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1. Iniezioni animali
Prima dell'iniezione endovenosa vena della coda, la pelle della coda devono essere puliti con scrub alcool isopropilico per la sterilizzazione. I topi deve essere iniettata con 0,2 g di mL/20 un 20-mg iodio / ml agente di contrasto iodati bloodpool (VIE 160XL, Binito Biomedical, Inc. di Ottawa, ON, Canada) attraverso la vena della coda distale con basso spazio morto ½ CC U -100 28G ½ siringhe da insulina (Product # 329461, Becton Dickinson and Company, New Jersey, USA).
2. Preparazione degli animali
Dopo 10 minuti dall'iniezione, gli animali devono essere preparati per microCT imaging. In primo luogo, l'animale deve essere anestetizzato in una scatola con 2% isoflurano in ossigeno al 100% a tasso di 2,5 litri al minuto. Un unguento oculare lubrificante deve essere applicato per prevenire l'essiccamento delle cornee durante l'anestesia. La temperatura corporea deve essere mantenuta a 37 ° C da un pad di calore.
3. MicroCT Imaging
I topi allora dovrebbe essere esaminato in una unità microCT in grado di eseguire scansioni di animali vivi. Per ridurre al minimo gli artefatti movimento e stabilità, i topi possono essere inseriti in un normale multi-modalità camera (Numira Biosciences, Salt Lake City, UT), prevedendo per l'aria e di scarico. Per evitare un episodio ipotermico l'animale durante le scansioni microCT, Pads Gel (Hot Brace Crioterapia, CVS Pharmacy Woonsocket, RI), le dita dei piedi caldo (Fabbrica di calore, Vista, CA) o pad argilla Thermipaq (Thermionics, Springfield, IL) può essere utilizzato. Luogo questi pad riscaldamento sotto il letto di schiuma per mantenere il mouse a 37 ° C, evitando il contatto diretto con l'animale. Segni vitali di origine animale come la temperatura corporea, la respirazione e il battito cardiaco devono essere monitorati con il monitoraggio Piccoli Animali e sistemi di colata come SA Instruments (Stony Brook, NY).
Il protocollo di imaging seguenti può essere utilizzato come linea guida per determinare i parametri di scansione appropriata per ogni unità microCT. Gli animali utilizzati in questo esperimento sono stati scansionati a 93 micron su una risoluzione CT scanner volumetrico GE eXplore Locus (GE Healthcare, London, Ontario). Questo scanner utilizza un volumetrico x 3500 1750 rivelatore CCD per Feldkamp cone-beam ricostruzione. I parametri piattaforma indipendente dal tempo corrente, tensione e l'esposizione sono state mantenute costanti a 450 μA, 80 KVP e 100 ms, rispettivamente. I parametri standard del tempo di esposizione, cornici per view e il numero di punti di vista può essere variato e potrebbe essere 100 ms, 5-8, e 360-720, rispettivamente con il tempo di scansione totale di circa 20 minuti. Le immagini sono state ricostruite con il software EVSBeam di proprietà del produttore.
4. Immagine di rendering
I dati microCT ricostruiti possono essere utilizzati per avanzati isosuperficie, unidimensionale, bidimensionale o trasferire le immagini di rendering Seg3D funzione utilizzando il software di elaborazione delle immagini (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ).
5. Rappresentante Risultati
Vedere la figura allegata di un mouse tipo selvatico scansione con eXIA160XL con le impostazioni indicato nella sezione metodi.

Figura 1. Bidimensionali Transfer Function (2DTF) rendering delle immagini di un mouse tipo selvatico Seg3D creati utilizzando il software di elaborazione delle immagini (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ). L'animale è stato iniettato con eXIA160XL e 10 minuti dopo microCT risoluzione di scansione a 93 micron isometrica con le impostazioni menzionati nella sezione metodi.
Video 1. Bidimensionali Transfer Function (2DTF) rendering in base a 360 ° film di rotazione di un mouse tipo selvatico Imagevis3D creati utilizzando il software di elaborazione delle immagini (Imagevis3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software). L'animale è stato iniettato con eXIA160XL e 10 minuti dopo microCT risoluzione di scansione a 93 micron isometrica con le impostazioni menzionati nella sezione metodi.
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