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Articolo metodologico

Saggio del metiltiazolil tetrazolio o MTT: un test colorimetrico per misurare la resistenza ai farmaci attraverso la determinazione dell'attività metabolica nelle cellule tumorali

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30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

Fonte: Sciarrillo, R. et al. Utilizzo del sequenziamento dell'RNA per rilevare nuove varianti di splicing correlate alla resistenza ai farmaci in modelli di cancro in vitro. J. Vis. Exp. (2016)

Questo video descrive il test colorimetrico, il test del metil tiazolo tetrazolio (MTT), per misurare la citotossicità indotta da farmaci nelle cellule tumorali e determinare la loro attività metabolica. Questo test si basa sulla conversione metabolica dei sali di tetrazolio in prodotti colorati, che riflettono l'attività mitocondriale delle cellule.

Protocollo

1. Saggio MTT per cellule leucemiche

  1. Preparare in anticipo la soluzione MTT: Sciogliere 500 mg di MTT formazan in 10 mL di PBS e agitare (al riparo dalla luce) con un agitatore magnetico per circa 1 ora. Sterilizzare la soluzione con un filtro da 0,22 μm.
    nota: La soluzione può essere conservata in aliquote da 10 mL a -20 °C. Proteggere dalla luce diretta dopo lo scongelamento.
  2. Preparare in anticipo l'isopropanolo acidificato: aggiungere 50 ml di HCl 2 M a 2,5 L di isopropanolo.
    nota: Conservare la soluzione per almeno un mese a temperatura ambiente prima dell'uso. Se l'isopropanolo non viene acidificato correttamente, potrebbe formare precipitati con il mezzo e compromettere la lettura spettrofotometrica.
  3. Preparare una piastra separata a fondo piatto a 96 pozzetti "Giorno 0" (controllo) per garantire una stima più accurata dell'inibizione della crescita: dedicare da 3 a 6 pozzetti per linea cellulare, aggiungere 30 μL di terreno di crescita e 120 μL di sospensione cellulare (8.000 cellule) per ciascun pozzetto e 150 μL di terreno di crescita ai pozzetti corrispondenti ai bianchi (senza cellule). Procedere dal passaggio 1.9 al passaggio 1.13 di questa sezione per misurare la densità ottica (OD).
  4. Preparare una piastra sperimentale a fondo piatto da 96 pozzetti: dedicare 30 pozzetti alle concentrazioni di farmaci (10 concentrazioni, ciascuna in triplicato), 10 pozzetti alle cellule di controllo e 10 pozzetti al mezzo di controllo senza cellule (bianchi) e preparare un intervallo di diluizione del farmaco di desametasone (Dex) utilizzando il dimetilsolfossido come solvente.
    nota: Per le celle CEM-WT, l'intervallo di diluizione Dex è compreso tra 2 μM e 0,97 nM. Per le celle CEM/R30dm, CEM-R5 e CEM-C3, l'intervallo di diluizione Dex è compreso tra 640 μM e 0,33 nM.
  5. Aggiungere 30 μl da ciascuna diluizione Dex in un pozzetto appropriato della piastra a 96 pozzetti. Assicurati di includere ogni concentrazione in un triplicato.
  6. Aggiungere 30 μl di terreno di crescita ai pozzetti corrispondenti alle cellule di controllo e 150 μl di terreno di crescita ai pozzetti corrispondenti ai bianchi.
  7. Raccogliere cellule a crescita esponenziale e risospendere alla loro concentrazione ottimale di semina.
    nota: Al fine di determinare le concentrazioni ottimali delle cellule iniziali, si raccomanda di valutare il profilo di crescita di ciascuna linea cellulare in una piastra a 96 pozzetti seminando cellule a diverse concentrazioni e misurandole quotidianamente per almeno 4 giorni. Scegliere una concentrazione di semina che impedisca la crescita eccessiva delle cellule dopo 72 ore, in quanto ciò influenzerà l'esperimento saturando i valori di OD. Per CEM-WT, CEM-C5 e CEM-R5, la concentrazione ottimale di semina è di 8.000 cellule/pozzetto, mentre per CEM/R30dm è di 5.000 cellule/pozzetto.
  8. Aggiungere 120 μl di sospensione cellulare a ciascun pozzetto contenente la soluzione farmacologica o il terreno di crescita (pozzetti corrispondenti alle cellule di controllo). Riempire i pozzetti esterni vuoti della piastra con 150 μl di PBS per garantire una buona umidità nella piastra e incubare le piastre per 72 ore a 37 °C con il 5% di CO₂ in un incubatore per colture cellulari.
  9. Aggiungere 15 μl della soluzione MTT a ciascun pozzetto e agitare la piastra per 5 minuti con uno shaker per piastre fino a un massimo di 900 agitazioni/min.
  10. Riposizionare le piastre a 37 °C con il 5% di CO₂ in un incubatore per colture cellulari e incubare per altre 4-6 ore.
  11. Aggiungere 150 μl di isopropanolo acidificato a ciascun pozzetto e mescolare bene con una pipetta multicanale per risospendere completamente tutti i cristalli di formazan. Inizia con i pozzetti vuoti e assicurati di sciacquare bene le punte prima di procedere con un'altra fila del piatto.
  12. Incubare la piastra a temperatura ambiente (RT) per 10 minuti.
  13. Utilizzando un lettore di micropiastre, determinare il diametro esterno a 540 e 720 nm per garantire una misurazione accurata correggendo il diametro esterno di fondo. Quindi, salva i dati in un foglio di calcolo e analizzalo.

2. Analisi dei dati per il saggio MTT

  1. Calcola i valori OD delle celle al "Giorno 0" utilizzando la seguente formula:
    OD Giorno 0 =Celle di controllo OD -Pozzetti bianchi OD medi
  2. Calcolare la percentuale di cellule sopravvissute per ogni concentrazione di farmaco secondo la seguente formula:
    % Cellule trattate = Media [Cellule trattate con OD - Mediadei pozzetti in bianco OD -OD Giorno 0]/[Celle di controllo OD - Mediadei pozzetti in bianco OD -OD Giorno 0]*100
  3. Tracciare la curva dose-risposta (concentrazione del farmaco vs. inibizione della crescita in %).
  4. Calcolare la concentrazione del farmaco che inibisce la crescita delle cellule del 50% (IC50) utilizzando la curva dose-risposta.

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
CCRF-CEMATCC, Manassas, VA, Stati UnitiATCC CCL-119
RPMI-1640Gibco, Carlsbad, CA, Stati Uniti11875093
Siero fetale bovino e vitelloGreiner Bio-One, Frickenhausen, Germania758093
penicillina G streptomicina solfatoGibco, Carlsbad, CA, Stati Uniti15140122
Tris(idrossimetil)-amminometanoSigma Aldrich252859
CELLSTAR Fiasche per colture cellulari 25 centimetri quadratiGreiner Bio-One, Frickenhausen, GermaniaCodice 82051-074
MTT formazanSigma AldrichMotore M2003
Anthos-Elisa-reader 2001Labtec, Heerhugowaard, Paesi BassiSpettrofotometro a piastre UV-Vis a 96 pozzetti
Greiner CELLSTAR Piastre a 96 pozzettites Greiner/SigmaCodice: M0812-100EA
Soluzione salina tamponata con fosfato (NaCl 0,9%)B.Braun Melsungen AG, GermaniaCodice: 362 3140
Soluzione di tripsina/EDTA 100 mlLonza, Basilea, SvizzeraCC-5012

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