-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
פרוטוקול הזרקת עצב תועה ישיר לחולדות
פרוטוקול הזרקת עצב תועה ישיר לחולדות
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Direct Vagus Nerve Injection Protocol For Rats

פרוטוקול הזרקת עצב תועה ישיר לחולדות

Full Text
1,260 Views
08:22 min
March 14, 2025

DOI: 10.3791/67820-v

Nanda L. Regmi1, Xin Chen1, Rachel M. Bailey1,2, Steven J. Gray1,3,4,5

1Department of Pediatrics,UT Southwestern Medical Center, 2Center for Alzheimer's and Neurodegenerative Diseases,UT Southwestern Medical Center, 3Department of Neurology,UT Southwestern Medical Center, 4Department of Molecular Biology,UT Southwestern Medical Center, 5McDermott Center for Human Growth and Development,UT Southwestern Medical Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a novel protocol for direct vagus nerve injection in rats, which facilitates targeted drug delivery into the nerve. This method addresses challenges related to drug administration in preclinical studies of the autonomic nervous system, enhancing the potential for gene replacement therapy applications.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Gene Therapy
  • Drug Delivery Systems

Background

  • Current gene replacement therapies face challenges in delivering drugs directly into the autonomic and peripheral nervous systems.
  • AAV9 is an emerging vector in gene therapy for addressing neurological disorders.
  • The vagus nerve is crucial for regulating autonomic functions and presents a unique target for therapeutic interventions.
  • The study aims to establish a reliable and effective injection method for preclinical research using rats.

Purpose of Study

  • To enable direct drug delivery to the vagus nerve, overcoming existing limitations in peripheral nervous system interventions.
  • To facilitate preclinical studies in gene therapy by ensuring precise vector administration.
  • To improve upon traditional methods of drug delivery within neurological studies.

Methods Used

  • The method involves surgical exposure of the vagus nerve in anesthetized rats.
  • Utilizing a glass syringe, a candidate drug mixture is injected directly into the nerve following careful dissection.
  • The protocol allows for the infusion of drug agents while minimizing complications from injection techniques.
  • Specific procedural steps, such as sterilization and monitoring of infusion, are detailed to ensure reproducibility.

Main Results

  • The direct injection protocol successfully delivers drug agents into the vagus nerve without significant post-injection complications.
  • This approach may lead to better outcomes in addressing autonomic nervous system disorders in future research.
  • Key procedural insights emphasize the importance of maintaining sterile conditions and monitoring injection success.
  • This study highlights the technique's adaptability to other peripheral nerves with appropriate modifications.

Conclusions

  • This method demonstrates a significant advancement in the ability to deliver therapies to specific neural targets in a controlled manner.
  • Further development and application could enhance our understanding of autonomic nervous system mechanisms in both healthy and pathological states.
  • The protocol lays the groundwork for improved gene replacement therapies and may have implications for various neurological disorders.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of direct vagus nerve injection?
Direct vagus nerve injection allows for targeted drug delivery, reducing systemic effects and improving the efficacy of therapeutic agents.
How is the vagus nerve prepared for injection?
The vagus nerve is surgically exposed under anesthesia, and care is taken to minimize damage to surrounding tissues during the procedure.
What outcomes can be monitored using this method?
Outcomes include local drug efficacy, nerve response to treatment, and potential side effects associated with direct administration.
Can this method be adapted for other species?
Yes, the technique can be modified for use in other species, provided suitable anatomical and ethical considerations are addressed.
What are the limitations of this injection method?
Potential limitations include the need for surgical expertise and the possibility of complications if not performed under sterile conditions.

אנו מציגים פרוטוקול להזרקה ישירה של עצב הנרתיק בחולדות, המאפשר העברת תרופות ישירות לעצב ללא סיבוכים לאחר ההזרקה. שיטה זו חלה על מחקרים נוירולוגיים פרה-קליניים הכוללים מניפולציה של מערכת העצבים האוטונומית. זה יכול לשמש להזרקת עצבים ישירה לעצבים אחרים בחולדות ובמינים אחרים, עם השינויים הנדרשים.

