדיקה. אין לכלול בקרות קו-פקטור בשלב זה, במידת הצורך. הערה: ניתן לאחסן אנזימים בטמפרטורה של -20°C בגליצרול 50% v/v, מה שמאפשר לגרוף אותם ישירות מתמיסה. ודא שתמיסות אנזימים עם גליצרול מעורבבות היטב לפני התוספת, בין אם על ידי פיפטינג לערבוב או על ידי ערבול עדין.</li>
	</ol></li>
	<li>מיד להעביר את התגובות למכונת PCR ב 25 ° C ולדגור במשך 30 דקות. שנו את הטמפרטורה ואת משך הזמן בהתאם לתנאים האופטימליים לפעילות האנזים.</li>
	<li>להרוות את התגובות על ידי הוספת 5 μL של צבע העמסה (95% פורממיד, 0.5 M Ethylenediaminetetraacetic חומצה (EDTA), bromophenol כחול) ולדגור על 95 ° C במשך 5 דקות.</li>
</ol>4. ניתוח תוצאות הבדיקה
<ol><li>הכינו ג'לים Tris-Borate-EDTA (TBE)-Urea PAGE כמתואר להלן.<ol><li>הכינו מלאי של 20% אקרילאמיד, 7 M Urea ותמיסת TBE 1x. עבור ערכת האוליגונוקלאוטידים המתוארת כאן, השתמש בתמיסת אקרילאמיד/ביס ביחס של 29:1 לקבלת רזולוציה אופטימלית.</li>
		<li>עבור ג'ל אחד, ערבבו 10 מ"ל של 20% אקרילאמיד ותמיסת אוריאה 7M עם 100 μL של APS (10%) ו-3 μL של טטרמתילאתילאנדיאמין (TMED) ויצקו ביציקת ג'ל.</li>
	</ol></li>
	<li>לאחר שהג'ל מתמצק, הפעל את הדגימות על ג'ל אוריאה TBE ב 45 - 55 מעלות צלזיוס.<ol><li>הפעילו מראש את הג'ל במאגר TBE אחד למשך 30 דקות ב-10 mA לג'ל עם חימום חיצוני.</li>
		<li>הסר עודף אוריאה בבארות של ג'ל על ידי שטיפה עם 1x TBE באמצעות פיפטה מרעה.</li>
		<li>טען 10 μL מכל תגובה והפעל ב 10 mA במשך 1.0-1.5 שעות עם חימום חיצוני.</li>
	</ol></li>
	<li>דמיינו את הג'ל במכונת ההדמיה עם ההגדרות הנכונות עבור הפלואורופור שנבחר. ל-FAM, השתמשו בערכת מסננים המעניקה עירור/פליטה ברזולוציה של 495/519 ננומטר, המאוחסנת כקביעה מוגדרת מראש ברוב מכשירי ההדפוס.</li>
	<li>לכמת את עוצמת הפס של המוצר והמצע באמצעות תוכנת עיבוד תמונה עם מכונת ההדמייה, או תוכנה חיצונית כגון ImageJ49,50 ולחשב את אחוז המוצר באמצעות הנוסחה <img alt="נוסחת פרופורציה, P/(P+S)×100, המשמשת לחישוב אחוזים בניתוח נתונים." src="/files/ftp_upload/66930/66930eq01.jpg" style="margin: auto;" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Equation 1"> כאשר P הוא הערך המשולב של פס המכפלות, ו - S הוא האזור המשולב של רצועת המצע. במקרה של דוגמת תגובת ליגאז DNA, רצועת המכפלה פועלת ב-40 נוקלאוטידים (nt) ורצועת המצע ב-20 nt.</li>
</ol>5. דה-אדנילציה של ליגאז ה-DNA לבדיקת ספציפיות קו-פקטור
<ol><li>הכנת תערובות מאסטר תגובה<ol><li>הכינו ערכה אחת של תערובת האב המכילה את אוליגונוקלאוטיד NL1 המסומן בתווית FAM כמתואר בטבלה 4. הכינו ערכה שנייה המכילה את האוליגונוקלאוטיד NL1 ללא תווית FAM, כמתואר בטבלה 4.</li>
		<li>בנפרד, חממו את שני דופלקסי הדנ"א ל-95°C למשך 5 דקות וקררו למשך 30 דקות עד שעה ב-25°C. אין להוסיף קו-פקטור נוקלאוטידים לאף אחת מתערובות האב.</li>
	</ol></li>
	<li>הרכבה וייזום של תגובת דה-אדנילציה<ol><li>הכינו תגובת דה-אדנילציה יחידה עבור כל סוג / ריכוז קו-פקטור שייבדקו על ידי שילוב של 10 μL של תערובת האב ללא תווית עם 2.5 μL של אנזים ליגאז.</li>
		<li>הכינו צינורות נוספים כבקרה ללא קו-פקטור וללא בקרת חלבונים (2.5 מיקרוליטר של חיץ שנוסף במקום אנזים).</li>
		<li>לדגור על התגובות בטמפרטורה ספציפית לפעילות האופטימלית של האנזים, למשך 1-2 שעות. זמן הדגירה יכול להיות מוגבר אם האנזים הוא עדיין adenylated.</li>
	</ol></li>
	<li>הפעל את תגובת הקשירה עם הקו-פקטור.<ol><li>הוסף 10 μL של תערובת האב המסומנת ו- 2.5 μL של הגורמים משלימים של הנוקלאוטידים הרצויים (לדוגמה, ATP, NAD, ADP או GTP) ישירות לתגובה דה-אדניל (ריכוז סופי של 0.1-1 mM).</li>
		<li>הוסף 2.5 μL של מאגר תגובה לבקרת הקו-פקטור ללא נוקלאוטידים.</li>
		<li>לדגור את התגובות עבור אותו פרק זמן וטמפרטורה כמו בשימוש בעבר. הרוו והציגו באופן חזותי כמתואר בשלב 4.</li>
	</ol></li>
</ol>6. שימוש במצעים בעלי תווית כפולה לקשירת סד או הרכבה מרובת חלקים
<ol><li>תכננו ורכשו אוליגונוקלאוטיד עם מואטי פלורסנטי בעל ספקטרום עירור / פליטה שונה לפלואורופור שכבר נמצא בשימוש.<ol><li>במערך המתואר כאן, השתמש באוליגונוקלאוטיד NL2 (TAMRA) בעל 5-Carboxytetramethylrhodamine (TAMRA) בקצה 3' (טבלה 1).</li>
	</ol></li>
	<li>הרכיבו את תערובת האב כמתואר להלן.<ol><li>שלב את מרכיבי התגובה המתוארים בשלב 2, כולל יחסים שווי ערך של כל האוליגונוקלאוטידים המשמשים בהרכבה, כמו גם קטיונים חוצצים ודיוולנטיים.</li>
		<li>אנאל על ידי חימום ב 95 ° C במשך 5 דקות וקירור ב 25 ° C במשך 30 דקות - 1 שעות. הוסף את הקו-פקטור ואת האנזים ודגור כמתואר בשלב 3.</li>
	</ol></li>
	<li>הפעל וצלם את הדגימות כמתואר בשלב 4 באמצעות התעלות המתאימות לזוג הפלואורופורים במצע. במקרה של FAM ו-TAMRA, אלה הם תעלות פלואורסצאין (FITC) וטטרמתיל רודאמין (TRITC) הקיימות ברוב מכשירי ההדמיה.</li>
</ol>7. הערכה של קשירת DNA על ידי Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA) על ג'ל טבעי
<ol><li>הכינו ג'ל TBE PAGE מקורי 10% כמתואר להלן.<ol><li>יש לערבב 2.5 מ"ל של 40% אקרילאמיד, 1 מ"ל של 10x TBE, 100 μL של 10% APS, 3 μL של TMED ו-6.5 מ"ל של מי MQ ולצקת ביציקת ג'ל.</li>
	</ol></li>
	<li>הרכיבו את התגובה המחייבת כמתואר להלן.<ol><li>הרכיבו את מצע ה-EMSA לפי טבלה 5 כך שייכלל EDTA (10 מילימטר) ויושמטו יוני מתכת.</li>
		<li>ערבבו 20 μL של תערובת האב של מצע EMSA עם 5 μL של החלבון בצינור PCR. כלול דגימה ללא בקרת חלבון. יש לדגור במשך 30 דקות ב-25°C.</li>
	</ol></li>
	<li>נתח על ידי אלקטרופורזה טבעית כמתואר להלן.<ol><li>הוסף 5 μL של צבע העמסה טבעי 5x (100 mM EDTA, 0.25% ברומופנול כחול, 25% v/v גליצרול, ומי MQ עד 1 מ"ל) לדגימות.</li>
		<li>מעמיסים על הג'ל המוכן ופועלים במתח של 60 וולט למשך 2-3 שעות עם קירור על ידי סירקולציית מים עד שחזית הצבע נמצאת כמה סנטימטרים מעל קצה הג'ל.</li>
		<li>הצג ונתח ג'לים כמתואר בשלב 4.</li>
	</ol></li>
</ol>

