ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol>
	<li>Hasik AZ, et al. Parasitism as a driver of host diversification. Nat Rev Biodivers. 2025;1(6):401-410.</li>
	<li>Pennacchio F, Strand MR. Evolution of developmental strategies in parasitic Hymenoptera. Annu Rev Entomol. 2006;51:233-258.</li>
	<li>Quicke DL. Parasitic Wasps. 1997:221-255.</li>
	<li>Moreau S, Asgari S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological functions. Toxins. 2015;7(7):2385-2412.</li>
	<li>Huang J, Chen XX, Zhan S. Molecular mechanisms underlying parasitoid-derived host manipulation strategies. Annu Rev Entomol. 2026;71:51-68.</li>
	<li>Belokobylskij SA. Key to the Insects of Russian Far East. Tribe Alysiini. In: Ler PA, ed. 1998;4(3):163-298.</li>
	<li>Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Host range of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Entomol Sci. 2008;11(1):1-6.</li>
	<li>Mitsui H, Van Achterberg K, Nordlander G, Kimura MT. Geographical distributions and host associations of larval parasitoids of frugivorous Drosophilidae in Japan. J Nat Hist. 2010;41(25-28):1731-1738.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Whole-genome sequencing analysis and protocol for RNA interference of the endoparasitoid wasp Asobara japonica. DNA Res. 2022;29(4):1-14.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Parasitoid wasp venoms degrade Drosophila imaginal discs for successful parasitism. Sci Adv. 2025;11(5).</li>
	<li>Shrestha B, Aryal B, Lee Y. The taste of vitamin C in Drosophila. EMBO Rep. 2023;24(6).</li>
	<li>Murata Y, Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Genetic and physiological variation among sexual and parthenogenetic populations of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Eur J Entomol. 2009;106(2):171-178.</li>
	<li>Werren JH, Baldo L, Clark ME. Wolbachia: master manipulators of invertebrate biology. Nat Rev Microbiol. 2008;6(10):741-751.</li>
	<li>Furihata S, Hirata M, Matsumoto H, Hayakawa Y.&#160;Bacteria endosymbiont,&#160;Wolbachia, promotes parasitism of parasitoid wasp Asobara japonica. PLoS One. 2015;10(10).</li>
	<li>Yamashita S, Takahashi KH. Artificial transfer of a thelytoky-inducing Wolbachia endosymbiont between strains of the endoparasitoid wasp Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae). Appl Entomol Zool. 2018;53(3):403-409.</li>
	<li>Wang X, Biondi A, Daane KM. Functional responses of three candidate Asian larval parasitoids evaluated for classical biological control of Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae). J Econ Entomol. 2020;113(1):73-80.</li>
	<li>Niwa R, Niwa YS. Molecular mechanisms of ecdysteroid biosynthesis. Compr Mol Insect Sci. 2026:106-137.</li>
	<li>Zhang J, et al. A set of novel venom proteins enables parasitoid wasps to exploit older hosts and coexist with competitors. Adv Sci. 2026;13(4).</li>
	<li>Schott S, et al. A fluorescent toolkit for spatiotemporal tracking of apoptotic cells in living Drosophila tissues. Development. 2017;144(20):3840-3846.</li>
	<li>Kacsoh BZ, Bozler J, Ramaswami M, Bosco G. Social communication of predator-induced changes in Drosophila behavior and germ line physiology. eLife. 2015;4.</li>
	<li>Sadanandappa MK, Sathyanarayana SH, Kondo S, Bosco G. Neuropeptide F signaling regulates parasitoid-specific germline development and egg-laying in Drosophila. PLoS Genet. 2021;17(3).</li>
	<li>Amano S, Akada T, Takahashi KH. In vivo and in vitro developmental profiling of Asobara japonica, a larval endoparasitoid of drosophilid flies. Entomol Exp Appl. 2019;167(5).12790.</li>
	<li>Shirai Y, Piulachs MD, Belles X, Daimon T. DIPA-CRISPR is a simple and accessible method for insect gene editing. Cell Rep Methods. 2022;2(5):100215.</li>
	<li>Zhang X, Singh A, Soriano Martinez K, Ferree PM. Direct parental (DIPA) CRISPR in the jewel wasp, Nasonia vitripennis. G3 (Bethesda). 2024;14(7).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>50 mL tube</td><td>Greiner Bio-One</td><td>210261</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>1 mL syringe</td><td>TERUMO</td><td>SS-01T</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Daisin, Ltd.</td><td>P-700</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;40&times;13.5mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-01</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;55&times;17mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-02</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Blue dye (Erioglaucine disodium salt)</td><td>Sigma-Aldrich Co. Llc.</td><td>861146-25G</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Butyl p-Hydroxybenzoate</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>06327-15</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>CO2 pressure regulator</td><td>YAMATOSANGYO</td><td>YR-507F-2</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Confocal laser scanning microscope</td><td>Zeiss</td><td>LSM700</td><td>Image analysis</td></tr><tr><td>Corn meal</td><td>Sunny Maize Co., Ltd.