20 ביוני 2025
כאן, אנו מציגים פרוטוקול להערכת תפקוד תאי החיסון לאחר שבץ איסכמי באמצעות ניתוח זרימה ציטומטרי במודל מיני שבץ. שיטה זו מאפשרת בחינה מפורטת של אינטראקציות נוירואימוניות וניתן להתאים אותה לחקר מחלות ניווניות אחרות, מה שמשפר את ההבנה שלנו לגבי תגובות חיסוניות בפתולוגיה של שבץ מוחי.
היקף המחקר שלנו מתמקד בתפקוד תאי מערכת החיסון לאחר שבץ איסכמי. אנו שואפים להבין את חוקי התאים החיסוניים השוהים והחודרים בפתולוגיה של שבץ מוחי. נכון לעכשיו, זרימה ציטומטרית נמצאת בשימוש נרחב להערכת תפקוד תאי החיסון ואינטראקציות בדלקות עצביות.
בנוסף, טכניקות אימונוניות ותא בודד וריצוף מקדמים את המחקר באינטראקציות נוירו-חיסוניות. המעבדה שלנו תתמקד בהמחשת המסלול של אסטרוציטים באינטראקציות נוירו-אימוניות, תרומות אנג'יו לתהליכים נוירו-דלקתיים. כדי להתחיל, קח מזרק של 50 מיליליטר והצמד מחט בגודל 26 לקצהו.
מלאו את המזרק לחלוטין בתמיסת מלח. מקם את העכבר המורדם בכיוון שכיבה על לוח קצף. הארך את הגפיים הקדמיות והגפיים האחוריות ואבטח אותן באמצעות מחטים בגודל 26.
בעזרת מלקחיים משוננים של האגודל, אחוז בעור הבטן ובצע חתך רוחבי כדי לחשוף את הכבד. חותכים משני צידי הצלעות כדי לחשוף את הלב. כעת הכנס את המחט בגודל 26 לחדר השמאלי וחתך את האורקל הימני.
לחץ על בוכנת המזרק כדי לאפשר לדם להתנקז החוצה. המשך בזלוף עד שהדם המתנקז מהאורקל נראה צלול. לאחר עריפת ראשו של העכבר וחילוץ המוח, העבירו אותו למטריצת מוח מפלדת עכבר וחתכו אותו לפרוסות קרנית עוקבות של שני מילימטרים.
הכניסו 500 מיקרוליטר של תערובת אנזימי עיכול לכל באר של צלחת 12 בארות. בעזרת מיקרו מלקחיים מפרידים בעדינות את רקמת האוטם ומעבירים אותה לתערובת אנזימי העיכול. לבסוף, פרקו את הרקמה במספריים עיניים לחתיכות הקטנות ביותר האפשריות ודגרו את הצלחת בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות.
בעזרת פיפטה AP 1000, שאפו בעדינות והוציאו את התמיסה 10 פעמים כדי לפרק את הרקמה לתאים בודדים. לאחר מכן העבירו את התמיסה דרך מסננת תאים של 70 מיקרומטר. שטפו שוב ושוב גם את צלחת 12 הבאר וגם את מסננת התאים ב-HBSS קר כקרח המכיל סידן ומגנזיום.
כעת צנטריפוגה את תרחיף התאים שנאסף ב-500 גרם למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס. השליכו בזהירות את הסופרנטנט מבלי להפריע לכדור. השעו מחדש את הגלולה במיליליטר אחד של PBS.
לאחר שחוזרים על תהליך הצנטריפוגה, השעו את הגלולה שוב ב-150 מיקרוליטר PBS והעבירו את המתלה לצלחת תחתונה עגולה של 96 באר. שוב צנטריפוגה ב 500 גרם למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס. לאחר צנטריפוגה, אחזו בחוזקה בצלחת 96 הבאר והפכו אותה במהירות כדי להשליך את הסופרנטנט.
לאחר מכן, יש לדלל את הקרינה של כדאיות התא ביחס של אחד למאה ב-PBS ולהשעות מחדש את הגלולה ב-150 מיקרוליטר מתמיסת הצבע המדוללת. דגירה למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר תוך הגנה על הצלחת מפני אור. לאחר צנטריפוגה של חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס, השליכו את הסופרנטנט.
יש לדלל את קוקטייל הנוגדנים על פני התא במיון תאים פעילים מגנטיים או במאגר מקסימלי ומבלי לשטוף את התאים, להוסיף את קוקטייל הנוגדנים לבארות. יש לדגור במשך 15 עד 20 דקות בחום של ארבע מעלות צלזיוס לפני הצנטריפוגה למשך חמש דקות נוספות. לאחר צנטריפוגה של הצלחת והשלכת הסופרנטנט, השעו מחדש את הגלולה ב-150 מיקרוליטר של מאגר מקסימלי.
