-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
הדמיה ברזולוציה גבוהה של C. elegans בכל שלבי הזחל
הדמיה ברזולוציה גבוהה של C. elegans בכל שלבי הזחל
JoVE Journal
Developmental Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Developmental Biology
High-Resolution C. elegans Imaging Across All Larval Stages

הדמיה ברזולוציה גבוהה של C. elegans בכל שלבי הזחל

Full Text
1,439 Views
07:49 min
May 23, 2025

DOI: 10.3791/68172-v

Simon Berger1, Silvan Spiri1, Andrew deMello2, Alex Hajnal1

1Department of Molecular Life Sciences,University Zürich, 2Institute for Chemical- and Bioengineering,ETH Zürich

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol describes a microfluidic-based method for time-lapse imaging of C. elegans throughout post-embryonic development. It addresses challenges in high-resolution in vivo observation while maintaining animal viability.

Key Study Components

Area of Science

  • Developmental Biology
  • Imaging Techniques
  • Microfluidics

Background

  • C. elegans is a widely used model organism in developmental biology.
  • High-resolution imaging requires immobilization, which can affect viability.
  • Existing methods have limitations in observing dynamic processes in vivo.
  • This protocol provides a solution for long-term imaging of C. elegans.

Purpose of Study

  • To develop a method for long-term imaging of C. elegans.
  • To facilitate the study of dynamic developmental processes in vivo.
  • To improve the observation of organ formation and cell divisions.

Methods Used

  • Microfluidic device setup and calibration.
  • Injection of C. elegans into the microfluidic channels.
  • Time-lapse imaging using various microscopy modalities.
  • Image processing techniques for enhanced clarity.

Main Results

  • Successful imaging of C. elegans from early L1 to mid-L2 stages.
  • Observation of vulva precursor cell divisions and organ formation.
  • Consistent cell division timings across multiple animals.
  • Steady gonad length increase during larval stages.

Conclusions

  • The microfluidic method enables high-quality imaging of C. elegans.
  • It allows for detailed studies of developmental processes in real-time.
  • This approach has been adopted by various labs for diverse research applications.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of using microfluidics for C. elegans imaging?
Microfluidics allows for long-term imaging while maintaining the viability of C. elegans, enabling detailed observation of developmental processes.
What imaging techniques can be used with this protocol?
The protocol supports brightfield, epifluorescence, spinning disc confocal, and super resolution microscopy techniques.
How does the protocol ensure high imaging quality?
High imaging quality is maintained through the use of a 170-micrometer thick cover glass and careful device calibration.
What developmental stages of C. elegans can be observed using this method?
The method allows observation from early L1 to adulthood, capturing key developmental events.
Can this method be adapted for other organisms?
While this protocol is designed for C. elegans, the microfluidic approach may be adapted for other small organisms with similar imaging needs.

פרוטוקול זה מתאר הדמיית דולג זמן מבוססת מיקרופלואידית על פני כל ההתפתחות הפוסט-עוברית.

במעבדה אנו עובדים על כל מיני שאלות בביולוגיה התפתחותית. אני עצמי עובד יותר על הצד הטכני, מפתח שיטות להתמודד טוב יותר עם השאלות הללו באמצעות טכניקות הדמיה. תחום C. elegans אימץ בהצלחה מגוון עצום של שיטות, החל מעריכת גנים CRISPR, טרנסקריפטומיקה ופרוטאומיקה, ועד למיקרוסקופיה ברזולוציה גבוהה. C. elegans הוא מודל מדהים, אולם בהקשר של תצפית in vivo ברזולוציה גבוהה, הוא מגיע עם האתגרים שלו, הדורשים קיבוע לרזולוציה הטובה ביותר, מה שבתורו מגביל את יכולת הקיום של בעלי החיים. הפרוטוקול מציג פתרון אפשרי אחד להדמיה ארוכת טווח של C. elegans, ומאפשר לחוקרים לאמץ את השיטה במעבדה שלהם ולחקור מגוון רחב של תהליכי התפתחות דינמיים ישירות in vivo. בתוך המעבדה, השיטה אפשרה תצפית מפורטת על היווצרות איברים, למשל, בהקשר של מורפוגנזה או בעקבות חלוקת תאים סומטיים לבגרות. השיטה אומצה מאז על ידי מעבדות רבות החוקרות מגוון רחב של תהליכי התפתחות.

