Articolo metodologico

Targeting di nanoparticelle funzionalizzate del cancro ovarico: una tecnica per facilitare l'assorbimento dell'agente di contrasto di nanoparticelle coniugato con acido folico da parte delle cellule di cancro ovarico

30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Lusk, J. F. et al. Rilevamento del cancro ovarico utilizzando la citometria a flusso fotoacustica. J. Vis. Exp. (2020)

In questo video, dimostriamo una tecnica per facilitare l'internalizzazione delle nanoparticelle di solfuro di rame ricoperte di acido folico (NP CuS). Le NP di CuS funzionalizzate con acido folico hanno la capacità di colpire i recettori dei folati che sono sovraespressi in molte cellule di cancro ovarico.

Protocollo

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1. Sintesi e funzionalizzazione di nanoparticelle

ATTENZIONE: Tutta la sintesi dovrebbe avvenire in una cappa chimica ventilata.

  1. Prima della sintesi, filtrare circa 300 ml di acqua deionizzata (DI) attraverso un filtro sterile da 0,2 μm.
  2. Pulire un pallone di vetro a fondo tondo da 250 ml con una soluzione detergente e risciacquare con acqua deionizzata. Aggiungere 0,0134 g di CuCl2 in 100 mL di acqua deionizzata per creare una soluzione da 1 mM.
  3. Aggiungere 0,015 g di acido folico (FA) alla soluzione di CuCl2 e mescolare per ~5 minuti utilizzando un'ancoretta magnetica.
  4. Aggiungere Na2S·9H2O (0,024 g in 100 μL di acqua deionizzata) in circa 10 s alla miscela di reazione utilizzando una pipetta da 200 μL.
    nota: Dopo l'aggiunta di Na2S·9H2O, la soluzione cambierà colore da un giallo chiaro a un marrone scuro.
  5. Chiudere la reazione e immergerla in un bagno d'olio, impostato a 90 °C, e continuare a mescolare con un'ancoretta magnetica. Dopo circa 15 minuti, o quando il bagno d'olio ha raggiunto gli 85-90 °C, lasciare che la reazione proceda per un'altra ora. La tua miscela dovrebbe gradualmente diventare di un colore verde scuro.
    nota: Assicurarsi di sfiatare il sistema durante il riscaldamento della miscela di reazione per evitare l'accumulo di pressione.
  6. Rimuovere il recipiente di reazione dal bagno d'olio e raffreddarlo brevemente a temperatura ambiente per circa 10-15 minuti prima di trasferirlo in un bagno di ghiaccio.
  7. Una volta che la miscela di reazione si è raffreddata al di sotto di 20 °C, regolare il pH a 10 utilizzando 1M NaOH per sciogliere l'acido folico rimanente in soluzione.
  8. Purificare la miscela di reazione FA-CuS utilizzando una colonna di centrifugazione da 30 kDa. Aggiungere la soluzione in lotti da 15 mL alla colonna e centrifugare a 3,082 x g per 15 min.
  9. Una volta che tutta la miscela di reazione è stata concentrata, ricombinare le frazioni concentrate e lavare 4 volte con 15 mL di pH 10 NaOH nella colonna di centrifugazione da 30 kDa.
  10. Per le misurazioni di massa, prelevare 1/3 della soluzione (~66 μL) e dividerla in tre fiale di vetro. Asciugare in forno sottovuoto per una notte a 40 °C sotto un vuoto di ~27 mmHg.
  11. Sciogliere gli altri 2/3 di soluzione concentrata in 250 μl di PBS e conservare a 4 °C fino a nuovo utilizzo.
  12. Prima di utilizzare le NP FA-CuS, sonicarle per 30 minuti in un sonicatore da bagno ad alta velocità.

2. Assorbimento delle NP FA-CuS da parte delle cellule di cancro ovarico

  1. Prima dell'incubazione con NP di FA-CuS, incubare le cellule SKOV-3 in un pallone T75 con 8-15 mL di terreno RPMI-1640 privo di acido folico con il 10% di FBS e l'1% di penicillina/streptomicina per almeno 24 ore.
  2. Seminare le cellule in 0,5 mL di terreno di coltura completo RPMI-1640 privo di acido folico a una densità di 0,1 x 106 cellule/mL in una piastra a 24 pozzetti.
  3. Il giorno seguente, incubare le cellule con 400 μg/mL di NPS FA-CuS in 0,5 mL di terreno di coltura completo RPMI-1640 privo di acido folico per 2 ore.
  4. Dopo questa incubazione, tripsinizzare le cellule con 0,5 mL di tripsina allo 0,25% con EDTA. Aggiungere almeno 1 mL di terreno di coltura completo RPMI-1640 privo di acido folico per neutralizzare la tripsina e centrifugare le cellule a 123 x g per 6 minuti.
  5. Rimuovere il surnatante, risospendere le cellule in 2 mL di PBS e centrifugare a 123 x g per 6 minuti. Eseguire questa fase di lavaggio 2 volte per rimuovere eventuali NP non legate.
  6. Risospendere le cellule in 1-2 mL di PBS con una soluzione Tween al 2%.
  7. Contare le cellule utilizzando un emocitometro e il blu di tripano. Inoltre, diluire le cellule se la conta delle cellule è troppo alta. Diluire le cellule in PBS con il 2% di Tween alla concentrazione scelta per la rilevazione.
  8. Le cellule sono ora pronte per essere analizzate dal sistema PAFC.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
0,025% tripsina con EDTA Corning25-053-CL
Filtri centrifughi Amicon Ultra-15 MilliporeUFC903024
Filtri centrifughi Amicon Ultra-4 MilliporeUFC803024
Ematocitometro Bright-Line Hausser ScientificAnno 1492
Cloruro di rame (II) ACROS ORGANICS206532500
Bagno di pulizia digitale ad ultrasuoni serie CPX FisherbrandModello CPX3800
Siringhe Norm-Ject da 10 mlHENKE SASS LUPO4100-X00V0
FBS Sigma-Aldrich F2442-500ML
acido folico Sigma-Aldrich F7876-10G
Pbs Alfa Aesar J62036
Penicillina StreptomicinaGIBCO Codice: 15140-122
RPMI Midum 1640 (1x) Senza acido folico Gibco Codice 27016-021
Celle SKOV-3 ATCCHTB-77
Perle di idrossido di sodio BDHBDH9292-500G
Solfuro di sodio nonaidrato Sigma-AldrichCodice 431648-50G
Soluzione di Trypan Blue 0,4% AmrescoK940-100ML
Filtro per siringa sterile da 0,2 μmVWRCodice 28145-477
AlconoxSigma-Aldrich242985-1.8KGDetergente utilizzato per la pulizia della vetreria.
Interpolazione 20 Sigma-AldrichP7949-100ML

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Tag

Nanoparticelle di acido folicotargeting del recettore del folatotecnica di captazione cellulareprotocollo di lavaggio per tripsinizzazioneconteggio cellulare con emocitometrolavaggio con soluzione di Tweenincubazione in terreno RPMIseparazione per centrifugazione

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