בדיקות עבור אנזימי DNA באמצעות אוליגונוקלאוטידים סינתטיים

SEG ו-UR הם עובדים של ArcticZymes Technologies AS, המפיצה את ליגאז R2D. ל-AW, ER-S ו-RS אין אינטרסים מתחרים.

שלבים קריטיים בפרוטוקול תכנון ורכישה של אוליגונוקלאוטידים: בעת רכישת אוליגונוקלאוטידים ליצירת דופלקס, חיוני לשקול תכנון רצף. מומלץ להשתמש בכלי אנלייזר אוליגו לחיזוי תכונות רצף הנוקלאוטידים, כגון תכולת GC, טמפרטורת התכה, מבנה משני ופוטנציאל דימריזציה, לפני הזמנת57.
הרכבה וחישול של דופלקסים של חומצות גרעין: בעת הכנת דופלקסים מסוג RNA/RNA-DNA, יש להקפיד למנוע זיהום RNase על ידי שימוש בריאגנטים ומים נטולי RNase או הוספת מעכב RNAse (כל עוד האנזים הנחקר אינו RNAse בעצמו). ציוד, כפפות וחלל ספסל יש לטפל בתמיסת טיהור RNase לפני הרכבת תערובות האב כדי למנוע השפלה של אוליגונוקלאוטידים58. מלאי מאסטר של אוליגונוקלאוטידים RNA יכול להיות מורכב בקבוצות קטנות יותר במקרה של זיהום.
ליגאזות DNA דורשות תמיד קו-פקטור של נוקלאוטידים, ATP או NAD, בריכוז סופי בין 0.1 ל-1 מילימול. DNA פולימראז דורש dNTPs עבור סינתזת גדילים, ואלה מתווספים בדרך כלל ביחסים שווי ערך של 50 מיקרומטר של כל אחד. בעת הכנת תערובות אב לדופלקסים של ליגאז ופולימראז, יש להוסיף לתערובת האב גורמים משלימים של נוקלאוטידים, כגון ATP, NAD ו-dNTPs, לאחר חימום וקירור התערובת לטמפרטורת החדר, מכיוון שהם רגישים לחום.
חיץ 10x לחישול האוליגונוקלאוטידים דורש תוספת של DTT, שיש לו זמן מחצית חיים קצר ובאופן אידיאלי צריך להיות מוכן טרי או קפוא לפני השימוש. ניתן להכין מראש אליציטוטים קטנים יותר של חיץ 10x ולאחסן בטמפרטורה של 4°C, בתוספת DTT לפני השימוש.
מלאי אוליגונוקלאוטידים ותערובות מאסטר יש לאחסן בטמפרטורה של -20 מעלות צלזיוס לשימוש ארוך טווח, ואוליגונוקלאוטידים או תערובות עם תווית פלואורסצנטית עטופות בנייר כסף כדי למנוע הלבנה של הפלואורופור. כדי להימנע ממחזורי הקפאה-הפשרה חוזרים ונשנים שעלולים לפגוע בשלמות האוליגונוקלאוטידים, מומלץ להכין ולהשתמש בנפחים קטנים יותר (>1 מ"ל).
הגדרת בדיקה וניתוח של תוצאות: הכללת פקדים חיונית לפרשנות נכונה של תוצאות המבחן. יש להשתמש בבקרה ללא חלבון (מצע DNA עם תמיסת חיץ) כדי להבטיח שהפעילות הנראית לעין על המצע היא תוצאה של האנזים. במקרה של נוקלאז, התפרקות המצע האקסוגנית תגרום לרצועות משקל מולקולרי נמוך או סולם בשליטה, ואילו במקרה של ליגאז או פולימראז, דנטורציה דו-צדדית לא שלמה תגרום לפס בעל משקל מולקולרי גבוה בשליטה. בקרה חיובית על גודל המוצר הצפוי מסופקת בטבלה 2 ויש לכלול אותה כדי לאמת את גודל המוצר הנכון.
פרמטרים חשובים באלקטרופורזה מוצלחת של מוצר הבדיקה תוארו בפרוטוקול קודם59. אלה כוללים הבטחת אחוז האקרילאמיד המתאים לגודל המצע ושימוש בצבע העמסה מתאים בהתאם לגודל המצע וסוג הג'ל הנדרש להדמיית התוצאות. צבע המעקב ברומופנול כחול פועל בגודל המשוער של אוליגונוקלאוטיד בעל 10 בסיסים ולכן מתאים לקבוצת האוליגונוקלאוטידים המתוארת כאן; עם זאת, אם יש רצועת צבע החופפת למוצר הפלואורסצנטי או לפסי המצע בעת שימוש בנוקלאוטידים קצרים יותר, צבע המעקב עשוי להיות מוחלף לקסילן ציאנול, הפועל לאט יותר60.
כדי להבטיח רזולוציה טובה של המצע / רצועות המוצר, מיכל הג'ל צריך להיות מחומם חיצונית באמצעות אמבט מים או על ידי הפעלת מתח גבוה (למשל, 180 V). הפעלת ג'ל PAGE של אוריאה מראש למשך 30 דקות לפחות ושטיפת הבארות עם פיפטה כדי להסיר עודפי אוריאה חיונית לקבלת רצועות חדות וישרות המתאימות לכימות.
לצורך כימות מצעים ומוצרים, יש להמיר טווח של 20%-80% מכלל החומר למוצר כדי לאפשר אינטגרציה מדויקת של רצועות הג'ל הפלואורסצנטיות. אם משתמשים באנזים חדש, מומלץ להריץ שיפוע של ריכוזי חלבונים כדי לאפשר ביצוע מדידות עוקבות בטווח זה. למצלמות פלואורסצנטיות רבות יש תכונות משולבות פס מובנות שניתן להשתמש בהן למטרה זו. אם אתם משתמשים בתוכנה חיצונית כמו ImageJ49, ודאו שתמונת הג'ל מיוצאת באיכות גבוהה בפורמט tiff.
שינויים ופתרון בעיות של הטכניקה תכנון ורכישה של אוליגונוקלאוטידים: האוליגונוקלאוטידים הניתנים בפרוטוקול זה הם נקודות התחלה שימושיות וניתן להרחיבם, כפי שמוצע בסעיף השיטות, על ידי שינוי רצפי האוליגונוקלאוטידים ושילוב שינויים.
הגדרת בדיקה סטנדרטית וניתוח תוצאות: ניסויי פיילוט חיוניים בעת בדיקת פעילותו של אנזים חדש מכיוון שתנאי התגובה האופטימליים ישתנו בין חלבונים שונים; הפרמטרים המופיעים בפרוטוקול זה נועדו להוות נקודת מוצא בלבד. גורמים כגון ריכוז אנזימים, טמפרטורת תגובה, משך הדגירה, קו-פקטור והרכב חיץ/pH עשויים להשתנות במהלך התמהיל הראשי ומכלול תגובת הבדיקה. ריכוזי קו-פקטור חשובים במיוחד מכיוון שעודף של קופקטורים נוקלאוטידים או יוני מתכת יכול להיות מעכב, ומומלץ לבדוק טווח של ריכוזים של כל אחד מהם. עבור DNA פולימראזות, ריכוזי dNTP מומלצים נעים בין 20 ל -200 מיקרומטר בסך הכל, עם זאת, ריכוזי dNTP גבוהים מפחיתים את נאמנות61. כמו כן, ליגאזות פולינוקלאוטידים נבדקות בדרך כלל עם קופקטור נוקלאוטיד 0.1-1.0 mM, אך ריכוזים מופרזים גורמים לדנ"א מצטבר לאדנילט ולעיכוב תגובה62.
