Articolo metodologico

Saggio di fagocitosi in vitro: un metodo basato sull'imaging dal vivo per studiare la fagocitosi sinaptosomica mediata da astrociti in tempo reale

8 luglio 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Byun, Y. G., Chung, W. S. Un nuovo test di imaging in vitro dal vivo della fagocitosi mediata da astrociti utilizzando sinaptosomi coniugati con indicatore di pH. J. Vis. (2018)

In questo video, valutiamo la capacità fagocitaria di astrociti purificati in vitro mediante test di imaging dal vivo. Il test funge da efficace piattaforma di screening per identificare i composti chimici che possono migliorare o inibire la capacità fagocitaria degli astrociti.

Protocollo

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1. Saggio di imaging dal vivo per fagocitosi (Figura 1)

  1. Preparare una piastra a 24 pozzetti (o qualsiasi piastra/piastra preparata per l'imaging dal vivo) in cui gli astrociti siano confluenti (generalmente, da 7 a 10 giorni di incubazione dopo la purificazione è l'ideale per stabilizzare le cellule).
  2. Rimuovere il terreno in ogni pozzetto e lavare i pozzetti con 1 mL di soluzione salina tampone fosfato di Dulbco (DPBS), tre volte. Per ridurre al minimo l'esposizione all'aria, lavare rapidamente i pozzetti.
  3. Aggiungere 300 μL di terreno basico per astrociti immunopannati (IP-ABM) con 5 μL di sinaptosomi coniugati con indicatore di pH e fattori aggiuntivi come i terreni condizionati con astrociti immunopannati (IP-ACM) che possono modulare la fagocitosi delle cellule gliali.
  4. Incubare la piastra in un incubatore di CO2 per 40 minuti. Questo passaggio consente ai sinaptosomi coniugati con indicatore di pH di depositarsi sul fondo delle piastre.
  5. Rimuovere il terreno con sinaptosomi coniugati con indicatore di pH non legato e lavare ogni pozzetto con 1 mL di DPBS, tre volte.
    cautela: Non lavare con forza. Per ridurre al minimo l'esposizione all'aria, lavare rapidamente i pozzetti.
  6. Aggiungere 500 μl di IP-ABM con fattori aggiuntivi da testare nei pozzetti.
  7. Portare la lastra a uno strumento di imaging dal vivo e selezionare le posizioni. Regola la messa a fuoco, il tempo di esposizione, la luminosità e la potenza del LED.
    nota: Le impostazioni per il tempo di esposizione, la luminosità e la potenza del LED variano a seconda dell'intensità della fluorescenza e dello scopo dell'esperimento. Nel saggio di imaging dal vivo con sinaptosomi coniugati con indicatore di pH, di solito impostiamo questi valori come segue: esposizione: ~150-200 ms, luminosità: 15 e potenza LED: 4-6.
  8. Imposta il formato dell'immagine, l'intervallo di tempo e il numero totale di cicli per l'imaging dal vivo. Impostare l'intervallo di tempo su 1 o 2 ore a seconda del numero di posizioni selezionate. Si consigliano intervalli di 2 ore quando vengono selezionate più di 150 posizioni per l'imaging dal vivo.
  9. Inizia gli esperimenti di imaging dal vivo.

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Risultati

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Figura 1. Schema del test di imaging dal vivo della fagocitosi.

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Dichiarazioni

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Nessun conflitto di interessi dichiarato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
rosso di pHrodo, estere succinimidilico Sonde Molecula P36600Per la coniugazione dell'indicatore di pH
Siero fetale bovino (FBS) GibcoCodice 16000-044
DMEMGibcoCodice 11960-044
dPBSWelgene LB001-02
Test di imaging in tempo reale per fagocitosi
Tappa Juli NanoEntek
Plugin di Time Series Analyzer V3 https://imagej.nih.gov/ij/plugins/ time-series.html

Ristampe e permessi

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Tag

Fagocitosi degli astrocitiisolamento dei sinaptosomisaggio con indicatore di pHmicroscopia a fluorescenzacoltura di astrocitilegame dei sinaptosomiformazione del fagosomaimaging in tempo reale

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