</td><td>No.4M</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>PI62247</td><td>Nuclei staining, 1:10000</td></tr><tr><td>Deionized water</td><td>Millipore Inc.</td><td>ZLXEV030WW</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Dual-Stage Glass Micropipette Puller</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Fiji</td><td>NA</td><td><a href="https://fiji.sc/">https://fiji.sc</a></td><td>Image analysis</td></tr><tr><td>Filter paper</td><td>Advantec</td><td>ITEM 526</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Fly food vial</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>KFB-3M</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Fly food vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>AS-275</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Dumont Biologie</td><td>11252-20</td><td>Dissection</td></tr><tr><td>Freezer, -20 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>GS-3120HC</td><td>Sample storage</td></tr><tr><td>Freezer, -80 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>CLN-52UD2</td><td>Sample storage</td></tr><tr><td>Glass slides</td><td>Matsunami Glass Ind., Ltd</td><td>S7213</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Showa Sangyo Co., Ltd. </td><td>Not availavle</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>KOD Plus Neo</td><td>Toyobo</td><td>KOD-401</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Panasonic</td><td>MIR-254-PJ</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Ligation high Ver.2</td><td>Toyobo</td><td>LGK-201</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Micropipette Grinder</td><td>Narishige</td><td>EG-401</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Mineral oil</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>23306-84</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject III</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-207</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject Glass Capillaries</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-203-G/X</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>pBluescript KS (+) plasmid</td><td>Not availavle</td><td>Not availavle</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>pBluescript SK (-) plasmid</td><td>Not availavle</td><td>Not availavle</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>PrimeScript reverse Transcriptase</td><td>Takara</td><td>2680A</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Propionic acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>29018-55</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>PROWIPE</td><td>Daio Paper Corporation</td><td>2-2624-02</td><td>Infection assay, dsRNA injection.</td></tr><tr><td>ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover</td><td>Toyobo</td><td>FSQ-301</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>RNAiso Plus reagent</td><td>Takara</td><td>9108</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Small vial (Test tube 12 mL)</td><td>Sarstedt</td><td>REF 58.487</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Small vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., ltd.</td><td>QD-S4</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Spatula</td><td>As One Corporation</td><td>6-522-02</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Square petri dish</td><td>Eiken Chemical Co., Ltd.</td><td>64-2192-55, AW2000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Leica Microsystems</td><td>lvesta3 (C-Mount)</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Nikon Solutions Co., Ltd.</td><td>SMZ1000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express RNAi System</td><td>Promega</td><td>P1700</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Thermal Cycler Dice Real Time System</td><td>Takara</td><td>TP815</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Thermal Cycler GeneAtlas</td><td>Astel</td><td>G02</td><td>dsRNA synthesis, qRT-PCR</td></tr><tr><td>THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix</td><td>Toyobo</td><td>QPS-201</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>TissueLyser II</td><td>Qiagen</td><td>Not availavle</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Vitamin C, L-Ascorbic Acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>03420-65</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Welch's grape 100 juice</td><td>Asahi Soft drinks Co., Ltd.</td><td>32390</td><td>Infection assay </td></tr><tr><td>Yeast</td><td>Asahi Group Foods, Ltd.</td><td>HB-P02</td><td>Rearing</td></tr></tbody></table>