הפרוטוקול הסטנדרטי כאן משתמש ב- Mg כקטיון דו-ערכי; עם זאת, אנזימים מסוימים פעילים יותר עם מנגן (Mn) או אבץ (Zn). תערובות מאסטר המכילות Mn או Zn צריכות להיות מוכנות עם חיץ pH נמוך יותר (<7.5), ויש להוסיף מתכות לאחר חימום. יש להשתמש בתערובות מאסטר באותו היום כדי למנוע משקעים ועיכוב של פעילות האנזים.
תוספים, כולל חומרי צפיפות כגון פוליאתילן גליקול (PEG) או מייצבים כגון אלבומין בסרום בקר, ניתן להשתמש כדי להגביר את הפעילות של אנזימים מסוימים63,64. אלה יש להוסיף לאחר שלב החישול בשל thermolability שלהם. כל ריאגנטים שמקורם ביולוגי צריכים להיות בדרגת ביולוגיה מולקולרית כדי למנוע החדרת נוקלאזות מזהמות.
נפח חיץ מרווה פורממיד המשמש בפרוטוקול זה מתאים לקבוצת הבסיס של אוליגונוקלאוטידים. עם זאת, עבור אוליגונוקלאוטידים ארוכים יותר, יש להגדיל את נפח הפורממיד ל-10 μL עד 20 μL כדי להבטיח הפרדה מלאה של הגדיל, וניתן לקרר תגובות מרוות על קרח ב-4°C עד לאלקטרופורזה.
עם אנזימים מסוימים, קשירה הדוקה של החלבון למצע / מוצר עשויה למנוע נדידה של אוליגונוקלאוטידים לתוך הג'ל במהלך אלקטרופורזה, במיוחד כאשר האנזים משמש בריכוזים גבוהים. זה יופיע כחוסר בפסי מוצר/מצע על הג'ל ולעיתים קרובות הצטברות של חומר פלואורסצנטי (מוצר ו/או מצע מורכב עם חלבון) בבארות. כדי לשבש קומפלקסים אלה, ניתן לטפל בתערובת הבדיקה עם פרוטאינאז K לפני הוספת מאגר מרווה, או נתרן דודציל סולפט (SDS) ניתן להוסיף במהלך מרווה.
פעילות ליגאז הדנ"א מייצרת שתי רצועות בדידות, שקל לכמת אותן. ניתן להשתמש באותה שיטה כדי לכמת פעילות אנדונוקלאז על מצע נזק לדנ"א שבו צפוי מוצר יחיד של 20 נוקלאוטידים, או בדיקות EMSA שבהן מבחינים בבירור בין המצבים הכבולים/לא קשורים. כימות מדויק של פולימראז ופעילות נוקלאז תהליכית קשה על ידי שילוב פסים, ובאופן כללי, מומלץ להשתמש בבדיקה בזמן אמת עם בדיקות או משואות, כמתואר במבוא.
דה-אדנילציה וספציפיות קו-פקטור של ליגאז DNA: ייתכן שיהיה צורך באופטימיזציה מסוימת של פרוטוקול זה כדי להסיר את כל פעילות הרקע, אשר לאחר מכן תשוחזר על ידי הוספת הקו-פקטור(ים) של הנוקלאוטידים. אם פעילות ליגאז הרקע נשארת לאחר דה-אדנילציה (נתפסת כקשירה בבקרה ללא קו-פקטור), ניתן להגדיל את זמן הדגירה של שלב הדה-אדנילציה, או להקטין את ריכוז הליגאז. יש לוודא שהדנ"א הדו-צדדי ללא תווית מרוכז יותר מהחלבון (> 4:1::מצע: חלבון). אם הוספת קופקטור בנוכחות DNA מסומן אינה מחזירה את הקשירה עבור אף אחד מהקו-פקטורים שנבדקו, ייתכן שהאנזים עבר דנטורציה, ויש לקצר את שלב הדה-אדנילציה. עבור ליגאז חדש או אצווה חדשה של אנזים רקומביננטי, כדאי לקבוע את מידת קשירת הרקע עם האנזים אדנילציה בהיעדר גורמים משלימים נוספים של נוקלאוטידים. זה כרוך ביצירת תגובה נוספת שבה 10 μL של תערובת מאסטר ללא תווית, 10 μL של תערובת מאסטר מסומן, ו 2.5 μL של אנזים טרי שלא עבר de-adenylated מודגרים בו זמנית.
השתמש במצעים עם תווית כפולה: פרוטוקול זה דורש תכנון ורכישה של אוליגונוקלאוטיד עם מואטי פלורסנטי בעל ספקטרום עירור / פליטה שונה מהפלואורופור ששימש במקור ולאחר מכן הרכבה שלו לדופלקס כך ששני הפלואורופורים האורתוגונליים יסמנו חלקים שונים של המצע. אם יש ספק, מספר צופים ספקטרליים מקוונים זמינים לבדיקת ספקטרום עירור ופליטה, לדוגמה, FPbase Spectra Viewer ו- BD Spectrum Viewer, שניתן להשתמש בהם כדי לבדוק הן את התאימות של זוג הפלואורופורים והן את הגדרות התמונה המתאימות ביותר. ההגדרות הספציפיות המשמשות להדמיית הג'ל יהיו תלויות בדגם של ההדמיה ובפלואורופור(ים) המשמשים. התמונה המורכבת תקליט את האות משני הערוצים בג'ל היחיד, והרצועה שבה שני הפלואורופורים מחוברים לאותו מוצר תופיע כצבע ביניים. ניתן לנתח תמונות נפרדות מערוצים בודדים כדי לכמת את מידת הקשירה או ההשפלה על גדילים המסומנים באופן דיפרנציאלי.
מגבלות הטכניקה בעוד שלעבודה עם מצעים המסומנים באופן פלואורסצנטי יש יתרונות רבים, כגון סיכונים בריאותיים נמוכים, ישנן כמה מגבלות שיש לקחת בחשבון כאשר עובדים עם סוגים אלה של מצעים מסומנים. אחד מהם הוא העלות הגבוהה יחסית של הזמנת אוליגונוקלאוטידים אלה עם תוויות פלואורופור או שינויים, כגון הוספת בסיסים פגומים, בהשוואה לתיוג רדיו פנימי. סיבה נוספת היא שנדרשים ציוד ותוכנה מיוחדים לזיהוי גדילים מסומנים. עם זאת, תכונות אלה כלולות כעת ברוב מערכות הדמיון הג'ל החדשות. יש לשקול גם את הפוטנציאל של הפלואורופורים לשנות את תכונות הקישור של חלבוני אינטראקציית המטרה. פלואורסצאין ונגזרתו FAM משמשים בדרך כלל לסימון אוליגונוקלאוטידים ורגישים לשינויים ב-pH וב-Nucleobase-quenching65. מגבלות אלה יש לשקול בזהירות כאשר מחליטים על סוג ומיקום של fluorophores על אוליגונוקלאוטיד עבור עיצוב דופלקס.