אנו עורכים מחקרים פרה-קליניים בטיפול בתחליפי גנים. אנו משתמשים בחיות מעבדה כדי לבסס את השיטה האופטימלית למתן תרופות כדי לטפל בבעיות של מערכת העצבים האוטונומית וההיקפית. טיפול בהחלפת גנים מבוסס וקטור הוא אחת הטכנולוגיות המתפתחות בריפוי גנטי. היישום של וקטור ויראלי הקשור לאדינו הוא אחת האפשרויות הפוטנציאליות הזמינות כעת. AAV9 נמצא בשימוש נרחב במחקר ריפוי גנטי כדי להעביר את הגן המעניין למערכת העצבים המרכזית וההיקפית. לחוקרים אין מספיק אפשרויות זמינות להעביר תרופות ישירות למערכת העצבים ההיקפית. ישנם מצבים הכוללים הפרעות נוירולוגיות הנגרמות על ידי מערכת העצבים ההיקפית או האוטונומית. עם זאת, חסרה שיטה יעילה למתן תרופות כדי לטפל במצבים אלה.

שיטה זו מדגימה דרך להעביר את חומרי התרופות ישירות לעצבים התועים כדי לטפל בבעיה של מערכת העצבים האוטונומית במחקרים פרה-קליניים באמצעות חולדות. בנוסף, ניתן לייצא שיטה זו להעברת תרופות דרך עצבים היקפיים אחרים עם שינויים הכרחיים במינים אחרים. המעבדה האפורה תמשיך במחקר ריפוי גנטי פרה-קליני בתיווך AV באמצעות מכרסמים ובעלי חיים גדולים. בנוסף, התמקדנו בפיתוח שיטות חדשות הישימות לריצוף האסטרטגיה של טיפול בהחלפת גנים.

