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Articolo metodologico

Modello murino di carcinoma pancreatico ortotopico bioluminescente: una tecnica non invasiva per monitorare la progressione del cancro nei topi

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30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

Fonte: Chai, M. G., et al. Modello ortotopico bioluminescente della progressione del cancro al pancreas.(2013).

Questo video mostra un modello ortotopico di cancro al pancreas che utilizza Matrigel per la somministrazione di cellule localizzate e l'imaging a bioluminescenza in vivo per il monitoraggio non invasivo della progressione del tumore. Il modello ortotopico è adatto sia a modelli singenici che a xenotrapianti e potrebbe essere utilizzato in studi preclinici per studiare l'impatto di nuove terapie antitumorali sulla crescita del tumore pancreatico primario e sulle metastasi.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria JoVE.

1. Trasduzione di linee cellulari di cancro al pancreas

  1. Trasdurre le cellule tumorali del pancreas per esprimere la luciferasi come descritto in precedenza. Qui vengono utilizzate linee cellulari di cancro al pancreas Panc-1 e Capan-1 trasdotte con luciferasi lucciola.
    Nota: può essere utilizzata anche la luciferasi renilla o la luciferasi batterica.

2. Preparazione delle cellule di cancro al pancreas

  1. La coltura ha trasdotto le cellule tumorali del pancreas fino al 70% confluenti.
  2. Sollevare le cellule pancreatiche e garantire che la vitalità sia superiore al 90%.
  3. Risospendere a 2 x 107 cellule/ml in una miscela 3:2 di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) Matrigel:Phosphate refrigerata.
  4. Mantenere la sospensione di Matrigel-cell in ghiaccio prima dell'iniezione nel pancreas.
    NOTA: Per garantire una rapida solidificazione di Matrigel, ridurre il volume del PBS per tenere conto del volume del pellet della cella. Maneggiare sempre Matrigel con strumenti ghiacciati e siringhe per prevenire la solidificazione prima dell'iniezione. Il numero di cellule suggerito è una guida e dovrebbe essere determinato empiricamente per ogni linea cellulare.

3. Preparazione del mouse

  1. Anestetizzare il topo utilizzando isoflurano al 2-3% inalato. Determinare la profondità dell'anestesia in base alla mancanza di riflesso del pedale fino a un leggero pizzicamento delle dita.
  2. Applicare lubrificante sugli occhi per prevenire l'essiccazione.
  3. Posizionare il mouse sul retro su un termoforo a 37 °C e ruotare delicatamente il mouse per sollevare il lato sinistro dell'addome.
  4. Preparare l'addome con una soluzione di iodio povidone al 10%.
    NOTA: L'anestesia iniettabile può essere utilizzata al posto dell'anestesia inalatoria. Il digiuno preoperatorio non è necessario.

4. Laparotomia

  1. Utilizzando strumenti chirurgici sterili, praticare un'incisione di 1,5 cm nella pelle a circa 1 cm a sinistra laterale dalla linea mediana.
  2. Praticare un'incisione di 1,5 cm nel muscolo addominale sottostante.
  3. Localizzare la milza usando la pinza e rimuovere delicatamente la milza dalla cavità addominale. Fissare la milza lungo un batuffolo di cotone sterile per esporre il pancreas sottostante.
  4. Individua la coda del pancreas adiacente alla milza.
  5. Utilizzando una siringa da insulina da 29 G 0,3 ml, iniettare 20 μl della sospensione di cellule Matrigel nel pancreas.
  6. Dopo l'iniezione, tenere la siringa nel pancreas per 30-60 secondi fino a quando il Matrigel non si è solidificato. Questo importante passaggio riduce al minimo le perdite cellulari.
  7. Ispezionare il sito di iniezione per assicurarsi che non si siano verificate perdite.
  8. Riportare la milza e il pancreas nella cavità addominale.
    NOTA: Fare attenzione a non perforare il lato dorsale del pancreas che potrebbe essere sottile.

5. Chiusura della parete addominale

  1. Chiudere la muscolatura addominale del topo con una sutura intrecciata 4-0 riassorbibile con un ago rotondo utilizzando un punto continuo.
  2. Chiudere la pelle esterna con una sutura monofilamento 6-0 non assorbibile con un ago da taglio utilizzando un punto continuo.
  3. Rimuovere il topo dall'anestetico inalato e iniettare 0,05-0,1 mg/kg di buprenorfina per via sottocutanea.
  4. Lasciare che il mouse si riprenda nella sua gabbia posizionata su un termoforo a 37 °C con libero accesso a cibo e acqua. Se i topi mostrano segni di dolore come curvatura o mobilità ridotta, la buprenorfina può essere somministrata ogni 12 ore per un periodo di 36 ore.
  5. Dopo la guarigione della ferita (7-10 giorni), anestetizzare il topo e rimuovere i punti di sutura esterni.

6. Monitoraggio bioluminescente della progressione del cancro al pancreas

  1. Anestetizzare il topo con isoflurano per via inalatoria.
  2. Iniettare 150 mg/kg di D-luciferina attraverso la vena caudale.
  3. Posiziona il mouse nel sistema di imaging bioluminescente e acquisisci immagini a luce bianca e bioluminescenza.
  4. Togliete il topo dall'anestetico inalato e lasciatelo riprendersi nella sua gabbia domestica.
    NOTA: L'imaging bioluminescente non è invasivo e può essere condotto periodicamente per studiare la cinetica di crescita del tumore. Per visualizzare il tumore nella coda del pancreas, è importante posizionare il mouse sul lato sinistro, in modo che il tumore punti verso la telecamera. Abbiamo ripreso una volta alla settimana con la frequenza aumentata fino a tre volte alla settimana prima dell'endpoint sperimentale utilizzando un sistema di imaging Lumina II (Perkin-Elmer, ex Caliper Life Sciences) che esegue il software Living Imaging 4.3.1 con binning 4, FOV 12,5, F-stop 1, esposizione 1 - 60 sec (determinata dall'esposizione più alta senza saturazione dei pixel).

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Cappotto da banco pulito
termoforoImpostare a 37 °C
Ivis Lumina ll Imager bioluminescentecalibratoreI sistemi di imaging bioluminescenti alternativi includono In vivo F PRO (Carestream) e Photon Imager (Biospace Lab)
Forbici da dissezione
Pinza dell'iride (seghettata)
Porta aghi
27 G Siringa da insulina da 0,3 mlTerumoT35525M2913

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