כל צורות החיים דורשות אנזימים לעיבוד חומצות גרעין כדי לבצע תהליכים ביולוגיים בסיסיים, כולל שכפול, שעתוק ותיקון DNA. פונקציות אנזימטיות עיקריות עבור מסלולים אלה הן פולימראזות, אשר מייצרות עותקים של מולקולות RNA/DNA, ליגאזות המצטרפות למצעי פולינוקלאוטידים, נוקלאזות המשפילות אותן, ומנחתים וטופואיזומראזות, אשר ממיסים דופלקסים של חומצות גרעין או משנים את הטופולוגיה שלהם 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10 . בנוסף, רבים מהאנזימים הללו מספקים כלים מולקולריים חיוניים ליישומים כגון שיבוט, אבחון וריצוף בתפוקה גבוהה 11,12,13,14,15.
המאפיינים הפונקציונליים, הקינטיקה וייחודיות המצע של אנזימים אלה ניתנים לקביעה באמצעות מצעי DNA/RNA מסומנים המיוצרים על ידי חישול אוליגונוקלאוטידים. מעקב אחר מצעים ומוצרים הושג באופן מסורתי על ידי הצגת תווית רדיואקטיבית (32P) בקצה גדיל 5 ', אשר לאחר מכן ניתן לזהות על ידי סרט צילום או עם מערכת הדמיה זרחן16,17. בעוד שמצעים עם תווית רדיואקטיבית מציעים את היתרון של רגישות ניסויית מוגברת ואינם משנים את התכונות הכימיות של נוקלאוטיד, הסיכונים הבריאותיים הפוטנציאליים מעבודה עם רדיואיזוטופים עודדו את הפיתוח של תיוג חומצות גרעין לא רדיואקטיביות כדי לספק חלופה בטוחה יותר לזיהוי DNA ו- RNA 18,19,20 . בין אלה, זיהוי פלואורסצנטי, כולל זיהוי פלואורסצנטיות ישיר, פלואורסצנטיות שנפתרה בזמן ומבחני העברת אנרגיה/פלואורסצנטיות בולטים כ-21,22,23,24 הרב-תכליתיים ביותר. המערך הנרחב של פלואורופורים מאפשר עיצובים שונים של מצעי DNA/RNA הכוללים כתבים ייחודיים על כל אוליגונוקלאוטיד25. בנוסף, יציבותם של פלואורופורים, בהשוואה לרדיואיזוטופים, מאפשרת למשתמשים לייצר ולשמר כמויות משמעותיות של מצעי DNA המסומנים באופן פלואורסצנטי19. ניתן לדגור על מצעים אלה המסומנים בפלואורופור עם החלבון המעניין, יחד עם שילובים שונים של גורמים משלימים של מתכת ונוקלאוטידים, כדי לנתח את פעילות הקישור או האנזים. הדמיה של קשירה או פעילות ניתן לראות באמצעות תעלות צבע פלואורופור שונות עם מערכת הדמיה ג'ל. מכיוון שרק אוליגונוקלאוטידים המסומנים באופן פלואורסצנטי יהיו גלויים באמצעות טכניקה זו, כל עלייה או ירידה בגודל האוליגונוקלאוטיד המסומן תהיה קלה לעקוב. ג'לים יכולים גם להיות מוכתמים לאחר מכן, עם צבעים מכתימים חומצת גרעין כדי לדמיין את כל רצועות ה- DNA הקיימות על הג'ל.
ליגאזות של חומצות גרעין הן אנזימים המצטרפים למקטעים של DNA/RNA, ומזרזים את אטימת השברים על ידי יצירת קשר פוספודיסטר בין טרמיני DNA פוספורילציה 5' לבין 3' OH של DNA. ניתן לחלק אותם לשתי קבוצות בהתאם לדרישת מצע הנוקלאוטידים שלהם. הליגאזות התלויות ב-NAD שהשתמרו מאוד נמצאות בכל חיידקי26 ואילו את האנזימים תלויי ה-ATP המגוונים מבחינה מבנית ניתן לזהות בכל תחומי החיים 8,27. ליגאזות DNA ממלאות תפקיד חשוב בעיבוד מקטעי אוקזקי במהלך השכפול, כמו גם מעורבות במסלולי תיקון DNA שונים, כגון נוקלאוטיד ותיקון כריתת בסיס, באמצעות איטום ניקים וניקים ספונטניים שנותרים לאחר תיקון 8,10. ליגאזות דנ"א שונות מציגות יכולות שונות להצטרף לקונפורמציות שונות של שברי דנ"א, כולל ניקים בדופלקס, שברים דו-גדיליים, אי-התאמות ורווחים, כמו גם היברידיות RNA ו-DNA 28,29,30. ניתן להרכיב מגוון רחב של מצעים ניתנים לליגה על ידי חישול אוליגונוקלאוטידים עם פוספט 5' כדי ליצור טרמיני 5' ו-3' בדופלקס חומצות גרעין 31,32,33. שיטת הניתוח הנפוצה ביותר היא רזולוציה על ידי אוריאה PAGE בפורמט בדיקת נקודת קצה; עם זאת, חידושים אחרונים כללו שימוש באלקטרופורזה של ג'ל נימי, המאפשר תפוקה גבוהה34, פרופיל ספקטרומטרי מסה35, כמו גם בדיקת משואות מולקולרית הומוגנית, המאפשרת ניטור בזמן36.