[קריין] כדי להתחיל, חבר מזרק זכוכית של 100 מיקרוליטר כשהבוכנה הוסרה למחט בגודל 27. חבר קצה אחד של כ-45 סנטימטרים של צינורות פוליאתילן מעוקרים למחט בגודל 27, ואז התקן מזרק פלסטיק של שלושה מיליליטר עם מחט בגודל 27, והעמיס את המזרק בכ-0.5 מיליליטר של 0.9% מלח רגיל. השתמש במי מלח רגילים של 0.9% כדי למלא את צינורות הפוליאתילן מהקצה הפתוח, תוך הקפדה על מילוי אורך הצינור המלא וחבית מזרק הזכוכית עד שהמלח עולה על גדותיו. לאחר שתסיים, הסר והשליך את מזרק שלושת המיליליטר ואת המחט שלו. כעת הכנס את הבוכנה לתוך הקנה של מזרק הזכוכית, ודחף אותה מעט קדימה לאמצע הקנה, והנח את מזרק הזכוכית במשאבת המזרק. השתמש במשאבת המזרק כדי למשוך את הבוכנה מעט לאחור, וליצור מרחב אוויר של כ-1.5 סנטימטרים בקצה הפתוח של הצינור. פיפטה לפחות חמישה מיקרוליטר צבע, ותערובת תרופות מועמדת באמצעות מיקרו פיפטה של 10 מיקרוליטר על פיסת סרט פרה מעוקרת. משוך את תערובת התרופות המועמדת לתוך הצינור בעזרת משאבת המזרק, וסמן את רמת תערובת ההזרקה בטוש. התקן מחט בגודל 35 לצינור, ואבטח אותה למשטח נקי בשלב הניתוח בעזרת סרט, וודא שהיא נשארת קבועה, מעוקרת ואינה נוגעת בשום דבר אחר. הפעל את משאבת המזרק למשך 10 עד 15 שניות עד שתמיסת ההזרקה מתחילה לצאת מקצה המחט. העבירו את החולדה המורדמת לשולחן המצויד להסרת שיער והכנת האתר. מרחו משחת דמעה מלאכותית בשתי עיני החולדה כדי למנוע יובש יתר. מתן משככי כאבים בהתאם לפרוטוקול המוסדי המאושר לבעלי חיים כדי לשלוט בכאב כאשר החולדה חוזרת להכרה. גילח את הצד הגחוני של הצוואר באזור צוואר הרחם, והאריך אותו עד כשני סנטימטרים בניצב מקו האמצע משני הצדדים מהסנטר ועד עצם החזה. עיקר את האזור המגולח שלוש פעמים עם 70% אלכוהול אתילי ו-10% בטאדין, וניגב החוצה בתבנית מעגלית. העבירו את החולדה לשלב הכירורגי במצב שכיבה מתחת למיקרוסקופ הניתוח. ודא שכרית החימום מתחת לחולדה מחוסמת כראוי, והתאם את המיקרוסקופים הממוקדים כדי לדמיין את אזור צוואר הרחם לניתוח. חבר את החולדות או את שיני הלסת בתפר שאינו נספג. תקן את הקצה הפתוח של התפר בתוך חרוט האף כדי לשמור על הנחיריים בתוך חרוט האף לאורך כל ההרדמה. מקם את החולדה כך שראשה מונח בצד שמאל של המנתח הימני. הניחו כרית גזה מעוקרת מתחת לצוואר ליישור, ויישרו את אזור צוואר הרחם. כסו את גוף החולדה בווילון מעוקר והשאירו את אזור הניתוח חשוף. תקן ארבעה פיני מפסק עם מקבעים מגנטיים בארבע פינות השלב הכירורגי. כעת, יש להזריק חומרי הרדמה מקומיים אפידרמיס בקו האמצע של אזור צוואר הרחם בו יבוצע החתך. השתמש בלהב אזמל כדי לבצע חתך עור אורכי של שני סנטימטרים בקו האמצע בין הסנטר לעצם החזה באזור צוואר הרחם הגחוני. ואז עם קצות כותנה מעוקרים, בלאנט מפריד בין קצוות העור החתוכים. בעזרת קצות המפרק, משוך את קצוות העור המופרדים בכיוונים מנוגדים. הפרד את הפאשיה בעזרת קצות כותנה כדי להעמיק יותר, ודחף את בלוטות הרוק לרוחב. כעת, הפרד את שרירי המסטואיד של עצם החזה עם קצות כותנה ומשוך אותם לרוחב בעזרת סיכות מפרק. המשך להפריד רקמות בצד שמאל של קנה הנשימה עד שנראה נדן הצוואר. השתמש במלקחיים עדינים כדי ליצור חור קטן במעטפת הצוואר מבלי לפגוע בעורק הצוואר, והפרד בזהירות את עצב הנרתיק השמאלי מעורק הצוואר המשותף. לאחר הפרדת העצב מהעורק באמצעות מלקחיים, השתמש במחט מעוקלת בגודל 25 המותאמת למזרק מיליליטר אחד כדי לחבר את העצב, והחזק את העצב ביד הלא דומיננטית. החזק את המחט העמוסה בתערובת הצבע של התרופה המועמדת ביד הדומיננטית. כדי להקל על דקירה חלקה, שמור על העצב ישר על ידי משיכתו בעדינות באמצעות וו 25 מד. הכנס את המחט לעצב, וקדם אותה קדימה ביותר מ-0.5 סנטימטרים תוך שמירה על המחט מקבילה לעצב הנרתיק. משוך מעט לאחור כך שכ- 0.4 עד 0.5 סנטימטרים מהמחט יישארו בתוך העצב. הגבל את מספר דקירות העצבים במחט אחת ללא יותר משלוש פעמים. לאחר אישור החדרת המחט, שמור על מיקומה ללא תנועה והפעל את משאבת המזרק. עקוב אחר העירוי כדי לוודא שהוא נשאר בתוך העצב וזורם בצורה חלקה. השתמש בנקודה המסומנת על צינור העירוי כדי לעקוב אחר תנועת תערובת צבע התרופה. שימו לב כאשר העצב מתחיל לפתח את צבע הצבע. הסר את המחט המעוקלת בגודל 25, ובעזרת קצות כותנה סטריליים, הזיזו בעדינות את הרקמות בחזרה למקומן המקורי. ואז הסר את קצות הנסיגה. סגרו את הפצע בתפר נספג או שאינו נספג, ומרחו כמות זעירה של דבק רקמות בין התפרים במידת הצורך כדי להבטיח שהפצע נסגר בצורה מושלמת.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

