23 במאי 2025
מתוארת טכניקה חדשה להעברה נרחבת של נגיף הקשור לאדנו, המשתמשת בעירוי וירוס תת-עכבישי. שיטה זו לא רק מבטיחה התמרה נרחבת של נוירונים ניאו-קורטיקליים של עכברים בשכבות שטחיות, אלא גם מביאה לביטוי סלקטיבי של הטרנסגן בנוירונים פירמידליים בשכבה חמש, גם כאשר משתמשים במקדם לא סלקטיבי.
המחקר שלנו מתמקד בפיתוח השיטה המאפשרת התמרה ויראלית של נפח גדול של רקמה עצבית בניאו-קורטקס של העכבר. בדרך כלל, השעיה של חלקיקים נגיפיים מוזרקת ישירות לפרנכימה של המוח. כאן טרנספקציה של האזור נקבעת על ידי דיפוזיה של החלקיקים הנגיפיים ברקמת המוח, שיש להם טווח מוגבל.
אנו מזריקים נגיפי וקטור ויראלי AAV2 לחלל התת-עכבישי דרך פני השטח של המוח. מצאנו כי מתן תת-עכבישי של הנגיף הוביל לעלייה של כמעט פי ארבעה באזור ההדבקה בהשוואה להזרקה תוך-פרנכימלית. הטכניקה החדשה מספקת התמרה נרחבת של נוירונים ניאו-קורטיקליים בעכברים בוגרים, ומסייעת בשימור רקמת המוח לצורך הקלטות אופטיות או אלקטרופיזיולוגיות של פעילות עצבית.
שיטת ההזרקה שלנו מאפשרת ביטוי סלקטיבי של הטרנסגן בשכבת אוכלוסייה גדולה של חמישה נוירונים פירמידליים, גם כאשר משתמשים במקדם חזק ולא סלקטיבי. עם זאת, המנגנון של סלקטיביות כזו אינו מובן במלואו. כדי להתחיל, אבטח את השיניים הקדמיות של עכבר מורדם בסרגל השיניים, והרכיב את מסכת החיה.
מקם בזהירות את העכבר על מוטות האוזניים. גלחו את הראש מהעיניים אל מאחורי האוזניים, ולאחר מכן ספוגו את המשטח המגולח עם 70% אתנול, ולאחר מכן תמיסת יוד של 5%. יש למרוח תמיסת לידוקאין סטרילית של 4% באופן מקומי, ולהזריק 0.02 מיליליטר דקסמתזון באופן תת עורי כדי להפחית כאב ודלקת.
בעזרת אזמל סטרילי ומספריים, בצע חתך בקו האמצע של ארבעה עד חמישה מילימטר החל מבין האוזניים כדי לפתוח את הקרקפת. הרחב את החתך בעזרת מספריים כדי למנוע נזק לגולגולת. ספוג את פני הגולגולת עם מי חמצן 3% כדי לדמיין ברגמה ולמבדה.
הפסק מיד את התגובה עם 0.9% נתרן כלורי מלח. לאחר מכן השתמש במגרד עצם כדי להסיר רקמה משטח הגולגולת. התקן את המזרק הממונע שהוכן מראש עם מזרק המילטון על הזרוע הסטריאוטקסית.
האירו את הגולגולת החשופה באמצעות מקור אור כירורגי ומקדו את המיקרוסקופ על הברגמה. בהסתכלות דרך המיקרוסקופ, תפעל את הזרוע הסטריאוטקטית כדי ליישר את קצה המחט ישירות מעל ברגמה. יישר ברגמה ולמבדה אופקית באמצעות קצה המחט.
חזור לברגמה ורשום את הקואורדינטות. הזז את המחט לקואורדינטות המחושבות. הורד אותו למיקום החדש וסמן אותו.
בחר את האתר להזרקה ויראלית ליד היעד תוך התחשבות בהתפשטות הנגיף. כעת, השתמש בקוץ שיניים סטרילי בקוטר של 0.5 עד 0.8 מילימטרים כדי ליצור קרניוטומיה קטנה תוך כדי צפייה דרך המיקרוסקופ. השתמש באוויר בלחץ כדי לפוצץ אבק עצמות.
יש לרחוץ את החור במי מלח סטריליים ולהסיר את העודפים בעזרת צמר גפן. לאחר מכן השתמש במחט בגודל 27 עם קצה בצורת וו או פינצטה עדינה כדי להסיר את העצם שנותרה, תוך הקפדה לא לפגוע בדורה. מכסים את הגולגולת במגבת נייר סטרילית לחה במי מלח.
לאחר מכן, הניחו סרט שקוף סטרילי על גבי משטח הגולגולת. הזז את הזרוע הסטריאוטקסית לאחור ויישר את מחט המזרק המיקרו מעל הסרט השקוף. לאחר מכן מחלקים עודפי שמן עד שנשארים שני מיקרוליטר.