הצעד הראשון בתגובת קשירה הוא אדנילציה של אנזים ליגאז על ידי אדנוזין טריפוספט (ATP) או ניקוטינאמיד אדנין דינוקלאוטיד (NAD), וכתוצאה מכך אנזים קוולנטי מתווך. השלב השני בתגובה הוא אדנילציה של מצע חומצת הגרעין בקצה 5' של אתר הניק, ואחריו קשירה של גדילי ניק חומצת הגרעין. אנזימי ליגאז רבים המתבטאים באופן רקומביננטי ב- E. coli מטוהרים בצורה אדנילציה, ולכן מסוגלים לשדר בהצלחה חומצות גרעין ללא תוספת של קו-פקטור נוקלאוטיד. זה מקשה לקבוע איזה סוג מסוים של קו-פקטור נוקלאוטידים הם דורשים עבור קשירת חומצות גרעין. בנוסף לתיאור בדיקות להערכת פעילות ליגאז DNA, מוצגת גם שיטה לקביעת שימוש בקו-פקטור באופן מהימן על ידי דה-אדנילציה של האנזים באמצעות מצעים לא מסומנים.
נוקלאזות הן קבוצה גדולה ומגוונת של אנזימים לשינוי DNA/RNA ורנ"א קטליטי המנתקים את קשרי הפוספודיסטרים בין חומצות גרעין37. תפקודי אנזימי נוקלאז נדרשים בשכפול, תיקון ועיבוד DNA וניתן לסווגם לפי ספציפיות הסוכר שלהם עבור DNA, RNA או שניהם. אנדונוקלאזות מבצעות הידרוליזה של קשרי פוספודיזטר בתוך גדיל דנ"א/רנ"א, בעוד אקסונוקלאזות הידרוליזות של גדילי דנ"א/רנ"א גוועדות נוקלאוטיד אחד בכל פעם מקצה ה-3' או ה-5' או ה-5' עד הקצה ה-5' של הדנ"א38'.
בעוד חלבוני נוקלאז רבים אינם ספציפיים ועשויים להיות מעורבים בתהליכים מרובים, אחרים ספציפיים מאוד עבור רצף מסוים או נזק לדנ"א 6,39,40. נוקלאזות ספציפיות לרצף משמשות במגוון רחב של יישומים ביוטכנולוגיים, כגון שיבוט, מוטגנזה ועריכת גנום. נוקלאזות פופולריות ליישומים אלה הן נוקלאזות הגבלה41, נוקלאזות אצבע אבץ42, נוקלאזות אפקט דמוי מפעיל שעתוק 43, ולאחרונה, נוקלאזות CRISPR מהונדסות מונחות רנ"א43. לאחרונה זוהו נוקלאזות ספציפיות לנזק, כגון נוקלאז EndoMS, שיש לו ספציפיות לאי-התאמות בדנ"א באמצעות תחום הנוקלאז דמוי RecB 5,44 הספציפי לאי-התאמה. מבחני פעילות נוקלאז, מבחינה היסטורית, נעשו כבדיקות לא רציפות עם מצעים מסומנים ברדיו; עם זאת, בנוסף לחסרונות האחרים שלהם, אלה אינם מאפשרים זיהוי של האתר שנחתך על ידי חלבון נוקלאז, אשר אפשרי בעת שימוש במצעים מסומנים פלואורסצנטית45,46. לאחרונה פותחו מבחני נוקלאז רציפים הפועלים באמצעות צבעי דנ"א שונים המקיימים אינטראקציה עם דנ"א במצבים שונים; לדוגמה, פליטת אות פלואורסצנטי גבוה יותר בעת אינטראקציה עם dsDNA מאשר במצבו הלא קשור, או קשירה ספציפית לרנ"א קצר47. בדיקות נוקלאז רציפות אחרות משתמשות בסיכות ראש DNA עם קבוצת פלואורופורים בקצה 5' ומרווה בקצה 3', כך שהפלואורסצנטיות עולה ככל שהאוליגונוקלאוטיד מתפרק עקב הפרדה בין הפלואורופור למרווה48. בעוד שבדיקות אלה מאפשרות לאפיין את הקינטיקה של חלבונים מפרקים DNA, הן דורשות ידע מוקדם על תפקוד האנזים והמצע ומוגבלות גם לאנזימים המשנים את קונפורמציית הדנ"א כדי לגרום להבדל בקישור הצבע. מסיבה זו, מבחני נקודות קצה שפותרים תוצרי נוקלאז בודדים עדיין רצויים כדי לספק תובנה לגבי שינויים בדנ"א הנגרמים על ידי פעילות החלבון.
כאן, מוצג הליך מפורט לתכנון אוליגונוקלאוטידים של DNA/RNA המסומנים באופן פלואורסצנטי שניתן לערבב ולהתאים ליצירת מצעים לבדיקת הפעילות של אנזימי נוקלאז, פולימראז וליגאז חדשים. האימות של קבוצה בסיסית זו של רצפי אוליגונוקלאוטידים מפשט את התכנון הניסיוני ומאפשר פרופיל חסכוני של מגוון רחב של פונקציות אנזימטיות ללא צורך לרכוש מספר רב של מצעים בהתאמה אישית. הליך מפורט מסופק להפעלת בדיקת אנזים סטנדרטית לעיבוד DNA עם מצעים אלה, תוך שימוש בדוגמה של פעילות ליגאז DNA ומתוארים שינויים להערכה וניתוח של אנזימי נוקלאז ופולימראז. בנוסף, ניתנת בדיקה שונה לקביעת ספציפיות הקו-פקטור של אנזים ליגאז ה- DNA בדיוק גבוה, ובדיקות בעלות תווית כפולה משמשות להערכת הרכבה של קשירה מרובת רכיבים. לבסוף, שינויים בפורמט הבדיקה הבסיסית נדונים כדי לאפשר להשתמש בו כדי לקבוע אינטראקציות חלבון-DNA עם אותם מצעים על ידי בדיקת שינוי ניידות אלקטרופורטית (EMSA).