העבירו את המתלה לצינורות צנטריפוגה של 1.5 מיליליטר או מבחנות פוליסטירן תחתונות עגולות של חמישה מיליליטר. תכנן לוח ציטומטריית זרימה רב צבעוני בהתאם לתצורת המכשיר בשיטות ידניות או בכלי עיצוב פאנל מקוון. כלול צבע כדאיות תא בפאנל כדי לא לכלול תאים ופסולת שאינם ברי קיימא מהנתונים.
התאם את הגדרות גלאי הפיזור קדימה ופיזור הצד כדי להבטיח שהתאים המעניינים מוצגים כהלכה וניתן לסגור אותם כראוי. כוונן את פרמטרי FSC ו-SSC כדי למנוע לכלוך ורעשים זרים. בתרשים נקודות המציג שטח FSC לעומת גובה, הבחין בין כפולות לתאים בודדים.
השתמש באות השלילי של צבע הכדאיות כדי לבודד תאים ברי קיימא. השווה את בקרת האוטופלואורסצנציה מתאים לא מוכתמים עם בקרות חיוביות של תאים מוכתמים כדי לאשר שהתאים המוכתמים מותאמים כראוי לכל פרמטר. כוונן את הפיצוי על ידי ניתוח דגימות תאים צבעוניות ובחינת שתי עלילות נקודות צבע.
כוונן את הגדרות הפיצוי כלפי מעלה או כלפי מטה עד שאוכלוסיות התאים יתיישרו אנכית או אופקית זו עם זו. השתמש באותות CD45 ו-CD11B כדי להבחין בין לימפוציטים, מיקרוגליה, תאים מיאלואידים ואסטרוציטים על סמך דפוסי הביטוי הספציפיים שלהם. השתמש ברקמת מוח דמה כבקרת אוטופלואורסצנטית כדי לשמש כהתייחסות לזיהוי לימפוציטים.
אם מנתחים מטרה ספציפית, השתמשו בבקרת FMO עם רקמת מוח לאחר שבץ מוחי. אסוף את נתוני הבקרה ושמור אותם. באופן דומה, אסוף את הנתונים לדוגמה ושמור אותם.
בחר ומיין את אוכלוסיות תאי היעד למבחנות פוליסטירן תחתונות עגולות של חמישה מיליליטר או צינורות צנטריפוגה חרוטיים של 15 מיליליטר. הוסף 500 מיקרוליטר PBS ושטוף את צינור האיסוף כדי לשמור על כדאיות התאים ולסייע ביצירת גלולות. מיקרוגליה חיובית ל-CCR7 ו-CD11c חיובית כומתו בימים השני והשביעי לאחר שבץ איסכמי.
ביטוי CCR7 במיקרוגליה עלה בחדות ביום השני ונותר גבוה ביום השביעי בהשוואה לביקורת מזויפת. מיקרוגליה חיובית ל-CD11c עקבה אחר מגמה דומה, הגיעה לשיאה ביום השני ונשארה גבוהה יותר ממזויפת ביום השביעי. תרשימי נקודות הראו אותות CCR7 ו-CD11c צפופים בימים השני והשביעי.
בניגוד לאותות דלילים בבקרות דמה. אסטרטגיית שער הפרידה בין תאי מיקרוגליה מיאלואידים ולימפוציטים באמצעות ביטוי CD11B ו-CD45. סמנים נוספים הגדירו תאים ברי קיימא, אסטרוציטים ותת-קבוצות לימפוציטים.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מציג פרוטוקול להערכת תפקוד תאי מערכת החיסון לאחר שבץ מוחי איסכמי באמצעות ניתוח ציטומטרי זורם במודל של שבץ מוחי מיניאטורי (mini-stroke). השיטה מאפשרת בחינה מפורטת של אינטראקציות נוירו-אימוניות וניתן להתאימה למחקר של מחלות נוירודגנרטיביות שונות, ובכך היא תורמת להבנת התגובות החיסוניות בפתולוגיה של שבץ מוחי.
הערכה כמותית באמצעות ציטומטריית זרימה של אינטראקציות נוירו-אימוניות במודל עכברים לשבץ מוחי זעיר מאפשרת אפיון מדויק של הפעלה וחדירה של תאי מערכת החיסון בעקבות פגיעה איסכמית. גישה זו תומכת בהפחתת סיכונים מכניסטיים ובתיקוף מטרות עבור פתולוגיות המונעות על ידי נוירו-דלקת, ובכך מספקת מידע לקבלת החלטות בשלבים מוקדמים של תיקי פיתוח עבור מחלות נוירודגנרטיביות ומחלות בכלי הדם המוחיים. יכולת ההתאמה של הפרוטוקול למודלים שונים של מחלות משפרת את הרצף התרגומי ואת רמת הוודאות החזוית עבור אסטרטגיות טיפוליות של ויסות חיסוני.
פרוטוקול זה משתלב ברצף שבין שלב הגילוי לשלב הפרה-קליני, ותומך בתיקוף מטרות (target validation), הבהרה של מנגנונים חיסוניים ופיתוח בדיקות כמותיות עבור תוכניות מחקר למחלות נוירו-דלקתיות ונוירו-דגנרטיביות.