פיפטה את נפח ההזרקה הנגיפית ועוד שני מיקרוליטרים של וירוס על הסרט השקוף. כשמסתכלים דרך המיקרוסקופ, מורידים את קצה המחט למרכז טיפת הנגיף. כעת טען את הנגיף למזרק המיקרו בעזרת מזרק ממונע.
הסר את הנייר הלח מהגולגולת וייבש את האזור בעזרת צמר גפן. מקם מחדש את הזרוע הסטריאוטקסית והמחט מעל אתר ההחדרה. לאחר מכן, יש לחלק טיפת וירוס כדי לבדוק אם יש סתימת מחט.
צור חריץ קטן בדורה באמצעות מחט בגודל 30 עם קצה בצורת וו. הורד את מחט המזרק לדורה וחשב את עומק ההחדרה על סמך נקודת המגע של פני השטח. הכניסו את המחט לאט לקליפת המוח לעומק של 300 מיקרומטר, המתינו שתיים-שלוש דקות, חזרו ל-200 מיקרומטר והמתינו עוד שתיים-שלוש דקות.
התחל בהזרקה ויראלית ב-0.06 מיקרוליטר לדקה בסך הכל מיקרוליטר אחד. לאחר העירוי, שמור את המחט באתר המטרה למשך 10 דקות כדי לאפשר פיזור הנגיף. לאחר מכן משוך את המחט לאט כדי למנוע זרימה חוזרת.
יש להוציא טיפת וירוס כדי לוודא שהמחט אינה סתומה. סגור את החתך בקרקפת באמצעות 5-0 תפרים נספגים או לא נספגים. מתן תת-עכבישי של AAV2 הוביל לשטח גדול משמעותית של זיהום עצבי בהשוואה להזרקה תוך-קורטיקלית מסורתית, עם התרחבות כמעט פי ארבעה הן בכיוונים המדיולטרליים והן בכיוון הרוסטרו-קאודלי.
הזרקת נגיף תת-עכבישי הביאה לתיוג פלואורסצנטי ירוק חזק של נוירונים בשכבות קליפת המוח שתיים, שלוש וחמש, בעוד ששכבות ארבע ושש לא הראו גופי תאים מסומנים אך הציגו דנדריטים ואקסונים גלויים בהתאמה. חלקיקים פלואורסצנטיים שנוספו לתרחיף הנגיף המוזרק במהלך הזרקה תת-עכבישית נמצאו לאורך פני המוח, מה שמעיד על התפשטות הנגיף דרך נוזל השדרה, עם כיסוי פני שטח רחב יותר מאשר תיוג עצבי. פיזור פני שטח גדול של פלואורסצנטי ירוק בחתכים קדמיים אישר זיהום נרחב בקליפת המוח לאחר הזרקה תת-עכבישית, בניגוד לזיהום מקומי קטן שנראה בהזרקה רגילה.
בשכבות סופר גרגיריות, חלק ניכר מהנוירונים המומרים ביטאו במשותף פרוואלבומין או קלבינדין, בעוד שלא זוהו אינטרנוירונים בעלי תווית משותפת בשכבה החמישית, וכל התאים הנגועים יוצגו אך ורק על ידי נוירונים פירמידליים.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מציג שיטה חדשנית להחדרת נגיף אדנו-אסוסיאטיבי (AAV) באמצעות עירוי לתעלת הסב-עכביש בעכברים. הטכניקה משפרת את התעתוק הנרחב של נוירונים בנאוקורטקס, תוך הבטחת ביטוי סלקטיבי של הגן המועבר בנוירונים פירמידליים בשכבה חמישה. היא לא רק מרחיבה את שטח ההדבקה, אלא גם משמרת את רקמת המוח לצורך הקלטות נוירונליות עתידיות.
העברה נרחבת וסלקטיבית של גנים לנוירונים היא אתגר קריטי בגילוי תרופות נוירולוגיות, המשפיע על דיוק מידול המחלה ותיקוף המטרה. שיטת עירוי AAV2 למרווח הסוב-עכבישי מאפשרת טרנסדוקציה רחבה וספציפית לשכבות בנאוקורטקס של העכבר, ובכך תומכת במחקרים פונקציונליים בעלי תוכן גבוה תוך שימור הרקמה לניתוחים המשכיים. גישה זו מגבירה את הביטחון החזוי בקווי פיתוח מוקדמים במדעי המוח ומסייעת לתהליכי עבודה תרגומיים חסונים.
שיטת הובלת AAV2 למרווח הסוב-עכבישי (subarachnoid) זו משתלבת ברצף שבין הגילוי לשלב הפרה-קליני, ומגשרת בין תיקוף מוקדם של מטרות לבין מחקרים פונקציונליים וטרנסלציונליים המשכיים.