<table><tbody><tr><td>30% אקרילאמיד / תמיסת ביס (29: 1)</td> <td>BioRad</td><td>1610156</td><td></td></tr><tr><td>אדנוזין טריפוספט (ATP)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>אמוניום פרסולפט (APS)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>צנטריפוגה שולחנית</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>בוראט</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>ברומופנול כחול</td><td>רבים ספקים</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dithiothreitol (DTT)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>מערכת אלקטרופורזה עם אמבט מים במחזור</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>Fluoresnence imager, למשל iBright FL1000</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A32752</td><td></td></tr><tr><td>Formamide</td><td>Many ספקים</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מערכת יציקת ג'ל</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>בלוק חימום</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>מגנזיום כלוריד</td><td>ספקים</td><td></td> רבים <td>יוני מתכת אחרים עשויים להיות מועדפים בהתאם לחלבון שנחקר</td></tr><tr><td>צינורות מיקרוצנטריפוגה (1.5 מ"ל)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>מיקרופיפטות וטיפים</td><td>ספקים רבים</td><td></td><td>1 מ"ל, 0.2 מ"ל, 0.02 מ"ל, 0.002 מ"ל</td></tr><tr><td>ניקוטינמיד אדנין דינוקלאוטיד (NAD+)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>אוליגונוקלאוטידים</td><td>טכנולוגיות DNA משולבות</td><td>NA</td><td>תרמו פישר, סיגמא-אולדריץ', &nbsp; Genscript ואחרים מספקים גם את פיפטות המרעה הללו</td></tr><tr><td></td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>PCR thermocycler</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>צינורות PCR</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>RNAse Away</td><td>ThermoFisher</td><td>7002PK</td><td>נחוץ רק בעבודה עם RNA oligos</td></tr><tr><td>RNase AWAY</td><td>Merck</td><td>83931-250ML</td><td>פעילי שטח להסרת RNAse זיהום על משטחים</td></tr><tr><td>מים נטולי RNAse</td><td>ניו אינגלנד Biolabs</td><td>B1500L</td><td>נחוץ רק בעבודה עם RNA oligos</td></tr><tr><td>נתרן כלורי</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>SUPERase IN מעכב RNase</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM2694</td><td>מעכב RNAse רחב ספקטרום (מבוסס חלבון)</td></tr> <tr><td>SYBR Gold</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>S11494</td><td>זה עשוי לשמש כדי להכתים ג'לים לאחר ולדמיין אוליגונוקלאוטידים ללא תווית</td></tr><tr><td>Tetramethylethylenediamine (TMED)</td> <td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>Tris, או tris(hydroxymethyl)aminomethane</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>מים טהורים במיוחד (Milli-Q)</td> <td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>urea</td><td>ספקים</td><td></td><td></td>רבים</tr><tr><td>Vortex</td><td>ספקים רבים</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