[מגישה] כדי להתחיל, חבר את המכשיר למסגרת התמיכה והרכיב אותו על המיקרוסקופ הזקוף. מלאו מזרק במים נטולי יונים, ולאחר מכן חברו מחט בגודל 23 וחתיכה ארוכה של צינור בגודל 16 אינץ' עם סיכת פלדה כפופה חלולה. מלאו את הצינור במים נטולי יונים מהמזרק והכנסו את סיכת הפלדה לחור האגרוף של כניסת השסתום כדי לחבר את הצינור. הסר את המזרק והמחט לפני חיבור הצינור לסולנואיד מחוץ לשבב. באמצעות תוכנת ההדמיה, הפעל את הסולנואיד ולחץ על המכשיר למשך מספר דקות כדי להוציא את כל האוויר מהשסתום. ודא את ההשלמה על ידי בדיקה ויזואלית שממשק מי האוויר נראה כהה ונעלם לתוך חומר ה-PDMS. כבה את הסולנואיד באמצעות תוכנת ההדמיה. לאחר מכן, מלאו מזרק של מיליליטר אחד בתמיסת החיידקים המסוננים והצמידו למחט מחט בגודל 30 וחתיכה ארוכה של צינור בגודל 32 אינץ'. לחץ על הבוכנה כדי למלא גם את המחט וגם את הצינור המחובר בתמיסת החיידקים. לאחר מכן, בעזרת פינצטה, הכנס את הצינור בגודל 1 על 32 אינץ' ישירות לכניסת המזון של המכשיר המיקרופלואידי והנח את המזרק על משאבת המזרק. לחץ על בוכנת המזרק באמצעות בורג האגודל מאחור כדי למלא את המכשיר בנוזל. חסום את כניסת ויציאת התולעת עם סיכות פלדה אטומות והפעל לחץ נוסף באמצעות בורג הסט כדי להסיר את כל האוויר שנותר מהמכשיר. לאחר מכן הסר את סיכת הפלדה החסומה בשקע והצמד את מיכל הפסולת לשקע. דחוף את המזרק כדי לוודא שמיכל הפסולת מחובר כהלכה ושאין סתימות במערכת. הסר את סיכת הפלדה החסומה השנייה מהכניסה ודחף את המזרק עד להופעת טיפת נוזל קטנה בכניסת התולעת. לאחר מכן, בעזרת מחט בגודל 23, חבר חתיכה ארוכה יותר של צינור בגודל 16 אינץ' בגודל של כ-15 עד 20 סנטימטרים למזרק של מיליליטר מלא במאגר S-בסיסי. חבר סיכת פלדה ישרה בגודל 23 לקצה השני של הצינור. מלאו את המחט והצינור במאגר S-בזאלי מהמזרק. כעת, הכנס את סיכת הפלדה בקצה הצינור לתוך הצינור המכיל את התולעים, ודחף כמות קטנה של נוזל דרך הצינור כדי להבטיח שלא יישאר אוויר. משוך את התולעים לתוך הצינור מבלי למשוך אותן לתוך המזרק. לאחר מכן דחוף את המזרק המחובר לתולעים עד שתופיע טיפת נוזל קטנה על סיכת הפלדה והכנס את סיכת הפלדה לכניסת התולעת של המכשיר המיקרופלואידי. הנח את המכשיר על מיקרוסקופ בהגדלה נמוכה, פי 5 או פי 10, או על מיקרוסקופ דיסקציה. מקם את ההתקן כך שהכניסה נראית בצד אחד של שדה הראייה והחלק האחורי של כניסת תעלת המלכודת נראה בצד השני. לחץ בעדינות על הבוכנה של מזרק התולעת. לאחר מכן, דחף את בעלי החיים לכיוון מערך הערוצים. ברגע שבעל חיים פונה לערוץ, דחפו אותו לתוך התעלה וחזרו על הפעולה עבור בעלי חיים נוספים. לאחר לכידת מספיק בעלי חיים, הנח את המזרק, שעדיין מחובר לכניסת התולעת על במת המיקרוסקופ, שם הוא יישאר לאורך כל הניסוי. אם בוצעה טעינה במיקרוסקופ דיסקציה, העבר את המכשיר למיקרוסקופ ההדמיה. כעת, הפעל את משאבת המזרק והפעל אותה בקצב מוגדר מראש של מיקרוליטר אחד לשעה עבור 0.5 מיקרוליטר. תכנת את משאבת המזרק כך שהיא תפעל במיקרוליטר אחד לשעה עבור 0.5 מיקרוליטר, ולאחר מכן קצב הזרימה מוגבר ב-100 מיקרוליטר לשעה עבור 0.5 מיקרוליטר, ודפוס הזרימה חוזר על עצמו לאורך כל הניסוי. הנח את המכשיר על המיקרוסקופ tagוודא שהוא מוחזק היטב. עבור להגדלת ההדמיה הרצויה. זהה את בעלי החיים ואזורי העניין במערך ערוצי הלכידה והגדר את תנאי ההדמיה הרצויים. תמונה בתנאי ההדמיה הרצויים, הפעלת השסתום על השבב דרך הסולנואיד 10 שניות לפני רכישת התמונה כך שבעלי החיים מוחזקים במקומם. המכשיר המיקרופלואידי שמר על איכות הדמיה גבוהה על פני שיטות מיקרוסקופיה שונות, כולל שדה בהיר, אפיפלואורסצנטי, קונפוקל דיסק מסתובב ושיטות סופר רזולוציה עקב שימוש בזכוכית כיסוי בעובי 170 מיקרומטר. התפתחות תאי אפיתל של Caenorhabditis elegans נראית מתחילת L1 עד אמצע שלב הזחל L2. ניכרת אינדוקציה של תאי הפות הראשוניים הדהויים וחלוקתם לאחר מכן משלהי L1 לשלב הזחל המוקדם של L4. שלבי היווצרות הפות מתחילת L3 ועד לבגרות. התמונות שנרכשו שופרו באמצעות דה-קונבולוציה ורישום תמונה, ושיפרו את הבהירות החזותית חלוקות תאים שנראו התרחשו באופן עקבי ובזמן על פני כל בעלי החיים, כאשר כל החלוקות הושלמו במשכי זמן טיפוסיים של שלב הזחל. אורך בלוטת המין גדל בהתמדה במהלך שלבי L2 ו-L3 עם מדידות עקביות שהתאפשרו על ידי כיוון ישר של בעלי חיים.

