Tutte le procedure che coinvolgono partecipanti umani sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali, nazionali e internazionali per il benessere umano e sono state esaminate dal comitato di revisione istituzionale locale.
1. Isolamento dei cheratinociti primari dall'epidermide
- Lavare il tessuto epidermico con PBS. Tagliare l'epidermide in pezzi più piccoli (1 mm2) e raccoglierli in una provetta conica da 50 ml. Aggiungere 10 mL di 1x Tripsina-EDTA (preriscaldato a 37 °C) e incubare per 5 minuti in un bagno d'acqua a 37 °C. Agitare la sospensione tissutale ogni 2 minuti.
- Arrestare la reazione enzimatica aggiungendo 1 ml di siero fetale di vitello (FCS). Risospendere le cellule pipettando su e giù con una pipetta di plastica da 10 ml per 4 minuti. Cerca di evitare la formazione di bolle e schiuma.
- Pipettare la sospensione cellulare in un colino cellulare (dimensione dei pori 100 μm), posizionato sopra una provetta conica fresca da 50 mL e risciacquare 3 volte con 5 mL di PBS. Centrifugare le celle a 200 x g per 5 min. Risospendere il pellet cellulare in un terreno di coltura da 2-6 mL contenente l'1% (v/v) di gentamicina. Determinare manualmente il numero di cellule contando le cellule in un emocitometro e seminare 6 x 105 cellule in un pallone di coltura cellulare T75.
2. Isolamento dei fibroblasti primari dal derma
- Tagliare il tessuto dermico in pezzi più piccoli (1 mm2) e trasferirli in una provetta conica da 50 mL. Aggiungere 10 mL di soluzione di collagenasi (5 U/mL in PBS+) e incubare per 45 minuti a bagnomaria a 37 °C. Centrifugare la miscela di pezzi di tessuto e cellule a 200 x g per 5 minuti.
- Lavare due volte il pellet cellulare con 10 ml di DMEM contenente 4,5 g/L di glucosio e L-glutammina, ma senza L-piruvato. Infine, risospendere i pezzi di tessuto in 2 mL di DMEM contenenti l'1% (v/v) di gentamicina e il 10% di FCS. Trasferirli in un pallone per colture cellulari T25 e incubarli in un incubatore cellulare a 37 °C e 5% di CO2 per una notte.
NOTA: Il volume ridotto consente ai fibroblasti di migrare fuori dai detriti tissutali e li costringe ad attaccarsi al pallone di coltura.
- La mattina successiva, aggiungere altri 6 mL di DMEM/Gentamicina/FCS e incubare per 2-3 giorni a 37 °C fino a quando le cellule non hanno raggiunto l'80-90% di confluenza.
3. Generazione del compartimento dermico delle ricostruzioni organotipiche della pelle completa
- Genera modelli di pelle utilizzando inserti di membrana microporosa cellulare a 24 pozzetti (dimensione dei pori 8 μm) posizionati in piastre a 24 pozzetti.
nota: Assicurati di non utilizzare inserti sospesi ma in piedi, perché verranno inseriti in una piastra a 6 pozzetti per la coltivazione aria-liquido in una fase successiva.
- Preparare la soluzione di neutralizzazione del gel (GNL), nonché i terreni di coltura denominati MM e i terreni di crescita endoteliali (EGM). Per prevenire la coagulazione, conservare il collagene di tipo I (di solito dalla coda di ratto, 3,5-4 mg/mL in acido acetico 0,02 N) su ghiaccio fino all'uso perché inizia a gelificare a RT.
- Risospendere 1 x 105 fibroblasti per inserto in GNL e miscelare rapidamente la sospensione cellulare con il collagene in un rapporto di 1:3 in un volume finale di 500 μL/inserto. Mescolare pipettando delicatamente su e giù per evitare la formazione di bolle poiché le bolle possono compromettere la qualità della ricostruzione della pelle.
- Lasciare depositare i singoli gel dermici mantenendoli senza mezzo a RT per 30 minuti in una cappa sterile. Successivamente, coprire ogni gel con DMEM contenente 4,5 g/L di glucosio, 1% di L-glutammina, 10% di FCS e senza L-piruvato e incubare per una notte a 37 °C.
4. Generazione del compartimento epidermico delle ricostruzioni organotipiche della pelle completa
- Il giorno successivo, rimuovere il terreno dai gel dermici ed equilibrarli con terreni EGM (10% FCS, 1% PenStrep, 10 mg/mL gentamicina) per 2 ore a 37 °C. Prelevare il terreno e seminare con cura 1 x 105 cheratinociti risospesi in 100 μL di EGM sopra il gel dermico.
- Incubare i ricostruzioni per 1,5 ore a 37 °C per consentire ai cheratinociti di aderire al compartimento dermico.
nota: Durante questo periodo di incubazione, i gel inizieranno a restringersi a causa della contrazione indotta dai fibroblasti e, quindi, si staccheranno almeno parzialmente dalle pareti dell'inserto.
- Coprire gli equivalenti cutanei con circa 800 μl di EGM e rimuovere con cura il gel residuo dalla parete dell'inserto con un piccolo puntale per pipetta (bianco). Coltivare gli equivalenti cutanei immersi in EGM per 7 giorni in un incubatore cellulare a 37 °C, 5% CO2, e cambiare il terreno a giorni alterni.
nota: Durante questo periodo, gli equivalenti della pelle si ridurranno in modo significativo.
5. Ricostruzioni organotipiche della pelle intera
- Al giorno 8, trasferire ciascun inserto in un singolo pozzetto di una piastra a 6 pozzetti. Aggiungere solo 1,2-1,4 mL di terreno MM a ciascun pozzetto, in modo che la ricostruzione cutanea venga alimentata con terreno dal fondo del pozzetto ma non sia coperta con il terreno.
nota: La coltivazione all'interfaccia aria-liquido consente la stratificazione della parte epidermica e la formazione di uno strato corneo completo.
- Durante i prossimi 10-17 giorni, cambiare il mezzo come indicato nella sezione 5.1 a giorni alterni. Durante questo periodo, aggiungere droghe o altri stimoli secondo necessità al substrato. Rimuovere con cura la ricostruzione cutanea completa dall'inserto della membrana microporosa utilizzando una pinzetta curva per ulteriori analisi, ad esempio analisi immunoistochimiche (Figura 1).