שימוש באוליגונוקלאוטידים סינתטיים שעברו שינוי כדי להעריך אנזימים לחילוף חומרים של חומצות גרעין

Using Modified Synthetic Oligonucleotides to Assay Nucleic Acid-Metabolizing Enzymes

הזמינות של מגוון אוליגונוקלאוטידים סינתטיים מותאמים מספקים מסחריים אפשרה פיתוח של בדיקות מתוחכמות כדי לאפיין תכונות מגוונות של אנזימים מטבוליזם חומצת גרעין שניתן להריץ בכל מעבדה סטנדרטית לביולוגיה מולקולרית. השימוש בתוויות פלואורסצנטיות הפך את השיטות הללו לנגישות לחוקרים עם ציוד אלקטרופורזה סטנדרטי של PAGE ומכשיר הדמיה פלואורסצנטי, ללא שימוש בחומרים רדיואקטיביים וללא צורך במעבדה המיועדת לאחסון והכנה של חומרים רדיואקטיביים, כלומר מעבדת הוט. התוספת האופציונלית של שינויים סטנדרטיים כגון זרחן יכולה לפשט את הגדרת המבחן, בעוד שניתן להשתמש בשילוב ספציפי של נוקלאוטידים שעברו שינוי המחקים נזקי DNA או מתווכים כדי לחקור היבטים ספציפיים של התנהגות אנזימים. כאן, התכנון והביצוע של בדיקות כדי לחקור מספר היבטים של עיבוד DNA על ידי אנזימים באמצעות אוליגונוקלאוטידים סינתטיים זמינים מסחרית מודגמים. אלה כוללים את היכולת של ליגאזות להצטרף או nucleases כדי לפרק מבנים היברידיים שונים של DNA ו- RNA, שימוש בקו-פקטור דיפרנציאלי על ידי ליגאז DNA, והערכה של יכולת קשירת DNA של אנזימים. נדונים גורמים שיש לקחת בחשבון בעת תכנון מצעי נוקלאוטידים סינתטיים, ומסופקת קבוצה בסיסית של אוליגונוקלאוטידים שניתן להשתמש בהם עבור מגוון של חומצות גרעין ליגאז, פולימראז ובדיקות אנזימי נוקלאז.

כאן מוצג פרוטוקול לבדיקת אנזימים לחילוף חומרים של חומצות גרעין, תוך שימוש בדוגמאות של אנזימי ליגאז, נוקלאז ופולימראז. הבדיקה משתמשת באוליגונוקלאוטידים מסומנים פלואורסצנטית ולא מסומנים שניתן לשלב ליצירת דופלקסים המחקים נזקי RNA ו/או DNA או מתווכי מסלול, ומאפשרים אפיון התנהגות אנזימים.

The availability of a range of modified synthetic oligonucleotides from commercial vendors has allowed the development of sophisticated assays to ...

using-modified-synthetic-oligonucleotides-to-assay-nucleic-acid

Research

JoVE Journal

Biochemistry

ביוכימיה

הפרוטוקול המתואר במסמך זה נועד להסביר ולקצר מספר רב של מכשולים בדרכו של המסלול המורכב המוביל לtriphosphates נוקלאוזידים שונה. כתוצאה מכך, פרוטוקול זה מאפשר גם לסינתזה של אבני הבניין הופעל אלה וזמינותם ליישומים מעשיים.

