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Costo-efficace metodo per il rilevamento di origine microbica Utilizzando specifici virus umani e animali

DOI:

10.3791/2820

December 3rd, 2011

In This Article

Summary

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Lo studio descrive un metodo conveniente per l'identificazione della fonte di contaminazione fecale / urina o la contaminazione da nitrati in acqua utilizzando qPCR per la quantificazione specifica di virus DNA umano / suini / bovini, adenovirus e poliomavirus, proposti come strumenti di MST.

Abstract

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La contaminazione microbica dell'ambiente rappresenta un rischio significativo per la salute. Classica indicatori batterici fecali hanno dimostrato di avere notevoli limitazioni, i virus sono più resistenti ai processi di inattivazione molti indicatori e standard fecale non informare sulla fonte di contaminazione. Lo sviluppo di metodi economici per la concentrazione di virus da acqua e saggi molecolari facilita l'applicabilità di virus come indicatori di contaminazione fecale e come fonte microbica tracking (MST) strumenti. Adenovirus e poliomavirus sono virus a DNA infettare specie di vertebrati specifici compresi gli esseri umani e sono costantemente escreto nelle feci e / o urine in tutte le aree geografiche studiate. In studi precedenti, abbiamo suggerito la quantificazione di adenovirus umani (HAdV) e poliomavirus JC (JCPyV) mediante PCR quantitativa (qPCR) come indice di contaminazione fecale umana. Recentemente, abbiamo sviluppato saggi qPCR per la quantificazione specifica di poradenovirus cine (PAdV) e poliomavirus bovina (BPyV) come animali indicatori di contaminazione fecale con sensibilità di copie del genoma 1-10 per provetta. In questo studio, presentiamo la procedura da seguire per identificare la fonte di contaminazione nei campioni di acqua di questi strumenti. Come esempio dei risultati rappresentativi, l'analisi dei virus nelle acque sotterranee presenta alti livelli di nitrati è mostrato.

Individuazione di virus in acque inquinate o moderatamente bassa richiede la concentrazione del virus da almeno diversi litri di acqua in un volume molto più piccolo, una procedura che di solito comprende due fasi concentrazione in serie. Questa procedura alquanto complesso e la variabilità osservata in recuperi virale ostacolare in modo significativo l'elaborazione simultanea di un gran numero di campioni di acqua.

Al fine di eliminare il collo di bottiglia causato dai due procedure dettagliate abbiamo applicato un passo protocollo sviluppato in Studie precedentes ed applicabile ad una varietà di matrici acqua. La procedura prevede: l'acidificazione di dieci litri di campioni di acqua, flocculazione da latte scremato, sedimentazione dei materiali flocculato, la raccolta del precipitato e centrifugazione, risospensione del precipitato in 10 ml di tampone fosfato. Il concentrato virale è utilizzato per l'estrazione di acidi nucleici virali e l'adenovirus specifico e poliomavirus di interesse sono quantificati da qPCR. Elevato numero di campioni può essere contemporaneamente analizzate con questo metodo a basso costo concentrazione.

La procedura è stata applicata per l'analisi delle acque di balneazione, l'acqua di mare e di acqua di fiume e in questo studio, presentiamo i risultati analizzando campioni di acque sotterranee. Questo high-throughput metodo quantitativo è affidabile, semplice e conveniente.

Protocol

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1. Concentrazione delle particelle virali presenti nei campioni di acqua

  1. Raccolta e condizionamento dei campioni di acqua
    1. Raccogliere un minimo di 2 repliche di 10 litri per campione in contenitori di plastica con fondo piatto e un campione in più come un controllo di processo. Questo ultimo esempio sarà arricchito con una quantità nota di particelle virali e utilizzato come controllo.
      Nota: Si raccomanda di avere particolari materiali utilizzati (bottiglie, tubi, ecc) per i campioni a spillo.
    2. Controllare la taratura del conduttimetro e ricalibrare se necessario. Preparare un controllo negativo utilizzando l'acqua del rubinetto in p....