הזרקה ישירה של עצב הנרתיק מתן תרופות מערכת העצבים ההיקפית הפרעות במערכת העצבים האוטונומית עצב הוואגוס השמאלי מיקרו-כירורגיה חולדות מורדמות צבע מעקב נאמנות להזרקה מחקרים פרה-קליניים ריפוי גנטי שיטת הזרקה

Related Videos

גירוי עצב התועה באמצעות אלקטרודות שרוול עצב היקפי מושתלות באופן כרוני בחולדות

02:00

גירוי עצב התועה באמצעות אלקטרודות שרוול עצב היקפי מושתלות באופן כרוני בחולדות

Related Videos

371 Views

גירוי זרם ישיר טרנס-שדרתי של מוטונורון עמוד השדרה של חולדה

03:21

גירוי זרם ישיר טרנס-שדרתי של מוטונורון עמוד השדרה של חולדה

Related Videos

864 Views

שיטה של ​​הזרקת Nodose הגרעינים בSprague-Dawley עכברוש

09:28

שיטה של ​​הזרקת Nodose הגרעינים בSprague-Dawley עכברוש

Related Videos

19.8K Views

הקוצב וגאלי ככלי כדי לגרום פלסטיות במסלולים רלוונטיים ללמידה הכחדה

11:02

הקוצב וגאלי ככלי כדי לגרום פלסטיות במסלולים רלוונטיים ללמידה הכחדה

Related Videos

24.4K Views

הגברת Recovery Time וירידה מינהל LPS לחקר העצב התועה מנגנוני גירוי בתגובות דלקתיות מוגבל

06:43

הגברת Recovery Time וירידה מינהל LPS לחקר העצב התועה מנגנוני גירוי בתגובות דלקתיות מוגבל

Related Videos

10.4K Views

עבודה חדשה מומלצת עבור אימות זריקות וריד הזנב עכברוש עם סוכנים ליד אינפרא אדום-שכותרתו

04:19

עבודה חדשה מומלצת עבור אימות זריקות וריד הזנב עכברוש עם סוכנים ליד אינפרא אדום-שכותרתו

Related Videos

22.3K Views

משלוח פנימי של אנטי-סנס וליגונו, במערכת העצבים המרכזית של חולדה

07:47

משלוח פנימי של אנטי-סנס וליגונו, במערכת העצבים המרכזית של חולדה

Related Videos

19.6K Views

ב Vivo הקלטה תאית של מוטונורון עמוד השדרה חולדה מזוהה סוג במהלך גירוי זרם ישיר טרנס-עמוד השדרה

11:07

ב Vivo הקלטה תאית של מוטונורון עמוד השדרה חולדה מזוהה סוג במהלך גירוי זרם ישיר טרנס-עמוד השדרה

Related Videos

5.7K Views

ניתוח השתלה לגירוי עצב הואגוס בטני ותיעוד מחקרים בחולדות ערות

07:17

ניתוח השתלה לגירוי עצב הואגוס בטני ותיעוד מחקרים בחולדות ערות

Related Videos

2.9K Views

גישה טרנס-לחמית להזרקה לעצב הראייה של החולדה

02:33

גישה טרנס-לחמית להזרקה לעצב הראייה של החולדה

Related Videos

844 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code