1. Immunoprecipitazione della cromatina
NOTA: L'immunoprecipitazione della cromatina è stata eseguita con un kit ChIP disponibile in commercio secondo le istruzioni del produttore con modifiche.
- Calcolare il numero di immunoprecipitazioni (70 μL (cellule Jurkat) o 15 μL (campioni di pazienti) di cromatina tranciata più un anticorpo) e preparare 20 μL di perle rivestite di proteina A per precipitazione in una provetta da 1,5 mL. Lavare le microsfere in 40 μl di 1 tampone ChIP 1 per precipitazione pipettando su e giù, lasciare riposare le perle in una griglia magnetica per 1 minuto e rimuovere il surnatante mediante pipettaggio. Eseguire questo passaggio quattro volte in totale. Alla fine, risospendere le perle nel volume originale con 1x buffer ChIP 1.
- Per l'immunoprecipitazione vera e propria, utilizzare 10 μg dell'anticorpo αNFAT2 (7A6) per catturare NFAT2 con le sue sequenze bersaglio legate. Utilizzare 2,5 μg di un anticorpo IgG di coniglio (DA1E) come controllo IgG. Preparare le reazioni in provette fresche da 1,5 mL come indicato nella Tabella 1.
NOTA: Per questo protocollo è importante utilizzare un anticorpo monoclonale ad alta affinità il cui epitopo non sia mascherato durante la fissazione. Gli anticorpi policlonali introducono un ulteriore livello di variazione, rendendo significativamente più difficile interpretare in modo appropriato i risultati ricevuti.
- Incubare la miscela dal passaggio 1.2 per una notte a 4 °C su una ruota rotante a 6 giri/min.
- Il giorno successivo centrifugare le provette per 5 s a 7.000 x g nella piccola centrifuga, incubarle in una rastrelliera magnetica per 1 minuto e rimuovere il surnatante per aspirazione. Lavare le perline una volta consecutivamente con ciascuno dei tamponi di lavaggio 1, 2, 3 e 4.
- A tal fine, risospendere le microsfere in 350 μL di tampone di lavaggio e incubarle per 5 minuti a 4 °C su una ruota rotante a 6 giri/min.
- Successivamente, centrifugare le provette per 5 s a 7000 x g nella centrifuga piccola. Quindi, metterli per 1 minuto in una griglia magnetica, rimuovere il surnatante e aggiungere il tampone di lavaggio successivo.
- Dopo l'ultima fase di lavaggio, rimuovere il surnatante mediante pipettaggio, prelevare le perle in 100 μl di tampone di eluizione 1 e incubarle per 30 minuti su una ruota rotante a 6 giri/min.
- Centrifugare brevemente le provette (5 s a 7000 x g nella centrifuga piccola) e metterle in una griglia magnetica per 1 minuto.
- Quindi trasferire il surnatante mediante pipettaggio in una nuova provetta da 1,5 mL e aggiungere 4 μL di tampone di eluizione 2.
- Per creare il controllo di ingresso, mescolare 1 μL di cromatina tranciata con 99 μL di tampone di eluizione 1 e 4 μL di tampone di eluizione 2 (in questa configurazione, ci sono tre provette per paziente: un controllo di ingresso, un controllo IgG e un campione αNFAT2).
- Incubare i campioni per 4 ore a 65 °C e 1300 giri/min in un agitatore per provette da 1,5 mL. Aggiungere 100 μl di isopropanolo al 100%, agitare e centrifugare i campioni per 5 s a 7000 x g nella piccola centrifuga.
- Risospendere le microsfere magnetiche disponibili mediante vortice completo, aggiungere 10 μl di perle a ciascun campione e incubare per 1 ora a temperatura ambiente su una ruota rotante a 6 giri/min.
- Dopo l'incubazione, centrifugare le provette per 5 s a 7000 x g nella centrifuga piccola e posizionarle per 1 minuto in un rack magnetico. Rimuovere il surnatante per aspirazione.
- Risospendere le perle in 100 μl di tampone di lavaggio 1. Capovolgere le provette per miscelare e incubare per 5 minuti a temperatura ambiente su una ruota rotante a 6 giri/min.
- Centrifugare le provette per 5 s a 7000 x g nella centrifuga piccola, posizionarle per 1 minuto in un rack magnetico e rimuovere il surnatante mediante pipettaggio. Ripetere i passaggi 2.13-2.14 con il tampone di lavaggio 2.
- Successivamente, rimuovere il tampone di lavaggio per aspirazione, risospendere le perle in 55 μL del tampone di eluizione e incubare per 15 minuti a temperatura ambiente sulla ruota rotante a 6 giri/min per eluire il DNA precipitato. Infine, centrifugare le provette per 5 s a 7000 x g nella centrifuga piccola, posizionarle per 1 minuto in un rack magnetico e trasferire il surnatante in nuove provette da 1,5 mL.
nota: In questo caso, il protocollo può essere potenzialmente sospeso. Il DNA eluito deve quindi essere conservato a -20 °C.
| articolo | volume (μL) per IP |
| 5% BSA | 6 |
| 100 x inibitore della proteasi | 3 |
| 5 x Buffer ChIP 1 | 56 |
| cromatina tranciata | x (15 μl o 70 μl) |
| Sfere magnetiche rivestite di proteina A | 20 |
| ChIP seq grado acqua | 185-x-y |
| anticorpo (αNFAT2 o controllo IgG) | y (1,09 μl o 1 μl) |
| totale | 270 |
Tabella 1: Programma per il pipettaggio dell'immunoprecipitazione della cromatina. L'immunoprecipitazione della cromatina è stata eseguita preparando le reazioni come indicato nella tabella.