פרוטוקולים לגידול יעיל וניתוח תפקודי של הצרעה האנדופרזיטואידית asobara japonica והמארח שלה drosophila melanogaster

Protocols for Efficient Rearing and Functional Analysis of the Endoparasitoid Wasp Asobara japonica and its Host Drosophila melanogaster

פרוטוקולים לגידול יעיל וניתוח תפקודי של הצרעה האנדופרזיטואידית Asobara japonica והמארח שלה Drosophila melanogaster

Parasitism is a biological interaction in which one organism exploits the body or resources of another (the host), resulting in substantial damage or ...

protocols-for-efficient-rearing-functional-analysis-endoparasitoid

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

ביולוגיה התפתחותית

Fopius arisanus הוא טפיל הביצה הזחל של זבובי פירות Tephritid המשמש בהצלחה הדברה ביולוגית של מזיקים אלה טרופיים חשוב. אנו מתארים כאן פרוטוקול מותאם לגידול פ arisanus בקנה מידה קטן תוך שימוש בחומרים זמינים.

פרוטוקול אופטימליים לגידול Fopius arisanus, טפיל של פירות Tephritid זבובים

טפיל (טפילים) צרעות מהווים שיעור גדול של אויבים טבעיים של חרקים רבים,...

מבוא של צרעות טפיליות<em&gt; תסיסנית</em&gt; ואת התגובה החיסונית Antiparasite

מעגל ההאכלה בזחלי melanogaster דרוזופילה משמש מודל פשוט אך רב עוצמה המאפשר שינויים בשער האכלה להיות מתואמים עם שינויים במעגלים העצביים stomatogastric. מעגל זה מורכב מתאי עצב סרוטונין המרכזיים ששולחים תחזיות לפי הווים כמו גם המעי הקדמי.

ניתוח פונקציונלי של מעגל האכלת הזחל ב דרוזופילה</i

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לכימות ההימנעות של אנשים לחוצים. פרדיגמה זו היא עוצמתית אך ידידותית למשתמש וניתן להשתמש בה כדי להעריך את ההשפעה של גנים וסביבה על סוג אחד של אינטראקציה חברתית ב-Drosophila melanogaster.

Assay הפשוט לכימות חברתיות הימנעות ב Melanogaster דרוזופילה

אנו מספקים פרוטוקול מפורט לבדיקת אורך נתיב חיפוש מזון של Drosophila melanogaster. אנו דנים בהכנה ובטיפול בחיות ניסוי, כיצד לבצע את הבדיקה ולנתח את הנתונים.

פרוטוקול נתיב באורך שארגן לעצמו<em&gt; תסיסנית</em&gt; זחלים

זבובים בוגרים של Drosophila melanogaster נוצלו בהרחבה כאורגניזמים מודל כדי לחקור את המנגנונים המולקולריים שבבסיס התגובות החיסוניות המולדות של המארחים ואסטרטגיות זיהום מיקרוביאליות. כדי לקדם את שלב הזחלים D. melanogaster כמערכת מודל נוספת או חלופית, מתוארת טכניקת הזרקת זחלים.

Drosophila melanogaster פרוטוקול הזרקת זחלים

הפרוטוקול הנוכחי מתאר את שיטת הגידול של חרקים מזיקים טורטריים במעבדות. ההליכים להבחנה בין מין החרקים ולמיצוי חומצות גרעין לריצוף בתפוקה גבוהה נקבעים באמצעות שני מזיקים מומנטיים.

גידול המוני ומחקרים מולקולריים בחרקים מזיקים בטורטריים

Ganaspis brasiliensis - טפיל זחל של Drosophila suzukii (מזיק גידולי פירות פולש עולמי) - אושר או נחשב להכנסתו לאירופה ולארצות הברית להדברה ביולוגית של מזיק זה. מאמר זה מספק פרוטוקולים הן לגידול בקנה מידה קטן והן בקנה מידה גדול של טפיל זה.

שיטות לגידול ה-Ganaspis brasiliensis הטפילי, חומר הדברה ביולוגי מבטיח לסוזוקי דרוזופילה הפולשני

עוברי צרעת נסוניה נותחו מגלמי Lucillia sericata לאחר טפילים במשך 12-24 שעות ונשטפו בתמיסת אלכוהול ונתרן היפוכלוריט 10% כדי להשיג עוברים נטולי חיידקים. לאחר גידול העוברים נטולי הנבט ואספקת מצע גידול נסוניה, כדי לגדול ולהתפתח במבחנה, התקבלו בוגרים נטולי חיידקים של נסוניה.

אופטימיזציה של הליך הגידול של צרעות נטולות חיידקים

מאמר זה מתאר את תחזוקת המעבדה (כולל הזדווגות והאכלה) של זבוב הדיפטרן התחתון Bradysia (Sciara) coprophila.

תחזוקת מעבדה של זבוב הדיפטרן התחתון Bradysia (Sciara) coprophila: אורגניזם מודל מתפתח חדש/ישן

University of Tsukuba.  מטרת הפרוטוקול היא להקל על ניתוח פונקציונלי של אינטראקציות בין פרזיטואידים למארח ב-Asobara japonica וב-Drosophila melanogaster. באמצעות שיטות גידול אופטימליות, בדיקת זיהום בביצת ביצים יחידה, והפלת גנים בתיווך RNAi.

פרוטוקולים לגידול יעיל וניתוח תפקודי של הצרעה האנדופרזיטואידית Asobara japonica והמארח שלה Drosophila melanogaster

גלה סרטונים נוספים