Explore More Videos

ביולוגיה התפתחותית גיליון 219

Related Videos

הדמיה ג elegans עוברים באמצעות מיקרוסקופ Epifluorescent ותוכנות קוד פתוח

08:32

הדמיה ג elegans עוברים באמצעות מיקרוסקופ Epifluorescent ותוכנות קוד פתוח

Related Videos

28.5K Views

התקני microfluidic פשוטים עבור In vivo הדמיה של ג elegans, דרוזופילה ודג זברה

10:32

התקני microfluidic פשוטים עבור In vivo הדמיה של ג elegans, דרוזופילה ודג זברה

Related Videos

17.6K Views

הדמיית דינמיקת סידן תת-תאית בתאי עצב של Caenorhabditis elegans

03:17

הדמיית דינמיקת סידן תת-תאית בתאי עצב של Caenorhabditis elegans

Related Videos

548 Views

חזותי neuroblast cytokinesis במהלך ג elegans עובר

09:52

חזותי neuroblast cytokinesis במהלך ג elegans עובר

Related Videos

12.4K Views

Microchambers agarose לסידן הדמיה לטווח ארוך של Elegans Caenorhabditis

07:51

Microchambers agarose לסידן הדמיה לטווח ארוך של Elegans Caenorhabditis

Related Videos

10.1K Views

C. elegans המעי כמו המודל עבור המערכת לומן מורפוגנזה ו Vivo ב מקוטב ממברנה להן ברמה תא בודד: תיוג על ידי נוגדנים מכתים, ניתוח אובדן RNAi-של-פונקציה והדמיה

12:15

C. elegans המעי כמו המודל עבור המערכת לומן מורפוגנזה ו Vivo ב מקוטב ממברנה להן ברמה תא בודד: תיוג על ידי נוגדנים מכתים, ניתוח אובדן RNAi-של-פונקציה והדמיה

Related Videos

14.3K Views

פלטפורמה Microfluidic הדמיה האורך ב Caenorhabditis elegans

09:00

פלטפורמה Microfluidic הדמיה האורך ב Caenorhabditis elegans

Related Videos

7K Views

איזוטרופי מיקרוסקופ גיליון אור אוטומטי שושלת היוחסין ניתוח לקטלוג Caenorditis הEmbryogenesis עם רזולוציה Subcellular

08:16

איזוטרופי מיקרוסקופ גיליון אור אוטומטי שושלת היוחסין ניתוח לקטלוג Caenorditis הEmbryogenesis עם רזולוציה Subcellular

Related Videos

8.8K Views

שיטת דימות למחצה של תפוקה גבוהה וערכת כלי הדמיה של נתונים כדי לנתח את הפיתוח העובריים של ס. אלאנס

06:49

שיטת דימות למחצה של תפוקה גבוהה וערכת כלי הדמיה של נתונים כדי לנתח את הפיתוח העובריים של ס. אלאנס

Related Videos

7.2K Views

שבב מיקרופלואידי פשוט לגדילה והדמיה ארוכת טווח של Caenorhabditis elegans

10:45

שבב מיקרופלואידי פשוט לגדילה והדמיה ארוכת טווח של Caenorhabditis elegans

Related Videos

2.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code