Articolo metodologico

Coltura rapida di melanociti murini primari e fibroblasti: isolamento di melanociti e fibroblasti da un campione di pelle intera murina

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30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

Fonte: Murphy, B. M. et al. Generazione rapida di colture primarie di melanociti murini e fibroblasti. J. Vis. Exp. (2019)

Questo video descrive il metodo rapido per isolare e coltivare contemporaneamente i melanociti e i fibroblasti dalla pelle del cucciolo di topo postnatale. Queste cellule possono essere mantenute e manipolate in vitro per studiare la biologia delle cellule della pelle, la guarigione delle ferite e il melanoma.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono gli animali sono state esaminate dal comitato istituzionale locale per la cura degli animali e dal comitato di revisione veterinaria di JoVE.

1. Isolamento di melanociti e fibroblasti

  1. Eutanasia di cuccioli maschi e/o femmine di C57Bl/6J di età compresa tra 0 e 4 giorni mediante decapitazione e rimozione delle estremità dai topi soppressi utilizzando le forbici chirurgiche.
  2. In una cappa a flusso laminare, arrotolare brevemente il tronco di ciascun topo in una capsula di Petri sterile contenente il 70% di etanolo. Togliete il tronco dall'etanolo e mettetelo in una capsula di Petri vuota e sterile.
  3. Utilizzando delle forbici chirurgiche, sterilizzate in etanolo al 70%, praticare un'incisione nella pelle sul lato ventrale del tronco partendo dal collo fino alla coda. Staccare la pelle dal tronco del topo usando una pinza sterile.
  4. Mettere la pelle, con il derma rivolto verso il basso, in un piatto a 6 pozzetti contenente 3 ml di soluzione antibiotica/antimicotica 1x e incubare a temperatura ambiente per 2-3 minuti.
  5. Accendere il tritatutto con le seguenti impostazioni: Spessore fetta: 1 μm; Forza della lama: ~60% del massimo; Velocità: ~50% del massimo.
  6. Trasferire la pelle, con il derma rivolto verso il basso, in un disco tritatessuti sterile e passare completamente la pelle attraverso il trinciatessuti attivato 3 volte.
  7. Trasferire la pelle omogeneizzata in una provetta conica sterile da 15 ml contenente 3 ml di tampone per la digestione cutanea (preparare 3 ml di tampone per la digestione cutanea fresco contenente il 10% di siero fetale bovino, l'1% di penicillina/streptomicina in soluzione, l'1% di L-glutammina, 10 mg/mL di collagenasi di tipo I, lo 0,25% di tripsina suina e 0,02 mg/mL di desossiribonucleasi I in RPMI 1640). Miscelare la sospensione risultante pipettando su e giù 10-15 volte con una micropipetta P1000.
  8. Tappare la provetta conica e incubare il campione in un bagno d'acqua a 37 °C per 15 minuti, capovolgendo la provetta ogni 3-5 minuti.
  9. Pellettare le cellule dell'omogeneizzato cutaneo centrifugando la provetta conica in un rotore a secchiello oscillante a 750 x g per 5 minuti a temperatura ambiente.
  10. Utilizzando una micropipetta P1000, rimuovere lentamente e completamente il tampone per la digestione cutanea, facendo attenzione a non disturbare il pellet.
    nota: Una parte dell'intera pelle può essere salvata in questa fase e utilizzata come controllo per la conferma della purezza cellulare. Filtrare queste cellule attraverso un filtro cellulare da 70 μm e procedere ulteriormente.
  11. Risospendere accuratamente il pellet cellulare in 1 mL di terreno melanocitario pipettandolo su e giù 15-20 volte con una micropipetta P1000. Aggiungere la soluzione cellulare risultante goccia a goccia in un pozzetto non rivestito di una piastra a 6 pozzetti contenente 1 mL di terreno melanocitario.
  12. Posizionare l'omogeneizzato cutaneo placcato in un incubatore per colture tissutali impostato a 37 °C e 5% di CO2. Lasciare incubare le colture per 40 min.
