17 באפריל 2026
כאן, אנו מציגים פרוטוקול ATAC-seq מהיר ופשוט שיושם בתולעת שלמה בשלב L4 Caenorhabditis elegans באמצעות 30 מיקרו-ליטר של כדור תולעת בלבד.
המחקר שלנו מתמקד באופן שבו ויסות אפיגנטי מעוצב על ידי ביטוי הגנים, במיוחד כיצד נגישות כרומטין שולטת בפעילות הגנים בתנאים ביולוגיים שונים. ATAC-seq ב-C.elegans מוגבל על ידי החיפוי המגן שלו. הפרוטוקולים שלנו מתגברים על מחסום זה כדי לאפשר ניתוח אמין של נגישות כרומטין.
כדי להתחיל, השג אוכלוסייה סינכרונית של תולעי L1 ואפשר להם לגדול במשך 26 שעות ב-20 מעלות צלזיוס. ודא תחת מיקרוסקופ שרוב התולעים נמצאות בשלב L4. שחזר את כל התולעים מן הצלחות עם מאגר M9 והעביר אותן לצינור צנטריפוגה של 1.5 מיליליטר.
שטוף את התולעים חמש פעמים עם מיליליטר אחד של מים סטריליים על ידי לתת להן להתיישב בכבידה. לאחר מכן, העבר את הצינור המכיל את התולעים לחממה של 25 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות כדי להסיר את שרידי המזון במעיים. לאחר מכן קח 50 מיקרוליטר מהגלולה של התולעים והניח אותה בצינור חדש.
כדי לפרק את התולעים, הוסף 200 מיקרוליטר של מאגר SDS-DTT טרי ולשלב ברוטטור צינור במשך חמש דקות בדיוק. לאחר מכן, הוסף מיליליטר אחד של מאגר ביצה קר. לאחר מכן, סובב בפיקופוג להוצאת הנוזל העליון וחזור על הפעולה שש פעמים.
לאחר מכן, הוסף 80 מיקרוליטר של פרונים טריים. באמצעות פיפטה של 200 מיקרוליטר עם קצות מסוננות, ערבב את תערובת התולעים והפרונים 70 פעמים והשאיר אותה להתבשל בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות. הוסף 800 מיקרוליטר של מדיום L15 עם 10% סרום בקר עובר וצנטריפוג ב-500G למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס.
לאחר הסרת הנוזל העליון, הוסף מיליליטר אחד של מדיום L15 עם 10% סרום בקר עובר וצנטריפוג כפי שהוצג קודם לכן. לאחר שהגלולה נשטפה שלוש פעמים, הסר את הנוזל העליון והשעה מחדש את הגלולה ב-900 מיקרוליטר של מדיום L15 עם 10% סרום בקר עובר. לאחר מכן סנן את ההשעיה באמצעות מסנן של 20 מיקרומטר.
צנטריפוג את השעיית התאים המסוננים ב-500G למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס. לאחר מכן, הסר את הנוזל העליון והשאיר בערך 50 מיקרוליטר. הוסף 45 מיקרוליטר של מאגר ליזה טרי ושלב מחדש את הדגימה בזהירות.
לאחר מכן, הוסף בזהירות 50 מיקרוליטר של מאגר שטיפה מבלי לערבב את הדגימה. צנטריפוג ב-500G למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס. הסר את הנוזל העליון ושמור את הדגימה על קרח.
בעת הצנטריפוגה, הכן את תערובת ה-TN5 לפי דגימה על ידי שילוב של 25 מיקרוליטר של מאגר TN5, 24.8 מיקרוליטר של מים נטולי נקליאזות ו-0.2 מיקרוליטר של אנזים TN5. לאחר הצנטריפוגה, הסר את הנוזל העליון והשאיר את הגרעינים על קרח. הוסף 50 מיקרוליטר של תערובת TN5 לגלולה הגרעינית.
לאחר מכן, פיפט אותו למעלה ולמטה שבע פעמים כדי לערבב. התבשל ב-37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות על גוש תרמי וטפחו בעדינות על הצינור כל 10 דקות. לאחר התבשלות ה-TN5, הוסף 300 מיקרוליטר של מאגר PB וערבב על ידי וורטקס במהירות מקסימלית למשך 25 שניות.
העביר את כל הנפח מהצינור לעמודת הספין. צנטריפוג בטמפרטורת החדר למשך דקה במהירות מקסימלית. הוסף 750 מיקרוליטר של מאגר PE לעמודת הספין וצנטריפוג שוב.
לאחר מכן, זרוק את הנוזל העליון עם צינור האיסוף. לאחר ספין ריק, הכנס את העמודה לצינור חדש ממוספר של 1.5 מיליליטר. הוסף 10 מיקרוליטר של מאגר EB ב-37 מעלות צלזיוס למרכז העמודה מבלי לגעת בה.
השאיר אותו בטמפרטורת החדר למשך דקה. לאחר מכן, צנטריפוג למשך דקה במהירות מקסימלית בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, חזור על שלבי האלציה כדי לקבל נפח סופי של 20 מיקרוליטר במאגר EB.
בצע
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג פרוטוקול מותאם לביצוע ATAC-seq (בדיקה של כרומטין נגיש לטרנספוזאז באמצעות ריצוף) בתולעי Caenorhabditis elegans שלמים בשלב התפתחותי L4. השיטה מתגברת על האתגרים המוצבים על ידי הקוטיקולה העשירה בקולגן של הנמטודה, ומאפשרת מיפוי יעיל של נגישות הכרומטין ברחבי הגנום עם מספר מינימלי של תאים. זרימת העבודה המפושטת מקלה על מחקרים של דינמיקת כרומטין בתגובה לשינויים גנטיים וסביבתיים.
מיפוי נגישות כרומטין ברחבי הגנום בזחלי L4 שלמים של Caenorhabditis elegans מאפשר בחינה ישירה של נופים רגולטוריים באורגניזם רב-תאי שלם. תהליך עבודה אופטימלי זה של ATAC-seq מפחית חסמים טכניים, תומך בביטחון חיזוי במחקרי רגולציה של גנים ומסייע בהסרת סיכונים מכניסטיים בשלבים מוקדמים של הגילוי. יכולת ההתאמה של הפרוטוקול מגבירה את ערכו עבור תיקוף מטרות ברחבי פורטפוליו ויוזמות של גנומיקה פונקציונלית.
פרוטוקול ATAC-seq זה משתלב ברצף הגילוי, החל מאימות מטרות מוקדם ועד למחקר פרה-קליני, ומאפשר מיפוי כרומטין חסון באורגניזמים שלמים.