1. Iniezione di Sospensione Cellulare Mista nel Pesce Zebra
- Aggiungere 10 volte la soluzione di tricaina nell'acqua E3 per anestetizzare le larve di zebrafish e trasferire le larve (dal passaggio 2.3) alla piastra di iniezione riempita con E3 modificato (E3 con 1 g/L di glucosio e 5 mmol/L di L-glutammina).
- Riempire 25 μl di sospensione di cellule miste nell'ago dei microcapillari e inserire l'ago nel manipolatore per microiniezione.
- Impostare la pressione e il tempo di iniezione. Iniettare 50-80 cellule (~8 nL) nel sacco vitellino del pesce zebra 48 hpf.
2. Coltura del pesce zebra xenotrapiantato (modello zPDX)
- Trasferire le larve di zebrafish post-xenotrapianto in 40 mL di soluzione miscelata (soluzione E3 con 1 g/L di glucosio e 5 mmol/L di L-glutammina) a 32 °C.
3. Somministrazione di farmaci sul pesce zebra xenotrapiantato e valutazione della vitalità delle cellule tumorali/fibroblasti
- Determinazione della concentrazione ottimale di gemcitabina/navitoclax.
- Posizionare 10 embrioni di pesce zebra wildtype a 48 hpf in ciascun pozzetto di una piastra a 12 pozzetti.
- Aggiungere diverse concentrazioni di gemcitabina o navitoclax in ogni pozzetto e incubare a 32 °C per due giorni.
- Dopo 2 giorni, calcolare il dosaggio di tolleranza massima (MTD) di gemcitabina e navitoclax al quale le larve di zebrafish non mostrano malformazioni significative e comportamento anomalo e le concentrazioni di lavoro sono fissate al di sotto dell'MTD.
- Trattamento di modelli zPDX con gemcitabina/navitoclax.
- Mettere 10 larve xenotrapiantate in ogni pozzetto di una piastra a 12 pozzetti.
- Dividere le larve in quattro gruppi, trattare il gruppo di controllo in E3 contenente lo 0,1% di DMSO e trattare gli altri gruppi con 5 μg/mL di gemcitabina e/o 50 μM di navitoclax e incubare a 32 °C per due giorni.
- Valutazione della vitalità cellulare e della composizione cellulare in modelli zPDX.
- Anestetizzare le larve xenotrapiantate dopo il trattamento e metterle in metilcellulosa al 3%.
- Fotografa le larve dalla vista laterale usando un microscopio a fluorescenza o un microscopio confocale.
- Quantifica l'intensità dei segnali di fluorescenza rossi e verdi utilizzando i software ImageJ e GraphPad.