    nota: Durante questo periodo, alcuni fibroblasti nell'omogenato cutaneo aderiranno al piatto non rivestito mentre i melanociti e i cheratinociti rimangono in sospensione.
  13. Trasferire il surnatante di coltura dalla piastra non rivestita a un pozzetto di una piastra a 6 pozzetti prelavata e rivestita di collagene. Aggiungere G418 al terreno in modo che la concentrazione finale sia di 100 ng/mL.
  14. Aggiungere 2 mL di Fibroblast Media a un pozzetto della piastra non rivestita, che ora contiene fibroblasti aderenti.
  15. Incubare entrambe le colture per una notte in un incubatore per colture tissutali impostato a 37 °C e 5% di CO2.
  16. Aspirare separatamente il terreno e gli eventuali detriti da ciascuna coltura, 16-24 ore dopo la piastratura. Lavare ogni piatto due volte con 1 mL di PBS sterile, quindi aggiungere 2 mL di terreno di coltura per melanociti fresco più 100 ng/mL di G418 alla coltura di melanociti e 2 mL di terreno di coltura per fibroblasti freschi alla coltura di fibroblasti. (Preparare 6 ml di terreno melanocitario fresco contenente il 10% di siero fetale bovino, il 7% di siero equino, l'1% di penicillina/streptomicina, l'1% di L-glutammina, 0,5 mM di di-butirrile ciclico AMP (dbcAMP), 20 nM di tetradecanoilforbolo 13-acetato (TPA) e 200 pM di tossina del colera (CT) nel Nutrient Mix F-12 Ham's media.
    NOTA: Le soluzioni madre concentrate di dbcAMP, TPA e CT possono essere prodotte, aliquotate e conservate per >1 anno a -80 °C. I terreni di base privi di questi componenti possono essere conservati fino a 1 mese a 4 °C.
    Preparare 4 ml di terreno per fibroblasti contenente il 10% di siero fetale bovino, l'1% di penicillina/streptomicina e l'1% di L-glutammina nel terreno Eagle modificato di Dulbecco. Questo supporto può essere conservato a 4 °C per un massimo di 1 mese)
  17. Dopo che le colture di melanociti sono state trattate con G418 per 48 ore, lavare le cellule due volte con 1 mL di PBS sterile e aggiungere 2 mL di terreno melanocitico fresco senza G418 alla coltura.
    nota: Poiché i fibroblasti nella coltura dei melanociti continuano a morire dopo il trattamento con G418, lavare il piatto con PBS sterile per rimuovere le cellule morte e aggiungere nuovi terreni melanociti. Le colture di melanociti e fibroblasti devono essere passate quando raggiungono la confluenza del 70-80%.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Etanolo, 200 proofFisher Scientifico22032601
Soluzione antibiotica antimicotica (100x)Sigma-AldrichCodice: A5955
Trinciafazzoletti McIlwainTed PellaCodice: 10180
Lama per tritatessutiTed Pella121-6
Disco di plastica per tritatessutiTed PellaCodice 10180-01
Collagenasi Tipo IWorthington BiochemicalsLS004156
Tripsina suinaSigma-Aldrich85450C
tripsinaVWRVWRL0154-0100
G418 DisolfuroP212121LGB-418-1
Aquila di Dulbecco modificata mediaGibcoCodice 12800-082
Supporti RPMI 1640Sigma-AldrichCodice: R8758
Soluzione salina tamponata con fosfato di DulbeccoSigma-AldrichD8537
piatto per coltura cellulare a 6 pozzettiSigma-AldrichSIAL0516
Provette da 5 mL in polistirene a fondo tondoFisher Scientifico352008
Piatto per coltura cellulare da 10 cmCorning430167
Albumina sierica bovinaFisher ScientificoBP9706-100
Siero fetale bovinoSigma-AldrichCodice: 12306C
Corning Soluzione di penicillina/streptomicinaFisher Scientifico30-002-CL
Miscela di nutrienti F-12 Ham's MediaSigma-AldrichN6760
Collagene dalla coda di topoSigma-AldrichVisualizzazione del materiale C7661
Filtro per siringa sterile in PES da 0,2 μmVWRCodice 28145-501
Filtro cellulare da 40 μmFisher Scientifico22363547
Filtro cellulare da 70 μmFisher Scientifico22363548
Tossina del coleraSigma-AldrichCodice: C8052
Siero di cavalloFisher Scientifico26050088
HyClone L-GlutamminaFisher ScientificoSH3003402

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