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Discussion

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La procedura descritta potrebbe soddisfare le condizioni per un metodo adatto per routine laboratori ambientali e sanitarie: riproducibile, affidabile, semplice e conveniente. Il protocollo è semplice, ma che devono essere seguite attentamente. Bassa conducibilità nei campioni senza aggiungere la concentrazione richiesta di sali di acqua di mare artificiale ridurrebbe drasticamente il recupero di virus come sarebbe il caso se il tempo di agitazione per la flocculazione è significativamente ridotto (meno di 5 ore p.......

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Disclosures

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Due domande di brevetto sono state depositate nel 2009 per proteggere la proprietà intellettuale dei protocolli per la quantificazione della PAdV e BPyV.

Acknowledgements

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Questo lavoro è stato parzialmente sostenuto dal governo spagnolo "Ministerio de Educación y Ciencia" (progetto AGL2008-05275-C01/ALI), dall'Unione Europea Quadro di Ricerca 7 progetti finanziati VIROBATHE (contratto n ° 513648), VIROCLIME (contratto n ° 243923 ) e dall'Agenzia catalana di acqua, Agencia Catalana de l'Aigua (ACA), Departament de controllo i Millora dels Ecosistemes Aquatics. Durante lo studio ha sviluppato Marta Rusiñol era un collega del governo catalano "AGAUR" (FI-DGR).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Nome del reagente Azienda Numero di catalogo Commenti
Centrifuga ad alta velocità (8.000 xg) Berckman Coulter Avanti J-20XP
pH-metro, termometro e conduttimetro Afora LPPC3003
Tubi di plastica 100-200 cm di lunghezza DeltaLab 350059
Pipette graduate sterili monouso Labclinics PN10E1
Sterili tubi di plastica di 1,5 e 10-15 ml (Eppendorf, Falchi, ecc) Afora KA298/00
Pentole centrifuga (500 ml) Fisher Scientific SE5753512
Agitatori magnetici e magneti (uno percampione) Fisher Scientific 10510
Contenitori di vetro o plastica, che ha fondo piatto per consentire l'uso di agitatori magnetici DeltaLab 191642
Una pompa peristaltica per la rimozione del surnatante (o un getto d'acqua pompa del vuoto) Watson-Marlow 323E / D
Timer per lo spegnimento l'agitazione dopo 8-10 ore DeltaLab 900400
Acido cloridrico (1N e 0,1 N) Panreac 141020.1611
Idrossido di sodio (1N) Panreac 131687.1211
Artificiale con acqua di mare mare sali Sigma S9883
Latte scremato (SM) Difco 232100
Tampone fosfato a pH 7, 5 01:02 v / v di sterile Na 2 HPO 4 0,2 M e NaH 2 PO 4 0,2 M a pH 7,5
Tiosolfato Panreac 121879.1209 Fai una soluzione al 10% in acqua
QIAamp Viral RNA Mini Kit Qiagen 52904
96-pozzetti di reazione ottico (500 unità) Applied Biosystems 43426659
Ottico copre adesivo (100 unità) Applied Biosystems 4311971
TaqMan Ambientale PCR Master Mix 2x Applied Biosystems 4396838

References

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  1. Bofill-Mas, S., Clemente-Casares, P., Major, E. O., Curfman, B., Girones, R. Analysis of the excreted JC virus strains and their potential oral transmission. J. Neurovirol. 9 (4), 498-507 (2003).
  2. Bofill-Mas, S., Albinana-Gimenez, N., Clemente-Casares, P., Hundesa, A., Rodriguez-Manzano, J., Allard, A., Calvo, M., Girones, R.

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Microbial Source TrackingVirus ConcentrationSkimmed Milk FlocculationQuantitative PCRAdenovirus DetectionPolyomavirus QuantificationWater Sample AnalysisNucleic Acid ExtractionFecal Contamination MarkersHigh throughput Method

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