10 ביוני 2025
ציטומטריית זרימה רב-צבעונית עבור טסיות יכולה לזהות תת-סוגים חדשים של טסיות דם בתוך תת-אוכלוסיות טסיות קלאסיות, כגון טסיות מנוחה, אגרגטוריות, פרוקו-קרישה ואפופטוטיות. זה מאפשר השוואה של דפוסי תת-אוכלוסייה שונים המושרים על ידי אגוניסטים שונים של טסיות דם. כאן מתואר בפירוט הליך להקמת פאנל ציטומטריית זרימה רב צבעוני.
המחקר שלנו משתמש בציטומטריית זרימה צבעונית כדי לזהות ולאפיין תת-אוכלוסיות טסיות דם, במטרה להבין את התפקידים, דפוסי ההפעלה והרלוונטיות הקלינית בפקקת, דלקת והקשר ספציפי למחלה. הבדיקה הציטומטרית של הזרימה הרב-צבעונית שהוקמה מאפשרת להתבונן ב, אגוניסט טסיות משרה דפוס הפעלה מובהק ובהשוואה לפפטיד הקשור לקולגן מייצר פרוקואגולנט ושל תת-אוכלוסייה. הבדיקה הרב-צבעונית מאפשרת מדידה בו-זמנית של הפעלת טסיות דם, הידבקות, צבירה ופוטנציאל אפופטוטי של טסיות בודדות בתוך אוכלוסייה של טסיות דם אנושיות מבודדות בצינור יחיד.
[מדריך] כדי להתחיל, הכינו את כל הריאגנטים הנדרשים להליך. כעת, מערבבים 10 מיליליטר של מאגר 10x Tyrode עם 90 מיליליטר מים מזוקקים. הוסף 0.1 גרם גלוקוז והתאם את ה-pH של הנפח המלא עם hepes כדי להגיע ל-7.4. ראשית, הגדר את ה-pH של 10 מיליליטר של המאגר ל-7.4, ולאחר מכן התאם את ה-pH של 90 מיליליטר הנותרים עם חומצה הידרוכלורית רגילה אחת ל-6.5. לאיסוף דגימות דם, הכינו מזרק של 10 מיליליטר לכל תורם עם שני מיליליטר נוגד קרישה ACD. תן למזרק להתייצב בטמפרטורת החדר. לאחר איסוף דם תורם במזרק ACD שחומם מראש, העבירו לאט את הדם שטופל ב-ACD לצינור תגובה של 15 מיליליטר. צנטריפוגה ה-ACD טיפלה בדם ב-209G למשך 20 דקות בטמפרטורת החדר מבלי להשתמש בהפסקה. בינתיים, הכינו 25 מיליליטר של מאגר Hepes של Tyrode, pH 6.5 בצינור תגובה של 50 מיליליטר. לאחר הצנטריפוגה, העבירו בעדינות את שכבת הפלזמה העליונה העשירה בטסיות לתוך הצינור המכיל את מאגר Hepes של Tyrode. כדי למנוע זיהום, השאירו כמיליליטר אחד של פלזמה עשירה בטסיות דם מעל שכבת המעיל והאריתרוציטים. לאחר מכן, צנטריפוגה את המתלה ב-430G למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר כדי לגלול את טסיות הדם. השליכו את הסופרנטנט והשעו בזהירות את כדור הטסיות ב-200 עד 300 מיקרוליטר של חוצץ טירוד, מותאם ל-pH 7.4. מדוד את ספירת הטסיות באמצעות מונה תאים לפני התאמתו ל-200,000 טסיות למיקרוליטר עם מאגר Hepes של Tyrode ב-pH 7.4. עבור קולטנים שאינם דורשים הפעלה לפני הצביעה, כולל CD61, CD42B, CD41, CXCR7 ו-CXCR4, הכינו דגימה אחת לא מוכתמת ודגימה אחת מוכתמת לכל נוגדן. עבור קולטנים או סמנים הדורשים הפעלה כגון PAC-1, CD63, CD62P, NXN5 ו-NIR זומבי. הפעל את הדגימה עם 10 מיקרוגרם למיליליטר של CRPXL והכן דגימות מופעלות ולא מופעלות. כדי להפעיל את טסיות הדם, דגרו עליהן עם 10 מיקרוגרם למיליליטר CRPXL למשך 30 דקות. לאחר מכן, יש לדגור על הטסיות המבודדות עם ריכוזים משתנים של הנוגדן המצומד פלואורוכרום או למות למשך 30 דקות. לאחר מכן, הוסף 300 מיקרוליטר של מאגר קשירת אנקסין לכל דגימה כדי לדלל אותה. מדוד 10,000 אירועים עבור כל דגימה באמצעות ציטומטר זרימה. חשב את מדד הכתם עבור כל נוגדן כדי לקבוע את ההפרדה האופטימלית בין