נוקלאוזידים triphosphates - מ - סינתזה ביוכימיה באפיון

DNA וחלבונים-במיוחד רצף שכותרתו עם זיקה או קבוצות כתב ניאון באמצעות methyltransferases DNA או חלבון ואנלוגים cofactor סינטטיים. בהתאם לסגולי כקו-הפקטורים של האנזימים, aziridine או אנלוגים cofactor מופעלים כפולים מועסקים תיוג אחת או שני שלבים.

תיוג רצף ספציפי של חומצות גרעין וחלבונים עם Methyltransferases ואנלוגים כקו-פקטורים

פרוטוקול זה מתאר את האפיון של ה-DNA פולימראז סינתזה של דנ א שונה דרך התבוננות שינויים-סגול fluorescently שכותרתו הדנ א באמצעות אלקטרופורזה בג'ל ג'ל הדמיה. ג'לים אקרילאמיד משמשים עבור הדמיה ברזולוציה גבוהה של ההפרדה של חומצות גרעין קצר, אשר נודדים בקצב שונה בהתאם לגודל.

DNA פולימראז פעילות Assay באמצעות DNA שכותרתו פלורסנט-סגול, דמיינו ידי אקרילאמיד אלקטרופורזה בג'ל

כאן, אנו מציגים עבור טיהור יעיל צעד בודד של האדם לא מתויגות הפעיל פרוטוקול 10-11 טרנסלוקציה-2 (TET2) dioxygenase 5-methylcytosine באמצעות יונים כרומטוגרפיה ואת וזמינותו שלה באמצעות מסה טנדם-כרומטוגרפיה נוזלית מסות (LC-MS/MS)-המבוסס על הגישה.

טיהור יעיל ופיתוח Assay LC-MS/MS-מבוסס על 10-11 טרנסלוקציה-2 5-Methylcytosine Dioxygenase

NMR-מבוסס על פעילות שפותחה כדי לזהות ולאפיין מעכבי של שני אנזימים ריבוהיהידרוקלז. הפרוטוקולים מסופקים עבור בחני התרכובת הראשונית ב-500 μm ו 250 μm, מינון התגובה בחני לקביעת ערכי IC50 , ניקוי נוזל מונה המסך, לקפוץ-דילול מונה מסך בחני, ו בחני בתאי E. coli שלם.

NMR-מבוסס על פעילות מבוססת על קביעת עיכוב מורכבים, IC50 ערכים, פעילות פרועובדתית, ואת הפעילות התא כולו של נוקלאוטילסייד הריבוליטיות

פעילות נוקלאז שונה היתה קשורה לתנאים אנושיים שונים, המשמש כבסיס הפוטנציאל שלה כמו סמנים. מודולרי וקל ליישם את מתודולוגיית ההקרנה הציג בנייר זה מאפשר את הבחירה של חומצות גרעין ספציפיים בדיקה לרתימת פעילות נוקלאז כמו סמנים של מחלה.

קינטי הקרנה של פעילות Nuclease באמצעות חומצות גרעין רגשים

מתיל-טרנספראזות דנ"א הן מטרות פוטנציאליות לתרופות לסרטן. כאן מוצג פרוטוקול להערכת מולקולות קטנות לעיכוב מתיל-טרנספראז של DNA. בדיקה זו משתמשת באנדונוקלאז למתילציה זוגית של דנ"א ליצירת פלואורסצנציה ומאפשרת לנטר את פעילות האנזים בזמן אמת.

בדיקת מתילציה רציפה של דנ"א מצומד אנדונוקלאז מבוססת פלואורסצנציה לסינון מעכבי מתיל-טרנספראז של DNA

ננו-מכונות מבוססות DNAzyme יכולות לשמש לזיהוי סלקטיבי ורגיש ביותר של חומצות גרעין. מאמר זה מתאר פרוטוקול מפורט לתכנון ננו-מכונות מבוססות DNAzyme עם ליבה של 10-23 המשתמשות בתוכנה חופשית ויישומן בזיהוי מקטע וירוס אפשטיין-בר כדוגמה.

DNAzyme 10-23 - ננו-מכונות מבוססות לזיהוי חומצות גרעין

מתואר מבחן תפוקה גבוהה לבדיקת אנזימים. ערכת בדיקה מוכנה לשימוש מרובה זו מורכבת ממצעי Chromogenic Polymer Hydrogel (CPH) שנבחרו מראש ומצעי Chromogenic B iomass (ICB) מורכביםI בלתי מסיסים. אנזימי המטרה הם אנדו-אנזימים ופרוטאזות מפרקים רב-סוכרים.

הקרנת תפוקה גבוהה של אנזימים פחמימות-משפיל שימוש רומן מסיסים chromogenic המצע Assay ערכות

חומצות גרעין הן אנליטים נפוצים להערכת מערכות ביולוגיות; עם זאת, הטיה ממניפולציה אנזימטית עלולה לגרום לדאגה. כאן מתוארת שיטה לזיהוי ללא תווית של חומצות גרעין באמצעות פוליאנילין. טכנולוגיית חיישנים רגישה וחסכונית זו יכולה להבחין בהבדלים בין נוקלאוטידים בודדים בין מולקולות.

חיישן מבוסס-Polyaniline של חומצות גרעין

למדו איך לאפיין אנזימים המטבוליזים חומצות גרעין כמו ליגזות, נוקלאזות ופולימראזות באמצעות אוליגונוקלאוטידים סינתטיים עם תיוג פלואורסצנטי. השיטה מאפשרת לחקור התנהגות אנזימים בדו-גדילים המחקים נזקי DNA ו-RNA.

שימוש באוליגונוקלאוטידים סינתטיים שעברו שינוי כדי להעריך אנזימים לחילוף חומרים של חומצות גרעין

גלה סרטונים נוספים