אוכלוסיות חיוביות ושליליות. שרטט את אינדקס הכתם מול ריכוזי הנוגדנים כדי לזהות את הריכוז האופטימלי עבור כל נוגדן לצביעה, ממיסים אבקת המן בנתרן הידרוקסיד 1.4M ליצירת תמיסה של 3M. מחממים את התמיסה ל 96 מעלות צלזיוס למשך חמש דקות ב -450 סיבובים לדקה. מדללים אותו במים מזוקקים לקבלת תמיסת גבעול של שלושה מילי-מולרים. לאחר התאמת ספירת הטסיות למיליון טסיות לדגימה, הפעל את הטסיות כפי שהודגם קודם לכן. הוסף 43.3 מיקרוליטר של קוקטייל נוגדנים לכל דגימה ודגר אותם למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר בחושך. לאחר הדגירה, יש לדלל כל דגימה ב-300 מיקרוליטר של X ו-X אחד במאגר קשירה המורכב מ-10 מילי-מולרי Hepes נתרן הידרוקסיד ב-pH 7.4. מדוד כל דגימה מוכתמת מיד באמצעות ציטומטר הזרימה. לפיצוי עם חרוזים, הכינו 150 מיקרוליטר PBS לכל פלואורופור והוסיפו טיפה אחת של חרוזים ומיקרוליטר אחד של הנוגדן המצומד הקרינה. כדי לפצות על נספח V, השתמש בשבעה חרוזים PECY7B המסומנים ב-CD 62L אנטי-אנושי מצומד לאותו פלואורופור כמו נספח V. השתמש בחרוזי פיצוי תגובתי אמין לצבע המגיב אמין על ידי ערבוב שתי טיפות של חרוזים חיוביים וטיפה אחת של חרוזים שליליים ב-150 מיקרוליטר של PBS עם מיקרוליטר אחד של קוביה. ודא שהחרוזים החיוביים מגיבים ומציגים אות והחרוזים השליליים לא. הכן פלואורסצנטי מינוס בקרה אחת לכל סמן. חלקות הפיזור הראו שינוי ברור באוכלוסיית טסיות הדם. כאשר המין יוצר יותר טסיות עם פיזור נמוך קדימה מאשר אגוניסטים אחרים. טיפול בתרומבין ADP ו-CRPXL הביא לכך ש-40 עד 60% מהטסיות היו חיוביות ל-CD42, בעוד שהמין הפחית משמעותית את האוכלוסייה הזו. לכל האגוניסטים של טסיות הדם לא הייתה השפעה על ביטוי פני השטח CD41 ו-CD61. רק המן הגדיל משמעותית את ביטוי פני השטח CXCR4 ו-CXCR7. בנוסף, החשיפה לפוספטידילסרין הוגברה גם תחת טיפול בהמין, וכתוצאה מכך שיפור של תאים חיוביים לנספח V. ניתוחי UMAP וגרף פנול הגדירו 27 אשכולות טסיות נפרדים, שהשתנו בהתאם לסוג האגוניסט. המין גרם לשינוי הדרמטי ביותר בדפוסי האשכולות. תת-אוכלוסיות טסיות מנוחה נשמרו ביותר עם ADP והוחכרו עם המין.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה עושה שימוש בבדיקת flow cytometry רב-צבעית כדי לזהות ולאפיין תתי-אוכלוסיות שונות של טסיות דם, ובכך להעמיק את הבנתנו בתפקידיהן בתהליכי thrombose ודלקת. השיטה מאפשרת מדידה סימולטנית של מצבי אקטיבציה שונים של טסיות דם ותגובות לאגוניסטים שונים.
ציטומטריית זרימה רב-צבעית לניתוח תתי-אוכלוסיות של טבקיות מאפשרת פנוטיפואיזציה ברזולוציה גבוהה, שהיא קריטית להפחתת סיכונים בתוכניות גילוי מוקדמות בתחומי קרדיו-וסקולר והמטולוגיה. גישה זו תומכת בביטחון חיזוי בקישור בין מצבי שפעול של טבקיות לתוצאות פונקציונליות, ובכך מספקת מידע לאסטרטגיות של תיקוף מטרות וביו-מרקרים תרגומיים. שילוב בדיקה זו בממשק שבין שלבי הגילוי לשלבים הפרה-קליניים משפר את קבלת ההחלטות לגבי פורטפוליו של פיתוחי תרופות למצבי תרומבוזה ודלקת.
בדיקת פלוו-ציטומטריה (flow cytometry) רב-צבעית זו מגשרת בין שלבים מוקדמים של גילוי, סינון ומחקר פרה-קליני, על ידי מתן אפשרות לאפיון פנוטיפי של טבחים עם תוכן גבוה ולמיפוי תפקודי.